يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

فحص وعزل بكتيريا C-glycoside-clasinal المعوية

945 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/67346

⸱

فبراير 28, 2025

 ,  ,  ,  , 
1School of Life Sciences, Beijing University of Chinese Medicine

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

تضع هذه الدراسة مجموعة من إجراءات التشغيل القياسية (SOPs) لفحص وعزل البكتيريا المعوية القادرة على شق C-glycosides.

الملخص

توجد جليكوزيدات C بشكل شائع في النباتات الطبية وتظهر تنوعا هيكليا واسعا إلى جانب العديد من الأنشطة الحيوية ، بما في ذلك الأنشطة المضادة للبكتيريا والمضادة للالتهابات والفيروسات ومضادات الأكسدة ومضادات الأورام. في C-glycosides ، يرتبط الكربون الشاذ لجزء السكر مباشرة بمادة aglycone من خلال رابطة الكربون والكربون. بالمقارنة مع O-glycosides ، فإن C-glycosides مستقرة هيكليا ومقاومة للأحماض والإنزيمات. وبالتالي ، فهي عادة ما تكون غير قابلة للكسر ، مما يؤدي إلى ضعف الامتصاص وانخفاض التوافر البيولوجي. ومن المثير للاهتمام أن بعض البكتيريا المعوية يمكن أن تشق الروابط الجليكوسيدية C-C ، مما يوفر نهجا بيولوجيا محددا وصديقا للبيئة لتحلل C-glycosides. في هذه الدراسة ، تم تطوير مجموعة من إجراءات التشغيل القياسية (SOPs) لفحص البكتيريا المعوية القادرة على شق الروابط الجليكوسيدية C-C بناء على نموذج التحول الأحيائي للمركبات الطبيعية. وتشمل الإجراءات التشغيلية الموحدة إعداد وإثراء البكتيريا المعوية، والفحص الموجه نحو النشاط، والتحقق من صحة النشاط في وسط منخفض المصدر الكربوني. توفر هذه المنهجية مرجعا أساسيا للباحثين الذين يهدفون إلى عزل ودراسة هذه البكتيريا الوظيفية المتخصصة.

المقدمة

C-glycosides هي مجموعة من المركبات التي تتميز بالارتباط المباشر لمجموعات الجليكوسيل بالأجليكونات من خلال روابطC-C 1. في الطبيعة ، يتم تحديد أورينتين ، وفيتكسين ، وبورارين ، ومشتقاتها بشكل شائع على أنها C-glycosides2. توجد هذه المركبات بشكل متكرر في النباتات الطبية مثل Trollius chinensis3 وفي مثل Styela plicata4. أظهرت الدراسات أن هذه المركبات توفر فوائد صحية وتظهر أنشطة حيوية مختلفة ، بما في ذلك مضادات البكتيريا5،6،7 ، ومضادة للالتهابات8،9،10،11،12 ، ومضادة للفيروسات3،12،13 ، ومضادات الأكسدة14،15،16 ، و الأنشطة المضادة للأورام17.

نظرا لارتباط مجموعات الجليكوسيل بالهيكل العظمي من خلال روابط C-C ، تظهر هذه المركبات ثباتا عاليا ومقاومة للتحلل المائي الحمضي والأنزيمي18 ، مما يؤدي إلى ضعف الامتصاص وانخفاض التوافر البيولوجي19. يؤثر هذا القيد على تطوير واستخدام جليكوسيدات. ومع ذلك ، فإن الأدوية التي تحتوي على C-glycosides ، والتي غالبا ما يتم تناولها عن طريق الفم ، يتم إزالة الجليكوزيلات بواسطة إنزيمات معينة ، مما ينتج عنه أكثر فعالية من الغليكونات النشطةبيولوجيا 20،21،22،23. في حين أن إنزيمات المضيف الخاصة غير قادرة على إزالة جليكوسيدات C ، فقد تم الإبلاغ عن أن البكتيريا المعوية تستقلب أنواعا معينة. على سبيل المثال ، تقوم بعض البكتيريا المعوية بتحويل المانجيفيرين إلى نوراثيريول ، والذي يظهر فاعلية أكبر كعامل مضاد لمرض السكري أو مضاد للأورام24. على الرغم من هذه النتائج ، تم تمييز عدد محدود فقط من البكتيريا القادرة على شق جليكوسيدات C ، ولا تزال الآليات الأساسية غير مفهومة جيدا. سيؤدي الفحص الفعال والموحد لهذه البكتيريا إلى تعزيز فهم وظائفها وتسريع تطور C-glycosides.

