يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

طريقة بسيطة لأنبوب الطرد المركزي المزدوج للحصول على البلازما الغنية بالصفائح الدموية من دم الخيول

2.4K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/67985

⸱

أغسطس 15, 2025

 ,  , 
1Grupo de Investigación Terapia Regenerativa, Departamento de Salud Animal, Universidad de Caldas, 2Grupo de Investigación Patología Clínica Veterinaria, Departamento de Salud Animal, Universidad de Caldas, 3Grupo de Investigación DICOVI, Departamento de Diseño, Universidad de Caldas

في هذه المقالة

ملخص

تستخدم البلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP) في علاج اضطرابات العضلات والعظام للخيول. تنتج التقنيات المختلفة البلازما الغنية بالصفائح الدموية بتركيزات متفاوتة من الصفائح الدموية والكريات البيض. توضح هذه المقالة طريقة للحصول على البلازما الغنية بالصفائح الدموية من دم الحصان.

الملخص

تستخدم البلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP) على نطاق واسع كعلاج روتيني للأمراض العضلية الهيكلية المزمنة في الخيول ، مثل هشاشة العظام واعتلال الأوتار واعتلال الوراء. تنبع هذه الفعالية من التركيز العالي لعوامل النمو والسيتوكينات المضادة للالتهابات التي يتم إطلاقها عند تنشيط هذا العامل الحيوي ، سواء تم تنشيطه داخليا أو خارجيا. على الرغم من شعبيتها المتزايدة ، إلا أن هناك غيبا ملحوظا لمقاطع الفيديو التعليمية التي توضح تقنيات الحصول على البلازما الغنية بالصفائح الدموية في الخيول.

تبحث هذه الدراسة في طريقة أنبوب الطرد المركزي المزدوج للحصول على البلازما الغنية بالصفائح الدموية في الخيول. تم جمع الدم الكامل من ستة خيول في أنابيب سترات الصوديوم وطرده مرتين عند 120 × جم لمدة 5 دقائق و 240 × جم لمدة 5 دقائق. كان متوسط تركيز الصفائح الدموية في البلازما الغنية بالصفائح الدموية 360.95 ± 56.31 صفيحة (PLT) × 103 / ميكرولتر ، بينما كان متوسط تركيز الكريات البيض 3.05 ± 1.53 خلية × 103 / ميكرولتر. كان عدد الصفائح الدموية في البلازما الغنية بالصفائح الدموية أعلى بمقدار 2.41 مرة منه في الدم الكامل ، بينما كان تركيز الكريات البيض في البلازما الغنية بالصفائح الدموية أقل بمقدار 0.44 مرة. وبلغت كفاءة تجميع PLT في البلازما الغنية بالصفائح الدموية 17٪، في حين بلغت كفاءة تجميع الكريات البيض في البلازما الغنية بالصفائح الدموية 3.1 في المائة. كان متوسط تركيزات عامل النمو المحول بيتا 1 وعامل النمو المشتق من الصفائح الدموية BB في PRP هو 2601.82 (فاصل الثقة 95٪: 2358.88-2844.76) بيكوغرام/مل و1208.05 (فاصل الثقة 95٪: 1051.09-1365.02) بيكوغرام/مل على التوالي. تشير هذه النتائج إلى أنه يمكن الحصول على البلازما الغنية بالصفائح الدموية بكفاءة وتكرار من خلال طريقة بسيطة وفعالة من حيث التكلفة مناسبة للاستخدام من قبل ممارسي الخيول.

المقدمة

البلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP) هي منتج تقويم العظام يستخدم بشكل شائع لعلاج الأمراض العضلية الهيكلية المزمنة للخيول مثل اعتلال الأوتار واعتلال الرئاس وهشاشة العظام والتهاب الصفيحة1،2،3. كما أنه فعال في علاج جروح الأطراف وأمراض سطح العين4،5. يعتمد الأساس المنطقي لاستخدامه على التركيزات العالية لعوامل النمو (GFs) التي يتم إطلاقها بشكل أساسي بواسطة الصفائحالدموية 6. تساهم الكريات البيض أيضا في إطلاق السيتوكينات التنظيمية والمضادةللالتهابات 7. تمارس GFs مثل تحويل عامل النمو بيتا 1 (TGF-β1) وعامل النمو المشتق من الصفائح الدموية BB (PDGF-BB) تأثيرات مؤثرة قوية في الابتنائية والتكاثرية والأوعية الدموية والمضادةللالتهابات 8. عند التنشيط الخارجي أو الداخلي ، يتم بلمرة البلازما الغنية بالصفائح الدموية إلى هلام غني بالصفائح الدموية ، مما يسهل تهريب الخلايا ، والتثبيت ، والتمايز6،9. وبهذه الطريقة ، يعمل PRP كسقالة حية معقدة وليس فقط كحاوية ل GFs و cytokines10.

