ملاحظة: قبل تحضير المستخلص ، تم غسل مادة اللحاء التي تم الحصول عليها مرتين باستخدام الماء منزوع الأيونات وتجفيفها في مكان مظلل. تم تخزين اللحاء المجفف في الظل في حاوية محكمة الإغلاق.
1. تحضير مستخلص لحاء Eucommia ulmoides
- يقطع اللحاء الذي تم جمعه من شجرة Eucommia ulmoides إلى قطع صغيرة باستخدام المقص.
- اغسل مواد اللحاء المفرومة مرتين بالماء المقطر المزدوج.
- جفف قطع اللحاء تحت 37 درجة مئوية لمدة 24 ساعة في ظروف مظللة.
- اضبط مدة عملية التجفيف بناء على كمية اللحاء المستخدمة في الدراسة. تأكد من تجفيف اللحاء تماما قبل تقطيع اللحاء إلى قطع صغيرة. تجنب أشعة الشمس المباشرة.
- انقل 20 جم من اللحاء المجفف بالظل إلى قارورة مخروطية تحتوي على 220 مل من الماء المقطر المزدوج المعقم وسخنها على حرارة 130 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة.
- يتغير لون محلول التفاعل إلى الأصفر الفاتح. تحدث التغييرات في لون المحلول بعد 10 دقائق. اترك المحلول يسخن لمدة 10 دقائق أخرى. اضبط حجم الماء المقطر المزدوج بناء على كمية العينة.
- قم بتخزين المستخلص الخام المحتوي على البولي إيزوبرين عند 4 درجات مئوية لاستخدامه مرة أخرى. يشير تكوين هيكل يشبه الخيط إلى وجود مادة البولي إيزوبرين في المستخلصات.
2. التخليق الحيوي لجسيمات ZnO النانوية بوساطة اللحاء
- أضف 1 م من نيترات الزنك ثنائي هيدرات الزنك (NO3) 2 إلى 50 مل من الماء منزوع الأيونات في قارورة مخروطية سعة 500 مل. يقلب باستمرار باستخدام التقليب المغناطيسي (60 دورة في الدقيقة). يستغرق الزنك (NO3) 2 30 دقيقة ليذوب تماما.
- أضف 15 مل من مستخلص لحاء E. ulmoides بالتنقيط إلى 20 مل من محلول ثنائي هيدرات نترات الزنك 1 M (Zn (NO3) 2).
- ضع خليط التفاعل المغطى على محرك مغناطيسي ، وقم بتشغيل النمام ، وقم بالدوران عند (60 دورة في الدقيقة) لمدة 3 ساعات.
- أضف 1 نيوتن هيدروكسيد الصوديوم هيدروكسيد الصوديوم (3 مل) محلول قطريا إلى خليط التفاعل لضبط الرقم الهيدروجيني إلى 9. أضف هيدروكسيد الصوديوم حتى يتحول خليط المحلول إلى اللون الأبيض اللبني ولا يزيد الرقم الهيدروجيني عن 9. يصبح المحلول لونه أبيض حليبي عندما تتشكل جسيمات ZnO النانوية.
- قد يختلف تحضير 1 متر من نيترات الزنك ثنائي هيدرات الزنك (NO3)2 حجم محلول بناء على الاحتياجات التجريبية. تأكد من استخدام مستخلصات اللحاء الطازجة. إذا تجاوز الرقم الهيدروجيني 10 ، فسيؤدي ذلك إلى تراكم الجسيمات النانوية.
- انقل Eu-ZnO-NPs المركبة إلى أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل وقم بطرده عند 100 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية.
ملاحظة: يمكن تجنب الشوائب عن طريق الغسيل الفوري.
- اجمع Eu-ZnO-NPs المغسولة في طبق زجاجي وجففها عند 45-50 درجة مئوية لمدة ساعة واحدة في فرن الهواء الساخن.
ملاحظة: إذا تم الاحتفاظ ب Eu-ZnO-NPs لأكثر من 30 دقيقة ، فقد يؤثر ذلك على الطبيعة الفيزيائية والكيميائية للجسيمات النانوية
3. تأكيد الحجم باستخدام TEM
- قم بإعداد 1 مجم / مل من الجسيمات النانوية في DDH2O وقم بتحميل 5 ميكرولتر من عينة Eu-ZnO-NP في الشبكة النحاسية وانتظر حتى تجف تماما. دوامة العينة قبل التحميل على الشبكة النحاسية.
- قم بتحميل الشبكة النحاسية التي تحتوي على Eu-ZnO-NPs على حامل عينة TEM واحصل على صور بتكبير 50x و 100x.
