مقالة منهجية

تقييم الخصائص المضادة للأكسدة والطاردة للديدان لمستخلصات Tithonia diversifolia ضد بيض الديدان الخيطية المعدية المعوية باستخدام فحوصات في المختبر

DOI:

10.3791/67760

⸱

أغسطس 1, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Multidisciplinary Center for Technological Research, National University of Asunción (CEMIT - UNA), 2Centre of Marine Sciences (CCMAR/CIMAR LA), University of Algarve, 3Department of Food Biochemistry, Biodiversity, Food and Health Group (BIOALSA), Faculty of Chemical Sciences, National University of Asunción (FCQ - UNA), 4Carleton College

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

قيمت هذه الدراسة الأنشطة البيولوجية لمستخلصات Tithonia diversifolia باستخدام طرق قائمة على الجذور ومقايسة تفقيس البيض في المختبر (EHA) لتقييم آثارها على الديدان الخيطية المعدية المعوية في المجترات الصغيرة. تم وصف المنهجية والنتائج الرئيسية ، مع تسليط الضوء على إمكانات هذه المستخلصات في السيطرة على الطفيليات.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تعتبر الأمراض الطفيلية التي تسببها الديدان الخيطية المعدية المعوية (GIN) عوامل مهمة مقيدة للإنتاج الحيواني في جميع أنحاء العالم ، لأنها تضر بشكل كبير برعاية وتزيد من تكاليف الإنتاج. لسنوات ، اعتمدت مكافحة الطفيليات حصريا على استخدام العقاقير الاصطناعية. تم الإبلاغ بشكل متزايد عن مقاومة GIN لمضادات الديدان التجارية في جميع أنحاء العالم. لذلك ، ظهرت طرق بديلة للتحكم في GIN في المزرعة ، بما في ذلك استكشاف النباتات ذات الإمكانات النشطة بيولوجيا. يمكن حصاد Tithonia diversifolia على مدار السنة ، وقد استخدمت جميع أجزاء النبات في الطب الشعبي لمجموعة واسعة من الأمراض. قيمت هذه الدراسة الخصائص المضادة للأكسدة في المختبر للماء و 70٪ من مستخلصات الأسيتون المائية من T. diversifolia الأجزاء الهوائية ، بما في ذلك الأوراق والأغصان والزهور ، باستخدام طرق قائمة على الجذر ، وقيمت إمكاناتها المضادة للديدان من خلال نموذج طفيلي ، باستخدام مقايسة تفقيس البيض (EHA) مع مستخلصات المياه. بالإضافة إلى ذلك ، تم تحديد المحتوى الكلي للبوليفينول للمستخلصات. تسلط هذه النتائج الضوء على T. diversifolia كمصدر طبيعي واعد للمركبات المضادة للأكسدة والديدان.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تعتبر الأمراض الطفيلية التي تسببها الديدان الخيطية المعدية المعوية (GIN) عوامل محددة مهمة للإنتاج الحيواني في جميع أنحاء العالم ، لأنها تضر بشكل كبير برفاهية وتزيد من تكاليفالإنتاج 1. تتأثر العلاقة بين الطفيلي والماشية بعدة عوامل تتعلق بالمضيف ، وهي الخصائص الوراثية لمقاومة وقدرتها على الصمود ، والحالة الغذائية للحيوانات ، ومستوى التطفل ، وإمراضية مجموعات الطفيليات المعنية2.

لسنوات ، اعتمدت مكافحة الطفيليات حصريا على الأدوية الاصطناعية المضادة للطفيليات. ومع ذلك ، أدى الاستخدام المطول والحصري إلى ظهور المقاومة ، مما قلل من فعاليتها والحث على البحث عن استراتيجياتبديلة 3. تم وصف مقاومة الديدان الخيطية لمختلف مضادات الديدان بشكل متزايد في جميع أنحاء العالم ، مما يمثل سيناريو مثيرا للقلق ، خاصة في المناطق الاستوائية4. بالإضافة إلى ذلك ، يدرك المستهلكون بشكل متزايد الحاجة إلى تقليل بقايا الأدوية المضادة للطفيليات في لحوم والبيئة5. لذلك ، ظهرت طرق بديلة لمكافحة طفيليات الديدان الخيطية في المزرعة6.

Tithonia diversifolia هي شجيرة استوائية موطنها أمريكا الوسطى ، ولها خصائص فريدة تجعلها ذات قيمة لأنظمة إنتاج المجترات. يمكن حصاده على مدار السنة ، وقد تم استخدام جميع أجزاء النبات تقليديا في الطب الشعبي من قبل مجتمعات السكان الأصليين لعلاج مجموعة واسعة من الأمراض. موضعيا ، تم تطبيقه للتخفيف من آلام البطن والجروح والأمراض الجلدية واضطرابات العضلات ، بينما تم استخدام الإدارة عن طريق الفم لإدارة الالتهابات والملاريا والحمى والتهاب الكبد والسكري. تسلط هذه التطبيقات العلاجية المتنوعة الضوء على إمكاناتها الطبية الواسعة7.

يلعب الإجهاد التأكسدي دورا مهما في تطور وتطور العدوى الطفيلية ، سواء في الكائن الحي المضيف أو في الكائن الطفيلي الذي يكافح من أجل البقاءعلى قيد الحياة 8. لهذا السبب ، يعد الكشف عن النشاط المضاد للأكسدة أمرا بالغ الأهمية لتقييم النشاط البيولوجي لمستخلصات النباتات الطبية ذات الإمكانات المضادة للديدان. بسبب العدوى الطفيلية ، ينخفض تركيز مضادات الأكسدة في المضيف ، بينما يزداد تركيز منتجات الأكسدة للمكونات الخلوية. في حالة الطفيليات ، يعد الحفاظ على التوازن التأكسدي أمرا ضروريا لإطالة تفاعلها مع المضيف والدفاع ضد الإجهاد التأكسدي المتولد في الكائن الحيالمضيف 9.

تثير الأدلة على تطور مقاومة الديدان وانتشارها السريع مخاوف من أن العلاجات شائعة الاستخدام قد تصبح غير فعالة. لذلك ، يتم استخدام اختبار في المختبر يسمى مقايسة فقس البيض (EHA) لتقييم قابلية أو مقاومة البنزيميدازول (BZ) في الديدان الخيطية المعدية المعوية. يستخدم هذا الاختبار بشكل شائع لتقييم النشاط المضاد للديدان للمستخلصات النباتية على البيض ومقارنة نشاطها كدالة للجرعة. أحد القيود الرئيسية لهذا الاختبار هو التباين في فقس البيض بين الاختبارات. تقتصر صلاحية البويضات على 3 ساعات كحد أقصى ، مما يتطلب انتعاشا سريعا وبدء فوري. على الرغم من ذلك ، قد تختلف نسبة الفقس. لهذا السبب ، ثبت أن 70٪ على الأقل من البيض يجب أن يفقس في المجموعة الضابطة حتى تعتبر النتيجة صالحة10،11. إنه اختبار رخيص وسريع وسهل وقابل للتكرار12،13،14.

يعتمد استخدام المستخلصات النباتية لاستكشاف بدائل للتحكم في GIN على وجود مستقلبات ثانوية وإمكاناتها النشطة بيولوجيا. أحد التحديات في هذا المجال من البحث هو كمية واستقرار المستقلبات الثانوية ، حيث تختلف وفقا للعوامل الحيوية وغير الحيوية ، وكذلك بسبب الإجهاد الكيميائي الناجم عن عملية الاستخراج15،16،17.

افترضت هذه الدراسة أن الاختلافات في الأنشطة البيولوجية (التأثيرات المضادة للأكسدة والطاردة للديدان) يمكن أن تحدث اعتمادا على نوع المذيب المستخدم في الاستخراج ، مما قد يؤثر على تكوين البوليفينول ، وبالتالي نشاطها الحيوي. كان الهدف من هذه المخطوطة هو تحديد الخطوات المتخذة في تقييم المقتطفات باستخدام نموذج في المختبر يمكن تكراره بسهولة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

توافق لجنة أخلاقيات في CEMIT على جميع التجارب التي تنطوي على التلاعب بالحيوانات. تنتمي المانحة بالبيض إلى المزارع التي تتعاون مع CEMIT من خلال توفير عينات البراز لأغراض التشخيص الوقائي. هذه هي أغنام أو ماعز (ليس لها سلالة معينة) ، من أي من الجنسين ، فوق عام واحد من العمر ، ويجب ألا تكون قد تم التخلص منها في غضون 15 يوما قبل جمع العينة. يتم إبلاغ جميع المزارع المشاركة باستخدام العينات لأغراض البحث وتقديم موافقتها على المشاركة في الدراسة. لجمع البويضات ، يتم إخطار المؤسسات القريبة أولا ، وعند الحصول على الإذن ، يتم تنظيم زيارات ميدانية لجمع عينات البراز الطازجة ، مما يضمن المعالجة في غضون ثلاث ساعات. الكواشف والمعدات المستخدمة في هذه الدراسة مدرجة في جدول المواد.

1. تحضير المواد النباتية

  1. حدد موقعا مناسبا لجمع الأنواع النباتية.
  2. اجمع عينتين على الأقل من Tithonia diversifolia لتحديد التصنيف وإعداد المعشبة.
  3. اجمع ما لا يقل عن 1000 غرام من T. diversifolia الأجزاء الهوائية.
  4. تجفيف الكتلة الحيوية المجمعة في درجة حرارة الغرفة (حوالي 26 درجة مئوية ؛ انظر الشكل 1).
  5. طحن الكتلة الحيوية المجففة باستخدام مطحنة كهربائية.
  6. قم بتخزين المادة المطحونة في الثلاجة على حرارة 4 درجات مئوية.

2. تحضير المستخلصات

  1. تحضير مستخلص الماء:
    1. امزج 10 جم من الكتلة الحيوية المجففة مع 100 مل من الماء المقطر عند 100 درجة مئوية.
    2. اترك الخليط ينقع لمدة 24 ساعة تحت الرج المستمر عند 120 دورة في الدقيقة.
    3. قم بتصفية المستخلص من خلال ورق الترشيح (Whatman رقم 5 أو ما يعادله).
    4. جفف المستخلص المصفى بالتجميد.
  2. تحضير مستخلص الأسيتون:
    1. اخلطي 10 جم من المواد النباتية المجففة مع 70٪ أسيتون مائي بنسبة 1: 3.
    2. اترك الخليط ينقع لمدة 24 ساعة تحت الرج المستمر عند 120 دورة في الدقيقة.
    3. قم بتصفية المستخلص من خلال ورق الترشيح (Whatman رقم 5 أو ما يعادله).
    4. جفف المستخلص المصفى بالتجميد.
      ملاحظة: قم بتخزين المستخلصات المجففة بالتجميد عند -20 درجة مئوية لحفظ أفضل (انظر الشكل 2). تأكد من الحصول على ما لا يقل عن 5 جم من المستخلصات المجففة.

3. تحضير محلول المخزون

  1. لفحص مضادات الأكسدة:
    1. قم بإذابة المستخلصات المجففة في المذيبات المقابلة (الماء المقطر أو الأسيتون المائي 70٪) إلى تركيز نهائي يبلغ 10 مجم / مل.
  2. لفحص تفقيس البيض:
    1. تمييع 12 مجم من المستخلصات المجففة بالتجميد في 5 مل من الماء المقطر للحصول على محلول مخزون 2.4 مجم / مل.
    2. تحضير خمسة تركيزات: 1.2 مجم / مل ، 0.6 مجم / مل ، 0.3 مجم / مل ، و 0.15 مجم / مل (انظر الشكل 3).
      ملاحظة: اضبط حجم محلول المخزون بناء على عدد الآبار والألواح المستخدمة. على سبيل المثال ، إذا تم استخدام 48 بئرا بدلا من 12 ، فقم بتقليل الحجم وفقا لذلك ؛ تحضير 6 مجم في 2.5 مل بدلا من 12 مجم في 5 مل.

4. التركيب الكيميائي النباتي

  1. المحتوى الفينولي الكلي للمستخلصات (TPC)
    1. امزج 5 ميكرولتر من العينات مع 100 ميكرولتر من كاشف فولين سيوكالتو (F-C) المخفف 10× في الماء المقطر في ألواح بلاستيكية شفافة سعة 96 بئرا.
    2. احتضن في درجة حرارة الغرفة (RT) لمدة 10 دقائق.
    3. أضف 100 ميكرولتر من محلول كربونات الصوديوم (75 جم / لتر في الماء).
    4. احتضن في RT لمدة 90 دقيقة.
    5. قم بقياس الامتصاص عند 650 نانومتر.
      ملاحظة: عبر عن TPC كمكافئات لحمض الغاليك (GAE). قم ببناء منحنى معايرة باستخدام خمسة تركيزات على الأقل من حمض الغاليك.
  2. إجمالي محتويات الفلافونويد (TFC)
    1. امزج 50 ميكرولتر من المستخلصات مع 50 ميكرولتر من كلوريد الألومنيوم 2٪ في الميثانول في ألواح بلاستيكية شفافة سعة 96 بئرا.
    2. احتضن لمدة 10 دقائق في RT.
    3. قم بقياس الامتصاص عند 405 نانومتر.
      ملاحظة: التعبير عن TFC كمكافئات للكيرسيتين (QE). قم ببناء منحنى معايرة باستخدام خمسة تركيزات على الأقل من الكيرسيتين.
  3. إجمالي محتوى التانين (TTC)
    1. امزج 10 ميكرولتر من المستخلصات مع 200 ميكرولتر من 1٪ DMACA في الميثانول و 100 ميكرولتر من 37٪ حمض الهيدروكلوريك في ألواح بلاستيكية شفافة سعة 96 بئرا.
    2. احتضن لمدة 15 دقيقة في RT.
    3. قم بقياس الامتصاص عند 640 نانومتر.
      ملاحظة: عبر TTC من حيث مجم / مل من الكاتشين.

5. اختبار مضادات الأكسدة - ABTS

  1. أضف 0.003514 جم من بيرسلفات البوتاسيوم و 0.0203 جم من ABTS إلى 5 مل من الماء المقطر.
  2. لف المحلول بورق الألمنيوم واحتضنه عند 4 درجات مئوية في الثلاجة لمدة 12-16 ساعة.
  3. قم بقياس الامتصاص عند 734 نانومتر واضبطه على 0.7 تقريبا عن طريق إضافة الإيثانول. كنقطة انطلاق ، امزج 5 ميكرولتر من محلول ABTS مع 195 ميكرولتر من الإيثانول.
  4. في ألواح بلاستيكية شفافة سعة 96 بئرا ، اخلطي 10 ميكرولتر من المستخلصات مع 190 ميكرولتر من محلول ABTS.
  5. بالنسبة للتحكم الإيجابي (C +) ، امزج 10 ميكرولتر من Trolox (حدد التركيز باستخدام منحنى قياسي بناء على امتصاص العينة) مع 190 ميكرولتر من محلول ABTS.
  6. بالنسبة للتحكم السلبي (C-) ، امزج 10 ميكرولتر من المذيب المستخدم لإذابة المستخلصات (الماء أو الأسيتون المائي) مع 190 ميكرولتر من محلول ABTS.
  7. احتضن الألواح لمدة 6 دقائق في درجة حرارة الغرفة (RT).
  8. قم بقياس الامتصاص عند 734 نانومتر.
    ملاحظة: يوضح الشكل 4 مثالا على اختبار ABTS.

6. الإجراءات الطفيلية

  1. اجمع عينات البراز مباشرة من مستقيم الماعز المصاب بشكل طبيعي.
    ملاحظة: اجمع عينات البراز مباشرة من مستقيم الماعز والأغنام المصابة بشكل طبيعي لضمان نضارتها وتجنب التلوث البيئي. كبح برفق باستخدام موظفين مدربين لتقليل التوتر. باستخدام قفازات نظيفة يمكن التخلص منها ، أدخل إصبعا مشحما مرتديا قفازا في المستقيم واسترجع ما يقرب من 5-10 جم من مادة البراز. ضع العينات في حاويات بلاستيكية نظيفة تحمل علامات وتخزينها في درجة حرارة 4-8 درجات مئوية. قم بمعالجة جميع العينات في غضون 3 ساعات من الجمع للحفاظ على صلاحية بيض الديدان الطفيلية. اتبع الإرشادات المؤسسية لرعاية واحصل على موافقة مستنيرة من أصحاب المزارع.
  2. تحديد الأنواع الحيوانية المرتبطة بكل عينة.
  3. امزج 30 جم من كل عينة براز مع 50 مل من محلول الملح المشبع (الكثافة = 1.2) للتحضير لفحوصات الملح اللاصق.
  4. استخدم شريحة ماكماستر لعد البيض.
    1. تجانس 3 جم من عينة البراز في 50 مل من محلول كلوريد الصوديوم المشبع. قم بتصفية الخليط من خلال القماش القطني ، واملأ حجرتي الشريحة ، واتركه لمدة 5 دقائق.
    2. افحص الشريحة تحت المجهر عند تكبير 10× واعد البيض من النوع القوي. احسب البيض لكل جرام (EPG) باستخدام الصيغة: EPG = (عدد البيض) × 50. توحد هذه الطريقة القياس الكمي للديدان الخيطية المعدية المعوية في المجترات الصغيرة.
  5. عبر عن عدد البيض كبيض لكل جرام (EPG).
  6. اختيار عينات البراز مع EPG لا يقل عن 800 لتحضير زراعة البراز.
  7. احصل على يرقات L3 من مزارع البراز وحدد أجناسها أو أنواعها.
    ملاحظة: يتم ترسيب بيض الديدان الخيطية المعدية المعوية في العشب خلال دورة الحياة (انظر الشكل 5). عادة ما تظهر المجترات الصغيرة للماشية تعدد الطفيليات. يوضح الشكل 6 خطوات إجراء التخدير اللاصق.

7. الاختبارات المختبرية - فحص فقس البيض (EHA)

  1. جمع عينات البراز الطازجة.
  2. قم بتصفية البراز مرتين باستخدام شاش معقم.
  3. قم بتصفية التعليق الناتج وانقله إلى غربال.
  4. اغسل المادة على المنخل بالماء المقطر.
  5. اجمع المعلق المغسول في أنابيب سعة 15 مل.
  6. جهاز الطرد المركزي للعينات عند ~ 4800 × جم لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة باستخدام جهاز طرد مركزي منضدي مزود بدوار دلو متأرجح. جهاز الطرد المركزي مرتين بالماء المقطر ومرة بمحلول ملحي مشبع لتركيز البيض في القاع (انظر الشكل 7 لمعرفة مورفولوجيا البيض).
  7. أعد تعليق البيض في PBS.
  8. اضبط تركيز البيض على 100 بيضة / مل لإعداد الفحص.
  9. تحضير المكافحة الإيجابية عن طريق إذابة الثيابندازول (TBZ) في PBS عند 0.025 مجم / مل.
  10. قم بإعداد عنصر التحكم السلبي باستخدام تعليق البيض في PBS.
  11. استخدم 48 بئر ألواح متعددة الآبار للمقايس.
  12. قم بإعداد حجم نهائي قدره 250 ميكرولتر في كل بئر باستخدام خليط 50/50 (حجم / حجم) من المستخلص وتعليق البيض.
  13. أضف ما يقرب من 100 بيضة / مل إلى كل بئر.
  14. اختبر كل تركيز في أربع مرات (أربعة مكررات).
  15. عد البويضات تحت المجهر المقلوب بتكبير 40×.
  16. استخدم فقط الأطباق ذات معدل الفتحات ≥70٪.
  17. عد اليرقات (L1) ، والبيض غير المفرغ (UnE) ، والبيض المحتوي على اليرقات (LFE) ، والبيض الممزق (ME) لكل تركيز.
    ملاحظة: يظهر ملخص تمثيلي لبروتوكول فحص فقس البيض في الشكل 8.

8. التخدير الإحصائي

  1. إجراء التحليل الإحصائي الوصفي باستخدام Excel.
  2. استخدم تحليل التباين أحادي الاتجاه (ANOVA) واختبارات t لتقييم الاختلافات بين التركيزات عند مستوى دلالة 0.05.
  3. احسب التركيز الفعال بنسبة 50٪ (EC50) باستخدام تحليل Probit بناء على بيانات التركيز المحولة في السجل10 (انظر الملف التكميلي 1).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المحتوى الفينولي الكلي (TPC) ، ومحتوى الفلافونويد الكلي (TFC) ، ومحتوى التانين الكلي (TTC)
تظهر نتائج TPC و TTC و TFC و ABTS على Tithonia diversifolia في الجدول 1. يتم التعبير عن القيم على أنها ملغ من مكافئ حمض الغاليك لكل جرام من المادة الجافة (ملغ GAE / g DM) ل TPC ، ومجم من مكافئ الكيرسيتين لكل جرام من المادة الجافة (mg QE / g DM) ل TFC ، ومجم من مكافئ الكاتشين لكل جرام من المادة الجافة (mg CE / g DM) ل TTC. يتم التعبير عن القدرة المضادة ل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

توضح هذه المقالة العديد من الخطوات الأساسية لتطوير الأبحاث حول النباتات الطبية. تعتبر الاختبارات المختبرية ، مثل مقايسة فقس البيض (EHA) ، جذابة بشكل خاص لأنه يمكن إجراؤها في ظل ظروف معملية خاضعة للرقابة. تم تصميم EHA لتقييم نشاط المستخلصات النباتية بتركيزات مختلفة على بيض الديدان الخيطية ، ومقارنة النتائج مع كل من الضوابط الإيجابية والسلبية. تقدم النتائج التي تم الحصول عليها رؤى قيمة حول إمكانات المركبات المشتقة من النباتات لتطوير علاجات جديدة مضادة للديدان ، لا سيما في ضوء المق...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ويعلن أصحاب البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

إلى جميع المنتجين الذين يثقون بنا لإجراء أخذ العينات مع حيواناتهم. تلقت لويسا كوستوديو أموالا وطنية برتغالية من مؤسسة العلوم والتكنولوجيا (FCT) من خلال مشاريع UIDB / 04326/2020 ( D o I: 1 0 . 5 4 4 9 9 / U I D B / 0 4 3 2 6 / 2 0 2 0 0 ) ، U I D P / 0 4 3 2 6 / 2 0 2 0 (DOI: 10.54499 / UIDP / 04326 / 2020) ، LA/P/0101/2020 (DOI: 10.54499/LA/P/0101/2020) و CEECIND/00425/2017. تلقى Rocio Avila صندوق التدريب المهني من Nini لجعل هذا المشروع ممكنا من خلال تزويدني بالدعم المالي ومركز كارلتون الوظيفي للحصول على التوجيه والدعم المهني. تلقت Griselda Meza Beca de Investigacion BINV02 -52 CONACYT - 2nd convocatoria للسفر إلى البرتغال وإجراء فحوصات كيميائية نباتية. تلقى إسماعيل لانو من Beca Movility من PINV01 -306 ، CONACYT ، لإجراء فحص فقس البيض في البرازيل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
أنابيب 15 ملفي الموقع
صفيحة ذات 48 حفرةفي الموقع
96 لوحة بئرVWR 734-0126
ABTSإنزيماتA1088.0005في الموقع
المجهر البصري الأكاديمي والمجهر المقلوبفي الموقع
الأسيتونإنزيماتA/0600/17
كلوريد الألمنيوم سيغما ألدريتش6911
كاشف DMACAسيغما ألدريتش49825
الإيثانول 96٪إنزيماتVR11202
برازجمع في مزارع قريبة من الجامعة
فولان تشوكالتوسيغما ألدريتشF9252
حمض الغاليكسيغما ألدريتش91215
HCiسيغما ألدريتش258148
كاميرا ماكماسترفي الموقع
الميثانولإنزيماتM/4000/17
PBSفي الموقع
مستخلصات النباتاتفي الموقع
بيرسلفات البوتاسيوم سيغما ألدريتش216224
الكيرسيتينسيغما ألدريتشس4951
الملحفي الموقع
كربونات الصوديوم سيغما ألدريتش1063920500
ثيابندازولفي الموقع
ترولوكسسيغما ألدريتش648471في الموقع
الماءفي الموقع
واتمان رقم 5VWR WHAT97039654

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Vineer, H. R., et al. Increasing importance of anthelmintic resistance in European livestock: Creation and meta-analysis of an open database. Parasite. 27, 69(2020).
  2. Ribeiro, W. L. C., Vilela, V. L. R. Editorial: Alternatives for the control of parasites to promote sustainable livestock. Front Vet Sci. 9, 1097432(2023).
  3. Hodgkinson, J. E., et al. Refugia and anthelmintic resistance: Concepts and challenges. Int J Parasitol Drugs Drug Resist. 10, 51-57 (2019).
  4. Molento, M. B. Parasite control in the age of drug resistance and changing agricultural practices. Vet Parasitol. 163 (3), 229-234 (2009).
  5. Morgan, E. R., van Dijk, J. Climate and the epidemiology of gastrointestinal nematode infections of sheep in Europe. Vet Parasitol. 189 (1), 8-14 (2012).
  6. Hoste, H., Torres-Acosta, J. F. J. Non-chemical control of helminths in ruminants: Adapting solutions for changing worms in a changing world. Vet Parasitol. 180 (1-2), 144-154 (2011).
  7. Mabou Tagne, A., Marino, F., Cosentino, M. Tithonia diversifolia (Hemsl.) A. Gray as a medicinal plant: A comprehensive review of its ethnopharmacology, phytochemistry, pharmacotoxicology and clinical relevance. J Ethnopharmacol. 220, 94-116 (2018).
  8. Pawłowska, M., Mila-Kierzenkowska, C., Szczegielniak, J., Woźniak, A. Oxidative stress in parasitic diseases-reactive oxygen species as mediators of interactions between the host and the parasites. Antioxidants. 13 (1), 38(2024).
  9. Maldonado, E., Rojas, D. A., Morales, S., Miralles, V., Solari, A. Dual and opposite roles of reactive oxygen species (ROS) in Chagas disease: Beneficial on the pathogen and harmful on the host. Oxid Med Cell Longev. 2020, 8867701(2020).
  10. Adamu, M., Naidoo, V., Eloff, J. N. Efficacy and toxicity of thirteen plant leaf acetone extracts used in ethnoveterinary medicine in South Africa on egg hatching and larval development of Haemonchus contortus. BMC Vet Res. 9, 38(2013).
  11. Molan, A. L. Effect of purified condensed tannins from pine bark on larval motility, egg hatching and larval development of Teladorsagia circumcincta and Trichostrongylus colubriformis (Nematoda: Trichostrongylidae). Folia Parasitol. 61 (4), 371-376 (2014).
  12. Eguale, T., Tadesse, D., Giday, M. In vitro anthelmintic activity of crude extracts of five medicinal plants against egg-hatching and larval development of Haemonchus contortus. J Ethnopharmacol. 137 (1), 108-113 (2011).
  13. von Samson-Himmelstjerna, G., et al. Standardization of the egg hatch test for the detection of benzimidazole resistance in parasitic nematodes. Parasitol. Res. 105, 825-834 (2009).
  14. Robles-Pérez, D., Martínez-Pérez, J. M., Rojo-Vázquez, F. A., Martínez-Valladares, M. Screening anthelmintic resistance to triclabendazole in Fasciola hepatica isolated from sheep by means of an egg hatch assay. BMC Vet Res. 11, 5(2015).
  15. War, A. R., Paulraj, M. G., War, M. Y., Ignacimuthu, S., Sharma, H. C. Mechanisms of plant defense against insect herbivores. Plant Signal Behav. 7, 1306-1320 (2012).
  16. Veeresham, C. Natural products derived from plants as a source of drugs. J Adv Pharm Technol Res. 3, 200-201 (2012).
  17. Barthwal, R., Mahar, R. Exploring the significance, extraction, and characterization of plant-derived secondary metabolites in complex mixtures. Metabolites. 14, 119(2024).
  18. Vargas-Magaña, J. J., et al. Anthelmintic activity of acetone-water extracts against Haemonchus contortus eggs: Interactions between tannins and other plant secondary compounds. Vet Parasitol. 206, 199-206 (2014).
  19. Gertrude, M., et al. In vitro anthelmintic activity of Bidens pilosa Linn. (Asteraceae) leaf extracts against Haemonchus contortus eggs and larvae. Eur J Med Plants. 4, 1325-1333 (2014).
  20. Castañeda-Ramírez, G. S., et al. Bio-guided fractionation to identify Senegalia gaumeri leaf extract compounds with anthelmintic activity against Haemonchus contortus eggs and larvae. Vet Parasitol. 270, 13-19 (2019).
  21. Chan-Pérez, J. I., et al. In vitro susceptibility of ten Haemonchus contortus isolates from different geographical origins towards acetone:water extracts of two tannin-rich plants. Vet Parasitol. 217, 53-60 (2016).
  22. Alonso-Díaz, M. A., Torres-Acosta, J. F. J., Sandoval-Castro, C. A., Hoste, H. Comparing the sensitivity of two in vitro assays to evaluate the anthelmintic activity of tropical tannin-rich plant extracts against Haemonchus contortus. Vet Parasitol. 181 (2-4), 360-364 (2011).
  23. Meza Ocampos, G., et al. Two in vitro anthelmintic assays of four Paraguayan medicinal plants for proof of concept of the role of polyphenols in their biological activities and LC-HRMS analysis. J Ethnopharmacol. 312, 116453(2023).
  24. Babják, M., Königová, A., Urda Dolinská, M., Vadlejch, J., Várady, M. Anthelmintic resistance in goat herds-In vivo versus in vitro detection methods. Vet Parasitol. 254, 10-14 (2018).
  25. Elfawal, M. A., et al. High-throughput screening of more than 30,000 compounds for anthelmintics against gastrointestinal nematode parasites. ACS Infect Dis. 11 (1), 1-11 (2025).
  26. de Araújo Sanchez, C., et al. In vivo anthelmintic activity of hydroethanolic extract of Piper cubeba fruits in sheep naturally infected with gastrointestinal nematodes. Vet Parasitol. 333, 110348(2025).
  27. Hördegen, P., Cabaret, J., Hertzberg, H., Langhans, W., Maurer, V. In vitro screening of six anthelmintic plant products against larval Haemonchus contortus with a modified methyl-thiazolyl-tetrazolium reduction assay. J Ethnopharmacol. 108 (1), 85-89 (2006).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

estrongylus

مقالات ذات صلة