يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تقييم الجزء المفقود: تنوع ووفرة وكتلة اللدائن الدقيقة (1-300 ميكرومتر) في النظم المائية

533 مشاهدة

DOI:

10.3791/68148

أغسطس 22, 2025

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول منهجية يجب تطبيقها على العينات المائية التي تم جمعها على المرشحات لاكتشاف وتحديد وتحديد وتحديد الميكرون بحجم الميكرون (1-300 ميكرومتر). يمكن للتحليل الطيفي المجهري رامان تحديد التركيب الكيميائي البوليمري لجزيئات MP وتحديد وفرة منها من حيث عدد الجسيمات وكتلتها في عينات المياه.

الملخص

يتيح البروتوكول المقدم هنا القياس الكمي للجسيمات الدقيقة (MPS) التي يصل قطرها إلى ~ 1 ميكرومتر ، والتحديد الدقيق لأنواع البوليمرات ، وتقدير حجم الجسيمات ، مما يسمح بشكل حاسم بحساب كتلة MP. أظهرت النتائج التمثيلية من العينات التي تم جمعها في Great South Bay (GSB) ، نيويورك ، أن الجسيمات ضمن نطاق القطر الكروي المكافئ 1-6 ميكرومتر (ESD) كانت الأكثر وفرة ، حيث يبلغ قياس ما يقرب من 75٪ من الجسيمات أقل من 5 ميكرومتر. والجدير بالذكر أن خطوة الغربلة المسبقة فشلت في إنتاج أي جسيمات أكبر من 60 ميكرومتر ، مما يشير إلى أن أعضاء البرلمان الكبار كانوا نادرين في المواقع الساحلية التي تم أخذ عينات منها. قبل الترشيح ، تم استخدام خطوة أكسدة كيميائية لإزالة الحطام العضوي ، مما سهل ترشيح كميات أكبر من المياه (>1 لتر) من العينات المنفصلة التي تم جمعها بالزجاجات وتقليل انسداد المرشح. في حين أن هذا النهج حسن بشكل كبير من كفاءة الترشيح ، إلا أن جوانب المنهجية لا تزال بحاجة إلى تحسين لتقليل الوقت الإجمالي المطلوب لإعداد العينات وتحليل البيانات. يظل التحليل الطيفي المجهري رامان ومعالجة البيانات المرتبطة به يستغرق وقتا طويلا ، خاصة للتحليل الدقيق للجسيمات الأصغر من 10 ميكرومتر في المصفوفات البيئية المعقدة. تركز الجهود المستمرة على تقليل أوجه عدم اليقين التحليلية ، وتحسين المفاضلة بين دقة عد الجسيمات ووقت المعالجة ، وتقليل القطع الأثرية في سير عمل الكشف.

المقدمة

اللدائن الدقيقة (MPS) هي مجموعة غير متجانسة للغاية من الجسيمات التي تختلف اختلافا كبيرا في الحجم والشكل واللون والكثافة والتركيب الكيميائي والخصائص الفيزيائية الأخرى ، مما يجعل تحديدها وقياسها أمرا صعبا بشكل خاص1. تم استخدام مجموعة متنوعة من الأساليب التحليلية في استطلاعات MP ، من التقنيات المرئية مثل الفحص المجهريالضوئي 2 إلى الأساليب الكيميائية الأكثر تقدما مثل كروماتوغرافيا الانحلال الحراريللغاز 3. الفحص المجهري الضوئي هو طريقة شائعة الاستخدام لتوصيف ملفات النواب الأكبر حجما (عادة 0.5-5 مم) نظرا لبساطتها وسرعتها وفعاليتها من حيثالتكلفة 1. إنه يتيح التحديد البصري والقياس الكمي للجزيئات الشبيهة بالبلاستيك مع توفير معلومات عن مورفولوجيا السطحوهيكله 2. ومع ذلك ، فإن هذه التقنية لا تعطي معلومات كيميائية حول التركيب الكيميائي وتعتمد على خبرة المحلل. يعد التحديد الخاطئ قيدا موثقا جيدا للتحليل البصري ، حيث تتراوح معدلات الخطأ المبلغ عنها من 20٪ إلى 70٪ ، خاصة بالنسبة للجسيمات الصغيرة والشفافة. يمكن لمثل هذه الأخطاء أن تبالغ بشكل كبير في تقدير تركيزات MP في العيناتالبيئية 4.

