يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

التخزين البارد للكبد وزرعه في السناجب الأرضية Daurian المتكيفة على البارد

1.4K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/68444

⸱

يوليو 3, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Organ Transplantation, Tongji Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, 2Key Laboratory of Organ Transplantation, Ministry of Education, 3NHC Key Laboratory of Organ Transplantation, 4Key Laboratory of Organ Transplantation, Chinese Academy of Medical Sciences, 5Organ Transplantation Clinical Medical Research Center of Hubei Province, 6Department of Hepatic Surgery and Liver Transplantation Center of the Third Affiliated Hospital, Organ Transplantation Institute, Sun Yat-sen University, 7Guangdong Province engineering laboratory for transplantation medicine, Organ Transplantation Research Center of Guangdong Province, 8Guangdong Key Laboratory of Liver Disease Research, the Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, 9College of Life Science, Shenyang Normal University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

هنا ، نقدم بروتوكولا لإنشاء نموذج طويل الأمد للتخزين البارد للكبد وزرعه في السنجاب الأرضي Daurian (DGS) ، والذي كان يمثل تحديا تقنيا في نماذج القوارض القياسية.

الملخص

في زراعة الكبد ، يمثل التعافي الوظيفي للطعوم المانحة بعد التخزين البارد الممتد تحديا كبيرا. تنطبق نفس العقبة على نماذج القوارض القياسية (مثل الفئران والجرذان) لزراعة الكبد على الرغم من بروتوكولاتها الجراحية الراسخة ، وبالتالي تقييد البحث حول موضوعات رئيسية مثل التعافي الوظيفي بعد الزرع والتوافق المناعي بين المضيف والطعم. هنا ، نجحنا في إنشاء نموذج جديد لزراعة الكبد باستخدام سبات إلزامي ، السنجاب الأرضي Daurian (DGS; Spermophilus dauricus) ، مما يدل على التكيف الجوهري مع انتقالات نقص حرارة الجسم العميقة للغاية وإعادة تروية نقص التروية. في أيدينا ، أدى زرع ترقيع الكبد بعد التخزين البارد لمدة 24 ساعة إلى بقاء متلقي DGS بنسبة 100٪ خلال الإطار الزمني للمراقبة لمدة 7 أيام ، في حين أن نفس الإجراء في فئران Sprague-Dawley (SD) كان لديه 0٪ البقاء على قيد الحياة بعد 24 ساعة من الجراحة. وبالتالي ، فإن DGS وغيرها من نماذج الثدييات المتكيفة مع البرد توفر منصة فريدة وقوية للتحقيق في الآليات الكامنة وراء التكيف مع برودة الأعضاء وتحمل الزرع ، والتي يمكن أن تدعم تطوير استراتيجيات علاجية أو جراحية جديدة في مجال طب الزرع.

المقدمة

يعد إعادة التدفئة الباردة وإعادة تروية نقص التروية من العوامل المهمة في إصابة طعم الكبد ، مما يزيد من خطر حدوث خلل وظيفي مبكر في الطعم الخيفي. على الرغم من أن زرع الكبد في الكائنات الحية القياسية مثل الفئران والجرذان قد تم إنشاؤه بنجاح1،2 ، لأن الدراسات التي أجريت على هذه الأنواع التي لا تتحمل البرد توفر رؤى محدودة حول آليات التكيف مع البرد ، فقد تم إعاقة التقدم في الحفاظ على الأعضاء وطب الزرع.

قد يؤدي تطوير نماذج أبحاث الزرع في الأنواع المناسبة للتكيف مع البرد إلى سد هذه الفجوة. على سبيل المثال ، تطورت سبات الثدييات للبقاء على قيد الحياة لفترات طويلة من درجات الحرارة المحيطة المنخفضة و / أو ندرة الغذاء3،4. أثناء السبات ، ينتقل علم وظائف الأعضاء في دورات من حالات الإثارة الملتوية والبينية بحيث تتكيف بشكل جيد للحفاظ على درجة حرارة الجسم الأساسية المنخفضة وتحمل إعادة التدفئة السريعة وإعادة تروية الدم. من اللافت للنظر أن السناجب الأرضية التي يمكن أن تدخل في السبات تظهر مزيدا من المرونة في مواجهة إصابات نقص التروية وإعادة التروية حتى في حالتها النشطة والحرارة مقارنة بالجرذان5،6. في السنوات الأخيرة ، كشفت الدراسات المستوحاة من السبات النقاب عن بعض آليات التكيف مع البرد والأهداف القابلة للتعاطي والتي يمكن تعديلها للتخفيف بشكل كبير من الإصابات الناجمة عن التخزين البارد وتحسين الانتعاش الوظيفي للأنسجة والأعضاء المعزولة من الأنواع غير السباتية7،8،9،10،11.

مقتبس من البروتوكولات المطورة لزراعة الكبد في الفئران12،13،14 ، نقدم هنا بروتوكولا لشراء الكبد ، والتخزين البارد الثابت ، والزرع في السنجاب الأرضي Daurian (DGS; Spermophilus dauricus) ، من أنواع القوارض السباتية التي تعيش في شمال الصين. في أيدينا ، كان لدى متلقي الكسب غير المشروع DGS بقاء على قيد الحياة بنسبة 100٪ بعد الزرع مع طعوم من متبرعين حراريين (نشطين) أو منخفضي حرارة الجسم (طوربيد) مخزنون عند 4 درجات مئوية في محلول جامعة ويسكونسن (UW) لمدة 24 ساعة. في تناقض صارخ ، كان معدل البقاء على قيد الحياة في فئران Sprague-Dawley (SD) التي تعرضت لنفس سير العمل 0٪ ، مما يدل بوضوح على ميزة نموذج زراعة الكبد DGS. نتوقع أيضا أن يتم تحقيق التخزين البارد طويل الأمد وزرع الأعضاء الأخرى في DGS أو الأنواع الأخرى المتكيفة على البرد التي يتم تربيتها في المختبر ، مثل السنجاب الأرضي المكون من 13 خطا (Ictidomys tridecemlineatus) والهامستر السوري (Mesocricetus auratus) ، مما يوفر فرصا فريدة للباحثين لدراسة التعافي الوظيفي للكسب غير المشروع على المدى الطويل والتوافق مع الكسب غير المشروع ، واختبار دواء جديد.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على جميع التجارب على من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدامه بجامعة بكين (LSC-WangSQ-2). الأدوات المناسبة المستخدمة للدراسة مذكورة في جدول المواد والموضحة في الشكل 1.

ملاحظة: تم وصف مناولة وتربية أنواع القوارض السباتية التي يتم صيدها في البرية ، مثل السناجب الأرضية المكونة من 13 بطنا ، في بيئة معملية15،16. تم إنتاج DGSs المستخدمة في هذه الدراسة في المختبر بواسطة DGSs الحوامل التي تم التقاطها في الأراضي العشبية في مدينة Zhangjiakou. كانوا يبلغون من العمر حوالي 1-2 سنوات وقت التجربة. أما بالنسبة للإناث الحوامل الأصلية ، فقد تم طرد الطفيليات قبل وصول إلى المختبر. تم إجراء الحجر الصحي والتفتيش بحثا عن الفيروسات الشائعة عند وصول ، وتم تربية أولئك الذين لديهم نتائج اختبار سلبية في المنشأة.

1. التحضير قبل الجراحة

  1. التجارب
    1. استخدم DGS البالغين ، الذين تتراوح أعمارهم بين 1-2 سنوات ، ذكورا وإناثا ، يتراوح وزنهم بين 180 جراما و 400 جم كمتبرعين ومتلقين. كان وزن المتلقي أكبر قليلا من وزن المتبرع ، بفارق أقل من 50 جراما.
    2. استخدم الفئران SD البالغة ، من 8 إلى 10 أسابيع ، من الذكور والإناث ، التي تزن 200-300 جم ، كمتبرعين ومتلقين في المجموعة الضابطة. أثناء الإجراء التجريبي بأكمله ، ارتد أقنعة جراحية ومعاطف مختبرية وقفازات النتريل ، بالإضافة إلى قفازات جلدية ثقيلة للغاية أثناء التعامل مع DGS ونقلها.
  2. اصنع أصفاد للوريد البابي (PV) والوريد الأجوف السفلي تحت الكبد (IHIVC) باستخدام أغماد إدخال 6 F و 8 F ، على التوالي. تتكون كل صفعة من جسم رئيسي وامتدادات يبلغ طولها 2 مم. قم بإنشاء أخاديد متعددة حول محيط الكفة عن طريق التثبيت برفق باستخدام ملقط البعوض (الشكل 2).
    ملاحظة: تختلف أقطار PV و IHIVC اختلافا كبيرا اعتمادا على حجم وجنس DGS. لذلك ، ينصح بإعداد أصفاد 5-F و 6-F و 7-F و 8-F قبل الجراحة للاختيار المناسب. عادة ما تكون الكفة 5-F أو 6-F مناسبة للكهروضوئية ، في حين أن الكفة 7-F أو 8-F مناسبة ل IHIVC.
  3. اصنع دعامات للقناة الصفراوية (3 مم) والشريان الكبدي (2 مم) عن طريق قطع القسطرة الوريدية 22 جم و 24 جم إلى أنابيب مائلة على الوجهين باستخدام مشرط.
    ملاحظة: تجنب الضغط المفرط على الدعامات ، فقد يؤدي ذلك إلى تضييق أو انسداد التجويف ، مما يعرض بقاء المتلقي للخطر.

2. عملية المانحين

  1. الخطوات الأولية
    1. استخدم تركيز 5٪ من الأيزوفلوران بمعدل تدفق هواء 1 لتر / دقيقة للحث على التخدير و 2٪ عند 1 لتر / دقيقة للصيانة.
    2. ضع DGS في وضع ضعيف على اللوحة. احلق الفراء من منطقة البطن وقم بتعقيم الجلد باستخدام بوفيدون اليود و 70٪ إيثانول.
  2. عزل الكبد قبل التروية
    1. قم بعمل شق صليبي يمتد من عملية الخنجري إلى ارتفاق العانة وبشكل جانبي إلى الخطوط الوسطى الإبطية. اسحب عملية الخنجري باستخدام ملقط البعوض وضع حقنة سعة 5 مل أسفل ظهرها كدعم.
    2. يعبر الرباط المنجلي. اعزل الوريد الحجابي الأيسر عن الوريد الأجوف السفلي فوق الهيباتيك (SHIVC) وربطه بخياطة 7-0. كي الرباط الكبدي الطحالي.
    3. حرر بعناية IHIVC فوق الوريد الكلوي الأيمن من الأنسجة المحيطة باستخدام مسحات قطنية. اربط الأوردة الكظرية والقطنية اليمنى التي يتم تصريفها في IHIVC بالقرب من الكبد ب 7-0 خيوط.
    4. قم بعمل شق صغير على الجدار الأمامي للقناة الصفراوية المشتركة (CBD). أدخل دعامة القناة الصفراوية وثبتها بخياطة حريرية 7-0. اترك أحد طرفي الخيط بطول 5 مم تقريبا لتسهيل مفاغرة لاحقة باستخدام اتفاقية التنوع البيولوجي الخاصة بالمتلقي.
    5. عزل الشريان الكبدي الصحيح (PHA) والشريان المعدي والاثني عشر (GDA) والشريان الكبدي المشترك (CHA) من الأنسجة المحيطة.
    6. يجب تطبيق 1.5 مل من المحلول الملحي الهيباريني (300 وحدة دولية/مل) في وريد القضيب (المتبرعين الذكور) أو IHIVC (المتبرعات الإناث).
  3. نضح الكبد
    1. عزل الشريان الأورطي البطني أسفل الوريد الكلوي الأيسر. أدخل إبرة وريدية 7 جم في الشريان الأورطي وثبتها بمشبك.
    2. شق الحجاب الحاجز ووضع مشبك وعائي على الشريان الأورطي الصدري.
    3. قم بنشر الكبد عبر قنية الأبهر ب 20-30 مل من محلول UW البارد بمعدل 180-210 مل / ساعة باستخدام مضخة التسريب. شق الوريد الأجوف داخل الصدر و IHIVC فوق الوريد الكلوي الأيمن للسماح بتدفق الدفع.
      ملاحظة: اضبط موضع فصوص الكبد باستخدام مسحات قطنية لضمان نضح موحد ، مع إيلاء اهتمام خاص للفصوص الوسطى واليمنى. يكتمل التروية عندما يظهر الكبد بأكمله شحوبا موحدا.
    4. أثناء التروية ، استئصال المرارة.
      ملاحظة: على عكس الفئران ، تمتلك DGS مرارة. تعد إزالة المرارة وتنظيف القنوات الصفراوية بمحلول UW أمرا ضروريا لمنع انسداد القنوات الصفراوية بعد الجراحة بسبب تخثر الصفراء.
  4. حصاد طعم الكبد بعد التروية
    1. باستخدام ملقط دقيق ، اعزل PV عن النسيج الضام المحيط. ربط وعبر الوريد البوابي بخياطة 7-0. قم بتمرير الجذع الكهروضوئي على مستوى الوريد الطحالي.
    2. ربط وتمرير GDA بعيدا. قم بإنشاء شق صغير على الجدار الأمامي ل CHA. أدخل دعامة الشريان الكبدي في CHA وثبتها بخياطة حريرية 7-0 ، مع ترك أحد طرفيها بطول 5 مم تقريبا لتسهيل مفاغرة لاحقة باستخدام CHA الخاص بالمستلم.
    3. قم بتشريح SHIVC بالقرب من الحجاب الحاجز قدر الإمكان.
    4. قم بتشريح المرفقات بين الفص المذنبي والمعدة. بعد قطع الأربطة الظهرية ، قم بتعبئة الكبد بالكامل.
    5. ضع الكبد في وعاء فولاذي مقاس 7 سم يحتوي على محلول بارد للأشعة فوق البنفسجية. انقل الوعاء إلى ثلاجة 4 درجات مئوية للحفظ.
      ملاحظة: للحفاظ على برودة الكبد التي تتجاوز 24 ساعة ، أضف المضادات الحيوية إلى محلول UW لتقليل خطر الإصابة بالعدوى ؛ ضع في اعتبارك استبدال محلول UW كل 24 ساعة.

3. تحضير الكسب غير المشروع خارج الجسم الحي

ملاحظة: قم بإعداد وعاء ثلج مفتوح. تم تحضير الطاولة الخلفية بالكامل على الجليد.

  1. قم بتأمين مقبض الكفة الكهروضوئية بمشبك وعائي وتثبيته باستخدام ملقط البعوض. قم بربط PV برفق من خلال الكفة ، مع ضمان عدم حدوث التواء. قم بطي PV فوق الكفة وثبتها بخياطة 7-0 (الشكل 3).
  2. كرر الإجراء أعلاه (الخطوة 3.1) لصفعة IHIVC.
  3. قم بنفخ القناة الصفراوية عبر القناة الكيسية ب 2 مل من محلول UW. بعد ذلك ، ربط القناة الكيسية.
  4. اغسل طعم الكبد ب 8-10 مل من المحلول الملحي البارد من خلال الكفة الكهروضوئية لإزالة محلول UW المتبقي بعد التخزين البارد.
  5. ضع خياطة حريرية واحدة 7-0 حول IHIVC بين الكفة المرفقة والفص السفلي الأيمن من الكبد.
  6. قم بتدوير الكبد لفضح جانبه المتفوق. المكان 8-0 ابق خيوط في كلا الزاويتين الجانبيتين من SHIVC ، وإدخالها من الخارج إلى الداخل.