تصنف العديد من الأنظمة منتجات البلازما الغنية بالصفائح الدموية المستخدمة في كل من البشر والخيول6،11،12. يصنف أحد أبسط الأنظمة وأكثرها شيوعا مكونات الدم هذه بناء على تركيز الكريات البيض11،12. وفقا لهذا التصنيف ، يشار إلى منتجات البلازما الغنية بالصفائح الدموية ذات تركيزات الكريات البيض المنخفضة إلى الضئيلة وتركيزات الصفائح الدموية المنخفضة إلى المتوسطة - بالنسبة للمستويات الموجودة في دم الحصان الكامل - باسم PRP PURE (P-PRP) 6،11،12. في المقابل ، يشار إلى منتجات البلازما الغنية بالصفائح الدموية ذات تركيزات الكريات البيض التي يمكن اكتشافها إلى عالية وتركيزات الصفائح الدموية المتوسطة إلى العالية باسم البلازما الغنية بالكريات البيض والصفائح الدموية (L-PRP) 6،11،12.

عادة ما يتم الحصول على منتجات P-PRP عن طريق الطرد المركزي من أنبوب إلى أنبوب حيث يتم جمع الدم الكامل من الخيول في أنابيب تحتوي على مضادات التخثر مثل سترات الصوديوم والسترات والفوسفات وسكر العنب13. يتم طرد الدم مرتين لفصل الصفائح الدموية عن المكونات الأخرى14. في المقابل ، يتم تحضير منتجات L-PRP بشكل أساسي باستخدام مجموعات شبه آلية مصممة للدم البشري ، وقد تم التحقق من صحة بعضها للاستخدام في الخيول6،15. تتطلب هذه المجموعات شبه الآلية عموما أجهزة طرد مركزي متخصصة وتأتي بتكلفة أعلى16 ، بالإضافة إلى مخاوف محتملة بشأن التعامل المعقم ، مما قد يعقد استخدامها العملي في الإعدادات السريرية17. بالإضافة إلى ذلك ، قد تؤدي هذه المجموعات إلى تركيز غير مرغوب فيه للكريات البيض المفرطة أو خلايا الدم الحمراء ، مما قد يكون ضارا في بعض الحالات السريرية18. على سبيل المثال ، قد يؤدي ارتفاع عدد الكريات البيض إلى التهاب مفرط ، ويمكن أن تتداخل فرط خلايا الدم الحمراء مع عملية الشفاء أو تؤدي إلى مضاعفات مثل تهيج الأنسجة أو رفضها15 ؛ ومع ذلك ، فإن الطريقة الشائعة الاستخدام لإنتاج L-PRP للخيول تتضمن عملية جاذبية لا تتطلب معداتمتخصصة 19.

في ضوء هذه القيود ، فإن البدائل الأبسط والأكثر فعالية من حيث التكلفة لإعداد البلازما الغنية بالصفائح الدموية مرغوبة للغاية. أظهرت الدراسات المختلفة في المختبر والنماذج التجريبية للأمراض العضلية الهيكلية والملاحظات في الخيول أن كلا من منتجات P-PRP و L-PRP لها آثار مفيدة على الخلايا والأنسجة المعالجة1،2،20. تعزز هذه المنتجات الشفاء وتقلل الالتهاب وتعزز تجديدالأنسجة 6. ومع ذلك ، فإن قرار استخدام P-PRP أو L-PRP لعلاج الخيول يمكن أن يتأثر بالعوامل الفنية والاقتصادية.

وفقا للمؤلفين ، لا توجد دراسات منشورة تصف وتوضح بشكل كامل إجراء خطوة بخطوة تم التحقق من صحته على نطاق واسع للحصول على منتج البلازما الغنية بالصفائح الدموية من دم الخيول. توضح هذه المقالة الإجراءات اللازمة لجمع الدم الكامل بأمان من الخيول وإنتاج منتج PRP مناسب للاستخدام التجريبي والسريري. ويشمل أيضا التحقق من صحة هذا العظام عن طريق القياس الكمي للصفائح الدموية والكريات البيض وتحديد تركيز TGF-β1 و PDGF-BB ، والتي تعد جزءا لا يتجزأ من آثارها العلاجية. من خلال توحيد العملية وإظهار فعالية المنتج ، تسعى هذه الدراسة إلى توفير طريقة موثوقة ويمكن الوصول إليها لممارسي الخيول لإعداد البلازما الغنية بالصفائح الدموية بثقة ودقة.