تم تطوير طريقة الغربلة وتحسينها بمرور الوقت لتصبح نظاما ناضجا. تشمل النهج الأساسية الإثراء ، والفحص الموجه نحو النشاط ، والتحقق من صحة النشاط في وسائط المصدر منخفضة الكربون. تسهل هذه الطريقة عزل السلالات المستهدفة النقية ، بالإضافة إلى تحديد الأنواع والبيانات الجينومية وسمات الكائنات الحية الدقيقة المستهدفة. باستخدام هذا النظام ، يمكن فحص البكتيريا المعوية القادرة على شق C-glycosides وعزلها بشكل فعال.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

التزمت التجارب التي أجريت بلوائح احتواء السلامة البيولوجية المحلية والوطنية والدولية المناسبة لمخاطر السلامة البيولوجية المحددة المرتبطة بكل سلالة. تم جمع عينات البراز من متطوعين أصحاء لم يتناولوا أي أدوية لمدة أسبوع واحد على الأقل. وترد تفاصيل الكواشف والمعدات المستخدمة في جدول المواد.

1. بناء نموذج التحول البكتيري المعوي البشري في المختبر

  1. تحضير الوسط اللاهوائي العام (GAM)25
    1. تحضير الحل أ
      1. يمزج 10.0 جم من التربتون ، و 10.0 جم من البيبتون البروتيوز ، و 3.0 جم من بتون الصويا ، و 13.5 جم من مسحوق مصل الجهاز الهضمي ، و 1.2 جم من مسحوق مستخلص الكبد ، و 2.2 جم من مستخلص اللحم البقري ، و 5.0 جم من مستخلص الخميرة في قارورة إرلينماير سعة 500 مل.
      2. أضف 500 مل من الماء المقطر وحركه تحت التسخين حتى تذوب المواد تماما.
    2. تحضير الحل ب
      1. قم بإعداد المحلول B باتباع نفس الإجراء مثل المحلول أ ، باستثناء الجمع بين 3.0 جم من الجلوكوز ، و 5.0 جم من النشا القابل للذوبان ، و 2.5 جم من فوسفات الهيدروجين ثنائي البوتاسيوم ، و 3.0 جم من كلوريد الصوديوم في قارورة إرلينماير سعة 250 مل.
    3. تحضير المحلول ج
      1. قم بإعداد المحلول C باتباع نفس الإجراء مثل المحاليل A و B ، باستثناء الجمع بين 0.3 جم من L-cysteine hydrochloride و 0.3 جم من ثيوغليكولات الصوديوم في قارورة Erlenmeyer سعة 100 مل.
      2. امزج جميع المحاليل الثلاثة في قارورة Erlenmeyer سعة 1000 مل ، واضبط الرقم الهيدروجيني على 7.2 باستخدام محلول هيدروكسيد الصوديوم بنسبة 10٪ ، وأضف الماء المقطر لتكوين الحجم النهائي البالغ 1000 مل.
      3. وزعي الوسط على 250 مل من قوارير Erlenmeyer والأوتوكلاف عند 121 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة. تبرد إلى درجة حرارة الغرفة وتخزن في 4 درجات مئوية.
    4. تحضير وسط لاهوائي عام صلب
      1. أضف 1٪ -2٪ أجار إلى وسط سائل GAM وسخنه حتى يذوب تماما. وزعيها على 250 مل من قوارير Erlenmeyer والأوتوكلاف عند 121 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
    5. تحضير وسط مصدر منخفض الكربون
      1. قم بإعداد وسط المصدر منخفض الكربون باستخدام نفس الإجراء مثل GAM ، ولكن احذف مستخلص الخميرة والجلوكوز والنشا القابل للذوبان.
