تشكل Typha latifolia ، التي تنتشر بشكل أساسي لاجنسيا من خلال الجذور ، تحديات في التجميع بسبب نظام الجذر الواسع. تقدم هذه الورقة طريقة لزراعة T. latifolia من البذور ، مما يسهل الزراعة في المختبر ويوفر إمكانية نمو النبات المعقم والتعزيز البيولوجي الميكروبي المبكر.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
الطريقة المثلى للزراعة والتكبير الحيوي الميكروبي ل Typha latifolia (Cattail)
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
Typha latifolia ، المعروف أكثر باسم كاتيل عريض الأوراق أو البردي الشائع ، له نطاق عالمي ويهيمن على النظم البيئية للأراضي الرطبة في أمريكا الشمالية. في حين أن الأنواع المختلفة من الكاتيل غالبا ما تعتبر غازية في أمريكا الشمالية ، تعتبر T. latifolia الأنواع الأصلية للمنطقة وتوجد في جميع أنحاء القارة بأكملها باعتبارها الأنواع السائدة من Typha . تاريخيا ، خدم Typha وظائف مختلفة ، من مصادر الغذاء إلى مواد البناء. في الآونة الأخيرة ، برزت T. latifolia كنوع بارز للمساعدة في جهود المعالجة الحيوية. مع الاهتمام المتزايد بتطوير أنظمة معالجة الأراضي الرطبة المبنية (CWTS) لمعالجة الملوثات ، من الضروري استخدام تقنيات قابلة للتكرار لزراعة القطط في بيئة معملية. قام العمل المقدم هنا بفحص واختبار معايير النمو المختلفة للزراعة الناجحة ل T. latifolia من البذور. ينطوي الإنبات الناجح لأنواع Typha على الخدش (تمزق طبقة البذور) ، والذي تم تحقيقه باستخدام التقنيات الميكانيكية للإنتاج على نطاق واسع. تبين أن إنشاء البذور المبكر يفضل ظروف نمو منخفضة المغذيات في الأسبوع الأول ، يليه إدخال الأسمدة في الأسابيع اللاحقة لتعزيز البقاء على قيد الحياة بعد الزرع. بالنسبة للتكبير الحيوي الميكروبي للنظام النباتي ، أظهرت النتائج أن نقع البذور في اللقاح يؤدي إلى استعمار أكثر شمولا لأنسجة الجذر وثباتا بكتيريا على المدى الطويل. تم استخدام تقنية تعقيم البذور المحسنة باستخدام مزيج من المبيض والمنظفات لتحسين نجاح استعمار الكائنات الحية الدقيقة. أوعية النمو, سواء معقمة وغير معقمة, مصممة في هذه الدراسة دعم النمو طويل الأجل من T. latifolia في ظل ظروف مختلفة.
المقدمة
كتقنية موفرة للتكلفة والطاقة ، اكتسبت أنظمة معالجة الأراضي الرطبة المبنية (CWTS) شعبية كبيرة لمعالجة الملوثات البيئية1،2،3. تستخدم CWTS العمليات الفيزيائية والكيميائية والبيولوجية لإزالة الملوثات أو تحويلها أو تثبيتها. في حين أن العمليات الفيزيائية والكيميائية التي ينطوي عليها الدوران الكيميائي قد تميزت بشكل جيد منذ نشأة CWTS ، إلا أن تأثير الغطاء النباتي ظل غامضا إلى حد كبير2. في السنوات الأخيرة ، كان هناك تركيز متزايد على فهم الآليات التي تقوم بها النباتات بتحويل الملوثات العضوية وغير العضوية التي قد تكون مثيرة للقلق في مياه الصرف الصحي2،4،5. ومع ذلك ، تعتمد الدراسات الميكانيكية مثل هذه على القدرة على زراعة أعداد كبيرة من النباتات الكبيرة وتفضيل النمو من البذور لضمان أن كل نبات في نفس مرحلة النمو والتطور.