4. عملية المستلم

  1. للخطوات الأولية، راجع بروتوكول عملية المتبرع وكرر الخطوة 2.1.
  2. عزل الكبد المتلقي
    1. قم بإجراء شق خط الوسط من عملية الخنجري إلى ارتفاق العانة. اسحب عملية الخنجري في الجمجمة باستخدام ملقط البعوض وضع حقنة سعة 5 مل تحتها لرفع SHIVC. تراجع جانبيا الأقواس الساحلية الثنائية.
    2. إجراء إدارة الأربطة والأوعية كما هو موضح في الخطوة 2.2.2.
    3. عزل IHIVC كما هو موضح في الخطوة 2.2.3.
    4. قطع المرفقات الأربطة بين الكبد وخلف الصفاق. مرر ملقطا غير حاد بحذر خلف SHIVC وضع خياطة حريرية 7-0 حولها.
    5. اربط اتفاقية التنوع البيولوجي بشكل قريب بخياطة حريرية 7-0 وقم بعرضها فوق الرباط. استخدم طرفا من القطن لفصل القناة الصفراوية برفق عن الكهروضوئية.
    6. تقاطع GDA و PHA بين الربطات. قم بإنشاء تشعب على شكل حرف Y في نهاية CHA. اترك خياطة بطول 2 سم على رباط PHA لاستخدامها لاحقا.
    7. حرر الفرعين الأيمن والأيسر من PV. ضع خيوط 5 سم ، 7-0 على كل فرع للتلاعب اللاحق.
  3. إزالة الكبد المتلقي
    1. قلل تركيز الأيزوفلوران إلى 0.5٪ مع تدفق هواء 0.5 لتر / دقيقة.
      ملاحظة: حافظ على معدل تنفس يبلغ حوالي نفس واحد في الثانية عن طريق ضبط مبخر الأيزوفلوران. تقييم عمق التخدير باستمرار طوال مرحلة التخبد لمنع الوعي أثناء الجراحة أو التخدير المفرط الذي يؤدي إلى تثبيط الجهاز التنفسي.
    2. قم بتثبيت IHIVC فوق الوريد الكلوي الأيمن ، متبوعا بتثبيت PV فوق الوريد البواب. حقن 1.5 مل من المحلول الملحي في الكهروضوئية اليمنى في 10 ثوان باستخدام حقنة سعة 2 مل لطرد الدم من الكبد.
    3. اسحب الحجاب الحاجز برفق عن طريق سحب خياطة الحرير 7-0 الموضوعة حول SHIVC ، ثم ضع مشبك البلدغ على SHIVC ، بما في ذلك جزء من الحجاب الحاجز.
    4. قم بتمرير SHIVC فوق الكبد مباشرة. قم بتأمين خيوط البقاء 7-0 على كل من الفروع الكهروضوئية وقم بتمرير الكهروضوئية فوق هذه الأربطة. تقاطع IHIVC بالقرب من حمة الكبد. قم بإزالة الكبد على الفور عن طريق قطع أي مرفقات أربطة متبقية.
  4. إعادة بناء SHIVC
    1. ضع طعم الكبد بشكل تقويمي داخل تجويف البطن. الاستفادة من المرفق 8-0 خيوط لوضع خيوط البقاء في كلا زاويتي SHIVC الخاص بالمستلم ، وإدخالها من الداخل إلى الخارج ، وتثبيتها بالعقد.
    2. قم بجر الطرف السائب للخياطة اليمنى برفق بشكل جانبي باستخدام مشبك الأوعية الدموية لمحاذاة SHIVC.
    3. خياطة الجدار الخلفي مع 8-10 غرز مستمرة ، بدءا من الزاوية اليسرى. استمر في إغلاق الجدار الأمامي ب 10-12 غرزة ، وانتقل من اليمين إلى اليسار باستخدام نفس الخياطة. قبل الانتهاء من إغلاق الجدار الأمامي ، اغسل تجويف SHIVC لطرد أي هواء ومنع انسداد الهواء (الشكل 4).
  5. إعادة بناء الكهروضوئية
    1. ارفع الكهروضوئية باستخدام خيوط البقاء مقاس 5 سم الموضوعة على كلا التشعبين ، مع تطبيق الجر اللطيف لأعلى باستخدام مشابك الأوعية الدموية. قم بعمل شق في منتصف الفروع الكهروضوئية.
    2. اغسل التجويف الكهروضوئي بمحلول ملحي هيباريني (300 وحدة دولية / مل) ، ثم أدخل الكفة في الكهروضوئية وثبتها بخياطة حريرية 7-0.
    3. قم بتحرير المشابك بالتتابع على PV و SHIVC لإعادة تأسيس نضح الكسب غير المشروع وإنهاء مرحلة انعدام الكبد (الشكل 5).
  6. قم بإجراء مفاغرة IHIVC بشكل مشابه للإجراء الكهروضوئي. حرر الخيط 7-0 حول الجانب المتبرع أولا ، ثم قم بإزالة المشبك من جانب المتلقي.
  7. إعادة بناء الشريان الكبدي
    1. ضع مشبكا للأوعية الدموية الدقيقة لحجب تدفق الدم في CHA للمتلقي.
    2. قم بإنشاء شق صغير عند تشعب تكوين Y في نهاية CHA الخاص بالمستلم. اغسل تجويف CHA بمحلول ملحي هيباريني (300 وحدة دولية / مل) ، ثم أدخل الدعامة في CHA وثبتها بخياطة حريرية 7-0.
    3. اربط خيوط البقاء على جانبي المتبرع والمتلقي لمنع إزاحة الدعامة. حرر مشبك الأوعية الدموية الدقيقة لاستعادة التدفق الشرياني (الشكل 6).
  8. إعادة بناء القناة الصفراوية:
    1. قم بعمل شق صغير على الجدار الأمامي لاتفاقية التنوع البيولوجي للمتلقي. أدخل دعامة القناة الصفراوية في تجويف اتفاقية التنوع البيولوجي الخاصة بالمتلقي وقم بتثبيتها بخياطة حريرية 7-0.
    2. اربط خيوط البقاء على جانبي المتبرع والمتلقي لمنع إزاحة الدعامة (الشكل 7).
  9. أغلق شق البطن في طبقتين باستخدام خيوط مستمرة 3-0 بعد الانتهاء من إجراءات إعادة الإعمار (الشكل 8).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

كان متوسط المدد للإجراءات الجراحية على النحو التالي: بلغ متوسط جراحة المتبرعين 24.8 ± 2.3 دقيقة ، وجراحة المائدة الخلفية 15.4 ± 1.3 دقيقة ، وجراحة المتلقي 52.7 ± 5.1 دقيقة ، ومرحلة التكبد 14.2 ± 1.5 دقيقة.

أظهر متلقي ترقيع الكبد المحفوظة في محلول UW البارد لمدة 24 ساعة معدل بقاء بنسبة 100٪ في 7 أيام بعد الزرع ، بغض النظر عما إذا كانوا في حالة سبات قبل الزرع (ن = 8) أم لا (ن = 4) (

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

بناء على تقنية الكفة المزدوجة2 من Kamada ، نجحنا في إنشاء أول نموذج لزراعة الكبد تقويم العظام في DGS. نظرا للاختلافات التشريحية بين DGS ونماذج الفئران التقليدية ، فإن الاعتبارات المحددة في إعداد المواد والإجراءات الجراحية وإدارة ما بعد الجراحة ضرورية.

تساهم عوامل مثل السبات واحتياطيات الدهون في اختلافات كبيرة في الوزن الفردي في DGS البالغين ، تتراوح من 150 جم إلى 400 جم ، مع اختلافات ملحوظة بين الذكور والإناث. لذلك ، فإن الاختيار الدقيق...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإعلان عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل المشروع الرئيسي للأمراض المزمنة غير السارية - المشروع الوطني للعلوم والتكنولوجيا (2023ZD0507600) والمؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (82371794 و 82170671). تمت رعاية العمل أيضا من قبل مؤسسة التعليم بجامعة تشجيانغ ، ومؤسسة الأكاديمي شوسين لانجوان للمواهب. نود أيضا أن نشكر الأستاذة دانا ك. ميريمان من جامعة ويسكونسن ، أوشكوش ، على عملها في تربية السناجب الأرضية المكونة من 13 مبطرا وعلى مشاركة الأفكار والخبرات المفيدة بسخاء في نماذج القوارض السباتية في المختبر.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
غرز 3-0 مع الإبرشركة جينهوان للمنتجات الطبية المحدودةR315لإغلاق الجلد
غرزة حرير 7-0برينتري، ساي، إنكSUT-S103
غمد مقدمة 7F شركة بكين ديماكس للتكنولوجيا الطبية، المحدودة.DQ07083818Sالسوار لعلاج IHIVC
8-0 الغرز مع الإبرشركة جينهوان للمنتجات الطبية المحدودةH821بالنسبة لتشريح SHIVC
غلاف مقدمة 8F شركة بكين ديماكس للتكنولوجيا الطبية، المحدودة.DQ08083818Sالسوار لعلاج IHIVC
آلة التخديرشركة RWD لايف ساينسR500
كي إيقاف الدمشركة نينغبو شونيي الطبية المحدودة.BDD-ي-DT-1
مشبك بولدوج (منحني قليلا)شركة جينتشونغ للمنتجات الطبية المحدودةXEC120SHIVC
بوبرينورفينمعهد تيانجين لأبحاث الأدوية المحدودةH12020275مسكن الألم
صوديوم سيفوروكسيمإيستي فارماسيوتيشي إس.آر.إلH20160013المضاد الحيوي
عواد القطنفوتشينغ هيلث & الطب المتكامل20230R
الملقط الدقيق المنحنيشركة RWD لايف ساينسF11031-11أداة جراحية
المقص الصغير المنحني66 فيجن تك المحدودة54108Bأداة جراحية
مسحات الشاششركة يوباي للمواد الطبية المحدودة21080274
حقن الصوديوم بالهيبارينشركة نورث تشاينا للأدوية، المحدودة2101131-2
مضخة التسريبشركة هاوكمد المحدودةHK-400
إيزوفلورانشركة RWD لايف ساينس21070201
حامل الإبر الدقيقشركة وورلد بريسيجن إنسترومنتس المحدودة555408NTأداة جراحية
مشبك الوعاء الدقيقشركة RWD لايف ساينسR31005-06PV و IHIVC
أداة تطبيق مشابك الوعاء الدقيقةشركة RWD لايف ساينسR34001-14أداة جراحية
حامل الإبرشركة RWD لايف ساينسF31025-13إغلاق البطن
المحلول الملحيشركة تشجيانغ تيانروي للأدوية المحدودة716092103
الملقط الدقيق المستقيمشركة RWD لايف ساينسF11029-11أداة جراحية
المجهر الجراحيلايكاM650
منصة جراحيةلا يوجدلا يوجدمخصص، مغناطيسي
ملقط الأنسجةشركة RWD لايف ساينسF12002-12أداة جراحية
مقص الأنسجةشركة RWD لايف ساينسS12003-09أداة جراحية
حل UWأنظمة استعادة الأعضاءSPS-1توزيع الأرغن وتخزينه 

المراجع

  1. Zeng, Q., et al. Successful orthotopic liver transplantation in mice utilizing microcomputed tomography angiography. J Vis Exp. (199), e65537(2023).
  2. Kamada, N., Calne, R. Y. Orthotopic liver transplantation in the rat: technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 28 (1), 47-50 (1979).
  3. Dausmann, K. H., Glos, J., Ganzhorn, J. U., Heldmaier, G. Hibernation in a tropical primate. Nature. 429 (6994), 825-826 (2004).
  4. Arnold, C. Hibernation science harnessed to treat obesity and modify metabolism. Nat Med. 30 (10), 2700-2703 (2024).
  5. Lindell, S. L., et al. Natural resistance to liver cold ischemia-reperfusion injury associated with the hibernation phenotype. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 288 (3), G473-G480 (2005).
  6. Dave, K. R., Prado, R., Raval, A. P., Drew, K. L., Perez-Pinzon, M. A. The arctic ground squirrel brain is resistant to injury from cardiac arrest during euthermia. Stroke. 37 (5), 1261-1265 (2006).
  7. Zhang, L., et al. Cross-species metabolomic profiling reveals phosphocholine-mediated liver protection from cold and ischemia/reperfusion. Am J Transplant. 24 (11), 1979-1993 (2024).
  8. Zhang, X., et al. Cold-induced FOXO1 nuclear transport aids cold survival and tissue storage. Nat Commun. 15 (1), 2859(2024).
  9. Zhang, X., et al. 5-aminolevulinate improves metabolic recovery and cell survival of the liver following cold preservation. Theranostics. 12 (6), 2908-2927 (2022).
  10. Ou, J., et al. iPSCs from a hibernator provide a platform for studying cold adaptation and its potential medical applications. Cell. 173 (4), 851-863.e16 (2018).
  11. Ratigan, E. D., McKay, D. B. Exploring principles of hibernation for organ preservation. Transplant Rev (Orlando). 30 (1), 13-19 (2016).
  12. Chen, X. C., et al. Reduced complications after arterial reconnection in a rat model of orthotopic liver transplantation. J Vis Exp. (165), (2020).
  13. Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. J Vis Exp. (65), (2012).
  14. Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction. J Vis Exp. (73), (2013).
  15. Vaughan, D. K., Gruber, A. R., Michalski, M. L., Seidling, J., Schlink, S. Capture, care, and captive breeding of 13-lined ground squirrels, Spermophilus tridecemlineatus. Lab Anim (NY). 35 (4), 33-40 (2006).
  16. Merriman, D. K., Lahvis, G., Jooss, M., Gesicki, J. A., Schill, K. Current practices in a captive breeding colony of 13-lined ground squirrels (Ictidomys tridecemlineatus). Lab Anim (NY). 41 (11), 315-325 (2012).
  17. Lehmann, T. G., Bunzendahl, H., Langrehr, J. M., Neuhaus, P. Arterial reconstruction in rat liver transplantation-a new tubing technique of the common hepatic artery. Transpl Int. 18 (1), 56-64 (2005).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

التخزين البارد للكبد وزرعه في السناجب الأرضية Daurian المتكيفة على البارد
اتصل بنا
أوصِ بها للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

2026 © حقوق الطبع والنشر MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.