ملاحظة: يجب التقاط الشبكات باستخدام الملقط خلال هذه الخطوة.
4. تقييم السمية الخلوية
- البذور 1 × 104 HUVECs في كل بئر من صفيحة 96 بئر وضعها في حاضنة 5٪ CO2 37 °C.
- أضف 10 ميكرولتر بتركيزات مختلفة 0 و 10 و 20 و 30 و 40 و 50 ميكروغرام / مل من Eu-ZnO-NPs في الخلايا المتقاربة بنسبة 90٪ واحتضانها لمدة 24 ساعة.
- بعد الحضانة ، قم بإزالة الوسط القديم دون إزعاج الخلايا ، وأضف 10 ميكرولتر من محلول CCK-8 إلى كل بئر يحتوي على 90 ميكرولتر من وسط DMEM الطازج ، واحتضنه في حاضنة ثاني أكسيد الكربونبنسبة 5٪ 2 ، 37 درجة مئوية.
- قم بقياس امتصاص الخلايا المعالجة بمحلول CCK8 عند 450 نانومتر باستخدام مقياس الطيف الضوئي.
ملاحظة: تم قياس الامتصاص على الفور في غضون 15 دقيقة لتجنب التغيرات في الامتصاص.
5. تحضير خلايا HUVEC لمقايسة الخدش
- زرع كمية مناسبة (1 × 105) من HUVECs في 12 صفيحة استزراع آبار تحتوي على وسط النسر المعدل من Dulbecco مع 10٪ مصل بقري جنيني (FBS) و 1٪ بكتيريا بقرية واحتضانها في حاضنة 5٪ CO2 37 °C.
- قبل إجراء فحص الخدش ، تحقق من التقاء باستخدام المجهر المقلوب.
ملاحظة: لإجراء فحص الخدش ، سيتم استخدام 6 ألواح بئر أو 12 لوحة بناء على المتطلبات ، وستختلف كثافة الخلية باختلاف لوحات الاستزراع. يعد استخدام 70٪ -80٪ من الخلايا المتجانسة مثاليا ويوصى به لفحص الخدش. قد يختلف حجم وسيط DMEM بناء على لوحات الاستزراع المستخدمة في الدراسة. على سبيل المثال ، تتطلب 6 ألواح آبار 1-1.5 مل من وسط الاستزراع ، و 12 لوحة بئر تتطلب 0.5-1.0 مل من وسط النمو.
- قم بعمل خدش برفق باستخدام طرف ماصة معقم سعة 200 ميكرولتر في الجرح التمثيلي بعرض جرح يبلغ 200 ميكرومتر.
- تأكد من أن الطرف المستخدم في عمل خدوش على طبقة أحادية الخلية يتلامس مع سطح الخلايا.
ملاحظة: في كل مرة يتم فيها إجراء خدش ، استخدم الطرف المعقم.
- قم بإزالة الوسط الكامل واغسل الطبقة الأحادية HUVEC باستخدام 1 مل من 1x PBS لإزالة الخلايا المنفصلة.
ملاحظة: تأكد من إزالة الخلايا أحادية الطبقة المنفصلة تماما من الآبار المعنية. تأكد من عدم حدوث أي ضرر في المنطقة الناتجة عن الجرح.
- لتقييم إمكانات التئام الجروح لمركبات Eu-ZnO-NPs المركبة ، أضف تركيزات 0 (تحكم) و 10 و 20 ميكروغرام / مل من الجسيمات النانوية Eu-ZnO جنبا إلى جنب مع وسط كامل مع 10٪ FBS في الآبار. حافظ على الألواح التجريبية عند 37 درجة مئوية في حاضنة ثاني أكسيد الكربونبنسبة 5٪.
ملاحظة: لا تزعج طبقة خلية أحادية اللون أثناء إضافة الوسط الجديد الكامل. تأكد من بقاء الخلايا أحادية الطبقة دون إزعاج أثناء الحضانة.
- احصل على صورة مجهرية في 0 ساعة و 24 ساعة باستخدام مجهر مقلوب. استخدم أداة التعليقات التوضيحية لقياس إغلاق الجرح في فترات زمنية مختلفة.
- احسب النسبة المئوية لإغلاق الجرح باستخدام الصيغة التالية: إغلاق الجرح (٪) = [(هجرة الخلايا (بالميكرومتر) عند 0 ساعة - هجرة الخلايا (بالميكرومتر) عند 24 ساعة) / هجرة الخلايا (بالميكرومتر) عند 0 ساعة] × 100.