يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تجزئة الأنسجة الدهنية المبتكرة لتحويل الدهون إلى مكونات متخصصة

1.5K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/68152

⸱

يوليو 11, 2025

 ,  , 
1Department of Plastic and Cosmetic Surgery, Nanfang Hospital, Southern Medical University

في هذه المقالة

ملخص

هنا ، نقدم بروتوكولا يمكنه تحويل الأنسجة الدهنية الذاتية إلى مواد دهنية مختلفة ذات خصائص ووظائف فيزيائية كيميائية مختلفة.

الملخص

يستخدم تطعيم الأنسجة الدهنية الذاتية التقليدية بشكل شائع لزيادة الحجم وتجديد الأنسجة. ومع ذلك ، فإن الخصائص الفيزيائية والبيولوجية الموحدة لترقيع الدهون غالبا ما تؤدي إلى أداء دون المستوى الأمثل في سيناريوهات المريض المتنوعة والمتطلبات متعددة الأوجه. بالتوسع في أسس زراعة الدهون الذاتية ، نقدم نهجا رائدا يسمى زرع المكونات الدهنية الذاتية. يدمج هذا المفهوم المبتكر بروتوكولا مصمما بدقة يهدف إلى تحويل الأنسجة الدهنية الذاتية إلى مجموعة متنوعة من المكونات الدهنية ، تتميز كل منها بخصائص فيزيائية وكيميائية فريدة مصممة لتلبية تطبيقات محددة عبر سياقات سريرية متنوعة. من خلال سلسلة من الطرق الفيزيائية ، يمكن تحويل الأنسجة الدهنية إلى مركب المصفوفة الدهنية (AMC) الذي يوفر دعما صلبا كافيا ، والدهون عالية الكثافة (HDF) لمزيد من الملء ، وجل كسر الأوعية الدموية اللحمي (SVF) للحقن الصغيرة و / أو الدقيقة ، وجزء الكولاجين الدهني (ACF) للتجاعيد الدقيقة و / أو احتياجات تجديد شباب الوجه. تمتلك هذه المكونات الدهنية المتميزة خصائص متأصلة تتناسب مع استراتيجيات زرع دقيقة ومستهدفة ، وتلبي المتطلبات الدقيقة لاحتياجات المريض الفردية. يظهر بروتوكول تجزئة الأنسجة الدهنية الجديد إمكانات كبيرة في إحداث ثورة في تطعيم الأنسجة الدهنية. يقدم منظورا ومنهجية جديدة لزراعة أكثر دقة وتخصيصا.

المقدمة

تطعيم الأنسجة الدهنية الذاتية هي تقنية مستخدمة على نطاق واسع للتعزيز الحجمي وتجديد الأنسجة ، مدفوعة بالتقدم في إعداد موقع المتبرع ، واستخراج الدهون ، ومعالجتها ، وزرعها1،2،3،4. ومع ذلك ، فإن الخصائص الفيزيائية والبيولوجية الموحدة لترقيع الدهون التقليدية غالبا ما تحد من فعاليتها في تلبية الاحتياجات السريريةالمتنوعة 5. للتغلب على هذه القيود ، طور فريق البحث لدينا بروتوكولا مبتكرا لتجزئة الأنسجة الدهنية ، وتحويل الدهون الذاتية إلى مكونات متخصصة ذات خصائص ووظائف فيزيائية وكيميائية متميزة.

الهدف الأساسي من البروتوكول هو تجزئة الأنسجة الدهنية الذاتية إلى مكونات متخصصة - مركب المصفوفة الدهنية (AMC) ، وكسر الأوعية الدموية اللحمي (SVF) - جل ، وجزء الكولاجين الدهني (ACF) ، كل منها مصمم لمواجهة تحديات سريرية محددة. من خلال توفير مكونات ذات خصائص فريدة ، مثل الصلابة المحسنة ، وكثافة الخلايا العالية ، والتركيبات الغنية بالكولاجين ، يتيح البروتوكول استراتيجيات زرع دقيقة ومستهدفة6،7،8،9،10،11.

