مقالة منهجية

تصنيع جهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائية بالفأر للعلاج المسبق للوخز بالإبر الكهربائية في نموذج فأر اعتلال عضلة القلب السكري

DOI:

10.3791/67427

⸱

أبريل 18, 2025

 ,  ,  ,  ,  , 
1College of Acupuncture and Orthopedics, Hubei University of Chinese Medicine, 2Department of Acupuncture, Hubei Provincial Hospital of Traditional Chinese Medicine, 3Department of Acupuncture, Affiliated Hospital of Hubei University of Chinese Medicine, 4Hubei Province Academy of Traditional Chinese Medicine

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نقدم هنا بروتوكولا لإنشاء نموذج فأر لاعتلال عضلة القلب السكري وجهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائية للفأر لاستخدام الوخز بالإبر الكهربائية في الفئران ، والذي يمكنه إصلاح الفئران بلطف أكبر أثناء العلاج.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

اعتلال عضلة القلب السكري (DCM) هو أحد مضاعفات مرض السكري التي يمكن أن تتطور إلى قصور القلب وتقتصر على استخدام الأدوية. الوخز بالإبر الكهربائية هو وسيلة فعالة كطريقة علاج خارجية للطب الصيني التقليدي لعلاج اعتلال عضلة القلب السكري. يمكن لجهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائية للفأر إصلاح الفئران بسهولة وبلطف أثناء علاج الوخز بالإبر الكهربائية وكشف نقاط الوخز بالإبر على بطن وأطراف الفئران. توضح هذه المقالة الطرق المستخدمة لتصنيع جهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائية للفأر بجميع الخطوات والاحتياطات ، وإنشاء نموذج فأر لاعتلال عضلة القلب السكري مع تدابير شاملة لتسجيل التغيرات في المؤشرات الكيميائية الحيوية للدم مثل جلوكوز الدم. أجريت التجربة على 3 مجموعات: مجموعة ضابطة ، ومجموعة نموذجية ، ومجموعة معالجة مسبقة ، مع 10 فئران في كل مجموعة. تم علاج مجموعة المعالجة المسبقة عن طريق الوخز بالإبر الكهربائي لنقاط الوخز بالإبر بالإبر مرة واحدة كل يوم بديل لما مجموعه 7 جلسات. بعد الوخز بالإبر الكهربائية ، أظهرت الفئران في مجموعة المعالجة المسبقة انخفاضا في نسبة الجلوكوز في الدم مصحوبا بانخفاض في أعراض مرض السكري.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

اعتلال عضلة القلب السكري (DCM) هو أحد المضاعفات الشائعة لداء السكري الذي يتميز بتغيرات في بنية القلب والوظيفة الانبساطي البطيني والانقباضي لآفة معينة ، مما يتطور إلى قصور في القلب. إنه أحد الأسباب الرئيسية للوفاة لدى مرضى السكري1،2 ، وقد اجتذب انتشاره المتزايد اهتماما واسعا في السنوات الأخيرة3. لقد وجد أن التسبب في هذا المرض يشمل بشكل أساسي مقاومة الأنسولين ، والاستجابة الالتهابية ، والتمثيل الغذائي غير الطبيعي للدهون ، والإجهاد التأكسدي ، وتلف الميتوكوندريا4،5.