من ناحية أخرى ، يمكن أن يوفر كروماتوغرافيا غاز الانحلال الحراري (GC) جنبا إلى جنب مع قياس الطيف الكتلي (MS) معلومات مفصلة حول التركيب الكيميائي ل MPS من خلال تحليل منتجات التحلل الحراري3. عند إقرانها بخطوة امتصاص حراري ، يمكنها أيضا اكتشاف الإضافات البلاستيكية أثناء نفس التحليل5. ومع ذلك ، تتطلب هذه الطريقة الاختيار المسبق اليدوي للجزيئات الشبيهة بالبلاستيك ووضعها بعناية في نظام الانحلال الحراري ، مما يؤدي إلى انخفاض إنتاجية العينة1.

للتغلب على قيود الأساليب التقليدية ، أصبحت التقنيات الآلية التي تمكن من تحديد النواب وتحديدهم ضروريا بشكل متزايد. يوفر التحليل الطيفي للأشعة تحت الحمراء لتحويل رامان وفورييه (FTIR) تحديدا دقيقا للبوليمر من خلال بصماتهما الطيفيةالفريدة 6،7،8. تكتشف طرق التحليل الطيفي الاهتزازية هذه الاهتزازات الجزيئية التي يسببها الضوء والليزر لرامان والأشعة تحت الحمراء ل FTIR ، مما ينتج عنه أطياف تعكس هياكل جزيئيةمحددة 7. لقد طورت كلتا التقنيتين بشكل كبير في اكتشاف وتوصيف جزيئات MP الصغيرة (<300 ميكرومتر) في مصفوفات بيئيةمختلفة 8. إنها تقلل من الإيجابيات الخاطئة عن طريق التأكيد الكيميائي للجزيئات الشبيهة بالبلاستيك ، وتقلل من السلبيات الكاذبة ، وهي غير مدمرة. عندما تقترن هذه التقنيات بالفحص المجهري (التحليل الطيفي) ، تسمح بتحديد وقياس الجسيمات البوليمرية الأصغر من 0.3 مم (مع اكتشاف μFTIR حتى ~ 10 ميكرومتر و μRaman إلى ~ 0.3 ميكرومتر) 8. ومع ذلك ، فإن كل طريقة لها قيود: يوفر رامان دقة مكانية أعلى وكشفا محسنا لبعض البوليمرات (على سبيل المثال ، البوليسترين) ، ولكنه أكثر عرضة للتداخل الفلوري ويتطلب عادة أوقات اكتساب أطول. ومع ذلك ، يمكن للتحليل الطيفي لرامان اكتشاف الجسيمات الأصغر من 0.3 ميكرومتر ، والتي تغطي نطاق حجم اللدائن الدقيقة الأوسع من تصوير FTIR 8،9.

الأداة الأساسية للعمل الموصوف هنا هي مقياس الطيف الضوئي الدقيق رامان متحد البؤر المتوفر في مختبر التصوير الجزيئي NAno-Raman التابع ل SoMAS (NARMIL). تم تحسين البروتوكول لاكتشاف وتحديد وتحديد النواب ذات الحجم الصغير (<300 ميكرومتر) على المرشحات من عينات المياه التي يتم استبعادها عادة عند استخدام العوالق أو شباك شيطان البحر لأخذ عينات من البلاستيك البحري. أيضا ، عملية الأكسدة الكيميائية ضرورية لتقليل وجود المخلفات غير البلاستيكية (الحطام العضوي). هذا يقلل من التداخل التحليلي قبل التحليل الطيفي المجهري رامان ، والأهم من ذلك ، يمنع انسداد مسام المرشح ، مما يسمح بترشيح كميات أكبر من الماء. باستخدام هذه التقنية ، من الممكن اكتشاف جزيئات MP في جزء بحجم ميكرون إلى مليمتر تم جمعه على مرشحات من عينات المياه ، وتمكن من حساب تركيزات MP المحددة وأحجام الجسيمات والكتل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم تعديل هذا البروتوكول من الإصدار الأصلي9. البروتوكول هو دليل لتحليل العينات المائية (مياه الشرب أو النهر أو البحيرة أو الساحل أو المحيط المفتوح) لاستخراج واكتشاف وتحديد العينات المائية (<300 ميكرومتر) على المرشحات. الكواشف والمعدات المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. مراقبة الجودة

  1. تأكد من تصفية جميع الكواشف من خلال مرشح غشائي 0.22 ميكرومتر قبل الاستخدام.
  2. تأكد من ارتداء الأفراد لمعاطف المختبر القطنية (بدون مواد اصطناعية) وغسل أيديهم قبل وبين مناولة العينة.
  3. اشطف معدات الترشيح بالماء المقطر المفلتر 0.22 ميكرومتر قبل الترشيحات وبينها. قم بتغطيتها بورق ألومنيوم نظيف عندما لا تكون قيد الاستخدام.
  4. الفراغات الميدانية: املأ زجاجات العينات المغسولة بالماء المقطر المفلتر 0.22 ميكرومتر وقم بمعالجتها مثل العينات البيئية.
  5. الفراغات المختبرية: معالجة 1 لتر من الماء المقطر المفلتر 0.22 ميكرومتر من خلال مرشحات Al2O3 جنبا إلى جنب مع كل دفعة عينة.

2. جمع وإعداد عينات المياه الطبيعية لقياس MP

  1. اشطف مسبقا جميع زجاجات العينات (بما في ذلك عبوات نيسكين والعبوات الزجاجية) بالماء المقطر المفلتر 0.22 ميكرومتر لتقليل التلوث.
  2. يمكن جمع عينات أعمدة المياه المنفصلة (>1 لتر) من الأنظمة المائية باستخدام طرق أخذ العينات القياسية ، على سبيل المثال ، الزجاجات (المياه السطحية) أو زجاجات البولي فينيل كلوريد (PVC) المثبتة على وردة (عمود الماء) ونقلها مباشرة إلى زجاجات زجاجية.
  3. تم تجميع المياه مسبقا باستخدام مناخل معدنية 200 ميكرومتر و 60 ميكرومتر لإزالة الحطام العضوي وفصل MPS إلى كسور الحجم.
    ملاحظة: يمكن التعرف على الجسيمات المحتجزة مباشرة تحت المجهر.
  4. قم بتخزين الماء الذي يمر عبر المنخل المعدني 60 ميكرومتر في عبوات زجاجية. في وقت لاحق ، قم بتصفية هذا الجزء على مرشحات غشاء أكسيد الألومنيوم (Al2O3) (قطر 25 مم ، حجم مسام 0.2 ميكرومتر).

3. الأكسدة الكيميائية لعينات المياه

ملاحظة: لتقليل التداخل التحليلي من الجسيمات الحيوية الوفيرة ، يتم تنظيف العينات عن طريق الأكسدة الكيميائية قبل تحليل رامان الطيفي المجهري.

  1. امزج 100 مل من بيروكسيد الهيدروجين بنسبة 30٪ (حجم / حجم) مع 1 لتر من العينة في وعاء زجاجي واخلطه جيدا.
    تنبيه: تعامل مع H2O2 بعناية - مؤكسد قوي ، قد يسبب تهيج الجلد والعين. ارتد القفازات والنظارات الواقية واتبع إجراءات السلامة في المختبر.
  2. غطي الوعاء بغطاء أو ورق ألومنيوم وضعيه في فرن على حرارة 60 درجة مئوية لمدة ~ 10 ساعات.
  3. اترك العينة تبرد لمدة 10 دقائق ، ثم انتقل إلى الترشيح وهي لا تزال دافئة.

4. ترشيح عينات المياه

ملاحظة: نظرا للهشاشة المتأصلة في المرشح ، يجب توخي الحذر حتى لا تثني مرشحات الغشاء Al2O3 أثناء التركيب والإزالة عن طريق التعامل مع المرشح حصريا بواسطة حلقة البولي بروبيلين الحلقية المرتبطة بالغشاء.

  1. في غطاء التدفق الرقائقي ، قم بتصفية عينات وفراغات سعة 1 لتر باستخدام نظام ترشيح زجاجي بالكامل مع قاعدة زجاجية متكلس ومشبك معدني.
  2. بعد الترشيح ، اشطف المرشحات بالماء المقطر المفلتر 0.22 ميكرومتر.
  3. قم بتركيب المرشح على شريحة مجهرية بدون غطاء لتحليل رامان.

5. تحليل رامان الطيفي المجهري لجزيئات MP المفلترة

ملاحظة: يتم استخدام مقياس الطيف الضوئي الدقيق رامان متحد البؤر وبرامجه كطريقة تحليلية لتحديد وتحديد جزيئات MP. تم تكوين الأداة باستخدام مجهر epifluorising عمودي معدل ، ومرحلة xyz آلية يتم التحكم فيها بواسطة الكمبيوتر بحجم خطوة 0.1 ميكرومتر في جميع الأبعاد ، وأربعة خطوط ليزر (457/514 نانومتر ليزر أيون Ar + ، وليزر 633 نانومتر He / Ne ، وليزر 785 نانومتر) ، وكاشف CCD مبرد ببلتيير 1،040 × 256.