كثيرا ما يتم إنشاء CWTS في أمريكا الشمالية باستخدام الغطاء النباتي الأصلي للأراضي الرطبة الطبيعية في المنطقة ، مثل أنواع Typha و Scirpus و Juncus و Phragmites 6،7. يعتمد اختيار الغطاء النباتي أيضا على الأراضي الرطبة المبنية التي يتم استخدامها ، والتي يمكن أن تختلف في العمق وتدفق المياه ومصادر الركيزة ومصادر المياه (مع أو بدون إعادة التدوير)2. أخيرا ، يؤثر المناخ أيضا على نباتات الأراضي الرطبة ، حيث تفضل المناخات الأكثر برودة النباتات المغمورة بسبب زيادة قدرتها على التكيف8. تحظى أنواع التيفا بأهمية خاصة في الأراضي الرطبة العميقة المبنية على التدفق السطحي نظرا لقدرتها على استعمار البيئة بسرعة والتكيف مع الظروف البيئيةالمتنوعة 9،10.
أفادت مراجعة حديثة للنتائج أنه من بين 87 اختبارا للسمية النباتية باستخدام أنواع Typha ، بدأت 15 دراسة فقط في اختبار نباتات البذور ، ومن بين هؤلاء ، فحصت دراسة واحدة فقط النمو في النباتات الناضجة11. يشير هذا التمثيل الناقص لتجارب القطط من البذور إلى وجود فجوة في الأدبيات المتعلقة بالبروتوكولات التي تهدف إلى وصف زراعة الكاتيل للدراسات المختبرية. تهدف البروتوكولات الموضحة هنا إلى سد هذه الفجوة من خلال تقديم بروتوكول متعمق لنمو Typha latifolia من البذور إلى النبات الناضج في ظل ظروف معقمة وغير معقمة. بالإضافة إلى ذلك ، تناقش هذه الورقة تقنية للتكبير الحيوي البكتيري لأنواع القطط في مرحلة البذور حيث يمكن أن يساعد التلقيح المبكر في الحفاظ على الثبات طويل الأمد للميكروبات الجذرية والنباتية الداخلية التي تم إدخالها.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
1. خدش البذور
- تم الحصول على بذور Cattail من أرض رطبة في كالجاري ، AB ، كندا ، في خريف 2023 (51.11312 درجة شمالا ، 114.39381 درجة غربا). اجمع إزهار الكاتيل في الخريف واحفظه في كيس ورقي في الظلام حتى الاستخدام. إذا كان لا يزال على الساق ، فقم بجمع الإزهار في الربيع ، لكن استعادة البذور ستتضاءل.
- باستخدام مقصات الحديقة ، قم بقطع جذع النبات ~ 2 سم من قاعدة الإزهار. اسحب البذور من الإزهار وضعها في خلاط المختبر حتى يمتلئ حجم الخلاط بربع تقريبا. هذا ما يقرب من 250 مل من البذور غير مضغوطة.
- املأ الخلاط ب 500 مل من ماء الصنبور. حافظ على مسافة 10 سم في الخلاط. امزج بسرعة متوسطة منخفضة لمدة 20 ثانية ثم انقله على الفور إلى دورق كبير سعة 1 لتر. يجب أن يكون الحل الناتج لزجا.
- انقل ما يقرب من 100 مل من حمأة ماء البذور هذه مرة أخرى إلى الخلاط واملأ الخلاط ب 400-600 مل من ماء الصنبور العذب. امزج على سرعة متوسطة عالية لمدة 20 ثانية ثم انقله على الفور إلى كوب طازج سعة 1 لتر.
- املأ الدورق بماء الصنبور حتى 800 مل واتركه لمدة 60 ثانية على الأقل. سوف تغرق بذور الكاتيل المخدوش والقابلة للحياة في قاع الدورق ، وسوف يطفو العمود والمنقار (انظر الشكل 1 للحصول على وصف لهيكل بذور الكاتيل) إلى الأعلى. اغرف الحمأة الموجودة في الجزء العلوي من الدورق واسكب الماء ببطء من الدورق دون إزعاج البذور في الأسفل. انقل البذور إلى دورق سعة 100 مل.
- كرر عملية الخلط على ما تبقى من حمأة الكاتيل من الخطوة 1.5.
- ضع الدورق الذي يحتوي على البذور على طبق تقليب وقم بتدويرها بسرعة متوسطة لمدة 1 ساعة. بعد 1 ساعة ، اغرف أي مادة نباتية تطفو في الجزء العلوي من الدرق.
- صب البذور في قمع Büchner مع ورق ترشيح متصل بمكنسة كهربائية لتجفيف البذور طوال الليل. يمكن تخزين البذور الجافة عند -20 درجة مئوية في أنابيب البولي بروبلين المخروطية سعة 15 مل.
2. الإنبات باستخدام تقنية غير معقمة
- يعد نصف قوة Murashige و Skoog (MS) لوحات وسائط مع 1٪ phytoagar12.
- ضع ما يقرب من 1 مل من البذور الجافة في أنبوب بولي بروبيلين مخروطي الشكل سعة 15 مل واملأه ب 10 مل من ماء الصنبور. قم بالتدوير على شاكر مداري بسرعة منخفضة لمدة 24 ساعة للحث على الإنبات.
- قم بإزالة الماء الزائد بحيث يبقى 3 مل في أنبوب البولي بروبلين المخروطي سعة 15 مل.
- قم بقص طرف ماصة بلاستيكية سعة 1000 ميكرولتر لزيادة حجم التجويف وقم بعمل ماصة محلول البذور بقوة لتعليق البذور داخل طرف الماصة.
- ضع البذور والماء على ألواح أجار MS نصف القوة. حرك الطبق لتوزيع البذور بالتساوي.
- لف الألواح في غشاء مانع للتسرب في المختبر وضعها في غرفة نمو بدورة فاتحة داكنة مدتها 16 ساعة / 8 ساعات عند 23 درجة مئوية و 70٪ رطوبة. احتضان الألواح لمدة أسبوع واحد (حتى أسبوعين) للحث على إنبات البذور.
3. الإنبات باستخدام تقنية معقمة
ملاحظة: تم اختبار بروتوكولات تعقيم البذور المختلفة ومقارنتها. تم تعديل التقنية التي أنتجت أعلى معدلات إنبات أثناء إنتاج بذور معقمة بالكامل من بروتوكول سابق13 وهي موصوفة هنا.
- قم بإعداد ألواح وسائط MS نصف القوة مع 1٪ phytoagar12.
- ضع حجما يبلغ حوالي 1 مل من البذور في أنبوب بولي بروبيلين مخروطي الشكل سعة 15 مل واملأه ب 10 مل من ddH2O. ضعه على شاكر مداري بسرعة متوسطة إلى عالية لمدة 10 دقائق.
- قم بإزالة الماء وأضف 5 مل من محلول بولي سوربات 0.1٪ 20 (محضر في DDH2O) معقم إلى أنبوب البولي بروبلين المخروطي سعة 15 مل. ضعه على شاكر مداري بسرعة متوسطة إلى عالية لمدة 10 دقائق.
- قم بإزالة المحلول وأضف 5 مل من محلول التبييض التجاري بنسبة 30٪ و 0.025٪ محلول بولي سوربات 20 (محضر في ddH2O) المعقم إلى أنبوب البولي بروبلين المخروطي سعة 15 مل. رج العبوة بسرعة متوسطة إلى عالية لمدة 30 دقيقة.
- قم بإزالة المحلول واستبدله ب ddH2O. رج العبوة على سرعة متوسطة عالية لمدة 5 دقائق. كرر لمدة 3 مرات غسول بالماء.
- املأ أنبوب البولي بروبلين المخروطي سعة 15 مل ب ddH2O معقم وقم بتدويره بسرعة منخفضة لمدة 24 ساعة للحث على الإنبات. بعد 24 ساعة ، قم بإزالة الماء الزائد بحيث يبقى 3 مل في الأنبوب البلاستيكي.
- قم بقطع طرف طرف ماصة بلاستيكية سعة 1000 ميكرولتر بشكل معقم وماصة بقوة لتعليق البذور داخل الحافة.
- طبق البذور والسائل على ألواح أجار MS نصف القوة. قم بتدوير الطبق لتوزيع البذور بالتساوي.
- لف الألواح في فيلم مانع للتسرب في المختبر وضعها في غرفة نمو بدورة فاتحة وظلام 16 ساعة / 8 ساعات عند 23 درجة مئوية و 70٪ رطوبة. اترك الأطباق لمدة أسبوع واحد (حتى أسبوعين) للسماح بحدوث الإنبات.
4. تلقيح البذور بالبكتيريا المختارة
- لتلقيح بذور الكاتيل ، اتبع أولا بروتوكول إنبات البذور المعقمة أعلاه حتى الخطوة 3.6 لإنتاج بذور معقمة. قم بإزالة شطف الماء النهائي من أنبوب البولي بروبلين المخروطي سعة 15 مل كما هو موضح في الخطوة 3.6 أعلاه.
- باستخدام المزارع الميكروبية المزروعة بين عشية وضحاها والتي تم تلقيحها من عزلة واحدة أو مجتمع واحد ، قم بقياس OD600 وتطبيعها إلى قيمة امتصاص 1.0 عن طريق التخفيف في وسط الاستزراع. احتضان المزارع لفترة أطول من الزمن إذا لم يتم تحقيق OD600 من 1.0.
ملاحظة: هنا ، تم إنشاء الثقافات من Luteimonas sp. معزولة من جذور النباتات في شمال ألبرتا ومقترنة للتعبير عن بروتين الفلورسنت DsRed للتصور المجهري. - قم بتدوير 1 مل من المزرعة عند 9300 × جم لمدة دقيقتين. قم بإزالة المادة الطافية وأعد تعليق الحبيبات في 1 مل من محلول ملحي مخزن 1x فوسفات. تدور في 9300 × جم لمدة 2 دقيقة.
- قم بإزالة المادة الطافية وإعادة تعليق الحبيبات البكتيرية في 1 مل من ddH2O المعقم.
- في أنبوب بولي بروبلين مخروطي سعة 15 مل ، رج ما يقرب من 1 مل من البذور بسرعة منخفضة لمدة 24 ساعة في 10 مل من تخفيف 1:10 من اللقاح المحضر بنسبة 0.025٪ من السطحي العضوي.
- اتبع ما تبقى من بروتوكول إنبات البذور المعقمة بدءا من الخطوة 3.8.
5. نمو كاتيل غير معقم على التربة
- املأ الأواني بتربة منخفضة المواد العضوية من اختيارك ، مع ترك مسافة 1 سم من أعلى الإناء. قم بترطيب التربة مسبقا بماء الصنبور وقم بعمل ثقوب بحجم 1 سم في التربة.
- باستخدام الملقط ، قم بإزالة الشتلات النابتة لمدة أسبوع واحد برفق من ألواح أجار MS المزروعة كما هو موضح في الخطوة 3 أعلاه ، مع الحرص على عدم إتلاف الجذور. ضع شتلة برفق في كل حفرة في التربة وقم بتغطيتها بالتربة.
- ضع الأواني في صينية واملأها بماء الصنبور إلى مستوى التربة. لكل 10 أواني ، أضف 100 مل من سماد NPK 0.5٪ 20/20/20.
- إلى كل مجموعة من عشرة أواني ، أضف السماد على النحو التالي: الأسبوع 2 - 100 مل من السماد 0.5٪ ، الأسبوع 3 - 100 مل من السماد 1.0٪ ، الأسبوع 4 - 100 مل من السماد 1.0٪.
- بعد 4 أسابيع ، توقف عن الإخصاب الأسبوعي وقم بالتسميد مرة واحدة فقط شهريا باستخدام 100 مل من محلول الأسمدة 1.0٪. في 4 أسابيع ، قم بزرعها في أواني أكبر ، إذا لزم الأمر. تكون النباتات أقل حساسية لنوع التربة في هذه المرحلة ، لذا استخدم أي مزيج.
- استمر في زرع الكاتيل لأنها تتجاوز حاويتها. قم بإزالة أوراق الشجر الميتة بالمقصات. قم بتسميد الكاتيل مرة واحدة في الشهر.
- بالنسبة للتجارب ، قم بزرع الشتلات في وعاء صغير ، عند وضعه في قاع صندوق طرف الماصة الفارغ ، يتم تثبيته على جانبي الصندوق. هذا يسمح بالفيضانات المناسبة للتربة ، وبالتالي محاكاة ظروف الأراضي الرطبة. إذا أجريت تجارب على الكاتيل القديمة ، فقم بتعديل المثل بحيث يمكن غمر الوعاء بالكامل تقريبا في الماء.
6. نمو الشتلات المعقمة
- تصميم غرفة نمو الشتلات
ملاحظة: يتطلب تجميع كل وحدة غرفة نمو الشتلات صندوقين للاستزراع ، وحقنة واحدة بطرف قفل لور ، وفلتر معقم يمكن التخلص منه 0.2 ميكرومتر ، وسيليكون مقاوم للحرارة. انظر الشكل 2 للحصول على تمثيل مرئي لإعداد الغرفة.- قم بإزالة الأغطية من صناديق الاستزراع واستخدم مثقابا يدويا لإنشاء ثقوب قطرها 3.5 سم في وسط الأغطية. استخدم السيليكون المقاوم للحرارة للصق قمم الجبعين معا.
- احفر حفرة بحجم طرف المحقنة (قطر ~ 1 سم) في الزاوية السفلية لأحد صناديق الزراعة. اقطع طرف المحقنة وتخلص من جسم المحقنة.
- استخدم السيليكون المقاوم للحرارة لتثبيت طرف المحقنة في صندوق الثقافة باستخدام خيط قفل Luer على السطح الخارجي للصندوق.
- اترك السيليكون يشفى قبل 24 ساعة على الأقل من الاستخدام.
- نمو معقم في التربة
- اتبع بروتوكول إنبات البذور المعقمة الموضح في الخطوة 3 للحصول على بذور معقمة.
- املأ وحدة غرفة النمو المعقمة بالتربة التي تختارها ، مبللة بماء الصنبور.
- الأوتوكلاف على دورة سائلة مدتها 20 دقيقة ، تغطي طرف قفل الإغراء بورق الألمنيوم. بعد 24 ساعة ، قم بتعقيم النظام مرة أخرى على دورة سائلة مدتها 20 دقيقة. قم بتنفيذ جميع الخطوات اللاحقة في غطاء التدفق الصفحي.
- قم بتوصيل وحدة مرشح 0.2 ميكرومتر بمرفق قفل Luer في غرفة النمو (الشكل 2). افتح غرفة النمو وأضف 500 ميكرولتر من سماد 1٪ 20/20/20 المعقم بالترشيح إلى التربة. امزج التربة بملعقة معقمة. أثناء خلط التربة ، أضف ddH2O معقما للتأكد من ترطيبها بشكل كاف دون التشبع الزائد.
- استخدم شفرة حلاقة معقمة لقطع أجار MS من الألواح التي تحتوي على شتلات عمرها أسبوع واحد إلى أرباع. استخدم ملعقة معقمة لوضع قطعة الأجار على التربة.
- ضع وحدة غرفة النمو في حاضنة نمو النبات في دورة 16 ساعة / 8 ساعات ليلا ونهارا عند 23 درجة مئوية و 70٪ رطوبة.
- نمو معقم في محلول الزراعة المائية
- اتبع بروتوكول الإنبات المعقم الموضح في الخطوة 3 للحصول على بذور معقمة.
- قم بتعقيم صندوق طرف ماصة وأجار MS نصف القوة في دورة سائلة مدتها 20 دقيقة. في غطاء التدفق الرقائقي ، لف الجزء السفلي من ملحق الطرف بغشاء مانع للتسرب مختبري معقم. املأ كل فتحة طرف ماصة بالأجار إلى الأعلى تقريبا.
- أضف ملحق الطرف مرة أخرى إلى صندوق الطرف الذي يملأ الجزء السفلي من الصندوق بمحلول النمو المائي من Hoagland نصف القوة (0.5 ملي مولار NH4H2PO4 ، 3 ملي مولار KNO3 ، 2 ملي كالسيوم (NO3) 2 ، 1 ملي ملي MgSO4 ، 0.023 ملي H3BO3 ، 0.005 ملي مولار MnCl2 · 4 ساعة2O ، 0.0004 ملي من ZnSO4 ·7 ساعة2O ، 0.0002 ملي متر مكعب4 · 5 ساعات2O ، 0.00007 ملي مولار ارتفاع2MoO4 · 1 ساعة2O ، و 0.045 ملي مولار FeSO4 · 7 ساعة2O ، معدلة إلى درجة الحموضة 7.0).
- قم بإزالة الشتلات بعناية من ألواح أجار MS وضعها على أجار MS أعلى الأجار في فتحة الماصة في إدراج صندوق الطرف.
- أغلق غطاء صندوق الأطراف وضعه في حجرة النمو في دورة نهارية وليلا لمدة 16 ساعة / 8 ساعات عند 23 درجة مئوية ورطوبة 70٪.
- عندما تكون النباتات كبيرة جدا بالنسبة لصندوق الأطراف ، قم بزرعها في غرفة نمو الثقافة الموضحة في الخطوة 5.1. للنقل ، قم بإزالة سدادة الأجار بالكامل مع النبات وانقله إلى سدادة رغوية بقطع شعاعي. يمكن وضع سدادة الرغوة بين صندوقي الثقافة ، ويمكن ملء صندوق الثقافة السفلي بنصف قوة Hoagland.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
يوضح الشكل 1 تمثيلا لبذرة Typha التي مرت بعملية الخدش ، جنبا إلى جنب مع بذرة مخدوشة بشكل غير كامل مع إزالة المنقار ، وبذرة غير مخدوشة. تأكد من أن وقت الخلط كاف لإنتاج بذور مخدوشة بالكامل في المقام الأول.
بعد خدش البذور وتجفيفها ، يجب اختبار صلاحية البذور باستخدام تقنية الإنبات غير المعقمة. في نهاية 7 أيام ، يجب أن يكون على ما لا يقل عن 20٪ من البذور جذر ناشئ مع أنسجة نبتة. قد تشير معدلات الإنبات المنخفضة إلى ضعف صلاحية البذور أو ظروف النمو غير الكافية. يم...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
يوفر البروتوكول المقدم هنا دليلا مفصلا لنمو أنواع الكاتيل من البذور للتطبيقات المختبرية. بينما يمكن نشر الكاتيل بسهولة من قصاصات الجذمور ، فإن بدء النباتات من البذور يسمح بالتباين الجيني داخل مجموعة العينات ، ويضمن أن النباتات في مراحل نمو متساوية ، ويوفر الفرصة للاستعمار المبكر لتجارب التقوية البيولوجية الميكروبية. من المهم تحديد الأنواع التي يتم جمعها بشكل صحيح ، لأن إكثار أنواع الكاتيل الأكثر توغلا قد يعزز إزاحة الأنواع المحلية14. علاوة على ذلك ، غالبا ما تقل ا...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
المؤلفون ليس لديهم ما يكشفون عنه.
شكر وتقدير
تم تمويل AZ من قبل جائزة CGS-M للخريجين من مجلس العلوم الطبيعية والهندسة الكندي (NSERC). يتم دعم البحث حول CWTS في مختبر Muench من قبل Genome Canada من خلال منحة مشروع البحوث التطبيقية واسعة النطاق (LSARP) (# 18207) بالشراكة مع Genome Alberta و Genome Quebec.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| 0.2 & مرشح M المعقم | VWR | 514-4126 | |
| 3&برايم;,5&برايم;-ثنائي ميثوكسي-4&برايم;-هيدروكسي أسيتوفينون | مختبرات فيتوتك | S7777 | |
| صناديق الزراعة ذات الأغطية (77 مم &أضع؛ 77 مم &مرة؛ 97 مم) | ميليبور سيغما | V8505 | |
| مادة سيليكون مقاومة للحرارة عالية الحرارة | مجموعة إمبريال للتصنيع | KK0205 | |
| فيلم ختم المختبر | ميليبور سيغما | P7793 | |
| موراشيغي وسكوغ ميديا | مختبرات فيتوتك | M401 | |
| مادة خافضة للتوتر السطحي العضوي السيليكون | مختبرات فيتوتك | S7777 | |
| Phytoagar | جولد بيوتكنولوجي | P1003 | |
| بولي سوربات 20 | روش | 11332465001 |
المراجع
- Ciria, M. P., Solano, M. L., Soriano, P. Role of Macrophyte Typha latifolia in a Constructed Wetland for Wastewater Treatment and Assessment of Its Potential as a Biomass Fuel. Biosys Eng. 92 (4), 535-544 (2005).
- Shelef, O., Gross, A., Rachmilevitch, S. Role of Plants in a Constructed Wetland: Current and New Perspectives. Water. 5 (2), 405-419 (2013).
- Parde, D., et al. A review of constructed wetland on type, treatment and technology of wastewater. Environ Tech Innovation. 21, 101261(2021).
- Abdullah, S. R. S., et al. Plant-assisted remediation of hydrocarbons in water and soil: Application, mechanisms, challenges and opportunities. Chemosphere. 247, 125932(2020).
- Noor, I., et al. Heavy metal and metalloid toxicity in horticultural plants: Tolerance mechanism and remediation strategies. Chemosphere. 303, 135196(2022).
- Vymazal, J. Plants used in constructed wetlands with horizontal subsurface flow: A review. Hydrobiologia. 674 (1), 133-156 (2011).
- Sandoval, L., Zamora-Castro, S. A., Vidal-Álvarez, M., Marín-Muñiz, J. L. Role of Wetland Plants and Use of Ornamental Flowering Plants in Constructed Wetlands for Wastewater Treatment: A Review. Appl Sci. 9 (4), 685(2019).
- Wu, H., et al. Constructed wetlands for pollution control. Nat Rev Earth Environ. 4, 218-234 (2023).
- Yang, Y., Shen, Q. Phytoremediation of cadmium-contaminated wetland soil with Typha latifolia L. and the underlying mechanisms involved in the heavy-metal uptake and removal. Environ Sci Pollution Res. 27 (5), 4905-4916 (2020).
- Leto, C., Tuttolomondo, T., La Bella, S., Leone, R., Licata, M. Effects of plant species in a horizontal subsurface flow constructed wetland - phytoremediation of treated urban wastewater with Cyperus alternifolius L. and Typha latifolia L. in the West of Sicily (Italy). Ecol Eng. 61, 282-291 (2013).
- Sesin, V., Davy, C. M., Freeland, J. R. Review of Typha spp. (cattails) as toxicity test species for the risk assessment of environmental contaminants on emergent macrophytes. Environ Pollution. 284, 117105(2021).
- Murashige, T., Skoog, F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Physiol Plantarum. 15 (3), 473-497 (1962).
- Rogers, S., Beech, J., Sarma, K. S. Shoot regeneration and plant acclimatization of the wetland monocot cattail (Typha latifolia). Plant Cell Rep. 18 (1), 71-75 (1998).
- Tangen, B. A., et al. Distributions of native and invasive Typha (cattail) throughout the Prairie Pothole Region of North America. Wetlands Ecol Management. 30 (1), 1-17 (2022).
- Pieper, S. J., Nicholls, A. A., Freeland, J. R., Dorken, M. E. Asymmetric Hybridization in Cattails (Typha spp.) and Its Implications for the Evolutionary Maintenance of Native Typha latifolia. J Heredity. 108 (5), 479-487 (2017).
- Lansdown, R. V. Typha latifolia. The IUCN Red List of Threatened Species 2017. , (2017).
- Bedish, J. W. Cattail Moisture Requirements and their Significance to Marsh Management. Am Midland Naturalist. 78 (2), 288(1967).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