في الوقت الحاضر ، يعتمد العلاج السريري لاعتلال عضلة القلب السكري بشكل أساسي على الأدوية عن طريق الفم للتحكم في نسبة الجلوكوز في الدم وتخفيف أعراض أمراض القلب ، ولكن له قيود معينة ، مثل تفاعلات الدواء ، وتأثيرات وظائف الكلى ، والاعتماد على الأدوية طويلةالأمد 6. الوخز بالإبر ، كطريقة علاج خارجية للطب الصيني التقليدي ، له تأثير منظم بشكل أفضل على نسبة الجلوكوز في الدم ودهون الدم والاستجابة الالتهابية لدى مرضى اعتلال عضلة القلب السكري ، والفعالية السريرية رائعة7. الوخز بالإبر ليس له آثار سلبية على وظائف الجهاز الهضمي والكلى ، والعلاج طويل الأمد لا ينتج عنه الاعتماد. تعد نظرية نقاط الوخز بالإبر طريقة مهمة لاختيار واستخدام نقاط الوخز بالإبر في النظرية التقليدية للوخز بالإبر8. يحدد نقاط الوخز بالإبر التي يمكن أن تحسن أعراض الأمراض مثل نقاط الوخز ببياو ، وتسمى نقاط الوخز بالإبر التي يمكن أن تنظم الوظائف الأساسية للجسم المتعلقة بالأمراض وتعالج الأسباب الجذرية للأمراض بنقاط الوخز بالبن. يمكن أن يؤدي تحفيز نقاط الوخز بالإبر Biao و Ben Cuppoints في نفس الوقت مع الوخز بالإبر إلى تحقيق الغرض من علاج الأمراض وكذلك زيادة مقاومة الجسم للأمراض ومنع تفاقم وتكرار الأمراض9. يمكن أن يمنع تفاقم المرض وتكراره. أثبتت الأبحاث الحديثة أن الوخز بالإبر باستخدام نقاط الوخز بالإبر Biaoben فعال لمرض السكري ومضاعفاته العديدة ، بما في ذلك أمراض القلب السكرية ، واعتلال الكلية السكري ، واعتلال الشبكية السكري ، والقدم السكرية ، وما إلىذلك 10،11. يتمثل مخطط اختيار نقاط الوخز بالإبر بما يتماشى مع نظرية نقاط الوخز بالإبر Biaoben في اختيار PC6 (Neiguan) ، والذي يمكنه تنظيم وظائف القلب وتحسين الاستجابة الالتهابية مثل نقطة البر Biao12 ، و ST36 (Zusanli) ، والتي يمكن أن تحسن حالة الجلوكوز في الدم والسكر في الدم ، وتحسين مقاومة الأنسولين ، وتقليل الإجهاد التأكسدي ، مثل نقطة الوخز بالإبرBen 13.

تعد النماذج الحيوانية أداة مهمة في دراسة اعتلال عضلة القلب السكري لأنه ثبت تجريبيا أن نماذج الفئران أو الفئران تحاكي بشكل جيد التشوهات الهيكلية والتغيرات الوظيفية للقلب الناجمة عن اعتلال عضلة القلب السكري وتوفر العينات المطلوبة لمؤشرات الكشف الكيميائي الحيوي لاعتلال عضلة القلب السكري14،15. يمكن أن يؤدي استخدام الأعلاف عالية السكر والدهون جنبا إلى جنب مع محلول Streptozotocin لتحفيز الفئران على تكوين نماذج لمرضى السكري في 4-5 أسابيع ، مما يؤدي إلى تقصير وقت النمذجة بشكل فعال وتحسين معدل النجاح ، ولا توجد متطلبات خاصة لبيئة التربية16،17. اعتلال عضلة القلب السكري هو نوع من اعتلال عضلة القلب الناجم عن تلف بنية القلب ووظيفته الناجمة عن ارتفاع السكر في الدم المستمر. مع إطالة مسار المرض ، يمكن تطوير نموذج أمراض القلب السكري بشكل طبيعي بواسطة نموذج السكري تحت ارتفاع السكر في الدم على المدىالطويل 18،19،20. يشير العلاج المسبق للوخز بالإبر إلى المعالجة المسبقة للفئران بعد تكوين مرض السكري وقبل تكوين إصابة عضلة القلب الواضحة. ومع ذلك ، بعد التحفيز التجريبي المتكرر ، غالبا ما تصبح الفئران متحركة ويصعب شمولها ، وقد تتسبب تقنيات التلاعب التجريبي العنيف في إصابة الفئران أو جعلها مهووسة أو مكتئبة21. لذلك ، هناك حاجة إلى طريقة مناسبة لشل حركة الفئران. تشمل الطرق الشائعة الاستخدام لتثبيت الفأر التخدير والربط22. على الرغم من أن طريقة التخدير يمكن أن تكشف نقاط الوخز بالإبر بشكل أفضل ، إلا أنها قد تؤثر على التوصيل العصبي وتؤثر في النهاية على النتائج التجريبية. طريقة الربط هي طريقة الشلل الجسدي ولا تنتج نفس التأثيرات الفسيولوجية مثل التخدير ، لكن الفئران المقيدة ستعاني من توتر كبير ، وزيادة قوة العضلات ، وتحسين التغوط22،23. بالإضافة إلى ذلك ، لا يمكن للإبرة الوصول بسهولة إلى الموضع المطلوب. هنا ، نقدم جهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائية للفأر الذي يمكن استخدامه لضمان عدم تحرك الفئران وكذلك تعريض نقاط الوخز بالإبر أثناء علاج الوخز بالإبر الكهربائية بحيث يمكن إجراء علاج الوخز بالإبر الكهربائية بشكل مريح وآمن وغير عنيف وبدون عواقب.

توضح هذه المقالة بالتفصيل تصنيع جهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائي بالفأر وإنشاء نموذج فأر لاعتلال عضلة القلب السكري. عالجنا اعتلال عضلة القلب السكري عن طريق المعالجة المسبقة للوخز بالإبر الكهربائي لنقاط الوخز بالإبر Biaoben ، وأظهرنا كيف تم تحقيق عمليته على جهاز تثبيت الفئران ، وقمنا بتقييم التأثير العلاجي للوخز بالإبر الكهربائي لنقاط الوخز بالإبر Biaoben على اعتلال عضلة القلب السكري عن طريق قياس المؤشرات المتعلقة باستقلاب الجليكوليبيد.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تتوافق جميع التجارب على مع مبدأ 3Rs لأخلاقيات وقد تمت مراجعتها والموافقة عليها من قبل لجنة أخلاقيات التجارب على بجامعة هوبى للطب الصيني التقليدي (رقم التصريح الأخلاقي HUCMS00309300). هنا ، تم الحصول على 30 فأرا من فئة SPF من مركز مقاطعة هوبى لمكافحة الأمراض والوقاية منها (شهادة الجودة رقم 42010200009690).

1. تصنيع جهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائية

  1. لتجميع جهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائية ، احصل على أنبوب بلاستيكي مجوف أكريليك شفاف وأداة علاج بالوخز بالإبر الكهربائية كجسم رئيسي (الشكل 1 أ). في الأنبوب ، حافظ على جسم الأنبوب وقم بإعداد علامات تبويب الإغلاق الموجودة في الفتحات في كل طرف. اصنع أخاديد في الأنبوب المجوف في وسط كل طرف وقم بتأمين ألسنة الإغلاق في الأخاديد في كل طرف باستخدام براغي قابلة للدوران يدويا.
  2. في منتصف الأنبوب المجوف ، قم بعمل ثلاثة ثقوب بيضاوية يبلغ طولها حوالي 2 سم وعرضها 1 سم موزعة بجوار بعضها البعض. تستخدم الثقوب الموجودة على كلا الجانبين لسحب الأطراف الأمامية للفأر للتثبيت لعلاج الوخز بالإبر الكهربائية للأطراف الأمامية ، ويمكن استخدام الثقب الموجود في المنتصف لكشف نقاط الوخز بالإبر في المناطق الصدرية والبطنية للفأر لعلاج الوخز بالإبر الكهربائية للمناطق الصدرية والبطنية.
  3. في نهاية الأنبوب المجوف ، قم بعمل ثقب بيضاوي موزع بشكل متماثل على جانبي الأخدود المركزي ، والذي يمكن استخدامه لسحب الأطراف الخلفية للفأر لعلاج الوخز بالإبر الكهربائية للأطراف الخلفية (الشكل 1 ب).
  4. تحقق من سلامة الأنابيب البلاستيكية المجوفة وقم بتثبيت علامات تبويب الإغلاق. حرك ألسنة الإغلاق في جسم الأنبوب حيث تنزلق البراغي في الأخاديد ، مما يضمن أنه يمكنه ضبط طول التثبيت ليناسب طول الماوس.
  5. قم بتشغيل أداة العلاج بالوخز بالإبر الكهربائية وتأكد من تشغيلها. يمكن ضبط كل زر بالضغط عليه مرة واحدة (الشكل 1 ج).
  6. قم بإعداد أداة العلاج بالوخز بالإبر الكهربائية ليتم وضعها بجوار الأنابيب البلاستيكية المجوفة لإجراء علاجات الوخز بالإبر الكهربائية على الفئران. تتكون أداة العلاج بالوخز بالإبر الكهربائية من آلة علاج الوخز بالإبر الكهربائية وعدة أزواج من مقاطع المنشطة. يمكن أن يوفر كل زوج من مقاطع التنشيط قطبين من التنشيط.
  7. عند استخدام المشابك لقص مقبض الإبرة لتنشيط الإبرة ، استخدم مقطعا لإصلاح الإبرة.
  8. تحتوي آلة العلاج بالوخز بالإبر الكهربائية على 11 زرا. استخدم الجزء العلوي 5 لضبط التردد والوقت والشكل الموجي للوخز بالإبر الكهربائية ويستخدم من اليسار إلى اليمين للتردد والوقت والموجة المستمرة والموجة المتناثرة والكثيفة والموجة المتقطعة. استخدم 6 السفلية لضبط القوة الحالية للوخز بالإبر الكهربائية. يحتوي كل من هذه الأزرار على شق تحته لربط مقاطع تنشيطية. يمكن أن يزيد عدد مقاطع التنشيط أو ينقص مع عدد الفئران ، بحد أقصى 6.

2. إنشاء نموذج فأر لاعتلال عضلة القلب السكري

  1. قسم الفئران ال 30 إلى 3 مجموعات حسب طريقة جدول الأرقام العشوائية: مجموعة تحكم ، ومجموعة نموذجية ، ومجموعة معالجة مسبقة ، مع 10 فئران في كل مجموعة. إخضاع ما مجموعه 20 فأرا في المجموعة النموذجية ومجموعة المعالجة المسبقة لإنشاء نموذج اعتلال عضلة القلب السكري. عالج مجموعة المعالجة المسبقة بالوخز بالإبر الكهربائي لنقاط الوخز بالإبر Biaoben.
    ملاحظة: تم بناء النموذج على مدى فترة طويلة من الزمن ، ويتطور اعتلال عضلة القلب الكبير بعد 16 أسبوعا. وقت العلاج لدينا من اليوم 36 إلى اليوم 70 (الأسبوع 6 إلى الأسبوع 10). تم اختيار هذا العلاج بعد الإصابة بمرض السكري ولكن قبل تلف عضلة القلب الكبير. في نهاية 6 أسابيع ، تمت إزالة قلب الفأر ووجد أنه يعاني من اعتلال عضلة القلب السكري الكبير. لذلك ، فإن اختيار العلاج في هذه المرحلة الزمنية ينتمي إلى فئة المعالجة المسبقة.
  2. أطعم الفئران في المجموعة الضابطة بالطعام الطبيعي لمدة 16 أسبوعا. قم بإطعام الفئران في المجموعة النموذجية ومجموعة المعالجة المسبقة بنظام غذائي غني بالدهون وعالي السكر لمدة 16 أسبوعا للحث على حالة التمثيل الغذائي التي تشبه إلى حد كبير حالة مرض السكري. تركيبة العلف عالية الدسم والسكر هي 67.0٪ حساء قياسي, 10.0٪ شحم الخنزير, 2.5٪ كوليسترول, 20.0٪ سكروز, و 0.5٪ أملاح صفراء.
  3. حقن محلول الستربتوزوتوسين داخل الصفاق لإنشاء نموذج اعتلال عضلة القلب السكري في الفأر.
    1. تحضير محلول 1٪ من Streptozotocin في اليوم 29. قم بإذابة الستربتوزوتوسين في مخزن مؤقت محضر عن طريق خلط حامض الستريك مع سترات ثلاثي الصوديوم (الرقم الهيدروجيني = 4.4).
    2. قدم الماء فقط ولا طعام لمدة 12 ساعة في اليوم 29. بعد ذلك، أعط كل فأر حقنة واحدة داخل الصفاق بمقدار 150 ملغم/كغ من محلول الستربتوزوتوسين كما هو موضح أدناه.
    3. أمسك الماوس من الذيل باليد اليمنى وأخرجه من القفص. ضع الماوس على سطح القفص واسحب ذيله برفق للخارج. شل حركة الماوس باليد اليسرى واقلبه لكشف البطن.
    4. حقن الماوس داخل الصفاق باستخدام اليد اليمنى بحقنة سعة 1 مل محضرة بالكمية المناسبة من محلول Streptozotocin المسحوبة بالفعل.
  4. إجراء علاج الوخز بالإبر بواسطة نقاط الوخز بالإبر Biaoben.
    1. حدد نقاط الوخز بالإبر وفقا لنظرية نقاط الوخز بالإبرBiaoben 13 بما في ذلك PC6 و ST36 الثنائيين. بالنسبة لمجموعة المعالجة المسبقة ، قم بإجراء الوخز بالإبر في اليوم 36 ، مرة كل يومين ليصبح المجموع 18 علاجا ، مع استمرار العلاج لمدة 5 أسابيع (من اليوم 36 إلى اليوم 70 ؛ الشكل 2).
      1. نقطة الوخز بالإبر Biao: حدد PC6 الثنائي كنقطة الوخز بالإبر Biao ؛ يقع PC6 على الجانب الإنسي من الطرف الأمامي ، بين الغرز الزندية الشعاعية على بعد حوالي 3 مم من مفاصل الرسغ. بن الوخز بالإبر: حدد ST36 الثنائي كنقاط الوخز بالبن. يقع ST36 في الجانب الخلفي الجانبي لمفصل الركبة ، على بعد حوالي 2 مم تحت الحدبة الشظوية.
    2. أمسك الماوس ، واضغط على ذيله ، وضعه على سطح القفص. حافظ على فم الأنبوب البلاستيكي المجوف الأكريليكي بزاوية 30 درجة على المستوى الأفقي ، مع مواجهة الفتحة الصغيرة في الوسط للأرض وفم الأنبوب محاذاة رأس الماوس.
    3. استيعاب رأس الماوس في فم الأنبوب. قم بتدوير رأس الماوس ببطء في الأنبوب باستخدام حركة إرادية ودفع طفيف. ربتي برفق على أرداف الماوس بحيث يتم دفع الماوس بشكل مستقل وكامل في الأنبوب.
    4. اضبط ألسنة الإغلاق ، وارفع ذيل الماوس من الأخدود ، وشد الجوز ، واستخدم ألسنة الإغلاق في الأطراف العلوية والسفلية لتقييد حركة الماوس. في هذه المرحلة ، لم يعد بإمكان الماوس التحرك بحرية في جسم الأنبوب.
    5. استخدم الملقط لسحب الأطراف الأربعة للفأر برفق من كل من الثقوب الأربعة الصغيرة على كلا الجانبين. بعد سحب الأطراف الأربعة من الثقوب الصغيرة ، قم بتثبيتها برفق على الجزء الخارجي من جسم الأنبوب. في هذه المرحلة ، لم يعد من الممكن إزاحة أطراف الفأر الأربعة.
    6. أمسك مقبض الإبرة المصنوع من الفولاذ المقاوم للصدأ القابل للتصرف (0.3 مم × 13 مم) بإصبع الإبهام والسبابة باليد اليمنى وأمسك أنبوب الأكريليك والفئران غير المتحركة فيه باليد اليسرى.
    7. المس وحدد مكان وجود PC6 و ST36 بالإصبع الأوسط لليد اليمنى ، ثم وخز جلد الماوس برفق بطرف الإبرة. أدخل الإبرة المحقونة بشكل غير مباشر بسرعة حوالي 3 مم وقم بإزالة اليد اليمنى بسرعة.
  5. إجراء المعالجة المسبقة للوخز بالإبر الكهربائية
    1. قم بتشغيل جهاز العلاج بالوخز بالإبر الكهربائية واضبط على الموجة المتقطعة ، 1 هرتز. لكل فأر ، قم بإجراء علاج الوخز بالإبر الكهربائية لمدة 15 دقيقة.
    2. استخدم المشبك المنشط المطابق لآلة العلاج بالوخز بالإبر الكهربائية لتثبيت مقبض الإبرة ، مشبك واحد لمقبض إبرة واحد.
    3. اضبط تيار الزر مع توصيل المشبك ب 1 مللي أمبير (الشكل 3).
    4. انتظر لمدة 15 دقيقة وراقب حالة الفئران أثناء المعالجة المسبقة للوخز بالإبر الكهربائية.
    5. في نهاية العلاج ، حرر المشبك وقم بإزالة إبرة الوخز بالإبر. اضبط علامات تبويب الإغلاق وحرر الفئران من جهاز تثبيت الوخز بالإبر الكهربائي.
    6. افحص جسم الفئران بالكامل ولاحظ ما إذا كانت الفئران مصابة أو لديها أي تشوهات.
  6. قم بإجراء علاجات الوخز بالإبر كل يومين بعد 7 أيام من حقن محلول الستربتوزوتوسين لما مجموعه 18 علاجا على تركيبات الوخز بالإبر الكهربائية للفأر من اليوم 36 إلى اليوم 70.
  7. إنهاء التجربة في اليوم 112 (نهاية الأسبوع 16).
    1. التخدير عن طريق الحقن داخل الصفاق من 2٪ بنتوباربيتال الصوديوم وتأكيد التخدير عن طريق استجابة قرصة إصبع القدم. قياس وظيفة القلب للفئران باستخدام تخطيط صدى القلب.
      1. سجل قطر البطين الأيسر الانبساطي (LVEDD) ، وقطر نهاية البطين الأيسر الانقباضي (LVESD) ، والكسر القذفي للبطين الأيسر (LVEF) ، وتقصير البطين الأيسر الجزئي (LVFS).
    2. القتل الرحيم للفئران عن طريق خلع عنق الرحم. قم بإزالة القلب واغسله بمحلول ملحي فسيولوجي واغمره في 4٪ بارافورمالدهايد.

3. تلطيخ الهيماتوكسيلين يوزين (HE)

  1. تجفيف القلب وتضمينه وتقطيعه إلى شرائح وإزالة الشمع منه وإجراء تلطيخ HE وفقا للإجراء القياسي.
  2. لاحظ التغيرات المرضية لأنسجة قلب الفئران تحت المجهر الضوئي.

4. ملاحظات على الفئران

  1. قم بقياس نسبة السكر في الدم باستخدام جهاز قياس نسبة السكر في الدم في الأيام 27 و 36 و 49.
  2. لاحظ مقدار ما تأكله الفئران ، وحدد كمية كمية الماء التي تتناولها وحجم التبول كل يوم ، وسجل تغيرات وزنها.

5. التحليل الإحصائي

  1. اجمع بيانات جلوكوز الدم واستخدم ANOVA أحادي الاتجاه لتحديد الدلالة الإحصائية. حدد الدلالة الإحصائية على أنها < 0.05.
  2. تحديد البيانات من قبل المساعدين المكفوفين عن الظروف التجريبية. عبر عن البيانات كمتوسط ± انحراف معياري.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

اتبعنا الإجراء الموصوف أعلاه وأنشأنا نموذجا للفأر لاعتلال عضلة القلب السكري. كما يتضح من الصور الملطخة ب HE(الشكل 4) ، كان لدى الفئران في المجموعة الضابطة بنية أنسجة عضلة القلب سليمة ، وترتيب منتظم لخلايا عضلة القلب ، ولا توجد آفات واضحة. في المجموعة النموذجية ، تم ترتيب خلايا عضلة القلب بشكل غير منتظم ، وتضررت بعض خلايا عضلة القلب وتفككت (السهم الأسود) ، ولوحظ تسلل واضح للخلايا الالتهابية في الخلالي (السهم الأصفر). يقترح أن الفئران في المجموعة النموذجية مصابة بإصابة عضلة القلب. في مجموعة ال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

في هذه الدراسة ، تم الحصول على الفئران التي كانت تعاني من ارتفاع نسبة الجلوكوز في الدم وظهرت عليها علامات مرض السكري عن طريق الحقن داخل الصفاق لمحلول Streptozotocin ، وهي طريقة فعالة ومعترف بها لنمذجة27. تم اختيار PC6 كنقطة بياو ، وتم اختيار ST36 كنقطة بن وفقا لنظرية نقاط الوخز بالإبرBiaoben 28. كل هذه النقاط موجودة على أطراف الفأر ، لذا فإن أنابيب الأكريليك التي يمكن أن تعرض البطن وتشل حركة الأطراف مناسبة تماما لإبرة هذه النقاط. تم إدخال ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المؤلفون ليس لديهم ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا العمل مدعوم بمنحة من المشروع المشترك لمؤسسة هوبى للعلوم الطبيعية 2022CFD024 ؛ المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين ، رقم 81704142 ؛ جامعة هوبى للطب الصيني التقليدي 2023 مشروع بحث علمي خاص مزدوج من الدرجة الأولى ، 2023ZZXT005 ؛ دراسة آلية الوخز بالإبر الكهربائي لنقاط الوخز بالإبر في بياوبين على تنظيم البتلات الحديدية لخلايا عضلة القلب في الفئران المصابة بإصابة نقص تروية عضلة القلب (MIRI) في إطار المشروع الرئيسي لإدارة مقاطعة هوبى للطب الصيني التقليدي ZY2025D001 ؛ مشروع الابتكار المعرفي التابع لمكتب ووهان للعلوم والتكنولوجيا، رقم 2023020201010172؛ مشروع هندسة المواهب في هوبى شي تشن ، إي وي هان [2024] 256.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
أكريليك بلاستيك مجوفHenan ZhikeZK-GDQ
إبرة الوخز بالإبرHwato0.3 مم × 13 مم
C57BL / 6   الفئرانمركز مقاطعة هوبى لمكافحة الأمراض والوقاية منها حامض
الستريك أحادي الهيدراتSigmaC1909
أداة علاج الوخز بالإبرالكهربائية HwatoSDZ-V
التوازن الإلكترونيHenan ZhikeZK-DST
مقاييس الجلوكوزLifeScanOneTouch VerioVue
شريط اختبار الجلوكوزLifeScanOneTouch Verio
ستربتوزوتوسينSigmaS0130
سترات ثلاثي الصوديوم ثنائي هيدراتSigmaW302600
ملاقطLabshark130302001

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Dillmann, W. H. Diabetic cardiomyopathy. Circ Res. 124 (8), 1160-1162 (2019).
  2. Murtaza, G., et al. Diabetic cardiomyopathy - a comprehensive updated review. Prog Cardiovasc Dis. 62 (4), 315-326 (2019).
  3. Peng, M. L., et al. Signaling pathways related to oxidative stress in diabetic cardiomyopathy. Front Endocrinol. 13, 907757(2022).
  4. Tong, M., et al. Mitophagy is essential for maintaining cardiac function during high fat diet-induced diabetic cardiomyopathy. Circ Res. 124 (9), 1360-1371 (2019).
  5. Jia, G., Demarco, V. G., Sowers, J. R. Insulin resistance and hyperinsulinaemia in diabetic cardiomyopathy. Nat Rev Endocrinol. 12 (3), 144-153 (2016).
  6. Nakamura, K., et al. Pathophysiology and treatment of diabetic cardiomyopathy and heart failure in patients with diabetes mellitus. Int J Mol Sci. 23 (7), 3587(2022).
  7. Ye, Y., et al. Acupuncture reduces hypertrophy and cardiac fibrosis, and improves heart function in mice with diabetic cardiomyopathy. Cardiovasc Drugs Ther. 34 (6), 835-848 (2020).
  8. Zhou, X. L., et al. Effect of acupuncture-moxibustion stimulation of combined "biao-ben" acupoints on autonomic nervous activity and related factors in rats with irritable bowel syndrome diarrhea. Zhen Ci Yan Jiu. 48 (7), 635-642 (2023).
  9. Chen, Q., Liang, F., Wu, S., Lu, W., Wang, H. Theoretic exploration and clinical application of acupoint combination based on biaoben theory. Zhongguo Zhen Jiu. 38 (5), 5053-5059 (2018).
  10. Chen, J., et al. Protective effect and mechanism of electroacupuncture of "biao-ben" acupoints combination for mitochondrial dysfunction in diabetic nephropathy rats. Zhen Ci Yan Jiu. 47 (9), 759-768 (2022).
  11. Wang, K. X., et al. Effect of electroacupuncture of "biao-ben" acupoints on renal function and hemorheology and enos level in patients with early diabetic nephropathy. Zhen Ci Yan Jiu. 47 (1), 46-52 (2022).
  12. Zhang, M., et al. Acupuncture at pc6 prevents cardiac hypertrophy in isoproterenol-treated mice. Acupunct Med. 37 (1), 55-63 (2019).
  13. Chen, Q., et al. Protective effect and metabonomics research of "biao-ben acupoint combination" electroacupuncture in chronic myocardial ischemia model rats. Zhen Ci Yan Jiu. 43 (11), 698-704 (2018).
  14. Pulinilkunnil, T., et al. Cardiac-specific adipose triglyceride lipase overexpression protects from cardiac steatosis and dilated cardiomyopathy following diet-induced obesity. Int J Obes (Lond). 38 (2), 205-215 (2014).
  15. Sverdlov, A. L., et al. High fat, high sucrose diet causes cardiac mitochondrial dysfunction due in part to oxidative post-translational modification of mitochondrial complex ii. J Mol Cell Cardiol. 78, 165-173 (2015).
  16. Marino, F., et al. Streptozotocin-induced type 1 and 2 diabetes mellitus mouse models show different functional, cellular and molecular patterns of diabetic cardiomyopathy. Int J Mol Sci. 24 (2), 1132(2023).
  17. Ren, B. C., et al. Curcumin alleviates oxidative stress and inhibits apoptosis in diabetic cardiomyopathy via sirt1-foxo1 and pi3k-akt signalling pathways. J Cell Mol Med. 24 (21), 12355-12367 (2020).
  18. Wang, H., et al. Inhibition of fatty acid uptake by tgr5 prevents diabetic cardiomyopathy. Nat Metab. 6 (6), 1161-1177 (2024).
  19. Wang, R., et al. Fibroblast growth factor 21 improves diabetic cardiomyopathy by inhibiting ferroptosis via ferritin pathway. Cardiovasc Diabetol. 23 (1), 394(2024).
  20. Xu, H., et al. Types of cell death in diabetic cardiomyopathy: Insights from animal models. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). , (2024).
  21. Miyamoto, T., et al. Repeated cold stress enhances the acute restraint stress-induced hyperthermia in mice. Biol Pharm Bull. 40 (1), 11-16 (2017).
  22. Zhang, H. X., Wang, D. J., Yu, J. C., Han, J. X. Effect of the restriction on the efficacy of acupuncture in mice. Zhen Ci Yan Jiu. 34 (6), 429(2009).
  23. Chen, H. C., et al. Sub-acute restraint stress progressively increases oxidative/nitrosative stress and inflammatory markers while transiently upregulating antioxidant gene expression in the rat hippocampus. Free Radic Biol Med. 130, 446-457 (2019).
  24. Marwick, T. H., et al. Echocardiographic phenotypes of diabetic myocardial disorder: Evolution over 15 months follow-up in the arise-hf trial. Cardiovasc Diabetol. 24 (1), 16(2025).
  25. Fiordelisi, A., et al. L-arginine supplementation as mitochondrial therapy in diabetic cardiomyopathy. Cardiovasc Diabetol. 23 (1), 450(2024).
  26. Li, J. P., et al. Nlrp3 inflammasome-modulated angiogenic function of epc via pi3k/ akt/mtor pathway in diabetic myocardial infarction. Cardiovasc Diabetol. 24 (1), 6(2025).
  27. Racine, K. C., et al. The high-fat diet and low-dose streptozotocin type-2 diabetes model induces hyperinsulinemia and insulin resistance in male but not female c57bl/6j mice. Nutr Res. 131, 135-146 (2024).
  28. Wu, F., et al. Effects of moxibustion of "biaoben acupoint combination" on heart rate variability, atrial natriuretic peptide in the model rats of ibs-d complicated with anxiety. Zhongguo Zhen Jiu. 43 (10), 1139-1147 (2023).
  29. Zhang, S., et al. Research progress on the mechanism of acupuncture on type II diabetes mellitus. Zhen Ci Yan Jiu. 49 (6), 641-649 (2024).
  30. Zhang, Z., et al. Acupuncture-assisted lifestyle intervention improve the metabolic status and spontaneous brain activity of type 2 diabetes mellitus patients: A randomized, clinical trial. Diabetol Metab Syndr. 16 (1), 255(2024).
  31. Jia, X., et al. "Adjusting internal organs and dredging channelon" electroacupuncture glycolipid metabolism disorders in nafld mice by mediating the ampk/acc signaling pathway. Diabetol Metab Syndr. 16 (1), 173(2024).
  32. Li, S., Wang, S., Feng, X., Chang, Y., Yan, D. Biao and ben acupoints regulate mitochondrial function through p2x receptor to improve myocardial ischemia. Altern Ther Health Med. 29 (4), 43-51 (2023).
  33. Guo, J., et al. A new mouse-fixation device for iop measurement in awake mice. Vision Res. 219, 108397(2024).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Mouse Fixation DeviceBlood GlucoseAcupoint StimulationStreptozotocin InjectionCardiac Function IndicesEchocardiography AnalysisMyocardial TissueBiaoben Acupoints

مقالات ذات صلة