  1. باستخدام ميزة الحصول على الصور في برنامج Raman ، قم بإعداد تكوين الأداة لتحليل MPS للعينات المائية.
    1. الليزر: 633 نانومتر He / Ne عند ~ 9.3 ميجاوات طاقة ليزر (عبر هدف 50×).
    2. صريف: 1200 خط / مم.
    3. النطاق الطيفي: 200-2500 سم -1.
    4. وقت التعرض: 0.7 ثانية / الطيف.
  2. قم بإعداد شبكة داخل منطقة الاهتمام (ROI) عن طريق أخذ الأطياف كل 1 ميكرومتر في البعدين x و y.
  3. حدد كل عائد استثمار على أنه شبكة 100 ميكرومتر × 100 ميكرومتر في صورة الكاميرا (10,000 ميكرومتر2).
    ملاحظة: يمكن تعديل منطقة عائد الاستثمار. على سبيل المثال ، ستقلل المساحات الأصغر من الوقت الإجمالي للتحليل.
  4. قم بتحليل ~ 40 عائد استثمار لكل مرشح ، يتم اختياره عشوائيا باستخدام نموذج نمط متقاطع لتمثيل التوزيع المكاني MP عبر منطقة المرشح المكشوفة بأكملها.
  5. بعد جمع البيانات الآلي ، استخدم ميزة الحصول على الصور في البرنامج لإنتاج خرائط كيميائية ثنائية الأبعاد مفصلة لكل عائد استثمار.
  6. من كل خريطة كيميائية ، حدد وحدد جسيمات MP وحددها باستخدام تحليل المكونات (طريقة ارتباط المربعات الصغرى غير السلبية) وفقا لإمكانيات البرنامج.
  7. قارن الأطياف مع المكتبات المرجعية. قبول المباريات ذات الدرجة >60 (درجة المكتبة الداخلية 0-100) كأعضاء البرلمانالمؤكدين 10.

6. التعداد الكمي القائم على المرشح لجسيمات MP

  1. بعد إجمالي عدد الجسيمات من ~ 40 عائد استثمار ، احسب عدد جسيمات MP لكل لتر من العينة (N) ، وفقا للمعادلة 111.
    figure-protocol-1(1)
    حيث Af هو إجمالي مساحة المرشح المكشوفة (مم2) ، n هو العدد الإجمالي لجسيمات MP المحسوبة مجتمعة عبر جميع عائد الاستثمار الذي تم فحصه ، و b عدد عائد الاستثمار الذي تم فحصه ، و M حجم مساحة عائد الاستثمار الواحد (مم2) ، و V حجم (لتر) من المياه التي تمت تصفيتها من العينة.
  2. حدد عدم اليقين التحليلي للعدد الإجمالي للجسيمات (N) في كل عينة عن طريق حساب الخطأ المعياري من جميع عائد الاستثمار المحسوب.
  3. أبلغ عن العدد الإجمالي للجسيمات لكل لتر على أنه N ± 1S.E.

7. حسابات حجم الجسيمات والحجم والكتلة

ملاحظة: حدد الأبعاد والمساحة والقطر الكروي المكافئ (ESD) لكل جسيم بمساعدة برنامج تحليل الصور.

  1. حدد المساحة عن طريق حساب إجمالي وحدات البكسل الموجبة للبلاستيك المخصصة لكل صورة جسيم.
  2. استخدم مساحة الجسيمات هذه (Ap) لحساب ESD بتطبيق المعادلة 211:
    figure-protocol-2(2)
  3. احسب تقديرا مثاليا لحجم الإهليلجي لكل جسيم باستخدام المعادلة 312.
    figure-protocol-3(3)
  4. احسب الكتل (M) لكل بوليمر بلاستيكي في تجمع MP باستخدام تقديرات الحجم والكثافات المحددة المنشورة (ρ ؛ g cm3) لكل بوليمر بلاستيكي (أي M = ρV). عادة ما يتم الإبلاغ عن الكتلة بالميكروغرام / لتر
    ملاحظة: لتقدير عدم اليقين المنتشر في حساب الكتلة (الخطأ النسبي للكتلة ، RE = SD / متوسط) لكل جسيم ، يتم النظر في عدم اليقين التحليلي في كل من خوارزمية الحجم ومتوسط الكثافة من خلال تطبيق المعادلةالتالية 13:
    figure-protocol-4(4)
    حيث R.E. vol هو الخطأ النسبي (SE للمنحدر / المنحدر) لمنحدر الانحدار الخطي (3-D و "حجم 2-D")9. R.E. den هي الاختلافات النسبية (SE / المتوسط) في نطاق قيم الكثافة المبلغ عنها لكل بوليمر موجود في جسيم معين.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