  2. تحضير الفلورا المعوية البشرية المختلطة
    1. اجمع 1-2 جم من البراز البشري الطازج في أنبوب تجميع براز معقم يمكن التخلص منه مملوء بغاز النيتروجين. أغلق الأنبوب على الفور. أضف 5 مل من وسط GAM ، وختم ، وزراعة عند 37 درجة مئوية لمدة 24 ساعة في حاضنة لاهوائية معقمة.
      ملاحظة: استخدم مقياس الأكسجين لمراقبة مستويات الأكسجين في الحاضنة اللاهوائية ، واستبدال غاز النيتروجين حسب الضرورة للحفاظ على الظروف اللاهوائية.
  3. تنشيط الفلورا المعوية البشرية المختلطة
    1. بعد 24 ساعة ، انقل 0.5 مل من المعلق البكتيري المعوي البشري إلى أنبوب طرد مركزي دقيق جديد يحتوي على 4.5 مل من وسط GAM الطازج.
    2. ختم واحتضان عند 37 درجة مئوية لمدة 24 ساعة في ظل الظروف اللاهوائية للحصول على الفلورا المعوية البشرية المختلطة النشطة.
  4. إعداد الحلول المرجعية
    1. يزن 5 ملغ لكل من أورينتين ولوتولين ، ويذوب بشكل منفصل في 1 مل من DMSO لتحضير المحاليل المرجعية أورينتين واللوتولين بتركيز 5 مجم / مل.
  5. فحص الفلورا المعوية النشطة القادرة على شق جليكوزيدات C
    1. امزج 260 ميكرولتر من الفلورا المعوية المنشطة مع 6 مل من وسط المصدر الطازج منخفض الكربون الذي يحتوي على 40 ميكرولتر من محلول أورينتين المرجعي ، واحتضانه عند 37 درجة مئوية.
    2. قم بتضمين مجموعة تحكم (6 مل من وسط المصدر منخفض الكربون ، و 40 ميكرولتر من المحلول المرجعي للشرق ، و 260 ميكرولتر من المحلول الملحي العادي) ومجموعة فارغة (6 مل من وسط المصدر منخفض الكربون ، و 40 ميكرولتر من المحلول الملحي العادي ، و 260 ميكرولتر من الفلورا المعوية المنشطة).
      ملاحظة: قم بإجراء جميع الاختبارات ثلاث نسخ في حاضنة لاهوائية.
  6. المعالجة المسبقة لحلول التحويل
    1. بعد 24 ساعة و48 ساعة، ضع الماصة 1 مل من محاليل التفاعل في أنابيب طرد مركزي دقيقة سعة 1.5 مل وأجهزة طرد مركزي بسعة 13,400 × جم لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة لإزالة البكتيريا.
    2. أضف 200 ميكرولتر من المادة الطافية إلى 600 ميكرولتر من الميثانول ، واخلطها وأجهزة الطرد المركزي عند 13,400 × جم لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة لإزالة البروتينات.
  7. الكشف عن منتجات التحول
    1. قم بتصفية المادة الطافية باستخدام غشاء صغير يسهل اختراقه 0.22 ميكرومتر وتحليل المرشح عبر كروماتوغرافيا سائلة عالية الأداء (HPLC). إجراء تحليل HPLC على أداة مجهزة بعمود C18 (4.6 مم × 250 مم ، 5 ميكرومتر).
    2. حافظ على درجة حرارة الفرن العمودي عند 40 درجة مئوية ، بمعدل تدفق 1 مل / دقيقة. استخدم الأسيتونيتريل كمرحلة متحركة أ وحمض فورميك 0.1٪ في الماء النقي كمرحلة ب متنقلة.
      ملاحظة: استخدم نظام التدرج الخطي على النحو التالي: 5٪ -55٪ A في 0-20 دقيقة ، 55٪ -95٪ A في 20-25 دقيقة ، 95٪ -5٪ A في 25-30 دقيقة ، و 5٪ A في 30-32 دقيقة.

2. عزل السلالات المفردة من الفلورا البكتيرية المعوية البشرية

  1. تنشيط الفلورا البكتيرية المعوية البشرية المختلطة
    1. قم بتنشيط الفلورا البكتيرية المعوية البشرية المختلطة القادرة على شق الشرق، كما هو موضح في الخطوة 1.3، للحصول على محلول الفلورا البكتيرية المعوية البشرية المنشط.
  2. تحضير ألواح GAM الصلبة
    1. قم بإذابة وسط GAM الصلب المحضر عن طريق التسخين ، واسكبه في أطباق بتري معقمة يمكن التخلص منها في حاضنة لاهوائية. اسمح للوسيط بالتصلب لإعداد ألواح GAM الصلبة.
  3. الفحص الأولي لسلالات مفردة من الفلورا البكتيرية المعوية البشرية
    1. ماصة 100 ميكرولتر من المحلول البكتيري المنشط في أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 1.5 مل يحتوي على 1 مل من المحلول الملحي العادي.
    2. قم بتلقيح حجم مناسب من المحلول البكتيري على طبق بتري باستخدام حلقة تلقيح يمكن التخلص منها. أغلق الطبق واحتضنه في حاضنة لاهوائية.
  4. مراقبة مورفولوجيا المستعمرة
    1. بعد 48 ساعة من الحضانة عند 37 درجة مئوية ، لاحظ حجم وتشكل ولون المستعمرات على اللوحة.
  5. اختيار المستعمرات الفردية للحصول على سلالات واحدة
    1. حدد مستعمرات بكتيرية مفردة مميزة وزرعها في أنابيب طرد مركزي دقيقة سعة 10 مل تحتوي على 4.5 مل من وسط GAM الطازج. احتضان في ظل ظروف لاهوائية عند 37 درجة مئوية لمدة 24 ساعة للحصول على سلالات مفردة.
  6. التحقق من نشاط السلالة الفردية
    1. تحقق من نشاط السلالات المفردة كما هو موضح في الخطوات 1.5 و 1.6 و 1.7. قم بإجراء التحقق من النشاط باستخدام الكروماتوغرافيا السائلة عالية الأداء (HPLC) ووضع علامات على اللوحة25.
  7. تنقية السلالات المفردة من الفلورا البكتيرية المعوية البشرية
    1. قم بتنقية السلالة المفردة النشطة كما هو موضح في الخطوة 2.1. تحقق من نشاطها من خلال تجارب التحويل مع orientin ، باتباع الإجراءات الموضحة في الخطوات 1.5 و 1.6 و 1.7.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم فحص عينات البراز من عشرة متطوعين أصحاء باستخدام تجارب التحويل ، مما أدى إلى عينة واحدة تظهر نشاطا في إزالة الجليكوزيل أورينتين. أكدت هذه النتيجة جدوى فحص العينات النشطة. تم عزل العينة النشطة باستخدام طريقة تعليم اللوحة. بناء على مورفولوجيا وخصائص المستعمرات ، تم اختيار ما يقرب من 18 مستعمرة بكتيرية مفردة ذات لون أصفر أو أبيض وأشكال متنوعة وحواف غير مستوية لمزيد من التحليل. من بين هؤلاء ، أظهرت مستعمرة واحدة فقط القدرة على شق الشرق في مادة الأجليكون ، اللوتيولين. تم تنقية المستعمرة بشكل أكبر من خلال خمسة تكرارات لعملية...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تم وضع إجراء التشغيل القياسي (SOP) لفحص البكتيريا المعوية البشرية القادرة على شق C-glycosides. باستخدام هذه الإجراءات ، تم الحصول على سلالة نشطة نقية بنجاح ، وتم تأكيد خاصية إزالة الجليكوزيلات من خلال اختبارات التحول. يتكون الإجراء التشغيلي الموحد من تحضير وإثراء البكتيريا المعوية ، والفحص الموجه نحو النشاط ، والتحقق من صحة النشاط في وسط مصدر منخفض الكربون.

أهم جانب في عملية الفحص هو استخدام وسيط مصدر منخفض الكربون للحث على النشاط البكتيري وزيادة معدل نجاح الف...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن أصحاب البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

تم دعم العمل من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين 82374134.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
أسيتونيتريلثيرمو فيشر العلميF2408R205HPLC
حاضنة اللاهوائيةشنغهاي CIMO Medical Instrument Manufacturing Co. ، LTDYQX- II
مستخلص لحم البقرBeijing Abxing Biotechnology Co.، LTD01-009BR
مسحوق مصل الجهاز الهضميBeijing Abxing Biotechnology Co.، LTD01-087BR
ثنائي البوتاسيوم فوسفات الهيدروجينبكين للأشغال الكيميائيةM26298AR
أنبوب جمع البراز المعقم القابل للتصرفلانغ فو المحدودة5 مل
قسم المياه المقطرةللمستحضرات الصيدلانية الحيوية ، جامعة بكين للطب
DMSOشركة سيجما ألدريتشWXBD2861VAR
EP أنبوببكين بيودي التكنولوجيا الحيوية ، LTD10 مل / 1.5 مل
Eppendorf الطرد المركزيEppendorf AG5418
الجلوكوزبكين للأعمال الكيميائيةGC205003AR
كروماتوجراف سائل عالي الأداءشركة Shimadzu CorporationLC-20
معقم بالبخار عالي الضغطSanyo Denki Shanghai Co.، LTDMLS-3780
Innoval C18 < / sub>العمود الكروماتوجرافيAgela Technologies Co.، LTD4.6 مم & مرات ؛ 250 مم ، 5 & micro ؛ م
L-سيستين هيدروكلوريدبكين Abxing التكنولوجيا الحيوية المحدودةBGASY01BR
مسحوق استخراج الكبدبكين Abxing Biotechnology Co.، LTD01-085BR
المعاهد الوطنية لوتيولين للرقابةوالدواء>98٪
النمام المغناطيسيIka Werke Co.، LTDRCT أساسي
الميثانولالحرارية فيشر 20240901312 العلميAR
Millipore مرشح غشاءسانغون للتكنولوجيا الحيوية (شنغهاي) المحدودة0.22 وميكرو ؛ L & مرات; 50 مم
OrientinYishiming (بكين) التكنولوجيا الحيوية المحدودة19120601>98٪
PeptoneBeijing Abxing Biotechnology Co.، LTD1685787BR
Petri DishBeijing Biodee Biotechnology Co.، LTD150 مم
كلوريد الصوديومبكين Abxing التكنولوجيا الحيوية المحدودةBN20008AR
الصوديوم ثيوغليكولاتالصوديومشنغهاي جيانغلاي التكنولوجيا الحيوية المحدودةJ031S219019AR
للذوبان النشابكين Abxing التكنولوجيا الحيوية المحدودةS9765BR
فول الصويا Peptoneبكين Abxing التكنولوجيا الحيوية المحدودة2147955BR
TryptoneAgela Technologies Co.، LTD1685787BR
منظف بالموجات فوق الصوتيةكون شان بالموجات فوق الصوتية المحدودةKQ-500DE
مستخلص الخميرةبكين Abxing التكنولوجيا الحيوية المحدودة01-014BR
الصيني التقليدي على الغذاء

المراجع

  1. Zhang, Y. Q., Zhang, M., Wang, Z. L., Qiao, X., Ye, M. Advances in plant-derived C-glycosides: phytochemistry, bioactivities, and biotechnological production. Biotechnol Adv. 60, 108030(2022).
  2. Franz, G., Grun, M. Chemistry, occurrence and biosynthesis of C-glycosyl compounds in plants. Planta Med. 47 (3), 131-140 (1983).
  3. Cai, S., et al. Antiviral flavonoid-type C-glycosides from the flowers of Trollius chinensis. Chem Biodivers. 3 (3), 343-348 (2006).
  4. Shi, X., et al. A flavone C-glycoside from Styela plicata. Biochem Syst Ecol. 86, 103924(2019).
  5. Xiao, J., Capanoglu, E., Jassbi, A. R., Miron, A. Advance on the flavonoid C-glycosides and health benefits. Crit Rev Food Sci Nutr. 56 (Suppl 1), S29-S45 (2016).
  6. Ma, R., Cheng, S., Sun, J., Zhu, W., Fu, P. Antibacterial gilvocarcin-type aryl-C-glycosides from a soil-derived Streptomyces species. J Nat Prod. 85 (10), 2282-2289 (2022).
  7. Le Dang, Q., et al. Desmodinosides A-E: New flavonoid C-glycosides from Desmodium heterocarpon var. stigosum with hepatoprotective and antifungal activity. Fitoterapia. 169, 105609(2023).
  8. Choi, J. S., et al. Effects of C-glycosylation on antidiabetic, anti-Alzheimers disease and anti-inflammatory potential of apigenin. Food Chem Toxicol. 64, 27-33 (2014).
  9. Courts, F. L., Williamson, G. The occurrence, fate and biological activities of C-glycosyl flavonoids in the human diet. Crit Rev Food Sci Nutr. 55 (10), 1352-1367 (2015).
  10. Thao, N. P., et al. Anti-inflammatory flavonoid C-glycosides from Piper aduncum leaves. Planta Med. 82 (17), 1475-1481 (2016).
  11. Kim, M. K., Yun, K. J., Lim, D. H., Kim, J., Jang, Y. P. Anti-inflammatory properties of flavone di-C-glycosides as active principles of camellia mistletoe, Korthalsella japonica. Biomol Ther (Seoul). 24 (6), 630-637 (2016).
  12. Chen, Y. L., Chen, C. Y., Lai, K. H., Chang, Y. C., Hwang, T. L. Anti-inflammatory and antiviral activities of flavone C-glycosides of Lophatherum gracile for COVID-19. J Funct Foods. 101, 105407(2023).
  13. Wang, Y., et al. Flavone C-glycosides from the leaves of Lophatherum gracile and their in vitro antiviral activity. Planta Med. 78 (1), 46-51 (2012).
  14. Devkota, H. P., Fukusako, K., Ishiguro, K., Yahara, S. Flavone C-glycosides from Lychnis senno and their antioxidative activity. Nat Prod Commun. 8 (10), 1413-1414 (2013).
  15. Stark, T. D., et al. Isolation and structure elucidation of highly antioxidative 3,8-linked biflavanones and flavanone-C-glycosides from Garcinia buchananii bark. J Agric Food Chem. 60 (8), 2053-2062 (2012).
  16. Stark, T. D., Germann, D., Balemba, O. B., Wakamatsu, J., Hofmann, T. New highly in vitro antioxidative 3,8-linked biflav(an)ones and flavanone-C-glycosides from Garcinia buchananii stem bark. J Agric Food Chem. 61 (51), 12572-12581 (2013).
  17. Xiao, J., Capanoglu, E., Jassbi, A. R., Miron, A. Advance on the flavonoid C-glycosides and health benefits. Crit Rev Food Sci Nutr. 56 (Suppl 1), 29-45 (2016).
  18. Xie, K., Zhang, X., Sui, S., Ye, F., Dai, J. Exploring and applying the substrate promiscuity of a C-glycosyltransferase in the chemo-enzymatic synthesis of bioactive C-glycosides. Nat Commun. 11 (1), 5162(2020).
  19. Liu, L., et al. Characterization of the intestinal absorption of seven flavonoids from the flowers of Trollius chinensis using the Caco-2 cell monolayer model. PLoS One. 10 (3), e0119263(2015).
  20. Xu, M., et al. Mechanism and application of microbial transformation of glycosides in traditional Chinese medicine. World Sci Technol. 2, 24-27 (2006).
  21. Xie, L., et al. Comparison of flavonoid O-glycoside, C-glycoside and their aglycones on antioxidant capacity and metabolism during in vitro digestion and in vivo. Foods. 11 (6), 882(2022).
  22. Hostetler, G. L., Ralston, R. A., Schwartz, S. J. Flavones: Food sources, bioavailability, metabolism, and bioactivity. Adv Nutr. 8 (3), 423-435 (2017).
  23. Xiao, J. Dietary flavonoid aglycones and their glycosides: which show better biological significance. Crit Rev Food Sci Nutr. 57 (9), 1874-1905 (2017).
  24. Hasanah, U., Miki, K., Nitoda, T., Kanzaki, H. Aerobic bioconversion of C-glycoside mangiferin into its aglycone norathyriol by an isolated mouse intestinal bacterium. Biosci Biotechnol Biochem. 85 (4), 989-997 (2021).
  25. Yang, X., Xu, W. Establishment of model and standard operation procedure for biotransformation of chemical constituents of traditional Chinese medicine by human intestinal bacteria. China J Chin Mater Med. 36 (1), 19-26 (2011).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

تحلل سي-جليكوزيدالمسح البكتيريعزل البكتيرياوسط منخفض الكربونالحضن اللاهوائيتحليل الكروماتوغرافيا السائلة عالية الأداءفلورا الأمعاء البشريةمورفولوجيا المستعمراتنشاط إزالة الجليكوزيل
فحص وعزل بكتيريا C-glycoside-clasinal المعوية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.