على الرغم من فعالية تطعيم الدهون التقليدي في زيادة الحجم ، إلا أنه غالبا ما يفشل في تلبية المتطلبات الدقيقة للسيناريوهات السريرية المعقدة. يؤدي امتصاصه غير المتوقع للدهون إلى استعادة حجم غير مستقر. علاوة على ذلك ، نظرا للخصائص الفيزيائية والبيولوجية الموحدة لترقيع الدهون التقليدية ، فإنها لا تستطيع توفير حشو مستهدف للمناطق ذات متطلبات الزرع المحددة ، مثل الدعم الهيكلي ، وإجراء حقن دقيقة في منطقة صغيرة ، وتحقيق تحفيز الكولاجين المستهدف. تتطلب هذه المشكلات في كثير من الأحيان إجراء عمليات جراحية متعددة ، مما يزيد من آلام المرضى والعبء المالي1،2،5. يعالج بروتوكول التجزئة هذا هذه القيود عن طريق إثراء الأنسجة الدهنية على وجه التحديد بمحتوى ذي قيمة معينة من الأنسجة الدهنية التقليدية. من خلال هذه العملية ، نقوم بتشكيل مكونات الأنسجة الدهنية بخصائص مخصصة ، وبالتالي نقدم للأطباء مجموعة أدوات متعددة الاستخدامات للعلاج الشخصي. بالمقارنة مع الحشوات الاصطناعية أو تطعيم الدهون التقليدي ، يستخدم النهج الأنسجة الذاتية ، مما يلغي خطر الرفض المناعي ويضمن التوافق الحيوي3. بالإضافة إلى ذلك ، تنشئ عملية التجزئة مكونات ذات خصائص فريدة ، مثل AMC ، التي توفر دعما هيكليا وتتميز بمعدل امتصاص منخفض. SVF-gel ، الذي يوفر حقنا دقيقة ويتميز بكثافة عالية من خلايا كسر الأوعية الدموية اللحمية ؛ و ACF ، سقالة بروتين الكولاجين قادرة على التحكم في إطلاق عوامل الدهون ، والتي تظهر إمكانية التطبيقات السريرية في تجديد شباب الجلد7،9،11. يقلل هذا النهج أيضا من الحاجة إلى الإجراءات المتكررة من خلال تحسين الاحتفاظ بالكسب غير المشروع ورضاالمريض 10،12.

إن مفهوم تجزئة الأنسجة البيولوجية لتحسين النتائج العلاجية راسخ ، كما هو موضح في فصل الدم إلى بلازما وخلايا الدم الحمراء والصفائح الدموية للتطبيقات الطبية المستهدفة. في السنوات الأخيرة ، تقدمت الأبحاث والتطبيقات السريرية لمكونات الأنسجة الدهنية تدريجيا13،14،15،16،17،18. يعتمد بروتوكول التجزئة الدهنية هذا على هذا المبدأ ، حيث يعزل المكونات ذات الخصائص المميزة للاستخدام السريري المخصص. يمكن للأطباء تحديد مدى ملاءمة هذه الطريقة من خلال النظر في الاحتياجات التشريحية للمريض ، والنتائج المرجوة (على سبيل المثال ، زيادة الحجم ، والدعم الهيكلي ، أو تجديد شباب الجلد) ، والمعدات المتاحة. هذا البروتوكول فعال بشكل خاص للحالات التي تتطلب تحكما دقيقا في خصائص الكسب غير المشروع ، مثل تجديد شباب الوجه أو مراجعة الندبات أو الإجراءات الترميمية المعقدة7،10،12.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على هذا البحث من قبل مجلس المراجعة الأخلاقية في مستشفى نانفانغ ، قوانغتشو ، الصين. تم جمع الأنسجة الدهنية من متبرعين أصحاء أعطوا موافقة خطية مستنيرة للمشاركة في الدراسة. تمت الموافقة على جميع التجارب على من قبل لجنة رعاية واستخدام المؤسسية في مستشفى نانفانغ وتم إجراؤها وفقا لإرشادات المجلس الوطني للصحة والبحوث الطبية (الصين).

1. تحضير الدهون

  1. التخدير العام وتسلل السوائل المنتفخة
    1. ضع المريض تحت التخدير العام. خلال مرحلة التحريض الوريدي، يتم تطبيق مزيج من البروبوفول (2 ملغم/كغ) والفنتانيل (1.5 ميكروغرام/كغ) والروكورونيوم (0.6 ملغم/كغ)، يليه الحفاظ على عمق التخدير باستخدام سيفوفلوران (1.5٪) ورميفنتانيل (0.1 ميكروغرام/كغ/دقيقة). طوال الإجراء ، اضبط خطة التخدير ديناميكيا بناء على مراقبة BIS (القيمة المستهدفة 40-60) ، ومعلمات الدورة الدموية (MAP >65 مم زئبق) ، و EtCO2 (35-45 مم زئبق).
    2. ضع المريض في وضع ضعيف مع حشوة واقية عند نقاط الضغط وقم بتطهير موقع الجراحة بدقة باستخدام كحول الكلورهيكسيدين. التزم بالبروتوكولات المعقمة لتقليل مخاطر العدوى.
    3. تسلل إلى الأنسجة تحت الجلد في منطقة شفط الدهون (مثل البطن أو الفخذ) بسائل منتفخ يحتوي على 0.06٪ ليدوكائين و 0.001٪ أدرينالين باستخدام حقنة 20 مل. الحفاظ على نسبة 2: 1 من التسلل إلى الحجم المتوقع لاستخراج الدهون ، وضبط حجم الحقن الكلي وفقا للخصائص التشريحية المحددة للمريض وحجم منطقة العلاج.
    4. تحقق من تأثير التخدير لتأكيد تسلل السوائل المنتفخة بالكامل. قبل الخطوة التالية ، قم بوخز منطقة شفط الدهون أو قرصها. إذا شعر المريض بضغط طفيف فقط ، فإن التسلل يكفي ، مما يتيح جمع الدهون مع إزعاج أقل.
  2. حصاد الدهون
    1. استخدم قنية متعددة المنافذ مقاس 3 مم مع فتحات جانبية حادة بقطر 1 مم لجمع الدهون. قم بإجراء العملية عند ضغط الشفط -0.75 ضغط جوي لتقليل الضرر الذي يلحق بالأنسجة الدهنية وضمان سلامة الخلايا الدهنية المجمعة وقابليتها للحياة.
  3. تحضير دهون كولمان
    1. اترك الدهون المجمعة ، التي توضع في حقنة سعة 60 مل ، ثابتة لمدة 10 دقائق للسماح للمكونات السائلة بالاستقرار في قاع الحاوية.
    2. تخلص بعناية من الجزء السائل في الأسفل واجمع الطبقة الدهنية العلوية النقية نسبيا لإزالة الشوائب مثل الدم والسائل المنتفخ.
    3. احتفظ بالدهون المجمعة في حقنة 60 مليلتر وجهاز طرد مركزي عند 1,200 × جم لمدة 3 دقائق في درجة حرارة الغرفة لمزيد من التقسيم الطبقي للمكونات.
    4. بعد الطرد المركزي ، تخلص من الجزء السائل في الأسفل مرة أخرى. احتفظ بالطبقة العليا من الدهون ، والتي تعرف باسم دهن كولمان ، في 60-
      حقنة مليلتر.
  4. جمع عينات الدهون عالية الكثافة ومنخفضة الكثافة
    1. انقل الجزء العلوي من دهون كولمان إلى أنبوب اختبار سعة 20 مل ، وتعريفه على أنه دهون منخفضة الكثافة (LDF).
    2. انقل 1/3 الجزء السفلي المتبقي من دهون كولمان إلى أنبوب اختبار آخر سعة 20 مل ، وتعريفه بأنه دهون عالية الكثافة (HDF).

2. استخراج المكونات

  1. تحضير مركب المصفوفة الدهنية (AMC)
    1. قم بتمرير HDF من خلال جهاز ترشيح بغطاء وثلاثة مناخل داخلية (تباعد شاشة مرشح 1.5 مم).
    2. اجمع الأنسجة المرفقة وقم بتجفيفها في كيس مرشح 100 شبكة محاط بالشاش. تحديد نقطة النهاية من خلال مراقبة الأنسجة أثناء التقاطها بالملقط ؛ عندما لا تسقط قطرات سائلة واضحة عند التقاط الملقط ، فهذا يشير إلى أن الجفاف قد حقق التأثير المطلوب. تم تحديد المنتج النهائي على أنه AMC. قم بتخزين HDF المتبقي لاستخدامه في المستقبل.
  2. استخلاص الكسر الوعائي اللحمي (SVF) - جل
    1. الاستحلاب الميكانيكي ل LDF: استحلاب LDF ميكانيكيا عن طريق تمريره بين حقنتين متصلتين بواسطة موصل Luer-Lok من أنثى إلى أنثى بقطر داخلي يبلغ 1.4 مم بمعدل 10 مل / ثانية لمدة 1 دقيقة.
    2. جهاز الطرد المركزي LDF المستحلب عند 1,600 × جم لمدة 3 دقائق. اجمع الطبقة الوسطى ، التي تشبه مادة تشبه الهلام ، مثل SVF-gel.
  3. إنتاج جزء الكولاجين الدهني (ACF)
    1. سحق LDF: قم بسحق LDF في مستخرج ACF متخصص عند 30,000 دورة في الدقيقة لمدة 60 ثانية للحصول على تعليق الدهون.
    2. التصفية: انقل معلق الدهون إلى محاقن سعة 20 مل. قم بتوصيله بفلتر أحادي الاتجاه 0.25 مم ، وادفع المكبس ، واجمع المرشح في حقنة أخرى سعة 20 مل. بعد ذلك ، قم بتوصيل هذه المحقنة بمرشح أحادي الاتجاه 0.15 مم ، وادفع المكبس مرة أخرى ، واجمع المرشح النهائي في حقنة ثالثة سعة 20 مل. ثم ، قم بالطرد المركزي لتعليق الدهون عند 3,000 × جم لمدة 3 دقائق.
    3. اجمع الجزء الصلب في الأسفل على شكل ACF.

3. اختبار مكونات الدهون

  1. اختبار الصلابة
    1. استخدم جهازا مزودا بمستشعر قياس القوة بنطاق من 0 نيوتن إلى 225 نيوتن ومشغل كهرومغناطيسي يسمح ب 6 مم من السفر المحوري.
    2. قم بتثبيت كل عينة من الأنسجة (AMC ودهون كولمان) وقم بتطبيق تحميل مسبق من 25 - 30 نيوتن للتخلص من الركود والتسبب في الاستطالة. اضبط تحميل المنحدر على 8 مم / ثانية وسجل أعلى قوة تم تحقيقها قبل تمزق العينة إلكترونيا. ثم يحسب الجهاز تصلب الأنسجة.
  2. تلطيخ الهيماتوكسيلين والأيوزين (HE) وماسون
    1. قم بإصلاح العينات في 4٪ بارافورمالدهيد للحفاظ على هيكلها. يجفف في تدرج الإيثانول لإزالة الماء ، وهو أمر ضروري لعملية التضمين اللاحقة.
    2. قم بتضمين العينات في البارافين ، وهي عملية تجعل العينات أسهل في تقطيعها إلى أقسام رفيعة. بعد ذلك ، قم بتقسيم العينات المضمنة في البارافين.
    3. قم بتلطيخ الأقسام ببقع HE و Masson ثلاثية الألوان. فحص العينات باستخدام الفحص المجهري الإلكتروني الماسح (SEM).
  3. دراسات الزرع
    1. اختر 70 فأرا عارية بمستوى عامل حماية من الشمس الصحي، يتراوح وزنها بين 15 و 18 جراما وتتراوح أعمارهم بين 4 و 6 أسابيع (بغض النظر عن الجنس). احتفظ بالفئران وفقا للإرشادات المؤسسية ، ووضعها في أقفاص فردية مع دورة إضاءة / ظلام مدتها 12 ساعة ، ويتم تزويدها بالطعام والماء القياسي.
    2. تخدير الفئران عن طريق الحقن داخل الصفاق من الصوديوم البنتوباربيتال (50 مجم / كغ). تحقق من عمق التخدير باستخدام منعكس قرصة إصبع القدم. ضعي مرهم العين لمنع الجفاف.
    3. حقن 0.3 مل من AMC المحضر أو الأنسجة الدهنية (دهن كولمان في المجموعة الضابطة) في الأنسجة تحت الجلد لكل فأر ، ويكون بمثابة خط الأساس للطعم الدهني. راقب حتى تستعيد وعيها ثم انقلها إلى أقفاصها.
    4. في الأيام 7 و 14 و 30 و 60 و 90 بعد التطعيم ، قم بحصاد الطعوم عن طريق فصلها بعناية عن الأنسجة المحيطة. قياس أحجامها. تم تحديد معدل الاحتفاظ بالطعوم على النحو التالي:
      معدل الاحتفاظ (٪) = حجم الكسب غير المشروع في وقت الحصاد / حجم دهون الحقن (0.3 مل هنا) × 100٪.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

من خلال الإجراءات الميكانيكية المختلفة التي تم إجراؤها أثناء العملية الجراحية ، نجحنا في تحويل الأنسجة الدهنية إلى مكونات دهنية متميزة ذات خصائص مختلفة. هم ، بالتسلسل ، AMC الذي يوفر دعما قويا وافرا (الشكل 1 أ) ، و HDF لمزيد من الملء (الشكل 1 ب) ، و SVF-gel للحقن الدقيق في المناطق الصغيرة (الشكل 1 ج) ، و ACF لمعالجة التجاعيد الدقيقة أو احتياجات استعادة الوجه (الشكل 1 د). تم اختبار خصائص وفعالية المواد ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يتضمن بروتوكول تجزئة الأنسجة الدهنية هذا العديد من الخطوات الحاسمة التي تضمن العزل الناجح للمكونات المتخصصة. أولا ، يفصلها الطرد المركزي للأنسجة الدهنية المحصودة إلى دهون عالية الكثافة (HDF) ودهون منخفضة الكثافة (LDF) ، لكل منها تركيبات مصفوفة خلوية وخارج الخلية (ECM)مميزة 23،24. تتم معالجة HDF ، الغني بالخلايا الشحمية القابلة للحياة وخلايا الكسر الوعائي اللحمي (SVF) ، للحصول على مركب المصفوفة الدهنية (AMC) ، والذي يوفر الدعم اله...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ويعلن أصحاب البلاغ أنه ليس لديهم تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل المؤسسة الوطنية لعلوم الطبيعة في الصين (منح 81801932 و 81901976 و 81971852 و 81772101 و 81901975).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0.001٪ إبينفرينسيجما ألدريتشE4375
0.06٪ ليدوكائينسيجما-ألدريتشL5647
3 ملم قنيةتوليب للمنتجات الطبية ، سان دييغو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية/
أنابيب الطرد المركزي 50 ملكورنينج430829
BOSE جهاز اختبار الحمل ElectroForceBose Corporation/
كولاجيناسورثينجتون الكيمياء الحيويةLS004176
أنثى إلى أنثى موصل لور-لوكBD Biosciences309628
جهاز تصفية مع الأكمام والمناخلالطلب (Shanghai Tiangong Instruments Co.، Ltd.)/
GauzeMedline IndustriesMDS093944
Hematoxylin / Eosin StainingSigma-AldrichHT110116
Masson's Trichrome StainingSigma-AldrichHT15
عارية الفئرانSouthern Mdical/
محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)Thermo Fisher Scientificشاشة تصفية
(0.15 مم) ShanghaiTiangong Instruments Co.، Ltd./
شاشة تصفية مستديرة من الفولاذ المقاوم للصدأ (0.25 مم)شنغهاي Tiangong Instruments Co.، Ltd./
معقم 100 شبكة كيس تصفيةشنغهاي Tiangong Instruments Co.، Ltd./
الكسر الوعائي اللحمي (SVF) - جل المستخرجشنغهاي تيانجونج للأدوات المحدودة/
طقم تحليل اللطخة
حسب Kit Kit جامعة مستديرة من الفولاذ المقاوم للصدأ 10010023 الغربية 25200056 التربسين ثيرمو فيشر العلمي Bio-Rad 1705061

المراجع

  1. Simonacci, F., Bertozzi, N., Grieco, M. P., Grignaffini, E., Raposio, E. Procedure, applications, and outcomes of autologous fat grafting. Ann Med Surg. 20, 49-60 (2017).
  2. Strong, A. L., Cederna, P. S., Rubin, J. P., Coleman, S. R., Levi, B. The Current State of Fat Grafting: A Review of Harvesting, Processing, and Injection Techniques. Plast Reconstr Surg. 136 (4), 897-912 (2015).
  3. Evans, B. G. A., Gronet, E. M., Saint-Cyr, M. H. How Fat Grafting Works. Plast Reconstr Surg Glob Open. 8 (7), e2705(2020).
  4. Costanzo, D., Romeo, A., Marena, F. Autologous Fat Grafting in Plastic and Reconstructive Surgery: An Historical Perspective. Eplasty. 22, e4(2022).
  5. Suszynski, T. M., Sieber, D. A., Van Beek, A. L., Cunningham, B. L. Characterization of adipose tissue for autologous fat grafting. Aesthetic Surg J. 35 (2), 194-203 (2015).
  6. He, Y., et al. Human adipose liquid extract induces angiogenesis and adipogenesis: a novel cell-free therapeutic agent. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 252(2019).
  7. Li, Y., et al. Adipose matrix complex: a high-rigidity collagen-rich adipose-derived material for fat grafting. Aging. 13 (11), 14910-14923 (2021).
  8. Zhu, H., et al. Improving Low-Density Fat by Condensing Cellular and Collagen Content through a Mechanical Process: Basic Research and Clinical Applications. Plast Reconstr Surg. 148 (5), 1029-1039 (2021).
  9. Yao, Y., et al. Adipose Extracellular Matrix/Stromal Vascular Fraction Gel: A Novel Adipose Tissue-Derived Injectable for Stem Cell Therapy. Plast Reconstr Surg. 139 (4), 867-879 (2017).
  10. Yao, Y., et al. Adipose Stromal Vascular Fraction Gel Grafting: A New Method for Tissue Volumization and Rejuvenation. Dermatol Durg. 44 (10), 1278-1286 (2018).
  11. Jin, X., et al. An Adipose-Derived Injectable Sustained-Release Collagen Scaffold of Adipokines Prepared Through a Fast Mechanical Processing Technique for Preventing Skin Photoaging in Mice. Front Cell Dev Biol. 9, 722427(2021).
  12. Cai, J., et al. Adipose Component Transplantation: An Advanced Fat-Grafting Strategy for Facial Rejuvenation. Plast Reconstr Surg. 153 (3), 549e-554e (2024).
  13. Demirel, O., Aköz Saydam, F. Assessment of the Causes of Differences in Centrifugation Protocols as a Fat-Processing Technique: A Systematic Literature Review. Aesthetic Plast Surg. 45 (3), 1242-1265 (2021).
  14. Neal, M. D., et al. Early Cold Stored Platelet Transfusion Following Traumatic Brain Injury: A Randomized Clinical Trial. Ann Surgery. , (2025).
  15. Czako, S., Prochaska, M. Red blood cell transfusion clinical decision support: A scoping review of guideline adherence and clinical impact. Transfusion. 65 (2), 410-419 (2025).
  16. Warner, D., Duncan, H., Gudsoorkar, P., Anand, M. Indications and complications associated with centrifuge-based therapeutic plasma exchange - a retrospective review. BMC Nephrol. 26 (1), 87(2025).
  17. Yang, R., Song, Z., Li, S., Wang, J., Liang, H. Analysis of the Volume of the Liposuction-Derived Adipose Tissue in Clinical Application. J Craniofacial Surg. , (2025).
  18. Baniameri, S., et al. Tissue Engineering 3D-Printed Scaffold Using Allograft/Alginate/Gelatin Hydrogels Coated With Platelet-Rich Fibrin or Adipose Stromal Vascular Fraction Induces Osteogenesis In Vitro. J Cell Physiol. 240 (1), e31497(2025).
  19. Karna, E., Szoka, L., Huynh, T. Y. L., Palka, J. A. Proline-dependent regulation of collagen metabolism. Cell Mol Life Sci. 77 (10), 1911-1918 (2020).
  20. Ricard-Blum, S. The collagen family. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (1), a004978(2011).
  21. Ferrara, N. VEGF and the quest for tumour angiogenesis factors. Nat Rev Cancer. 2 (10), 795-803 (2002).
  22. Harraz, M. M., et al. SOD1 mutations disrupt redox-sensitive Rac regulation of NADPH oxidase in a familial ALS model. J Clin Invest. 118 (2), 659-670 (2008).
  23. Guan, J., et al. Identification of High-Quality Fat Based on Precision Centrifugation in Lipoaspirates Using Marker Floats. Plast Reconstr Surg. 146 (3), 541-550 (2020).
  24. Qiu, L., et al. Identification of the Centrifuged Lipoaspirate Fractions Suitable for Postgrafting Survival. Plast Reconstr Surg. 137 (1), 67e-76e (2016).
  25. Feng, J., et al. Mechanical process prior to cryopreservation of lipoaspirates maintains extracellular matrix integrity and cell viability: evaluation of the retention and regenerative potential of cryopreserved fat-derived product after fat grafting. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 283(2019).
  26. Comerci, A. J., et al. Risks and Complications Rate in Liposuction: A Systematic Review and Meta-Analysis. Aesth Surg J. 44 (7), Np454-Np463 (2024).
  27. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell stem cell. 3 (3), 301-313 (2008).
  28. Pan, Z., et al. CD90 serves as differential modulator of subcutaneous and visceral adipose-derived stem cells by regulating AKT activation that influences adipose tissue and metabolic homeostasis. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 355(2019).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

تجزئة الأنسجة الدهنية المبتكرة لتحويل الدهون إلى مكونات متخصصة
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.