هنا ، يتم عرض النتائج التي تم الحصول عليها باستخدام أحدث إصدار من المنهجية. تم تعديل الطريقة من تطبيقها الأصلي9،14. العينات المستخدمة في هذه المقالة هي جزء من مشروع لتقييم تلوث MP في ثلاثة مسطحات مائية ساحلية رئيسية في لونغ آيلاند ، نيويورك: Great South Bay ، ومصب Peconic ، وخليج Shinnecock. تعمل النتائج المعروضة هنا كدليل على المفهوم لطريقتنا المحسنة بدلا من التقييم المنهجي لجودة المياه في هذه المسطحات المائية. تم جمع المياه السطحية من محطتين تقعان في جريت ساوث ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تتيح هذه المنهجية القياس الكمي لجزيئات اللدائن الدقيقة (MP) التي يصل حجمها إلى 1 ميكرومتر من عينات المياه التي تم جمعها على المرشحات ، مما يسمح بقياسات مفصلة لوفرة الجسيمات والتركيب الكيميائي والحجم والكتلة. ومع ذلك ، من الضروري التعرف على مصادر عدم اليقين المتأصلة في هذا النهج ومعالجتها ، لا سيما عند تحليل الجسيمات الأصغر من 10 ميكرومتر في المصفوفات البيئية المعقدة.

يعد الافتقار الحالي إلى الإجراءات الموحدة لتحديد حدود الكشف (LOD) والقياس الكمي (LOQ) في أبحاث...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن المؤلفون أنه ليس لديهم مصالح مالية متنافسة معروفة أو علاقات شخصية يمكن أن يبدو أنها تؤثر على العمل المبلغ عنه في هذه الورقة.

شكر وتقدير

يعرب المؤلفون عن امتنانهم لاريسا كرايم وأنتوني هيل وألانا تشين ومايا بوتكيفيتش وليزلي ميخيا لمساعدتهم في المختبر وتحليل البيانات. تم إنتاج جميع بيانات رامان الطيفية في مختبر نانو رامان للتصوير الجزيئي (NARMIL) التابع لكلية العلوم البحرية والغلاف الجوي ، وهو مورد مجتمعي مخصص لتطبيقات العلوم البيئية وتم تأسيسه بمنحة NSF-MRI OCE-1336724. تم دعم البحث جزئيا من خلال منحة أولية من جامعة ستوني بروك (SBU) وزمالة إكمال أطروحة SBU الرئاسية CF21.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
رقائق الألومنيوم   ؛أي علامة تجارية
المناخل التحليلية المصنوعة من الفولاذ المقاوم للصدأRetsch GmbH ، ألمانيارقم الدين 4188
مرشحات Anodiscواتمان
حامل الفلترفيشربراند ميليبور سيجماXX1012542
الزجاجاتفيشربراند ميليبور سيجما02-912-313أي حاوية زجاجية تعمل على عملية أخذ العينات
قمع الأواني الزجاجيةفيشربراند ميليبور سيجماXX1012514
هايدروجين بيروكسيد 30٪ابتكار العلوم7722-84-1
inVia مقياس الطيف الضوئي المجهري رامان متحد البؤر   ؛رينيشيو
غطاء التدفق الرقائقيلابكونكو أو أي غطاء شفاط صفحي آخر ذهابا وإيابا وذهابا وتكرارا للاستخدام في المختبر
مشبك معدنيفيشربراند ميليبور سيجماXX1012503
ملقط معدنيفيشربراند ميليبور سيجما13-820-061
شرائح المجهرثيرمو فيشرhttps://www.thermofisher.com/
قفازات النتريلكيمتيك55080-54
فلترات غشاء النيتروسليلوز 0.22تقنية تصفية GVS 1214898
فرن حراري شعاعيأدوات خط المختبر  3609
مضخة فراغولشهاتف: 25468-01 أ
سلك 5.2رينيشيو

المراجع

  1. Shim, W. J., Hong, S. H., Eo, S. E. Identification methods in microplastic analysis: A review. Anal Methods. 9 (9), 1384-1391 (2017).
  2. Song, Y. K., et al. A comparison of microscopic and spectroscopic identification methods for analysis of microplastics in environmental samples. Mar Pollut Bull. 93 (1-2), 202-209 (2015).
  3. Fries, E., et al. Identification of polymer types and additives in marine microplastic particles using pyrolysis-GC/MS and scanning electron microscopy. Environ Sci Process Impacts. 15 (10), 1949-1956 (2013).
  4. Löder, M. G. J., Gerdts, G. Marine Anthropogenic Litter. Marine Anthropogenic Litter. Bergmann, M., Gustow, M., Klages, L. , 201-228 (2015).
  5. Dekiff, J. H., Remy, D., Klasmeier, J., Fries, E. Occurrence and spatial distribution of microplastics in sediments from Norderney. Environ Pollut. 186, 248-256 (2014).
  6. Käppler, A., et al. Identification of microplastics by FTIR and Raman microscopy: a novel silicon filter substrate opens the important spectral range below 1300 cm(-1) for FTIR transmission measurements. Anal Bioanal Chem. 407, 6791-6801 (2015).
  7. Araujo, C. F., Nolasco, M. M., Ribeiro, A. M. P., Ribeiro-Claro, P. J. A. Identification of microplastics using Raman spectroscopy: latest developments and future prospects. Water Res. 142, 426-440 (2018).
  8. Primpke, S., Lorenz, C., Gerdts, G. An automated approach for microplastics analysis using focal plane array (FPA) FTIR microscopy and image analysis. Anal Methods. 9, 1499-1511 (2017).
  9. Medina Faull, L. E., Zaliznyak, T., Taylor, G. T. Assessing diversity, abundance, and mass of microplastics (~1-300 µm) in aquatic systems. Limnol Oceanogr Methods. 19, 369-384 (2021).
  10. Woodall, L. C., et al. The deep sea is a major sink for microplastic debris. J Soc Open Sci. 1, 140317(2014).
  11. Engel, A. Determination of marine gel particles. Practical Guidelines for the Analysis of Seawater. Wurl, O. , CRC Press. 139-150 (2009).
  12. Hillebrand, H., Dürselen, C. D., Kirschtel, D., Pollingher, U., Zohary, T. Biovolume calculation for pelagic and benthic microalgae. J Phycol. 35 (2), 403-424 (1999).
  13. Harris, D. Quantitative Chemical Analysis. 13, W.H. Freeman and Company. New York. (2007).
  14. Medina Faull, L. E., Zaliznyak, T., Taylor, G. T. From the Caribbean to the Arctic, the most abundant microplastic particles in the ocean have escaped detection. Mar Pollut Bull. 202, 116338(2024).
  15. Munno, K., et al. Patterns of microparticles in blank samples: a study to inform best practices for microplastic analysis. Chemosphere. , (2023).
  16. Lao, W., Wong, C. S. How to establish detection limits for environmental microplastics analysis. Chemosphere. 333, 138883(2023).
  17. Dawson, A., Santana, J., Nelis, M., Cherie, D., Motti, A. Taking control of microplastics data: a comparison of control and blank data correction methods. J Hazard Mater. 443 (Part A), 130218(2023).
  18. Prata, J. C., Manana, M. J., da Costa, J. P., Duarte, A. C., Rocha-Santos, T. What is the minimum volume of sample to find small microplastics: Laboratory experiments and sampling of Aveiro Lagoon and Vouga River, Portugal. Water. 12 (4), 1219(2020).
  19. Cowger, W., et al. Reporting guidelines to increase the reproducibility and comparability of research on microplastics. Appl Spectrosc. 74 (9), 1066-1077 (2020).
  20. Schymanski, D., Goldbeck, C., Humpf, H. U., Fürst, P. Analysis of microplastics in water by micro-Raman spectroscopy: release of plastic particles from different packaging into mineral water. Water Res. 129, 154-162 (2018).
  21. Erni-Cassola, G., Gibson, M. I., Thompson, R. C., Christie-Oleza, J. A. Lost, but found with Nile Red: A novel method for detecting and quantifying small microplastics (1 mm to 20 µm) in environmental samples. Environ Sci Technol. 51 (23), 13641-13648 (2017).
  22. Tamminga, M. Nile Red staining as a subsidiary method for microplastic quantification: A comparison of three solvents and factors influencing application reliability. SDRP J Earth Sci Environ Stud. 2 (2), 165-172 (2017).
  23. Klein, M., Fischer, E. K. Microplastic abundance in atmospheric deposition within the metropolitan area of Hamburg, Germany. Sci Total Environ. 685, 96-103 (2019).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً