مقالة منهجية

تطبيق تصميم ديكسون لأعلى ولأسفل لتقدير الحد الأدنى لتركيز السنخية للسيفوفلوران في الفئران ذات تصنيف الحركة المكرر

DOI:

10.3791/68520

⸱

يوليو 25, 2025

 ,  ,  , 
1Department of Anaesthesia, Intensive Care Medicine and Pain Medicine, Clinical Division of General Anaesthesia and Intensive Care Medicine, Medical University of Vienna

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يسعى البروتوكول المقدم هنا إلى تقييم عمق التخدير باستخدام تصميم ديكسون لأعلى ولأسفل في الفئران المخدرة التي تتعرض لمحفز ألم موحد. علاوة على ذلك ، فإنه يحدد تصنيفا لأنماط الحركة المختلفة التي لوحظت.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

عند استخدام عوامل التخدير المتطايرة ، فإن المقياس القياسي للفاعلية هو الحد الأدنى للتركيز السنخي (MAC) ، والذي يعرف بأنه التركيز السنخي الذي لا يظهر عنده 50٪ من الأشخاص استجابة حركية لمحفز مؤلم. في الدراسات السريرية والتجريبية ، ينص الإجماع الحالي على أن "الحركات الهادفة الإجمالية" فقط هي التي تعتبر استجابة حركية إيجابية ، وبالتالي يمكن أن تشير إلى تخدير خفيف للغاية. ومع ذلك ، فإن المستوى المناسب من التخدير ، في كل من البشر ، يختلف بشكل فردي بناء على عوامل التأثير المختلفة ، مثل الأدوية الأخرى التي يتم تناولها. أجريت دراستان على على الفئران لفحص آثار رباعي هيدروكانابينول والإيثانول على سيفوفلوران ، وهو أحد أكثر أنواع التخدير المتطاير شيوعا. لتقدير MAC ، تم استخدام تصميم ديكسون لأعلى ولأسفل. بالنسبة للحيوان الأول ، تم اختيار جرعة محددة مسبقا من سيفوفلوران. بعد فترة توازن مدتها 15 دقيقة ، تم تطبيق محفز ألم موحد على الثلث البعيد من ذيل الجرذ باستخدام مشبك جراحي. تم توثيق استجابة للحافز على أنها إيجابية أو سلبية. في حالة حدوث تفاعل حركي إيجابي ، تزداد جرعة التالي. على العكس من ذلك ، إذا لم يظهر الجرذ استجابة حركية ، فقد انخفضت جرعة التالي. تم استخدام الانحدار متساوي التوتر وطريقة التمهيد لتقدير MAC وفواصل الثقة 95٪. توضح هذه المقالة بروتوكولا مفصلا لتقييم عمق التخدير في الفئران باستخدام التصميم لأعلى ولأسفل. كما يوفر وصفا جديدا ومفصلا وتصنيفا لأنماط الحركة في الفئران المخدرة عند تطبيق حافز مؤلم موحد لتعزيز قابلية التكاثر للدراسات المستقبلية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

سيفوفلوران هو أحد أكثر التخدير المستنشق المتطايراستخداما 1. يتم تقييم فعاليته باستخدام الحد الأدنى من التركيز السنخي (MAC) ، والذي يعرف بأنه التركيز السنخي الذي لا يظهر عنده 50٪ من المرضى استجابة حركية لمحفز مؤلم2،3،4. لإنشاء MAC ، يمكن استخدام الفئران كنماذج حيوانية نظرا لتجانسها الأكبر مقارنة بالبشر. عادة ما يتم تطبيق محفز الألم باستخدام مشبك جراحي على الثلث البعيد من ذيل الجرذ2. إن استخدام طرق بديلة لاختبار الألم لن يضمن قابلية المقارنة مع الدراسات التي أجريت سابقا ، وبالتالي يمكن أن يؤدي إلى نتائج متباينة. نظرا للتنوع الكبير في أنماط الحركة استجابة للتحفيز ، ينص الإجماع الحالي على أن "الحركات الهادفة الإجمالية" فقط هي التي يجب اعتبارها ردود فعل حركيةإيجابية 3. ومع ذلك، يفتقر هذا التعريف إلى مزيد من التنقيح فيما يتعلق بالفئات المحددة التي يمكن أن تصنف على أنها "هادفة إجمالية" وإلى أي مدى يجب أن تفي الحركة بهذا المعيار. هذا له أهمية قصوى ، حيث يمكن أن تشير الاستجابة الحركية للتحفيز ، في بيئة سريرية ، إلى عدم كفاية عمق التخدير.

تؤثر عوامل مختلفة على حالة التخدير ، بما في ذلك سن5 سنوات ، والأمراض المصاحبة6 ، وضعف وظائف الكبد7 أو انخفاض حرارةالجسم 8. علاوة على ذلك ، فإن الأدوية التي يتم تناولها مع التخدير تؤثر بشكل كبير على عمق التخدير. على سبيل المثال ، يقلل الفنتانيل والبروبوفول ، اللذان يستخدمان غالبا خلال مرحلة الحث ، من الكمية المطلوبة من سيفوفلوران9،10. بالإضافة إلى ذلك ، فقد ثبت أن الليدوكائين أو بريجابالين يمكن أن يخفض MAC للسيفوفلوران11،12. علاوة على ذلك ، يمكن أن يؤدي تناول الكحول أو مواد مثل رباعي هيدروكانابينول (THC) مؤخرا إلى تقليل MAC ، وبالتالي تعزيز عمق التخدير13،14. على العكس من ذلك ، فقد تم اقتراح أن عوامل الودي قد تخفف من التخدير عن طريق تحفيز الجهاز العصبي المركزي15.

لتعزيز قابلية التكاثر للدراسات المستقبلية ، يتم توفير بروتوكول مفصل وأوصاف فيديو لتقييم MAC في الفئران باستخدام تصميم ديكسون لأعلى ولأسفل16 . على عكس دراسات MAC السابقة ، يحدد هذا البروتوكول الخطوات الإجرائية التفصيلية لدعم قابلية التكاثر عبر المختبرات. علاوة على ذلك ، تمت إعادة تحليل لقطات الفيديو من دراستين منشورتين سابقا ، وتم تصنيف الاستجابات الحركية بناء على مداها ونمطها (الحركات المنسقة - التدحرج ، والتمدد ، والملوحة ، وتجعيد الحركة غير المنسق). لذلك ، تقدم هذه الدراسة أيضا وصفا وتصنيفا مبتكرا وشاملا لأنماط الحركة في الفئران المخدرة استجابة لمحفز مؤلم موحد ، يهدف إلى تحسين قابلية التكاثر للأبحاث المستقبلية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على جميع الدراسات التجريبية على من قبل اللجنة الداخلية للتجارب على التابعة لجامعة فيينا الطبية والسلطة التنظيمية المختصة (الوزارة الاتحادية النمساوية للمرأة والعلوم والبحوث). أجريت التجارب تحت التخدير المستمر. لا تدرك الألم بوعي حتى لو حدثت حركة17. تم استخدام فئران ويستار البالغة في سن 81 إلى 95 يوما.

1. دراسة والسكن

  1. قم بإسكان حسب الوزن والجنس. افصل بين الذكور والإناث وقم بإيوائهم لمدة لا تقل عن 14 يوما قبل بدء التجربة للسماح بالتأقلم. ضع ثلاثة فئران كحد أقصى فوق 400 جم أو أربعة فئران أقل من 400 جم لكل قفص.
  2. حافظ على الظروف البيئية من خلال دورة ضوء/ظلام مدتها 12 ساعة، ودرجة حرارة محيطة تبلغ 22 درجة مئوية، ومستويات رطوبة تتراوح بين 45٪ و65٪.
  3. قم بوزن كل بانتظام وسجل وزن الجسم قبل كل إجراء.
  4. نقل بشكل فردي من منطقة السكن إلى منشأة الاختبار. قم بتغطية كل قفص بقطعة قماش لتقليل الإجهاد البصري ، وقم بإيواء غير المختبرة في غرفة منفصلة لتجنب التعرض للإجراءات التجريبية.

2. إعداد المعدات

  1. تحقق من أن جميع المعدات المطلوبة تعمل ومتوفرة قبل بدء التجربة. قم بإجراء فحوصات المعدات وفقا للإرشادات المؤسسية أو إجراءات التشغيل القياسية، بما في ذلك اختبار التسرب والمعايرة واختبارات وظائف الطاقة عند الاقتضاء.
  2. استخدم غرفة محكمة الإغلاق وشفافة (15 سم × 20 سم × 9 سم) لوضع الفئران. تأكد من أن الغرفة مجهزة بفتحة 15 مم لتوجيه الذيل خارجيا مع تقليل تسرب الغاز.
  3. قم بتوصيل خط التدفق بمبخر سيفوفلوران ومصدر أكسجين.
  4. قم بتوصيل خط التدفق الخارجي على الجانب الآخر من الغرفة بكل من نظام شفط الغاز وجهاز مراقبة التخدير لتسجيل تركيزات سيفوفلوران.
  5. تأكد من أن مقياس حرارة المستقيم وبطانية التدفئة ومصباح التسخين بالأشعة تحت الحمراء يعملان. اختبر مقياس الحرارة مقابل جهاز مرجعي ، وتحقق من وصول بطانية التسخين إلى نطاقات درجات الحرارة المستهدفة ، وتحقق من تشغيل مصباح الأشعة تحت الحمراء ويحافظ على إخراج مستقر. ضع المصباح مباشرة فوق غرفة الاختبار على مسافة آمنة وفقا لإجراءات السلامة المحلية.
  6. قم بإعداد مشبك شرياني مقاس 25 سم لاستخدامه في محفز الألم القياسي.

3. تحضير الدواء

  1. تحضير THC (اختياري)
    1. استخدم تركيبة THC بتركيز 25 مجم / مل. احسب الحجم المطلوب لكل بضرب وزن الجسم بالكيلوغرام في (10 مجم / كجم / 25 مجم / مل) ، مما ينتج عنه 0.4 مل لكل كيلوغرام من وزن الجسم.
    2. استخدم ماصة الإزاحة الموجبة لرسم الحجم المحسوب الدقيق لكل. لا تطبق في هذه المرحلة. جهز الماصة واتركها جانبا لإعطائها لاحقا أثناء خطوة إعطاء الدواء (انظر الخطوة 4.6).
    3. استخدم طرف ماصة مناسب للتزقيم، مثل تلك التي يمكنها استيعاب ما يصل إلى 0.3 مل من السوائل بأمان. قم بإجراء التزقيم الفموي مباشرة باستخدام الماصة المحملة. تخلص من طرف الماصة بعد كل استخدام لمنع التلوث المتبادل.
  2. تحضير الإيثانول (اختياري):
    1. تحضير الإيثانول بتركيز الجرعة المطلوبة 1 جم / كجم أو 2 جم / كجم. استخدم تركيبة عالية التركيز من الإيثانول (على سبيل المثال ، 96-100٪) كقاعدة وقم بإذابتها في محلول ملحي بنسبة 0.9٪ إلى حجم إجمالي يبلغ 10 مل / كجم من وزن الجسم لكل على حدة. استخدم نفس حجم المحلول الملحي وحده مثل الدواء الوهمي المقابل. اتبع جميع إرشادات السلامة المؤسسية، لا سيما تلك المتعلقة بمناولة المواد القابلة للاشتعال وتخزينها.
    2. استخدم حقنة مناسبة (5 مل أو 10 مل ، حسب وزن) لرسم الحجم المحسوب الدقيق لكل على حدة. لا تقم بإعطاء المادة في هذه المرحلة. تحضير المحقنة ووضعها جانبا للحقن داخل الصفاق أثناء خطوة إعطاء الدواء (انظر الخطوة 4.6). قم بتوصيل إبرة 23 جم للإعطاء وقم بتغطيتها بغطاء مقابل لمنع الإصابة حتى الاستخدام.

4. تطبيق المخدرات

  1. تحفيز التخدير لإعطاء الدواء عن طريق وضع الجرذ في الغرفة وإغراقه ب 3.5٪ vol٪ سيفوفلوران في 100٪ أكسجين بمعدل 3 لتر / دقيقة.
  2. انتظر حوالي 3-5 دقائق حتى يفقد وعيا بصريا.
  3. قم بإجراء اختبار الانعكاس التصحيحي عن طريق إمالة الغرفة برفق لدحرجة على ظهره. إذا لم تحاول تصحيح نفسها في غضون 10 ثوان ، افترض عمق التخدير الكافي.
  4. قلل تركيز سيفوفلوران مؤقتا إلى 0 واغسل الغرفة بأكسجين بنسبة 100٪ لمدة 15 ثانية لتقليل تعرض المجرب لغاز التخدير.
  5. أخرج من الغرفة وضعه أمام أنبوب توصيل الغاز الذي يوفر نفس تركيز السيفوفلوران للحفاظ على التخدير أثناء التناول. تخطي هذه الخطوة إذا كانت إدارة مادة الاختبار قصيرة بما يكفي لتجنب التعافي من التخدير.
  6. إدارة المواد حسب التصميم التجريبي: قم بتوصيل 10 مجم / كجم من رباعي هيدروكانابولين عن طريق تزقيم المعدة أو إعطاء 1 جم / كجم أو 2 جم / كجم من الإيثانول داخل الصفاق يرجى الرجوع إلى القسم 3 للحصول على تفاصيل التحضير واتباع الإرشادات المؤسسية لأداء كل من إجراءات التزقيم وإدارة الصفاق.
  7. أعد إلى قفصه للتعافي.
  8. انتظر لمدة ساعة واحدة للإيثانول و 2 ساعة ل THC قبل متابعة الإجراء.

5. تحريض التخدير لاختبار MAC

  1. بعد فترة الانتظار ، ضع الجرذ مرة أخرى في غرفة الاختبار محكمة الإغلاق وغمره بمزيج محدد من سيفوفلوران والأكسجين. تأكد من تدفق الأكسجين المستمر بمقدار 3 لتر / دقيقة. حدد تركيز سيفوفلوران الفردي (الخطوة 9.1) لكل ، بدءا من 2.6٪ vol٪ (أو نقطة انطلاق أخرى محددة مسبقا بناء على التخطيط الإحصائي) للحيوان الأول في كل مجموعة. فيما يلي وصف مفصل للتصميم لأعلى ولأسفل.
  2. قم بتشغيل مصباح التسخين بالأشعة تحت الحمراء.
  3. انتظر حوالي 3-5 دقائق حتى يفقد وعيا بصريا.
  4. قم بإجراء اختبار الانعكاس التصحيحي عن طريق إمالة الغرفة برفق لدحرجة على ظهره. إذا لم تحاول تصحيح نفسها في غضون 10 ثوان ، افترض عمق التخدير الكافي.
  5. قلل تركيز سيفوفلوران مؤقتا إلى 0 واغسل الغرفة بأكسجين بنسبة 100٪ لمدة 15 ثانية لتقليل تعرض المجرب لغاز التخدير.
  6. افتح الغرفة بسرعة وأدخل مقياس حرارة المستقيم. راقب درجة حرارة الجسم الأساسية طوال الإجراء واضبط شدة مصباح التسخين بالأشعة تحت الحمراء وبطانية التدفئة وفقا لذلك.
  7. قم بقيادة الذيل للخارج عبر الفتحة الصغيرة في الغرفة.
  8. أغلق الغرفة بسرعة.
  9. أعد على الفور تركيز سيفوفلوران المطلوب قبل المتابعة.

6. وقت التوازن

  1. اترك فترة 15 دقيقة للتوازن.
  2. راقب باستمرار درجة حرارة قلب (37.2 درجة مئوية ± 0.3 درجة مئوية) واضبط أجهزة التسخين وفقا لذلك للحفاظ على النظام الحراري الطبيعي.

7. تحفيز الألم

  1. حدد الثلث البعيد من الذيل.
  2. قم بتطبيق محفز الألم عن طريق قفل المشبك في موضعه الثالث (حوالي 50 نيوتن من القوة).
  3. اترك المشبك مغلقا في موضعه الثالث حتى يظهر الجرذ استجابة حركة إيجابية ولكن لمدة أقصاها 1 دقيقة.
  4. سجل في البروتوكول وجود أو عدم وجود تفاعل حركي. قدم وصفا موجزا للحركة المرصودة من حيث نمطها ومداها. راجع النقطة 11 لتصنيف أنماط الحركة.

8. الانتعاش

  1. قم بإيقاف تشغيل المرذاذ ومصباح التسخين وضع الجرذ مرة أخرى في القفص.

9. تصميم صعودا وهبوطا

  1. حدد تركيز سيفوفلوران للتجربة التالية باستخدام تصميم ديكسون لأعلى ولأسفل. إذا أظهر السابق استجابة حركية للحافز ، فقم بزيادة تركيز التالي بنسبة 0.2٪ نقطة. على العكس من ذلك ، إذا لم يظهر السابق أي استجابة حركية ، فقم بتقليل التركيز بنسبة 0.2٪ نقطة مئوية.

10. القتل الرحيم (إن وجد)

ملاحظة: القتل الرحيم ليس بطبيعته جزءا ضروريا من التجارب. يجب استشارة اللجنة الداخلية المختصة للتجارب على. بالنسبة للدراستين المشار إليهما ، تقرر إجراء سحب دم داخل القلب والقتل الرحيم للحيوانات بعد ذلك. لم تتم إعادة إلى القفص كما هو موضح في الخطوة 8.1 ، ولكن بدلا من ذلك ، استمر الإجراء مباشرة في الخطوة 9.1.

  1. تحضير محلول القتل الرحيم عن طريق إذابة 300 مجم من البنتوباربيتال في 1 مل من المحلول الملحي. اسحب المحلول في حقنة واحتفظ به جاهزا للاستخدام الفوري بعد سحب الدم.
  2. أخرج الجرذ من الصندوق وضعه أمام أنبوب التنفس الذي يوفر 3.5٪ فولت٪ سيفوفلوران في 100٪ أكسجين للحفاظ على التخدير المستمر. ضع على ظهره للسماح بالوصول دون عائق إلى منطقة الصدر.
  3. قم بإجراء سحب الدم داخل القلب باستخدام إبرة 23 جم وحقنة سعة 5 مل. المس نبضات القلب برفق بإصبعك لتحديد موقع القلب. أدخل الإبرة الذيلية فقط في عملية الخنجري ، على يسار خط الوسط قليلا وبزاوية ضحلة.
  4. استنشق برفق أثناء ضبط موضع الإبرة حتى يلاحظ تدفق الدم. اجمع الحجم المطلوب.
  5. بعد الانتهاء من سحب الدم ، قم بإزالة المحقنة بعناية من الإبرة وقم بإرفاق المحقنة المحملة مسبقا التي تحتوي على محلول البنتوباربيتال. قم بإدارة 1 مل بالكامل من المحلول داخل القلب لضمان القتل الرحيم وفقا للإرشادات الأخلاقية المؤسسية.

11. مواصلة التجارب

  1. كرر التجربة بدءا من الخطوة 3 لكل دراسة على حدة.

12. تصنيف أنماط الحركة (اختياري)

  1. صنف الاستجابات السلوكية إلى الفئات التالية:
    1. التدحرج: تصنف على أنها متدحرجة عندما تتضمن الاستجابة السلوكية دورانا محوريا للجسم ، عادة على طول المحور الطولي.
    2. التمدد: تصنف على أنها تمدد عندما تتميز الاستجابة السلوكية بامتداد ثنائي ومتماثل للخارج للأطراف والجسم.
    3. الحركة المملحة: تصنف على أنها حركة مملحة عندما تتكون الاستجابة السلوكية من ركلات أو هزات مفاجئة تركز على الأطراف الخلفية تشبه رشقات نارية قصيرة تشبه القفز في الجسم كله.
    4. الشباك: يصنف على أنه تجعيد عندما تتضمن الاستجابة السلوكية حركة غير منسقة وموجهة إلى الداخل متفاوتة الشدة ، مما يتسبب في انحناء الجسم نحو مركزه.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

في دراسة THC ، كان تقدير التمهيد ل MAC 2.8٪ حجم ٪ في المجموعة الضابطة (95٪ CI: 2.7-2.9 vol٪) و 2.1 حجم ٪ في مجموعة 10 مجم / كجم THC (95٪ CI: 1.8-2.4 vol٪) 13.

في دراسة الإيثانول ، كان MAC المقدر 2.24٪ vol٪ في المجموعة الضابطة (95٪ CI: 1.97-2.94 vol٪). في مجموعة الإيثانول 1 جم / كجم ، كان 1.65 حجم ٪ (فاصل الثقة 95٪: 1.40-1.98 حجما٪) ، وفي مجموعة الإيثانول 2 جم / كجم ، 1.08 حجم ٪ (فاصل الثقة 95٪: 0.73-1.42 حجم ٪) 14. ويعكس اختلاف عدد المنازل العشري...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تعمل هذه الدراسة على تحسين بروتوكول تحديد MAC للسيفوفلوران في الفئران من خلال تفصيل الخطوات المنهجية الحاسمة ومعالجة التحديات الشائعة للمساهمة في نهج أكثر توحيدا وقابلية للتكرار لتقييم عمق التخدير.

يعد تحديد MAC الدقيق ضروريا لكل من ممارسات التخدير التجريبية والسريرية. يساهم هذا العمل في الأدبيات الموجودة من خلال توفير طريقة واضحة وقابلة للتكرار لتقييم فاعلية سيفوفلوران في النماذج الحيوانية. يعتبر البروتوكول المكرر ذا قيمة خاصة للأبحاث الدوائية وعلم الأعصاب ، ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن جميع المؤلفين أنه لا يوجد تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تمويل هذه الدراسة من قبل جامعة فيينا الطبية. يود المؤلفون أن يشكروا الدكتور توماس هامب على نصيحته العلمية والفريق في مركز البحوث الطبية الحيوية بجامعة فيينا الطبية على دعمهم في إجراء الدراسات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
غرفة شفافة محكمة الإغلاقغير متاحغير متاحالعامه
المشبك الشرياني  كوالا لمبور مارتن13-410-22-0725 سم
دكتور &أومل. جير بريموسدكتور &أومل. ger Austria GmbHبريموس
دكتور &أومل. جير بخار 2000دكتور &أومل. ger Austria GmbHبخار 2000
وحدة التحكم في البطانية المنزليةجهاز هارفارد ، هوليستون ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة الأمريكية50-7137230 فولت
جهاز تسخين الرضع اليدوي المتنقلفيشر / بايكل ، أوكلاند ، نيوزيلنداط: IW9210 / 920

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sury, M. R. J., Palmer, J. H. M. G., Cook, T. M., Pandit, J. J. The state of UK anaesthesia: a survey of National Health Service activity in 2013. Br J Anaesth. 113 (4), 575-584 (2014).
  2. Quasha, A. L., Eger, E. I., Tinker, J. H. Determination and applications of MAC. Anesthesiology. 53 (4), 315-334 (1980).
  3. Eger, E. I., Saidman, L. J., Brandstater, B. Minimum alveolar anesthetic concentration: a standard of anesthetic potency. Anesthesiology. 26 (6), 756-763 (1965).
  4. Merkel, G., Eger, E. I. A comparative study of halothane and halopropane anesthesia including method for determining equipotency. Anesthesiology. 24 (3), 346-357 (1963).
  5. Eger, E. I. Age, minimum alveolar anesthetic concentration, and minimum alveolar anesthetic concentration-awake. Anesth Analg. 93 (4), 947-953 (2001).
  6. Hardt, K., Wappler, F. Anesthesia for morbidly obese patients. Dtsch Arztebl Int. 120 (46), 779-779 (2023).
  7. Toprak, H. I., et al. Bispectral index monitoring to guide end-tidal isoflurane concentration at three phases of operation in patients with end-stage liver disease undergoing orthotopic liver transplantation. Transplant Proc. 43 (3), 892-895 (2011).
  8. Liu, M., Hu, X., Liu, J. The effect of hypothermia on isoflurane MAC in children. Anesthesiology. 94 (3), 429-432 (2001).
  9. SingsankCoats, J., Seddighi, R., Rohrbach, B. W., Cox, S. K., Egger, C. M., Doherty, T. J. The anesthetic interaction of propofol and sevoflurane on the minimum alveolar concentration preventing motor movement (MACNM) in dogs. Can J Vet Res. 79 (2), 95-95 (2015).
  10. Katoh, T., Ikeda, K. The effects of fentanyl on sevoflurane requirements for loss of consciousness and skin incision. Anesthesiology. 88 (1), 18-24 (1998).
  11. Hamp, T., et al. The effect of a bolus dose of intravenous lidocaine on the minimum alveolar concentration of sevoflurane. Anesth Analg. 117 (2), 323-328 (2013).
  12. Müller, J., et al. The effect of pregabalin on the minimum alveolar concentration of sevoflurane: a randomized, placebo-controlled, double-blind clinical trial. Front Med. 9, 883181(2022).
  13. Müller, J., et al. The effect of oral Δ-9-tetrahydrocannabinol on the minimal alveolar concentration of sevoflurane. Eur J Anaesthesiol. 38 (1), 58-63 (2021).
  14. Müller, J., et al. Ethanol reduces the minimum alveolar concentration of sevoflurane in rats. Sci Rep. 12 (1), 280(2022).
  15. Ishiyama, T., Oguchi, T., Iijima, T., Matsukawa, T., Kashimoto, S., Kumazawa, T. Ephedrine, but not phenylephrine, increases bispectral index values during combined general and epidural anesthesia. Anesth Analg. 97 (3), 980-984 (2003).
  16. Dixon, W. J. Staircase bioassay: the up-and-down method. Neurosci Biobehav Rev. 15 (1), 47-50 (1991).
  17. Stoelting, R. K., Longnecker, D. E., Eger, E. I. Minimum alveolar concentrations in man on awakening from methoxyflurane, halothane, ether and fluroxene anesthesia. Anesthesiology. 33 (1), 5-9 (1970).
  18. D'Amour, F. E., Smith, D. L. A method for determining loss of pain sensation. J Pharmacol Exp Ther. 72 (1), 74-79 (1941).
  19. Dixon, W. J. The up-and-down method for small samples. J Am Stat Assoc. 60 (312), 967-967 (1965).
  20. Kashimoto, S., Furuya, A., Nonaka, A., Oguchi, T., Koshimizu, M., Kumazawa, T. The minimum alveolar concentration of sevoflurane in rats. Eur J Anaesthesiol. 14 (4), 359-361 (1997).
  21. Olofsen, E., Dahan, A. The dynamic relationship between end-tidal sevoflurane and isoflurane concentrations and bispectral index and spectral edge frequency of the electroencephalogram. Anesthesiology. 90 (5), 1345-1353 (1999).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة