تم تطوير تقنية جراحية جديدة لزرع أجهزة القياس عن بعد في الخنازير تسمح بالمراقبة المستمرة دون إزعاج. يتم وضع الجهاز على الظهر ، مما يقلل من التهيج ومخاطر العدوى.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
تقنية جراحية لزرع جهاز القياس عن بعد اللاسلكي على ظهور الخنازير
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
تعد أجهزة القياس عن بعد ضرورية لأبحاث القلب والأوعية الدموية قبل السريرية ، مما يسمح بالمراقبة المستمرة للمعايير الفسيولوجية مثل مخطط كهربية القلب ودرجة الحرارة والتنفس في التجارب دون التسبب في اضطراب. يمكن أن تسبب الطرق التقليدية ، مثل التنسيب داخل البطن ، عدم الراحة ، خاصة في الخنازير بسبب عادتها في الاستلقاء. لمعالجة هذه المشكلة ، تم تطوير تقنية جراحية جديدة لزرع أجهزة القياس عن بعد اللاسلكية في الخنازير ، تهدف إلى تحسين راحة والحفاظ على جودة الإشارة. تضمنت هذه الدراسة 40 خنزيرا من خنزير يوركشاير (20-30 كجم). تم زرع جهاز القياس عن بعد في الخلف. تم إجراء شق بطول 2 بوصة بشكل جانبي في العمود الفقري ، متبوعا بتشريح حاد لإنشاء جيب تحت اللفافة الظهرية العريضة. تمت معالجة الجيب بمحلول فانكومايسين لمنع العدوى قبل إدخال الجهاز. تم تأمين الخيوط ، وتم إغلاق الموقع في طبقات. أظهرت جميع الخنازير إشارات قياس عن بعد قوية ومستمرة بعد الجراحة. على مدى فترة المتابعة التي استمرت 180 يوما ، حدثت حالتان فقط من العدوى: تمت إدارة إحداهما بالمضادات الحيوية ، والأخرى تطلبت إزالة الجهاز. لم يلاحظ أي نزيف كبير أو فقدان إشارة القياس عن بعد ، ونجت جميع حتى نهاية الدراسة. توفر هذه التقنية الجديدة طريقة موثوقة لزرع أجهزة القياس عن بعد في الخنازير ، مما يقلل من الانزعاج ومخاطر العدوى مع توفير بيانات فسيولوجية عالية الجودة. إنه يبشر بالاستخدام الأوسع نطاقا في أبحاث القلب والأوعية الدموية قبل السريرية ، مما يحسن كل من رعاية وموثوقية البيانات.
المقدمة
تلعب أجهزة القياس عن بعد دورا محوريا في تعزيز فهم فسيولوجيا القلب والأوعية الدموية ، لا سيما في الدراسات التي تستخدم نموذجا حيوانيا لاحتشاء عضلة القلب. من خلال تمكين المراقبة المستمرة للإشارات الفسيولوجية ، بما في ذلك المعلمات الحيوية وقراءات مخطط كهربية القلب (ECG) ، تقدم هذه الأجهزة رؤى لا تقدر بثمن حول التغييرات الديناميكية التي تحدث أثناء أحداث القلب. في الدراسات قبل السريرية ، حيث تلعب النماذج الحيوانية مثل الخنازير دورا أساسيا في تقليد استجابات القلب والأوعية الدموية البشرية ، أصبحت أجهزة القياس عن بعد أدوات لا غنى عنها1. توفر القدرة على تسجيل تخطيط القلب بشكل مستمر في غير المقيدة والمتحركة بحرية منظورا دقيقا لتأثير احتشاء عضلة القلب ، مما يسمح للباحثين بالتقاط التغيرات في الوقت الفعلي في وظائف القلب.
في الدراسات التي شملت نماذج حيوانية لاحتشاء عضلة القلب ، توفر أجهزة القياس عن بعد القابلة للزرع مزايا مميزة. إنها تسهل قياس المعلمات الحرجة مثل معدل ضربات القلب مع الحد الأدنى من الاضطراب في السلوك الطبيعي للحيوانات ، مما يلغي العوامل المربكة المحتملة التي تقدمها الأجهزةالخارجية 2.
غالبا ما تأتي هذه الأجهزة مع دليل يحتوي على تعليمات لزرعها الجراحي ، ولكن قد تتطلب الدراسات المختلفة والنماذج الحيوانية تقنيات زرع مختلفة عن تلك الموجودة في الدليل. تمثل مواقع زرع القياس عن بعد التقليدية ، مثل التنسيب داخل البطن أو الرقبة ، عيوبا في نماذج الخنازير المستخدمة في دراسات القلب والأوعية الدموية الموسعة ، بما في ذلك الانزعاج المحتمل ، والتداخل في الوصول إلى الفخذ ، وتقييد الحركة ، وزيادة خطر العدوى1،2،3. لذلك ، هناك حاجة إلى نهج بديل يتوافق مع المراقبة طويلة الأجل في الخنازير غير المقيدة.
بالمقارنة مع التنسيب التقليدي داخل البطن ، والذي يمكن أن يسبب عدم الراحة ، أو وضع الرقبة ، الذي كان له معدلات نجاح أقل في الخنازير في بعض الدراسات الأخرى ، يهدف هذا النهج الظهري إلى تحسين الرفاهية مع الحفاظ على جودة البيانات.
كان الهدف الأساسي من هذه الدراسة هو تطوير تقنية جراحية جديدة والتحقق من صحتها لزرع أجهزة القياس عن بعد اللاسلكية في ظهور الخنازير لضمان راحة وموثوقيته. كان الهدف هو تسخير فوائد المراقبة المستمرة لتخطيط القلب على مدى فترة طويلة (تصل إلى 180 يوما). تم تطوير هذه التقنية استجابة للقيود التي لوحظت في طرق الزرع التقليدية (على سبيل المثال ، المواضع داخل البطن ، الأربية ، والرقبة) ، والتي ترتبط في الخنازير بخطر كبير من عدم الراحة ، ومحدودية الحركة ، والتداخل مع وصول الأوعية الدموية ، والعدوى. لقد طورنا هذا النهج الظهري الجديد لتعزيز رفاهية ، وتقليل مضاعفات ما بعد الجراحة ، والحفاظ على جودة إشارة موثوقة أثناء المراقبة طويلة المدى في غير المقيدة.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
تمت الموافقة على جميع الإجراءات الحيوانية من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام (IACUC) التابعة لمعهد تكساس للقلب. تم زرع بالنظام الرقمي EMKA easyTEL + L-EEEETA (https://www.emkatech.com/product/easytel-large-animals/).
1. الاستعدادات قبل الجراحة لحيوانات التجارب
- استخدم خنازير يوركشاير من كلا الجنسين التي يتراوح وزنها بين 20 كجم و 30 كجم. لا تطعم الخنازير قبل 12-24 ساعة من بدء التخدير ولكن اسمح بالوصول إلى الماء.
2. التخدير والتخدير
- تطبيق التيلازول (التيلامين والزولازيبام؛ 2-6 ملغ/كغ عضلي) وكبريتات الأتروبين (0.02-0.05 ملغ/كغ عضلي). اترك 10-15 دقيقة حتى تحفز الأدوية التخدير ، ثم انقل الخنزير إلى غرفة التحضير. تأكد من التخدير الكافي من خلال غياب نغمة الفك وعدم الاستجابة لقرص إصبع القدم. ضع مرهما للعيون على كلتا العينين لمنع جفاف القرنية أثناء التخدير.
- ضع قناعا للوجه لإعطاء الأكسجين والأيزوفلوران بنسبة 3٪ حتى يسمح استرخاء درجة الفك الكافي بالتنبيب الرغامي.
- تنبيب الخنزير برؤية مباشرة للطيات الصوتية. قم بتوصيل الخنزير بجهاز التنفس الصناعي الحجمي وحافظ على التخدير عن طريق استنشاق الأيزوفلوران (0.5٪ -3.0٪) في O2 (40٪ -100٪).
- ضع قسطرة وريدية (IV) في وريد الأذن. احلق المنطقة فوق الوريد الأذني الجانبي وقم بتطهيرها بكحول الأيزوبروبيل بنسبة 70٪ متبوعا بمحلول بوفيدون اليود. أدخل قسطرة من 20 إلى 22 جم في الوريد ، باستخدام تقنية معقمة ، ثم قم بتأمين القسطرة بشريط طبي واغسلها بمحلول ملحي معقم لتأكيد المباح
- يتم تطبيق البوبرينورفين (بوبرينكس؛ 0.005-0.015 ملغم/كغ حقيلي)، فلونكسين ميجلومين (1.1-2.2 ملغ/كغ حقن وريدي أو حقيلي)، وسيفتيوفور (ناكسيل؛ 3-5 ملغم/كغ حقنلي).
- احلق الصدر وأعلى الظهر وأسفل الظهر والأجزاء البعيدة من الأطراف الأربعة ، وتحديدا المناطق الموجودة على الجانب الأمامي من الحوافر ، باستخدام مقصات كهربائية لكشف الجلد بالكامل لوضع القطب. نظف جميع المناطق المحلوقة بشاش معقم مبلل بكحول الأيزوبروبيل بنسبة 70٪ ، وامسحه بحركة دائرية من المركز إلى الخارج لإزالة الحطام والزيوت استعدادا لللف المعقم. ضع أقطاب كهربائية لاصقة لتخطيط القلب على جميع الأطراف الأربعة، مما يضمن ملامسة الجلد القوية لتقليل القطع الأثرية للإشارة.
3. الإجراء الجراحي
- في غرفة العمليات ، ضع الخنزير على الطاولة في الوضع البطني. الحفاظ على التخدير مع استنشاق الأيزوفلوران (0.5٪ -3.0٪). بدء التسريب الوريدي للبلازما بمعدل 10-15 مل / ساعة.
- تحضير موقع الجراحة
- نظف موقع الشق الجراحي المقصود في الجزء العلوي الأيسر من الظهر والمنطقة المحيطة بها (حوالي 15 سم × 15 سم) بشاش معقم مبلل بكحول الأيزوبروبيل بنسبة 70٪. امسح من المركز للخارج حتى لا تبقى أوساخ أو حطام مرئي على الشاش. اترك الكحول يجف تماما في الهواء.
- قم بإجراء مقشر جراحي معقم باستخدام محلول مقشر بوفيدون اليود والشاش المعقم. ضع المقشر بحركات دائرية ثابتة ، بدءا من خط الشق وتحرك للخارج في دوائر متوسعة. استمر في الفرك لمدة 5 دقائق على الأقل ، باستخدام شاش طازج حسب الحاجة.
- ضع محلول بوفيدون اليود بشاش معقم أو عصي إسفنجية ، وانتقل مرة أخرى من المركز إلى الخارج. اترك طبقة الطلاء النهائية هذه تجف تماما في الهواء ؛ لا تمسحه.
- اعزل المنطقة الجراحية المعدة بالستائر الجراحية المعقمة.
- تحديد المعالم التشريحية للشق. تشكل هذه المعالم مثلثا يتألف من العمود الفقري (الحد العلوي) ، والكتف (الحدود اليسرى) ، والحد السفلي للعضلة شبه المنحرفة (الحدود اليمنى. الشكل 1).
- باستخدام شفرة رقم 10 ، قم بعمل شق طولي بحجم 2 بوصة على بعد حوالي 2 بوصة جانبيا من العمود الفقري.
- بعد شق البشرة ، استخدم الكي الكهربائي للتقدم عبر الأنسجة تحت الجلد ثم قسم العضلة شبه المنحرفة. احرص بشكل خاص على تقسيم جميع طبقات اللفافة.
- بمجرد تقسيم الطبقة اللفافية الداخلية ، استخدم تشريحا حادا بالسبابة والإصبع الأوسط لإنشاء جيب في هذه الطبقة. تأكد من أن طرف لوح الكتف في متناول اليد. بعد التشريح ، سيكون طرف لوح الكتف واضحا في مدى الجيب (الشكل 2).
- تأكد من أن جهاز القياس عن بعد يمكن وضعه في الجيب بأقل قدر من التوتر على شق الجلد. أخرج الجهاز من الجيب.
- اخلطي الفانكومايسين (1 جم) مع 50 مل من محلول ملحي 0.9٪ وضعي ما يقرب من 10 مل من الخليط في الجيب لمدة 1-2 دقيقة. قم بإزالة المحلول الزائد باستخدام وسادة شاش.
- استخدم 14 Fr وعائية لوضع الأسلاك كما هو موضح في الشكل 2.
- أدخل الأوعية الدموية ، والانتقال الجانبي إلى الإنسي ، والاتجاه الخارجي إلى الداخلي. قم بتوجيه الإبرة تحت العضلات نحو الجيب. تقدم الإبرة حتى يبقى ثلث جسمها مرئيا فقط. قم بإزالة الإبرة وتمرير الرصاص عبر القسطرة ، وانتقل من طرف القسطرة إلى محور القسطرة.
- اترك ما بين 1 و 2 بوصة من الرصاص مكشوفا. يمنع الرصاص المكشوف بدرجة كافية من فقدانه في المسالك تحت الجلد أثناء وضع خيوط أخرى. قم بإزالة القسطرة.
- أدخل رصاصا ملونا واحدا (أصفر أو أحمر أو أخضر أو أزرق) ، متبوعا على الفور بالرصاص الشفاف المقابل على الجانب الآخر من الجيب. أدخل كل زوج معا، زوجا واحدا في كل مرة، لمطابقة ترتيبه على جهاز القياس عن بعد ومنع الارتباك أثناء الوضع. تشكل الخيوط الملونة والشفافة زوجا تفاضليا لكل قناة ECG ، مما يتيح الحصول على إشارة ثنائية القطب وتقليل الضوضاء الكهربائية. كرر هذه العملية بالتتابع لجميع أزواج العملاء المحتملين. أدخل الرصاص الأرضي الأسود أخيرا. يضمن هذا النهج اتجاها ثابتا للرصاص ونقل إشارة دقيقة (الشكل 3).
- بمجرد وضع جميع الخيوط ، اسحب الأسلاك بحيث تكون أطراف الخيوط بالكاد تحت الجلد. تأكد من عدم ظهور أي خيوط على مستوى الجلد (الشكل 3).
- اجمع كل الأسلاك في حلقة ، باستخدام اليد كدليل ، واربطها في حزمة من الحرير الثقيل.
- ضع الجهاز وحزمة الرصاص في الجيب. تأكد من أن الجهاز مسطح وموجها بشكل صحيح. تم تسمية جانب واحد من الجهاز بالتعليمات: هذا الجانب متجها للخارج.
- ضع الجهاز داخل الجيب بحيث تكون حافته الجانبية على الأقل 1-2 سم وسطي إلى الحافة الذيلية الملموسة للكتف. قبل المتابعة ، قم بمعالجة الطرف الأمامي الأيسر للخنزير برفق من خلال نطاق حركته للتأكد من أن الجهاز لا يصطدم بشكل كبير بلوح الكتف أو يحتكك.
- تأكد من إرسال قراءات الجهاز إلى جهاز الاستقبال والكمبيوتر (الشكل 4).
ملاحظة: يعرف الإرسال الناجح بأنه ناقل حركة يقيس بدقة معدل ضربات القلب ويقيم الإيقاع ويحدد مجمعات QRS. قد لا تكون الإشارة الأولية متساوية الكهرباء تماما أو خالية من القطع الأثرية. - ضمان الإرقاء. أغلق طبقة العضلات ب 1-0 Vicryl. ضع خليط الفانكومايسين فوق طبقة العضلات. اترك 1-2 دقيقة للامتصاص.
- أغلق الطبقة تحت الجلد ب 2-0 فيكريل. قم بتدبيس الشق وتطبيق غراء الأنسجة.
4. رعاية ما بعد الجراحة
- مراقبة وتسجيل العلامات الحيوية - معدل ضربات القلب ومعدل التنفس ودرجة الحرارة كل ساعة ، بدءا من وقت دخول وحدة العناية المركزة. قم بتقييم الخنزير باستمرار حتى يتم استيفاء معايير نزع الأنبيب ، بما في ذلك الجهد التنفسي التلقائي أثناء استخدام جهاز التنفس الصناعي ، ووجود منعكس المضغ ، والقدرة على الحفاظ على الاستلقاء القصي. يجب أن يعتمد نزع الأنبوب على هذه المؤشرات السريرية ومدعوما بقياسات غازات الدم الشرياني.
- مواصلة المراقبة كل ساعة بعد نزع الأنبوب ؛ قلل إلى كل 4 ساعات بمجرد أن يظهر الخنزير الاستقرار الفسيولوجي. تأكد من عدم ترك الخنزير دون رقابة أثناء التعافي. يجب أن يظل فني بيطري مدرب حاضرا في جميع الأوقات طوال فترة التعافي.
- ضع الخنازير بشكل فردي في حظائر مجاورة تسمح بالاتصال البصري ولكن ليس الجسدي مع الأنواع المحددة ، ولا تعيد الخنزير إلى السكن الجماعي حتى يتعافى تماما.
- يجب إعطاء تسكين ما بعد الجراحة، والتي تشمل البوبرينورفين (0.05-0.1 ملغم/كغ من الحقن العضلي أو الفم) كل 6-12 ساعة أو حسب توجيهات الطبيب البيطري المعالج، وفلونيكسين ميجلومين (1.1-2.2 ملغم/كغ وريدي أو حقن ديلي، أو فم) تعطى كل 6-8 ساعات حسب الحاجة.
- يجب تطبيق العلاج الوقائي المضاد للميكروبات بدءا من Naxcel (ceftiofur؛ 3-5 ملغ/كغ بالحقدارية) مرة واحدة يوميا لمدة 24 ساعة، بدءا من اليوم التالي للجراحة، يليه Baytril (enrofloxacin؛ 2.5-5.0 ملغ/كغ الفموي، BID) لمدة تصل إلى 14 يوما.
- حافظ على الرعاية المعقمة بعد الجراحة عن طريق وضع رذاذ اليود على موقع الشق كل 8 ساعات حتى التئام الجروح بالكامل وإزالة الدبابيس في اليوم 14 بعد الجراحة. ضع مرهم مضاد حيوي ثلاثي على موقع الشق حسب الحاجة.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
تظهر البيانات المعروضة في الجدول 1 موثوقية وسلامة التقنية الجراحية للزرع الظهري لأجهزة القياس عن بعد في الخنازير. تم تسجيل إرسال ناجح لتخطيط القلب في جميع الخنازير ال 40 (100٪) ، مما يؤكد أن تحديد موقع الجهاز وتكوين الرصاص مكن باستمرار من الحصول على إشارة فعالة على المدى الطويل. يشير عدم وجود أحداث نزيف كبيرة (0٪ ؛ يعرف بأنه ≥10 مل من فقدان الدم) إلى سلامة تشريح الجيب اللفافي والتعامل الدقيق مع هياكل الأوعية الدموية. حدثت العدوى في خنازير 2 (5٪) في وقت مبكر من الدراسة وتم إدارتها بالمضادات الحيوية الجهاز...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
يوصف إجراء زرع الجهاز بأنه طريقة جديدة للقياس عن بعد للمراقبة المستمرة لتخطيط كهربية القلب. تضمن هذه الطريقة تسجيلات موثوقة في التجارب على. على الرغم من أن دليل المستخدم لجهاز EMKA4 يصف إجراء جراحيا لزرع الجهاز في بطن الكبيرة مثل والخنازير ، إلا أن التنسيب داخل البطن لم يكن مرغوبا فيه لأن الخنازير عادة ما تستلقي على بطنها ، مما يؤدي إلى ضغط على الصفاق يمكن أن يسبب الألم أو الانزعاج للحيوان5. لم يكن وضع الأربية مرغوبا فيه أيضا لأن هذه الدراس...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
لم يعلن أي منها.
شكر وتقدير
ساهم ستيفن ن. بالمر ، دكتوراه ، ELS ، من قسم المنشورات العلمية في معهد تكساس للقلب ، في تحرير المخطوطة.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| 1 سم مكعب حقنة | Vetone | V1 670097 | |
| 10 سم مكعب حقنة | Medline | SYR110010 | |
| 12 سم مكعب | حقنة Vetone | V1 670065 | |
| 20 سم | حقنة نيبرو | دينار + 20 لتر | |
| 20 جرام إبرة | Medline | SYR100205 | |
| 3 سم مكعب حقنة | نيبرو | دينار + 03 لتر-NIJ | |
| act خرطوشة | Medtronic | 402-03 | |
| الكحول | Vetone | V1 500205 | |
| دائرة التخدير | فيشر & Paykel | RT210 | |
| الأوعية الدموية 14 Fr | BD | 382269 | |
| كبريتات الأتروبين | Vetone | V1 510221 | |
| ثنى | Medline | DYNJP3105 | |
| Blade 10 | Medline | MDS15010 | |
| Blade 11 | Medline | MDS15011 | |
| Buprenorphine | PAR Pharmaceuticals | 3003408B | |
| غطاء الكاميرا | أسبن الجراحي | LT-C02 | |
| قلم كوتيري | ميدلاين | ESPB3000 | |
| وسادة خدش قلم | كوتيري ميدلاين | DYNJ01208 | |
| كوفليكس 2 "شريط | Vetwrap | 1404BK | |
| كوروس واقي | غطاء 3M | CFF1-270 | |
| أقطاب تخطيط القلب | Medline | MDSM618305 | |
| EMKA easyTELL + L-EEEETA النظام الرقمي | EMKA | ||
| أنبوب القصبة الهوائية | Jorvet | J0615J | |
| Flunixin meglumine | Merck | 65707 | |
| غطاء الحقن | ICU Medical | C1000 | |
| قسطرة مقدمة 5F | أبوت | 406101 | |
| القسطرة 6F | أبوت | 407845 | |
| Isoflurane | Vetone | MWI502017 | |
| IV مجموعة تمديد القسطرة | Baxter | 2C8612 | |
| IV مجموعة المضخات SmartSite | BD Alaris ؛ | 2420-0007 | |
| غطاء خفيف | Medline | DYNJLHS2 | |
| Naxcel (ceftiofur) | Zoetis | 25434 | |
| عداد إبرة | Medline | DYNJNC20F | |
| إبرة دخول عن طريق الجلد | Cook | G00272 | |
| Permahand الحرير 2-0 | Ethicon | C012D | |
| PlasmaLyte | Baxter | 2B2544 | |
| عصي طلاء بوفيدون اليود | Aplicare | ORF20025S | |
| محول مراقبة الضغط 1x1 | Edwards Lifesciences | PX260 | |
| أنابيب الضغط 84 " | Edwards Lifesciences | 50P184 | |
| Saline | Baxter | 2F7124 | |
| يغطي الحذاء | Medline | NON29858 | |
| دباسة | Covidien | 8886803712 | |
| كوب عينة | Medline | DYND30389 | |
| الإسفنج ، 4 "& مرات ؛ 4 "، الأشعة السينية للكشف | Covidien | 441002 | |
| الإسفنج ، حضن | Medline | MDS241518 | |
| قبعة الجراح | CardinalHealth | 4359 | |
| قفازات جراحية | Medline | MSG9065 | |
| العباءات الجراحية | Medline | DYNJP2001S | |
| قناع جراحي | Halyard | 6211580 | |
| غطاء الطاولة | Medline | DYNJP2311 | |
| Telazol | Zoetis | 10004135 | |
| لاصق المناديل | 3M | 1469SB | |
| Vancomycin | Fresenius Kabi | 402254G | |
| Vicryl 1 | Ethicon | J480H | |
| Vicryl 2-0 | Ethicon | J869H |
المراجع
- Krause, A., et al. Surgical implantation and functional assessment of an invasive telemetric system to measure autonomic responses in domestic pigs. Vet J. 207, 140-146 (2016).
- Horning, M., et al. Best practice recommendations for the use of fully implanted telemetry devices in pinnipeds. Animal Biotele. 5 (1), 13(2017).
- Swindle, M., Smith, A. C., Helke, K. Recommendations for medical device implantation in swine. Israel J Vet Med. 68, 3-11 (2013).
- Implanted telemetry: A valuable tool for preclinical research. , National Centre for the Replacement, Refinement and Reduction of Animals in Research. https://www.emkatech.com/implanted-telemetry-in-preclinical-research/ (2023).
- Morton, D. B., et al. Refinements in telemetry procedures. Seventh report of the bvaawf/frame/rspca/ufaw joint working group on refinement, part a. Lab Animals. 37 (4), 261-299 (2003).
- Langin, M., et al. Perioperative telemetric monitoring in pig-to-baboon heterotopic thoracic cardiac xenotransplantation. Ann Transplantat. 23, 491-499 (2018).
- Markert, M., et al. A new telemetry-based system for assessing cardiovascular function in group-housed large animals. Taking the 3rs to a new level with the evaluation of remote measurement via cloud data transmission. J Pharmacol Toxicol Meth. 93, 90-97 (2018).
- Prior, H., Mcmahon, N., Schofield, J., Valentin, J. P. Non-invasive telemetric electrocardiogram assessment in conscious beagle dogs. J Pharmacol Toxicol Meth. 60 (2), 167-173 (2009).
- Ruppert, S., Vormberge, T., Igl, B. W., Hoffmann, M. Ecg telemetry in conscious guinea pigs. J Pharmacol Toxicol Meth. 81, 88-98 (2016).
- Shiotani, M., Harada, T., Abe, J., Hamada, Y., Horii, I. Methodological validation of an existing telemetry system for qt evaluation in conscious guinea pigs. J Pharmacold Toxicol Meth. 55 (1), 27-34 (2007).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
الوسوم