على الرغم من أن طريقة الطرد المركزي المزدوج لإنتاج البلازما الغنية بالصفائح الدموية للخيول قد تم وصفها لأول مرة بواسطة Argüelles et al.14 في عام 2006 ، إلا أن هذه هي المرة الأولى التي يتم فيها تقديم البروتوكول بالكامل في مقطع فيديو. يهدف هذا الفيديو إلى أن يكون بمثابة مورد عملي لممارسي الخيول الذين يواجهون قيودا تقنية وقيودا على الميزانية تمنعهم من استخدام مجموعات البلازما الغنية بالصفائح الدموية الأكثر تطورا وتكلفة للخيول المصابة باضطرابات عضلية هيكلية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

أجريت هذه الدراسة وفقا للبروتوكولات الداخلية لإعداد واستخدام البلازما الغنية بالصفائح الدموية في الخيول في المستشفى التعليمي البيطري التابع لجامعة دي كالداس ، مانيزاليس ، كولومبيا. لم تتطلب هذه الدراسة موافقة اللجنة الداخلية لرعاية حيث تم الحصول على البيانات من الخيول العرجاء التي عولجت سريريا في مؤسستنا. تم استخدام بيانات من ستة خيول كريول كولومبية وثلاث أفراس وثلاثة خصي ، بمتوسط عمر 7.4 (± 2.6) سنة لتطوير هذا البروتوكول. تم إبلاغ أصحاب الخيول بطبيعة الدراسة ووقعوا على نموذج موافقة مستنيرة. كانت جميع الخيول المدرجة في الدراسة تتمتع بصحة جيدة سريريا باستثناء مشكلة العضلات والعظام التي يتم علاجها. تم تضمين التي يزيد عدد الصفائح الدموية القاعدية فيها عن 100 × 103 / مل من الدم الكامل. من المهم ملاحظة أن الخيول ذات تركيزات الصفائح الدموية المنخفضة يمكن اعتبارها قلة الصفيحات14. بالإضافة إلى ذلك ، أظهرت هذه الحيوانات تعداد دم طبيعي ، ومعلمات الكيمياء الحيوية السريرية للكبد والكلى ، وقيم تحليل البول ضمن النطاق الطبيعي لأنواع الخيول.

1. تقييد الحصان وتطهير الجلد

  1. من أجل سلامة كل من الحصان والطبيب البيطري ، قم بتقييد الحصان (Eqqus caballus) بشكل آمن في شلال الفحص السريري أو بلجام (الشكل 1 أ) ، اعتمادا على سلوك. بعد ذلك ، قم بقص مساحة 5 سم × 5 سم من الشعر باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية في منتصف ثلث جانب واحد من الرقبة ، فوق الوريد الوداجي.
    ملاحظة: يفضل بعض المالكين عدم قص الحصان. تشير دراسة إلى أن قص الشعر في موقع بزل الوريد ليس ضروريا لمنع التلوث البكتيري ل P-PRP21. لذلك ، فإن هذا الإجراء يخضع لتقدير الطبيب البيطري.
  2. قم بإجراء تحضير أولي غير معقم للجلد على المنطقة المقطوعة من الوريد الوداجي لمدة 10 سم على الأقل باستخدام شاش وقفازات غير معقمة لمدة 3 دقائق تقريبا. ضع عدة قطع من الشاش مبللة برغوة مطهرة بنمط دائري (الشكل 1 ب).
  3. قم بإعداد موقع بزل الوريد بشكل معقم باستخدام كل من القفازات المعقمة والشاش المنقوع في المطهر. افرك الجلد في منطقة الرقبة بحركة دائرية لمدة 5 دقائق تقريبا. نظف المنطقة بشاش معقم مبلل بالكحول الإيثيلي بنسبة 95٪.

2. جمع الدم المعقم

  1. ضع 16 أنبوبا سعة 4.5 مل من سترات الصوديوم ، تم تنظيفها مسبقا بشاش مبلل بالكحول الإيثيلي بنسبة 95٪ ، في رف بلاستيكي نظيف. قم بتشريب الأغطية المطاطية للأنابيب المفرغة بالكحول الإيثيلي بنسبة 95٪ ، خاصة في فترة راحة اقتران الإبرة.
    ملاحظة: بشكل عام ، هناك حاجة إلى ثمانية أنابيب سترات الصوديوم سعة 4.5 مل للحصول على 2.5 مل من PRP. يعتمد عدد الأنابيب المستخدمة في حالة معينة على الأنسجة الرخوة أو المفصل المحدد الذي يتم علاجه.
  2. أدخل إبرة فراشة معقمة في الموقع الوداجي المطهر (الشكل 2 أ) وقم بتوصيل أنابيب سترات الصوديوم سعة 4.5 مل بالحامل (الشكل 2 ب). رج الأنابيب برفق وضعها في رف بلاستيكي.
    ملاحظة: يتم استخدام أنبوب سترات الصوديوم سعة 4.5 مل لتصوير الدم الآلي ولتحضير البلازما بعد الطرد المركزي بالدوران الصلب. ثم يتم استخدام هذه البلازما كعنصر تحكم سلبي لعامل النمو ومقارنات تخصيب السيتوكين مع البلازما الغنية بالصفائح الدموية.

3. شراء البلازما الغنية بالصفائح الدموية

  1. ضع أنابيب سترات الصوديوم سعة 4.5 مل التي تحتوي على دم كامل في دوار متأرجح من أربعة أماكن بزاوية 90 درجة في جهاز طرد مركزي. الطرد المركزي للأنابيب عند 120 × جم لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. بعد الطرد المركزي ، ضع الأنابيب سعة 4.5 مل التي تحتوي على دم سيتر وأنبوبين عاديين إضافيين سعة 10 مل في رف وضع الحامل على الجانب اليدوي غير المهيمن للمشغل داخل غطاء تدفق رقائقي من الفئة الثانية فوق ستارة معقمة غير منفذة.
    ملاحظة: تشير إحدى الدراسات إلى أن غطاء التدفق الصفحي من الفئة الثانية ليس ضروريا لمنع التلوث البكتيري أثناء شراء البلازماالغنية بالصفائح الدموية 21. بدلا من ذلك ، يمكن تحضير البلازما الغنية بالصفائح الدموية في غرفة نظيفة خالية من التيارات الهوائية والغبار. في هذا السيناريو ، يمكن وضع رف أنبوب الدم على طاولة مغطاة بستارة معقمة غير منفذة.
  2. الطرد المركزي الأول: ارتداء قناع الوجه وقفازات معقمة ، ضع حقنة لوير معقمة سعة 10 مل إلى جانب إبرة معقمة (21 جم 5/8 بوصة) في جانب اليد المهيمنة داخل غطاء التدفق الرقائقي.
    ملاحظة: من هذه اللحظة فصاعدا ، تظل اليد المهيمنة التي ترتدي القفازات معقمة دائما ، بينما يجب إزالة الأغطية المطاطية لأنابيب سترات الصوديوم باستخدام اليد غير المهيمنة.
  3. أدخل الإبرة المعقمة في كل أنبوب دم سيتر بالطرد المركزي 3 مم فوق الطبقة المصقولة (الشكل 3 أ) وشفط 50٪ من جزء البلازما برفق ، وتجنب اضطراب السوائل وشفط الدم. بمجرد شفط 10 مل من البلازما من أربعة أنابيب سعة 4.5 مل ، قم بتوزيعها في أنابيب عادية معقمة سعة 5-10 مل (الشكل 3 ب).
    ملاحظة: قم بإزالة الأغطية المطاطية لهذه الأنابيب باليد غير المهيمنة وضعها فوق موقع معقم من الستارة أو أمسكها لتجنب التلوث البكتيري.
  4. الطرد المركزي الثاني: أغلق الأنابيب مرة أخرى باستخدام السدادات المطاطية وضعها في حالة متوازنة في دوار متأرجح من أربعة أماكن بزاوية 90 درجة في جهاز الطرد المركزي العلوي وقم بتدوير هذه الأنابيب عند 240 × جم لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
    ملاحظة: يعتمد اختيار قوة الطرد المركزي النسبية (RCF أو g) على دراسة أساسية14 وصفت لأول مرة هذه الطريقة للحصول على البلازما الغنية بالصفائح الدموية من دم الخيول. علاوة على ذلك ، تم تقييم هذه الطريقة من أجل قابليتها للتكرار من قبل مؤلفين آخرين22.
  5. ضع الأنابيب في رف وضعها على الجانب غير المهيمن داخل غطاء التدفق الصفحي من الفئة الثانية ، فوق الستارة المعقمة وغير المنفذة مسبقا.
  6. استخدم اليد غير المهيمنة لإزالة الأغطية المطاطية واليد المهيمنة المعقمة لشفط أول 75٪ من البلازما ببطء باستخدام إبرة شوكية 18 جم ، 90 مم متصلة بحقنة لوير معقمة سعة 10 مل (الشكل 3 ج). تخلص من هذه المحقنة أو احتفظ بها للاستخدامات التجريبية أو السريرية الأخرى لأنها تحتوي على بلازما فقيرة بالصفائح الدموية (PPP). بعد ذلك ، قم بإرفاق الإبرة الشوكية المعقمة المستخدمة مسبقا بحقنة لوير معقمة سعة 5 أو 10 مل لشفط البلازما المتبقية (25٪) من الأنبوب العادي المعقم 5-10 مل. يعرف هذا الكسر باسم P-PRP (الشكل 3D).
    ملاحظة: في ظل ظروف سريرية وتجريبية معينة ، يتم استخدام حصة 0.5-1 مل من البلازما الغنية بالصفائح الدموية لتصوير الدم الآلي متبوعا بتحليل عامل النمو (TGF-β1 و PDGF-BB) عن طريق مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم. يمكن إجراء قياس هذه الوسطاء بعد 3 ساعات من تنشيط P-PRP بأملاح الكالسيوم أو الثرومبين23 أو بعد إحداث تلف الخلية عن طريق تغير درجة الحرارة أو إضافة المنظفات غير الأيونية24.
  7. لف حقنة الطلاء المعقمة التي تحتوي على البلازما الغنية بالصفائح الدموية في ستارة معقمة صغيرة غير منفذة بإبرة أو غطاء معقم متصل لمنع التلوث البكتيري لمنتج تقويم العظام (الشكل 4 أ).
    ملاحظة: يجب تحضير التركيب التشريحي للحصان المراد علاجه للحقن المعقم كما هو موضح في القسم 1 من هذا البروتوكول. يجب تقييد الحصان وتخديره بشكل كاف لتقليل الانزعاج وضمان سلامة كل من الحصان والطبيب البيطري. يجب التعامل مع منتج البلازما الغنية بالصفائح الدموية باستخدام قفازات وإبر معقمة وقد يتم تنشيطه أو لا يتم تنشيطه بناء على تفضيل الممارس (الشكل 4 ب).

4. التحليل الإحصائي

  1. جمع البيانات عن تعداد الصفائح الدموية والكريات البيض في الدم الكامل والبلازما الغنية بالصفائح الدموية. تقييم البيانات للتأكد من وضعها الطبيعي باستخدام اختبار Kolmogorov-Smirnov. إذا تم توزيع البيانات بشكل طبيعي (P > 0.05) ، قارن بيانات الخلية وحللها باستخدام اختبار t. إذا لم يتم توزيع بيانات تركيز الصفائح الدموية والكريات البيض بشكل طبيعي (P < 0.05) ، قارن البيانات وحللها باستخدام اختبار ويلكوكسون.
  2. تحديد تركيز كفاءة الصفائح الدموية والكريات البيض في P-PRP وفقا للصيغ التالية25:
    كفاءة جمع الصفائح الدموية = figure-protocol-1 × 100
    كفاءة جمع الكريات البيض = figure-protocol-2 × 100
  3. جمع البيانات من تركيزات TGF-β1 و PDGF-BB في البلازما (التحكم السلبي) البلازما (التحكم السلبي) البلازما الغنية بالصفائح الدموية (بعد 3 ساعات من التنشيط باستخدام غلوكونات الكالسيوم) ، ومحولات البلازما الغنية بالصفائح الدموية التي تم الحصول عليها عن طريق إضافة محلول منظف غير أيوني.
  4. استخدم نموذجا مختلطا خطيا معمما لمقارنة تركيزات عامل النمو بين البلازما ، والبلازما ، والمواد الطافية الغنية بالصفائح الدموية ، ومحللات البلازما الغنية بالصفائح الدموية. في حالة وجود اختلافات إحصائية كبيرة ، قم بتطبيق اختبار Tukey اللاحق.
  5. ضع في اعتبارك قيم p < 0.05 ذات دلالة إحصائية لجميع الاختبارات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

كان متوسط عدد الصفائح الدموية (الصفائح الدموية × 103 / ميكرولتر) أعلى بشكل ملحوظ في البلازما الغنية بالصفائح الدموية منه في الدم الكامل (ص < 0.001). في المقابل ، كان متوسط تركيز الكريات البيض (الكريات البيض × 103 / ميكرولتر) في البلازما الغنية بالصفائح الدموية أقل بكثير من ذلك الموجود في الدم الكامل (ص < 0.001) (الجدول 1). على وجه التحديد ، كان عدد الصفائح الدموية في البلازما الغنية بالصفائح الدموية أعلى بمقدار 2.41 مرة منه في الدم الكامل ، بينما كان تركيز الكريات البيض في الب...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يتزايد استخدام البلازما الغنية بالصفائح الدموية في الطب البشري والبيطري لعلاج الاضطرابات العضلية الهيكلية المزمنة1،8،26،27. ومع ذلك ، فإن الانتقادات الرئيسية لتطبيقات البلازما الغنية بالصفائح الدموية في الإعدادات التجريبية والسريرية هو نقص البيانات الأساسية حول التقنيات والبروتوكولات المستخدمة لإعداد مكونات الدمهذه 28. بالإضافة إلى ذلك ،...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإفصاح عنه.

شكر وتقدير

نشكر نائب رئيس التحقيقات والدراسات العليا في جامعة كالداس ، مانيزاليس ، كولومبيا على دعمهم المالي لنشر هذا المقال.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
10 مل أنابيب جمع الدم الوريدية العادية   ؛BD Vacutainer ، فرانكلين ليكس ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةالمرجع 366430هذا مجرد مثال ، يمكن استخدام أنابيب من العلامات التجارية الأخرى.
4.5 مل أنابيب سترات الصوديوم (105 م / 3. 2٪)   ؛BD Vacutainer ، فرانكلين ليكس ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكية107451هذا مجرد مثال ، يمكن استخدام أنابيب من العلامات التجارية الأخرى.
جهاز الطرد المركزي مقعدRotofix 32A, Hettich GmbH, Tuttlingen, ألمانيايمكن استخدام أجهزة الطرد المركزي الأخرى على مقاعد البدلاء.
إبرة الفراشة (21 جم &الأوقات ؛ 0.75 بوصة) مع 12 بوصة. الأنابيب والحامل المرفق مسبقا   ؛مجموعة جمع الدم Safety-Lok ، BD Vacutainer ، فرانكلين ليكس ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةالمرجع 367296هذا مجرد مثال ، يمكن استخدام إبر الفراشة من ماركات أخرى.
محلول رغوة الكلورهيكسيدين بنسبة 2.3-4٪   ؛قد تختلف العلامات التجارية أو الأسماء التجارية لهذه المنتجات من بلد إلى آخر.
غطاء محرك السيارة ذو التدفق الرقائقي من الفئة الثانيةثيرمو فيشر العلمي ، والثام ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة الأمريكيةيمكن استخدام أغطية التدفق الرقائقي الأخرى من الفئة الثانية
قارئ ELISAثيرمو فيشر العلمي ، والثام ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة الأمريكية
الكحول الإيثيلي بنسبة 95٪قد تختلف العلامات التجارية أو الأسماء التجارية لهذه المنتجات من بلد إلى آخر.
الإنسان PDGF-BB ثنائي ELISAآر آند D Systems، Inc، ماكينلي بليس، مينيسوتا، الولايات المتحدة الأمريكيةدي 220
الإنسان TGF-beta 1 DouSet ELISAآر آند D Systems، Inc، ماكينلي بليس، مينيسوتا، الولايات المتحدة الأمريكيةدي240
محلول رغوة اليود بوفيدون بنسبة 4-10٪   ؛قد تختلف العلامات التجارية أو الأسماء التجارية لهذه المنتجات من بلد إلى آخر.
برنامج SPSS 25.0شركة آي بي إم ، SPSS ، نيويورك ، الولايات المتحدة الأمريكية
محاقن لور معقمة بأحجام مختلفة   ؛حقنة التخلص ، BD Vacutainer ، فرانكلين ليكس ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةهذا مجرد مثال ، يمكن استخدام محاقن من ماركات أخرى.
إبرة شوكية معقمة (18 جم &مرات ؛ 90 مم)   ؛BD Quincke Spinel Needle ، فرانكلين ليكس ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةهذا مجرد مثال ، يمكن استخدام إبر العمود الفقري من العلامات التجارية الأخرى.

المراجع

  1. Pérez Fraile, A., González-Cubero, E., Martínez-Flórez, S., Olivera, E. R., Villar-Suárez, V. Regenerative medicine applied to musculoskeletal diseases in equines: a systematic review. Vet Sci. 10 (12), 666(2023).
  2. Boone, L., Peroni, J. Introduction to equine biologic and regenerative therapies. Vet Clin North Am Equine Pract. 39 (3), 419-427 (2023).
  3. Carmona, J. U., Gómez, W. A., López, C. Could platelet-rich plasma be a clinical treatment for horses with laminitis. J Equine Vet Sci. 61, 46-57 (2018).
  4. Gilger, B. C. Use of biologics and stem cells in equine ophthalmology. Vet Clin North Am Equine Pract. 39 (3), 541-552 (2023).
  5. Pereira, R., et al. Evaluation of three methods of platelet-rich plasma for treatment of equine distal limb skin wounds. J Equine Vet Sci. 72, 1-7 (2019).
  6. Camargo Garbin, L., Lopez, C., Carmona, J. U. A critical overview of the use of platelet-rich plasma in equine medicine over the last decade. Front Vet Sci. 8, 641818(2021).
  7. Jiménez-Aristizabal, R. F., et al. Long-term cytokine and growth factor release from equine platelet-rich fibrin clots obtained with two different centrifugation protocols. Cytokine. 97, 149-155 (2017).
  8. McCarrel, T. M. Equine platelet-rich plasma. Vet Clin North Am Equine Pract. 39 (3), 429-442 (2023).
  9. Garbin, L. C., Olver, C. S. Platelet-rich products and their application to osteoarthritis. J Equine Vet Sci. 86, 102820(2020).
  10. Anitua, E., et al. Advances in platelet rich plasma-derived extracellular vesicles for regenerative medicine: a systematic-narrative review. Int J Mol Sci. 24 (17), 13043(2023).
  11. Dohan Ehrenfest, D. M., Rasmusson, L., Albrektsson, T. Classification of platelet concentrates: from pure platelet-rich plasma (P-PRP) to leucocyte- and platelet-rich fibrin (L-PRF). Trends Biotechnol. 27 (3), 158-167 (2009).
  12. Dohan Ehrenfest, D. M., et al. Classification of platelet concentrates (platelet-rich plasma-PRP, platelet-rich fibrin-PRF) for topical and infiltrative use in orthopedic and sports medicine: current consensus, clinical implications and perspectives. Muscles Ligaments Tendons J. 4 (1), 3-9 (2014).
  13. Giraldo, C. E., Álvarez, M. E., Carmona, J. U. Effects of sodium citrate and acid citrate dextrose solutions on cell counts and growth factor release from equine pure-platelet rich plasma and pure-platelet rich gel. BMC Vet Res. 11, 60(2015).
  14. Argüelles, D., et al. Evaluation of single and double centrifugation tube methods for concentrating equine platelets. Res Vet Sci. 81 (2), 237-245 (2006).
  15. Carmona, J. U., López, C., Sandoval, J. A. Review of the currently available systems to obtain platelet related products to treat equine musculoskeletal injuries. Recent Patents on Regenerative Medicine. 3 (2), 148-159 (2013).
  16. Jildeh, T. R., Su, C. A., Vopat, M. L., Brown, J. R., Huard, J. A review of commercially available point-of-care devices to concentrate platelet-rich plasma. Cureus. 14 (8), e28498(2022).
  17. Arita, A., Tobita, M. Adverse events related to platelet-rich plasma therapy and future issues to be resolved. Regen Ther. 26, 496-501 (2024).
  18. Sutter, W. W., Kaneps, A. J., Bertone, A. L. Comparison of hematologic values and transforming growth factor-beta and insulin-like growth factor concentrations in platelet concentrates obtained by use of buffy coat and apheresis methods from equine blood. Am J Vet Res. 65 (7), 924-930 (2004).
  19. Mirza, M. H., et al. Gait changes vary among horses with naturally occurring osteoarthritis following intra-articular administration of autologous platelet-rich plasma. Front Vet Sci. 3, 29(2016).
  20. Peng, C., Yang, L., Labens, R., Gao, Y., Zhu, Y., Li, J. A systematic review and meta-analysis of the efficacy of platelet-rich plasma products for treatment of equine joint disease. Equine Vet J. 56 (5), 858-869 (2024).
  21. Alvarez, M. E., Giraldo, C. E., Carmona, J. U. Monitoring bacterial contamination in equine platelet concentrates obtained by the tube method in a clean laboratory environment under three different technical conditions. Equine Vet J. 42 (1), 63-67 (2010).
  22. Pereira, R. C. dF., et al. Avaliação de sete protocolos para obtenção de plasma rico em plaquetas na espécie equina. Ciência Rural. (6), (2013).
  23. Giraldo, C. E., Álvarez, M. E., Carmona, J. U. Influence of calcium salts and bovine thrombin on growth factor release from equine platelet-rich gel supernatants. Vet Comp Orthop Traumatol. 30 (1), 1-7 (2017).
  24. Carmona, J. U., López, C., Ceballos-Márquez, A. Temporal release and denature of several mediators in pure platelet-rich plasma and temperature-induced platelet lysates derived from a similar bovine platelet concentrate. Vet Med Int. 2022, 2609508(2022).
  25. Weibrich, G., Kleis, W. K., Hitzler, W. E., Hafner, G. Comparison of the platelet concentrate collection system with the plasma-rich-in-growth-factors kit to produce platelet-rich plasma: a technical report. Int J Oral Maxillofac Implants. 20 (1), 118-123 (2005).
  26. Cecerska-Heryć, E., Goszka, M., Serwin, N., et al. Applications of the regenerative capacity of platelets in modern medicine. Cytokine Growth Factor Rev. 64, 84-94 (2022).
  27. Bahadir, B., Sarikaya, B. Platelet-rich plasma in the management of rotator cuff tendinopathy. Jt Dis Relat Surg. 35 (2), 462-467 (2024).
  28. Harrison, P., Alsousou, J. Studies on platelet rich plasma - new editorial policy for "platelets". Platelets. 31 (3), 281-282 (2020).
  29. Chahla, J., et al. A call for standardization in platelet-rich plasma preparation protocols and composition reporting: a systematic review of the clinical orthopaedic literature. J Bone Joint Surg Am. 99 (20), 1769-1779 (2017).
  30. Ríos, D. L., López, C., Álvarez, M. E., Samudio, I. J., Carmona, J. U. Effects over time of two platelet gel supernatants on growth factor, cytokine and hyaluronan concentrations in normal synovial membrane explants challenged with lipopolysaccharide. BMC Musculoskelet Disord. 16, 153(2015).
  31. Carmona, J. U., et al. In vitro effects of platelet-rich gel supernatants on histology and chondrocyte apoptosis scores, hyaluronan release and gene expression of equine cartilage explants challenged with lipopolysaccharide. BMC Vet Res. 12 (1), 135(2016).
  32. Castillo-Franz, C., López, C., Carmona, J. U. Evaluation of the catabolic and anabolic gene expression effects and histology changes induced by platelet-rich gel supernatants in equine suspensory ligament explants challenged with lipopolysaccharide. MLTJ-Muscles Ligaments and Tendons. 11 (1), 1-14 (2021).
  33. Argüelles, D., Carmona, J. U., Climent, F., Muñoz, E., Prades, M. Autologous platelet concentrates as a treatment for musculoskeletal lesions in five horses. Vet Rec. 162 (7), 208-211 (2008).
  34. Carmona, J. U., Argüelles, D., Climent, F., Prades, M. Autologous platelet concentrates as a treatment of horses with osteoarthritis: a preliminary pilot clinical study. J Equine Vet Sci. 27 (4), 167-170 (2007).
  35. Dejnek, M., et al. Content of blood cell components, inflammatory cytokines and growth factors in autologous platelet-rich plasma obtained by various methods. World J Orthop. 13 (6), 587-602 (2022).
  36. Giraldo, C. E., et al. Effects of the breed, sex and age on cellular content and growth factor release from equine pure-platelet rich plasma and pure-platelet rich gel. BMC Vet Res. 9, 29(2013).
  37. Zimmermann, R., et al. Sample preparation technique and white cell content influence the detectable levels of growth factors in platelet concentrates. Vox Sang. 85 (4), 283-289 (2003).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

طريقة بسيطة لأنبوب الطرد المركزي المزدوج للحصول على البلازما الغنية بالصفائح الدموية من دم الخيول
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.