يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

عزل الخلايا المحتوية على الرتينويد في الرئة عن طريق فرز الخلايا

849 مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/68205

⸱

أبريل 11, 2025

 ,  , 
1Department of Animal Sciences, School of Environmental and Biological Sciences, Rutgers, The State University of New Jersey, 2Undergraduate Program in Biochemistry, School of Environmental and Biological Sciences, Rutgers, The State University of New Jersey, 3Rutgers Center for Lipid Research, 4Rutgers Center for Environmental Exposures & Disease

في هذه المقالة

ملخص

البروتوكول الموضح أدناه هو طريقة بسيطة وفعالة لعزل الخلايا المحتوية على الريتينويد من مجموعات خلايا الرئة غير المتجانسة للغاية من خلال الاستفادة من التألق الذاتي للريتينويد المحدد واستخدام فرز الخلايا المنشطة بالفلورسنت.

الملخص

تعتبر الرتينويدات (فيتامين أ ومستقلباته) مكونا دهنيا أساسيا في البيئة المكروية السنخية ، ويلزم استقلاب الريتينويد الخاص بنوع الخلية للحفاظ على الصحة الوظيفية للرئتين النامية والبالغين. تستخدم خلايا الرئة مسارات محددة ، مما يسمح بالامتصاص الفعال للرتينويدات المنتشرة من الدم مثل الريتينول (ROH) ، متبوعا بالتحويل التدريجي داخل الخلايا ل ROH إلى أنواع الريتينويد النشطة النسخ ، حمض الريتينويك (ATRA). تعد الإشارات بوساطة ATRA (أو بوساطة الريتينويد) أمرا بالغ الأهمية لتنظيم السنخية للرئة ، وإنتاج الفاعل بالسطح ، وتكوين الأوعية الدموية ، والنفاذية ، والمناعة. الأهم من ذلك ، أن خلايا الرئة المحددة ، بما في ذلك الخلايا الليفية ، يمكن أن تتراكم الريتينويدات في شكل استرات الريتينيل (RE) ، والتي يمكن تخزينها أو تعبئتها بشكل أكبر على شكل ROH لنقلها إلى الخلايا المجاورة عند الحاجة. يمكن عزل الخلايا المحتوية على الريتينويد في الرئة وجمعها من معلق الخلية المفردة للرئتين المهضومة عن طريق استخدام التألق الذاتي للريتينويد (الانبعاث عند 455 نانومتر عند الإثارة عند 350 نانومتر) وباستخدام فرز الخلايا المنشط بالفلورة (FACS). يسمح وضع العلامات الإضافية الخاصة بالخلايا في الجسم الحي لخلايا الرئة ببروتين الفلورسنت الأحمر بعزل وجمع مجموعات خلايا رئوية محددة تحتوي على الريتينويد. يمكن تحليل الخلايا التي تم جمعها أو زراعتها مباشرة لمزيد من التحليلات لمورفولوجيا الخلية والتعبير الجيني والاستجابة للتلاعب الدوائي. تعد تقنية العزل والتطبيق هذه مهمة لدراسات النماذج الحيوانية لصحة الرئة وإصابة الرئة لاكتساب نظرة أعمق على الجوانب الخلوية لعملية التمثيل الغذائي للريتينويد في الرئتين والاتصالات الخلوية بوساطة الدهون.

المقدمة

تعتبر الرتينويدات (فيتامين أ ومستقلباته) مكونا دهنيا أساسيا في البيئة المكروية السنخية ، ويلزم استقلاب وإشارات الريتينويد الخاصة بنوع الخلية للحفاظ على الصحة الوظيفية للرئة النامية والبالغة1،2،3،4،5،6،7،8،9،10،11، 12،13،14. تستخدم خلايا الرئة مسارات محددة ، مما يسمح بالامتصاص الفعال للريتينويدات المشتقة من النظام الغذائي المنتشرة من الدم مثل الريتينول (ROH) 15،16،17،18،19 ، متبوعا بالتحويل التدريجي داخل الخلايا ل ROH إلى أنواع الريتينويد النشطة النسخ ، حمض الريتينويك (ATRA) بالكامل (ATRA)20. يتم تحقيق الإشارات بوساطة ATRA (أو بوساطة الريتينويد) من خلال تفاعل ATRA مع مستقبلات الهرمونات النووية الثلاثة المتشابهة المتميزة ، ومستقبلات حمض الريتينويك (RARα و RARβ و RARγ21،22) ، وهي ضرورية لتنظيم السنخية للرئة23،24،25،26،27،28،29 ، إنتاج الفاعل بالسطح30، 31،32،33،34،35 ، تكوين الأوعيةالدموية 36 ، النفاذية37 ، والمناعة38،39،40. الأهم من ذلك ، أن خلايا الرئة المحددة ، وخاصة الخلايا الليفية الرئوية ، يمكن أن تتراكم الرتينويدات في شكل استرات الريتينيل (RE) ، والتي يمكن تخزينها أو تعبئتها بشكل أكبر على شكل ROH لنقلها إلى الخلايا المجاورة عند الحاجة1.

إن تعقيد استقلاب الريتينويد والإشارات ، بالإضافة إلى التعقيد الخلوي للرئة ، يجعل الدراسات التي تهدف إلى استكشاف استقلاب الريتينويد في الرئة في الجسم الحي صعبة. لقد حددنا بروتوكولا بسيطا وقويا لعزل الخلايا المحتوية على الريتينويد (الشكل 1) من مجموعات خلايا الرئة غير المتجانسة للغاية من خلال الاستفادة من التألق الذاتي للريتينويد المحدد (الانبعاث عند 455 نانومتر عند الإثارة عند 350 نانومتر) وباستخدام فرز الخلايا المنشط بالفلورة (FACS). لا يتطلب البروتوكول تسمية إضافية للخلايا باستثناء تلطيخ الجدوى إذا كان الهدف من الدراسة هو عزل وتوصيف خلايا الرئة الحية الأولية بناء على قدرتها على تخزين الرتينويدات. هذا يقلل بشكل كبير من وقت التحضير لفرز الخلايا ، ويلغي الحاجة إلى تلطيخ إضافي ، ويسمح بعزل عوائد عالية من الخلايا الأولية القابلة للحياة. ومع ذلك ، إذا كان الهدف من الدراسة هو عزل وتوصيف مجموعات معينة من خلايا الرئة (الخلايا الليفية أو الخلايا البطانية أو الظهارية أو المناعية) ، فيمكن إجراء فرز إضافي للخلايا بعد تسمية الخلايا المحتوية على الريتينويد المصنفة بالأجسام المضادة الخاصة بالخلايا.

تم استخدام التألق الذاتي للريتينويد في الدراسات المنشورة لتحديد هويات الخلايا المحتوية على الريتينويد و / أو لتحديد وفرة هذه الخلايا في الكبد41،42،43،44 ، والبنكرياس45،46 ، والكلى41،47 ، والرئة41. علاوة على ذلك ، أبلغت العديد من المجموعات البحثية عن استخدام مضان الريتينويد للعزل بواسطة FACS ودراسة الخلايا الأولية المحتوية على الريتينويد من الأنسجة الحية ، بما في ذلك الكبد44،48،49،50،51،52،53 والرئة1. في البروتوكول الحالي ، نوضح كيف يمكن تصنيف مجموعات خلايا معينة في الجسم الحي قبل عزل الخلايا المحتوية على الريتينويد باستخدام tdTomato (بروتين الفلورسنت الأحمر). لا تتداخل الخصائص الطيفية ل tdTomato (الانبعاث عند 581 نانومتر عند الإثارة عند 554 نانومتر54) والسطوع مع التألق الذاتي للريتينويد ، وبالتالي تجعله مناسبا لتحقيق خصوصية الخلية أثناء الفرز. نظرا للدور الحاسم لعملية التمثيل الغذائي للريتينويد غير المنازلة والإشارات داخل البيئة المكروية السنخية الطبيعية1 ، فإن التقنية الموصوفة لعزل خلايا الرئة هي أداة مفيدة في دراسات النماذج الحيوانية لصحة الرئة وأمراضها لاكتساب نظرة أعمق على الجوانب الخلوية لاستقلاب الريتينويد في الرئتين والاتصالات الخلوية بوساطة الدهون في الجسم الحي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم إجراء جميع الإجراءات والتجارب الموصوفة التي شملت الفئران بموافقة اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدامها (IACUC) بجامعة روتجرز (IACUC ID: PROTO202200111) وفقا للمعايير الموضحة في دليل رعاية واستخدام المختبر التي أعدتها الأكاديمية الوطنية للعلوم55.

1. الاعتبارات والاستعدادات للتجربة

  1. تربية والتلاعب بها
    ملاحظة: يمكن استخدام الفئران من الذكور والإناث بعمر ثلاثة أشهر (10-12 أسبوعا) في الدراسات. الليسيثين: الفئران التي تعاني من نقص الريتينول أسيل ترانسفيراز (نقص Lrat ، Lrat-/- الفئران56) على خلفية وراثية C57BL / 6J ورفقاء القمامة المتطابقين مع العمر (النوع البري ، الفئران Lrat +/+) تم استخدامها في التجارب الموصوفة. الفئران التي تعبر عن tdTomato الجين في الخلايا الليفية (فئران F-tdT) تم إنشاؤها عن طريق تهجين الفئران التي تؤوي كاسيت مراسل tdTomato (B6. Cg-Gt (ROSA) 26Sortm14 (CAG-tdTomato) Hze / J ، سلالة Jackson Lab # 007914) مع الفئران Col1a2-CreER (B6. Cg-Tg (Col1a2-Cre / ERT ، -ALPP) 7CPD / 2J ، سلالة جاكسون لاب # 029567).
    1. استخدم نموذج الماوس المعبر عن Cre ، وهو أحد الخيارات العديدة المتاحة لتسمية مجموعة الخلايا المستهدفة في الجسم الحي.
      ملاحظة: اعتمادا على اختيار الخلية المستهدفة ، وتعبير Cre ، وكفاءة إعادة التركيب بوساطة Cre ، وخصوصية الخلية ، قد يستخدم الباحثون أي نموذج فأر موثوق به يعبر عن Cre.
    2. استخدم تعبير الجينات المعدلة وراثيا tdTomato (عند علاج تاموكسيفين كما هو موضح أدناه) لتسمية الخلايا الليفية Col1a2 + ، متبوعا بعزلها عن معلقات الخلية المفردة للرئة المهضومة كما هو موضح أدناه.
  2. إعادة التركيب بوساطة Cre والتنشيط المعدل وراثيا في الجسم الحي
    1. تحفيز تعبير Cre في الفئران F-tdT من خلال الحقن داخل الصفاق (IP) 2 ملغ من تاموكسيفين مرة كل 24 ساعة لمدة 5 أيام متتالية.
    2. تعقيم موقع الحقن ب 70٪ إيثانول قبل الحقن. استخدم الفئران للتجارب بعد شهر واحد من حقن تاموكسيفين النهائي.
    3. تحقق من فعالية إعادة تركيب Cre قبل تجارب الفرز. تأكد من إعادة تركيب Cre الفعالة وتعبير tdTomato عن طريق عزل مجموعة الخلايا المستهدفة من الخلايا الليفية الرئوية من الفئران F-tdT المعالجة بتاموكسيفين باستخدام الخرز المغناطيسي المضاد ل Pdgfrα وفرز الخلايا المنشطة مغناطيسيا (MACS).
  3. تحضير المحاليل والأواني البلاستيكية والزجاجية
    ملاحظة: يجب اتباع تقنيات التعقيم للإجراءات الموضحة أدناه. يجب أن تتم الإجراءات التي تنطوي على مستحضرات المحلول وهضم الأنسجة وعزل الخلايا تحت الغطاء الرقائقي. يجب تعقيم المحاليل عن طريق الترشيح باستخدام مرشح 0.2 ميكرومتر ؛ يجب تعقيم الأدوات الجراحية وكذلك أدوات المختبر عن طريق التعقيم.
    1. تحت الغطاء الرقائقي ، قم بإعداد محلول الملح المتوازن من هانكس (HBSS) ، الخالي من الكالسيوم والمغنيسيوم (HBSS بدون Ca2 + / Mg2+ ، يحتوي على 5.3 ملي كلوريد كلوريد الرأس ، 0.4 ملي كيلو هيدروجين2PO4 ، 4.2 ملي NaHCO3 ، 137.9 ملي كلوريد الصوديوم ، 0.3 ملي Na2HPO4 ، 5.6 ملي مولار D-Glucose) لتروية الرئة (5 مل لكل فأر). عقم المحلول باستخدام مرشح 0.2 ميكرومتر واملأ المحقنة بالمحلول.
    2. تحت الغطاء الرقائقي ، قم بإعداد محلول الملح المتوازن من هانكس بالكالسيوم والمغنيسيوم (HBSS مع Ca2 + / Mg2+ ، يحتوي على 1.3 ملي CaCl2 ، 0.5 MgCl2 ·6 ساعات2درجة ، 0.4 ملي مجم4 ·7H2O ، 5.3 ملي KCl ، 0.4 ملي KH2PO4 ، 4.2 ملي NaHCO3 ، 137.9 ملي كلوريد الصوديوم ، 0.3 ملي Na2HPO4 ، 5.6 ملي مولار D-Glucose) ، تحتوي على 0.3 مجم / مل من النوع الرابع من الكولاجيناز و 1 مجم / مل من التباين لتروية الرئة (10 مل لكل فأر). عقم المحلول باستخدام مرشح 0.2 ميكرومتر واملأ المحقنة بالمحلول.
    3. تحت الغطاء الرقائقي ، قم بإعداد HBSS مع Ca2 + / Mg2+ ، الذي يحتوي على 0.3 مجم / مل من النوع الرابع من الكولاجيناز ، و 1 مجم / مل من التباين ، و 5 مجم / مل من DNase I لهضم الرئة (10 مل لكل فأر). عقم المحلول باستخدام مرشح 0.2 ميكرومتر واملأ المحقنة بالمحلول.
    4. تحت الغطاء الرقائقي ، املأ طبق ثقافة الخلية (35 مم 10 مم ، طبق واحد لكل رئة مجمعة من فأر واحد) ب 2 مل من HBSS المعقم مع Ca2 + / Mg2+. ضع الطبق (الأطباق) التي تحتوي على HBSS مع Ca2 + / Mg2+ على الثلج.

2. نضح الرئة ، والهضم ، وجمع تعليق الخلية المفردة

  1. تخدير الفأر عن طريق إعطاء كوكتيل تخدير يحتوي على 10 مجم / مل من الكيتامين و 2 مجم / مل زيلازين بجرعة 0.01 مل / جم من وزن الجسم عن طريق حقن IP.
  2. تأكد من أن الفأر في حالة عميقة من فقدان الوعي من خلال تقييم استجابة قرصة إصبع القدم. قم بإزالة الشعر المتساقط والأوساخ / الحطام المرئي من موقع الجراحة ، وقم بقص ومسح موقع الجراحة باستخدام 70٪ كحول للتطهير.
  3. باستخدام أدوات جراحية معقمة ، افتح تجاويف البطن والصدر. قطع الضلوع والحجاب الحاجز لكشف الرئتين والقلب.
    ملاحظة: سيضمن ذلك الموت الفوري لأن بضع الصدر سيؤدي إلى توقف التنفس أثناء تخدير الفأر. إذا تم تنفيذه بشكل صحيح ، فسيستغرق هذا الجزء من الإجراء ما يصل إلى 3 دقائق من بداية الإجراء حتى بضع الصدر ، يليه موت.
  4. قطع الوريد الأجوف السفلي وتطبيق وسادة ماصة لامتصاص الدم المنبعث.
  5. قم بنقخ الرئتين في الموقع من خلال البطين الأيمن للقلب باستخدام حقنة سعة 10 مل بإبرة 25 جم × 1 بوصة مملوءة ب 5 مل من HBSS المعقم بدون Ca2 +/Mg2+. إذا نجح التروية ، ستصبح أنسجة الرئة بيضاء.
  6. قم بنشر الرئتين في الموقع باستخدام حقنة سعة 10 مل بإبرة 25 جم × 1 بوصة مملوءة ب 10 مل من HBSS المعقم مع Ca2 + / Mg2+ ، يحتوي على الكولاجيناز من النوع الرابع (0.3 مجم / مل) وتباين (1 مجم / مل).
  7. قم بإزالة الرئتين ونقلهما إلى طبق زراعة الخلايا (35 مم × 10 مم) مع 2 مل من HBSS المعقم مع Ca2 + / Mg2+.
  8. تحت الغطاء الرقائقي ، اشطف الرئتين وافرمهما إلى قطع صغيرة باستخدام شفرة جراحية معقمة (# 20 ، يناسب المقبض # 4). انقل الرئة المفرومة إلى أنبوب سعة 15 مل عن طريق إضافة أول 5 مل من HBSS مع Ca2 +/Mg2+ يحتوي على 0.3 ملغم/مل من النوع الرابع من الكولاجيناز ، و 1 مجم / مل من التباين ، و 5 مجم / مل من DNase I إلى الأنسجة المفرومة ونقلها باستخدام ماصة مصلية سعة 10 مل. جمع ونقل بقايا الأنسجة المفرومة المتبقية عن طريق غسل طبق زراعة الخلية مع 5 مل المتبقية من HBSS مع Ca2 + / Mg2+ تحتوي على 0.3 مجم / مل من النوع الرابع من الكولاجيناز ، و 1 مجم / مل من التباين ، و 5 مجم / مل من DNase I.
  9. احتضان أنسجة الرئة المفرومة في HBSS مع Ca2 +/Mg2+ التي تحتوي على 0.3 ملغم/مل من الكولاجيناز من النوع الرابع، و1 ملغم/مل من التباين، و5 ملغم/مل من DNase I على شاكر دوار يتم الاحتفاظ به عند 37 درجة مئوية لمدة 45 دقيقة. في كل فترة من الفواصل الثلاثة التي تبلغ مدتها 15 دقيقة ، تحت الغطاء الرقائقي ، مرر الأنسجة المفرومة 10 مرات عبر ماصة مصلية سعة 10 مل لفصل الخلايا بشكل أفضل.
  10. مرر معلق الخلية الناتج من خلال مصفاة 100 ميكرومتر لتجميع الخلايا المفردة في أنبوب سعة 50 مل يحتوي على 20 مل من محلول تصوير الخلايا الحية الباردة (محلول ملحي فسيولوجي يحتوي على 20 ملي مولار HEPES ، درجة الحموضة 7.4) يحتوي على أقل من 5٪ من مصل الأبقار الجنينية (FBS). اجمع الخلايا عن طريق الطرد المركزي عند 500 جم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية.
  11. استنشق المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية في 1 مل من محلول تحلل خلايا الدم الحمراء واترك الأنبوب لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة (RT) للقضاء على كريات الدم الحمراء. أضف 20 مل من محلول تصوير الخلايا الحية الباردة الذي يحتوي على أقل من 5٪ FBS. اجمع الخلايا عن طريق الطرد المركزي عند 500 جم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية.
  12. استنشق المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية في 20 مل من محلول تصوير الخلايا الحية الباردة الذي يحتوي على أقل من 5٪ FBS. مرر معلق الخلية الناتج عبر مصفاة 40 ميكرومتر لتجميع الخلايا المفردة في أنبوب سعة 50 مل يحتوي على 20 مل من محلول تصوير الخلايا الحية الباردة الذي يحتوي على أقل من 5٪ FBS. اجمع الخلايا عن طريق الطرد المركزي عند 500 جم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية.
  13. استنشق المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية في 10 مل من محلول تصوير الخلايا الحية الباردة الذي يحتوي على أقل من 5٪ FBS. عد الخلايا واضبط تركيز الخلية إلى ~ 5-10 × 106 خلايا / مل.

3. عزل خلايا الرئة المحتوية على الريتينويد باستخدام فرز الخلايا المنشطة بالفلورة (FACS)

  1. خذ حصة من تعليق الخلية وضعها جانبا لاستخدامها كعنصر تحكم في البوابات غير ملوثة. أضف صبغة البقاء SYTOX Green إلى تعليق الخلية المتبقي (تخفيف 1: 1000 ، التركيز النهائي 30 نانومتر).
  2. قم بتمرير معلقات الخلية عبر المرشح المتصل بأنبوب تجميع البوليسترين سعة 5 مل (12 × 75 مم).
  3. تابع عزل خلايا FACS عن طريق فرز الخلايا الحية الفردية المحتوية على الريتينويد بناء على انبعاثها عند 455 نانومتر. قم بإجراء تمييز فردي تسلسلي باستخدام مخطط للتشتت الأمامي (ارتفاع الانتثار الأمامي/FSC-H مقابل منطقة التشتت الأمامية/FSC-A). استبعاد الخلايا الميتة عن طريق خصائص التشتت (التشتت الجانبي) والتلوين باستخدام SYTOX Green.
  4. قم ببوابة وفرز وجمع خلايا مفردة حية تحتوي على الريتينويد باستخدام الانبعاث عند 455 نانومتر عند الإثارة عند 350 نانومتر.
    ملاحظة: باستخدام الإجراء الموصوف ، يمكن جمع حوالي 5 · 10 5 خلايا رئوية تحتويعلى الريتينويد من رئة فأر واحدة.
  5. قم بإجراء تحليل بيانات FACS باستخدام برنامج قياس التدفق الخلوي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

عزل الخلايا المحتوية على الرتينويد في الرئة
تم هضم رئتي الفئران (من الفئران Lrat +/+ و Lrat-/-) إنزيميا ، وتم تحضير معلقات أحادية الخلية وإخضاعها ل FACS وفقا للإجراء الموضح أعلاه. تم إجراء فرز الخلايا والحصول على البيانات على نظام Cytek Aurora™ Cell Sorter الذي يتم تشغيله بواسطة الإصدار 1.3.0 من برنامج SpectroFlo CS باستخدام فوهة 100 ميكرومتر وضغط 15 رطل لكل بوصة مربعة. أولا ، تم تطبيق مخططات التشتت الأمامي (ارتفاع الت...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تم الإبلاغ عن قدرة الكشف عن فيتامين أ في الأنسجة البشرية والحيوانية وتصوره النسيجي باستخدام الفحص المجهري الفلوري لأول مرة في الأربعينيات من القرن العشرين59،60. ثم تم تطبيق ظاهرة التألق الذاتي للريتينويد بنجاح على الدراسات التي تهدف إلى تحديد تركيزات عالية من فيتامين أ في الأنسجة في المختبر61 وتوصيف تشكل الأنسجة الجنينية الحيوانية62 باستخدام المجهر الفلوري. لوحظ لاحقا وأكد ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

المؤلفون ليس لديهم ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

تم تمويل هذا العمل من خلال منحة من المعاهد الوطنية للصحة / المعهد الوطني للقلب والرئة والدم (NIH / NHLBI) R01 HL171112 (إلى IS) ، وجائزة التطوير الوظيفي (إلى IS) من مركز روتجرز للتعرضات البيئية والأمراض بتمويل من المعاهد الوطنية للصحة / المعهد الوطني لعلوم الصحة البيئية (NIH / NIEHS) P30 ES005022 ، وصناديق بدء التشغيل من روتجرز ، جامعة ولاية نيو جيرسي (إلى IS). يود المؤلفون أن يعرب عن تقديرهم لموظفي المورد المشترك لمراقبة المناعة وقياس التدفق الخلوي في معهد روتجرز للسرطان (مدعوم جزئيا بتمويل من NCI-CCSG P30CA072770-5920) لمساهماتهم في العمل المقدم في هذه المخطوطة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
10 مل ماصة مصليةأفانتور / VWR76452-284
100 & م مصفاة Greiner Bio-One542000
15 مل أنبوب الصقرCorning352099
40 & micro ؛ م مصفاة Greiner Bio-One542040
50 مل أنبوب الصقرCorning352070
طبق ثقافة الخلية ، 35 مم & 10 ممCorning430165
Cell Sorting MediaGibcoA59688DJ
Collagenase type IV & nbsp ؛شركة ورثينجتون للكيمياء الحيويةLS004188 
نظام فرز الخلايا Cytek Aurora Cytek Biosciences
Dispase IISigma-AldrichD4693
DNase ISigma-AldrichDN25
Falcon العلامة التجارية 5 مل أنبوب دائري من البولي بروبيلين ، 12 مم & 75 ممCorning352063
Falcon ماركة 5 مل أنبوب دائري القاع من البوليسترين مع غطاء مصفاة الخلية ، 12 مم & حاد 75 مم352235Corning
برنامج FlowJo برنامج قياس التدفق الخلويBecton Dickinson
HBSS مع Ca2 + < / sup> / Mg 2 + < / sup>Gibco14925-092
HBSS بدون Ca2 + < / sup> / Mg2 + < / sup>Gibco14175-095
Nalgene Rapid Flow معقمة الزجاجة العلوية التي يمكن التخلص منهاThermoFisher595-3320
تحلل الخلايا الحمراء عازلةSigma-AldrichR7757
SpectroFlo CS software Cytek Biosciencesالإصدار 1.3.0 
التصميم الجراحي Royaltek شفرات مشرط جراحية من الفولاذ المقاومللصدأ فيشر Scientific22-079-683
SYTOX صبغة الخلايا الميتة الخضراءInvitrogenS34860
TamoxifenSigma-AldrichT2859

المراجع

  1. Shmarakov, I. O., et al. Retinoids stored locally in the lung are required to attenuate the severity of acute lung injury in male mice. Nat Commun. 14 (1), 851(2023).
  2. Bogue, C. W., Jacobs, H. C., Dynia, D. W., Wilson, C. M., Gross, I. Retinoic acid increases surfactant protein mRNA in fetal rat lung in culture. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 271 (5), L862-L868 (1996).
  3. Ng-Blichfeldt, J. -P., et al. Retinoic acid signaling balances adult distal lung epithelial progenitor cell growth and differentiation. EBioMedicine. 36, 461-474 (2018).
  4. Chen, F., et al. Prenatal retinoid deficiency leads to airway hyperresponsiveness in adult mice. J Clin Invest. 124 (2), 801-811 (2014).
  5. Esteban-Pretel, G., Marin, M. P., Renau-Piqueras, J., Barber, T., Timoneda, J. Vitamin A deficiency alters rat lung alveolar basement membrane: reversibility by retinoic acid. J Nutr Biochem. 21 (3), 227-236 (2010).
  6. Massaro, G. D., Massaro, D. Postnatal treatment with retinoic acid increases the number of pulmonary alveoli in rats. Am J Physiol. 270 (2 Pt 1), L305-L310 (1996).
  7. Hind, M., Maden, M. Retinoic acid induces alveolar regeneration in the adult mouse lung. Eur Respir J. 23 (1), 20-27 (2004).
  8. Belloni, P. N., Garvin, L., Mao, C. P., Bailey-Healy, I., Leaffer, D. Effects of all-trans-retinoic acid in promoting alveolar repair. Chest. 117 (5 Suppl 1), 235S-241S (2000).
  9. Veness-Meehan, K. A., Bottone, F. G. Jr, Stiles, A. D. Effects of retinoic acid on airspace development and lung collagen in hyperoxia-exposed newborn rats. Pediatr Res. 48 (4), 434-444 (2000).
  10. Cho, S. J., George, C. L., Snyder, J. M., Acarregui, M. J. Retinoic acid and erythropoietin maintain alveolar development in mice treated with an angiogenesis inhibitor. Am J Respir Cell Mol Biol. 33 (6), 622-628 (2005).
  11. Massaro, G. D., Massaro, D. Retinoic acid treatment abrogates elastase-induced pulmonary emphysema in rats. Nat Med. 3 (6), 675-677 (1997).
  12. Stinchcombe, S. V., Maden, M. Retinoic acid induced alveolar regeneration: critical differences in strain sensitivity. Am J Respir Cell Mol Biol. 38 (2), 185-191 (2008).
  13. Fraslon, C., Bourbon, J. R. Retinoids control surfactant phospholipid biosynthesis in fetal rat lung. Am J Physiol. 266 (6 Pt 1), L705-L712 (1994).
  14. Zachman, R. D. Role of vitamin A in lung development. J Nutr. 125 (6 Suppl), 1634s-1638s (1995).
  15. van Bennekum, A. M., et al. Lipoprotein lipase expression level influences tissue clearance of chylomicron retinyl ester. J Lipid Res. 40 (3), 565-574 (1999).
  16. Blaner, W. S., et al. Lipoprotein lipase hydrolysis of retinyl ester: possible implications for retinoid uptake by cells. J Biol Chem. 269 (24), 16559-16565 (1994).
  17. Trites, M. J., Febbraio, M., Clugston, R. D. Absence of CD36 alters systemic vitamin A homeostasis. Sci Rep. 10 (1), 20386(2020).
  18. Wassef, L., Quadro, L. Uptake of dietary retinoids at the maternal-fetal barrier: in vivo evidence for the role of lipoprotein lipase and alternative pathways. J Biol Chem. 286 (37), 32198-32207 (2011).
  19. Spiegler, E., Kim, Y. -K., Wassef, L., Shete, V., Quadro, L. Maternal-fetal transfer and metabolism of vitamin A and its precursor β-carotene in the developing tissues. Biochim Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids. 1821 (1), 88-98 (2012).
  20. Kedishvili, N. Y. Enzymology of retinoic acid biosynthesis and degradation. J Lipid Res. 54 (7), 1744-1760 (2013).
  21. Channabasappa, S., Caldwell, S., Kanthan, R., Singh, B. Retinoid receptors are expressed in mouse and human lungs. Anat Rec. 305 (9), 2281-2289 (2022).
  22. Kimura, Y., et al. Retinoid receptors in the developing human lung. Clin Sci (Lond). 103 (6), 613-621 (2002).
  23. Yang, L., Naltner, A., Yan, C. Overexpression of dominant negative retinoic acid receptor alpha causes alveolar abnormality in transgenic neonatal lungs. Endocrinology. 144 (7), 3004-3011 (2003).
  24. Snyder, J. M., et al. Alveolarization in retinoic acid receptor-beta-deficient mice. Pediatr Res. 57 (3), 384-391 (2005).
  25. Gao, R. -w, et al. Retinoic acid promotes primary fetal alveolar epithelial type II cell proliferation and differentiation to alveolar epithelial type I cells. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 51 (5), 479-487 (2015).
  26. Dirami, G., et al. Lung retinol storing cells synthesize and secrete retinoic acid, an inducer of alveolus formation. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 286 (2), L249-L256 (2004).
  27. Massaro, G. D., Massaro, D., Chambon, P. Retinoic acid receptor-alpha regulates pulmonary alveolus formation in mice after, but not during, perinatal period. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 284 (2), L431-L433 (2003).
  28. Massaro, G. D., et al. Retinoic acid receptor-beta: an endogenous inhibitor of the perinatal formation of pulmonary alveoli. Physiol Genomics. 4 (1), 51-57 (2000).
  29. McGowan, S., et al. Mice bearing deletions of retinoic acid receptors demonstrate reduced lung elastin and alveolar numbers. Am J Respir Cell Mol Biol. 23 (2), 162-167 (2000).
  30. Yan, C., et al. Retinoic acid-receptor activation of SP-B gene transcription in respiratory epithelial cells. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 275 (2), L239-L246 (1998).
  31. Ghaffari, M., Whitsett, J. A., Yan, C. Inhibition of hSP-B promoter in respiratory epithelial cells by a dominant negative retinoic acid receptor. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 276 (3), L398-L404 (1999).
  32. Yang, L., et al. Synergy between signal transducer and activator of transcription 3 and retinoic acid receptor-α in regulation of the surfactant protein b gene in the lung. Mol Endocrinol. 18 (6), 1520-1532 (2004).
  33. Metzler, M. D., Snyder, J. M. Retinoic acid differentially regulates expression of surfactant-associated proteins in human fetal lung. Endocrinology. 133 (5), 1990-1998 (1993).
  34. George, T. N., Snyder, J. M. Regulation of surfactant protein gene expression by retinoic acid metabolites. Pediatr Res. 41 (5), 692-701 (1997).
  35. Naltner, A., Ghaffari, M., Whitsett, J. A., Yan, C. Retinoic acid stimulation of the human surfactant protein B promoter is thyroid transcription factor 1 site-dependent. J Biol Chem. 275 (1), 56-62 (2000).
  36. Ng-Blichfeldt, J. P., et al. Deficient retinoid-driven angiogenesis may contribute to failure of adult human lung regeneration in emphysema. Thorax. 72 (6), 510-521 (2017).
  37. Lochbaum, R., et al. Retinoic acid signalling adjusts tight junction permeability in response to air-liquid interface conditions. Cell Signal. 65, 109421(2020).
  38. Mamidi, S., Hofer, T. P., Hoffmann, R., Ziegler-Heitbrock, L., Frankenberger, M. All-trans retinoic acid up-regulates prostaglandin-e synthase expression in human macrophages. Immunobiology. 217 (6), 593-600 (2012).
  39. Hashimoto, S., et al. Retinoic acid differentially regulates interleukin-1beta and interleukin-1 receptor antagonist production by human alveolar macrophages. Leuk Res. 22 (11), 1057-1061 (1998).
  40. Li, S., Lei, Y., Lei, J., Li, H. Alltrans retinoic acid promotes macrophage phagocytosis and decreases inflammation via inhibiting CD14/TLR4 in acute lung injury. Mol Med Rep. 24 (6), (2021).
  41. Nagy, N. E., et al. Storage of vitamin A in extrahepatic stellate cells in normal rats. J Lipid Res. 38 (4), 645-658 (1997).
  42. Thompson, K. C., et al. Primary rat and mouse hepatic stellate cells express the macrophage inhibitor cytokine interleukin-10 during the course of activation in vitro. Hepatology. 28 (6), 1518-1524 (1998).
  43. Zhang, X. Y., Sun, C. K., Wheatley, A. M. A novel approach to the quantification of hepatic stellate cells in intravital fluorescence microscopy of the liver using a computerized image analysis system. Microvasc Res. 60 (3), 232-240 (2000).
  44. D'Ambrosio, D. N., et al. Distinct populations of hepatic stellate cells in the mouse liver have different capacities for retinoid and lipid storage. PLoS One. 6 (9), e24993(2011).
  45. Apte, M. V., et al. Periacinar stellate shaped cells in rat pancreas: identification, isolation, and culture. Gut. 43 (1), 128-133 (1998).
  46. Kim, N., et al. Formation of vitamin A lipid droplets in pancreatic stellate cells requires albumin. Gut. 58 (10), 1382-1390 (2009).
  47. Kida, Y., et al. Characterization of vitamin A-storing cells in mouse fibrous kidneys using Cygb/STAP as a marker of activated stellate cells. Arch Histol Cytol. 70 (2), 95-106 (2007).
  48. Ogawa, T., et al. Identification of vitamin A-free cells in a stellate cell-enriched fraction of normal rat liver as myofibroblasts. Histochem Cell Biol. 127 (2), 161-174 (2007).
  49. Tacke, F., Weiskirchen, R. Update on hepatic stellate cells: pathogenic role in liver fibrosis and novel isolation techniques. Expert Rev Gastroenterol Hepatol. 6 (1), 67-80 (2012).
  50. Bartneck, M., et al. Isolation and time lapse microscopy of highly pure hepatic stellate cells. Anal Cell Pathol (Amst). , (2015).
  51. Balaphas, A., et al. Optimized isolation and characterization of C57BL/6 mouse hepatic stellate cells. Cells. 11 (9), (2022).
  52. Kubota, H., Yao, H. L., Reid, L. M. Identification and characterization of vitamin A-storing cells in fetal liver: implications for functional importance of hepatic stellate cells in liver development and hematopoiesis. Stem Cells. 25 (9), 2339-2349 (2007).
  53. Larsen, A. K., et al. Autofluorescence in freshly isolated adult human liver sinusoidal cells. Eur J Histochem. 65 (4), (2021).
  54. Shaner, N. C., Patterson, G. H., Davidson, M. W. Advances in fluorescent protein technology. J Cell Sci. 120 (24), 4247-4260 (2007).
  55. National Research Council. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , The National Academies Press. Washington DC. (2011).
  56. O'Byrne, S. M., et al. Retinoid absorption and storage is impaired in mice lacking lecithin: retinol acyltransferase (LRAT). J Biol Chem. 280 (42), 35647-35657 (2005).
  57. McGowan, S. E., Torday, J. S. The pulmonary lipofibroblast (lipid interstitial cell) and its contributions to alveolar development. Annu Rev Physiol. 59, 43-62 (1997).
  58. McGowan, S. E. The lipofibroblast: more than a lipid-storage depot. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 316 (5), L869-L871 (2019).
  59. Meyer, K. A., Popper, H., Ragins, A. B. Histologic distribution of vitamin A in biopsy specimens of the liver. Arch Surg. 43 (3), 376-385 (1941).
  60. Popper, H. L. Histological demonstration of vitamin A in rats by means of fluorescence microscopy. Proc Soc Exp Biol Med. 43, 133-136 (1940).
  61. Van Exan, R. J., Hardy, M. H. Localization of vitamin A by autofluorescence during induced metaplastic changes in cultures of skin. In Vitro. 15 (8), 631-640 (1979).
  62. Schweigert, F. J., Siegling, C., Tzimas, G., Seeger, J., Nau, H. Distribution of endogenous retinoids, retinoid binding proteins (RBP, CRABPI) and nuclear retinoid X receptor beta (RXRbeta) in the porcine embryo. Reprod Nutr Dev. 42 (4), 285-294 (2002).
  63. Wake, K. Perisinusoidal stellate cells (fat-storing cells, interstitial cells, lipocytes), their related structure in and around the liver sinusoids, and vitamin A-storing cells in extrahepatic organs. Int Rev Cytol. 66, 303-353 (1980).
  64. Senoo, H., Kojima, N., Sato, M. Vitamin A-storing cells (stellate cells). Vitam Horm. 75, 131-159 (2007).
  65. Senoo, H., et al. Hepatic stellate cell (vitamin A-storing cell) and its relative--past, present and future. Cell Biol Int. 34 (12), 1247-1272 (2010).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

عزل الخلايا المحتوية على الرتينويد في الرئة عن طريق فرز الخلايا
اتصل بنا
أوصِ بها للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

2026 © حقوق الطبع والنشر MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.