مقالة منهجية

في الجسم الحي الفحص المجهري متحد البؤر: إجراء تشغيل قياسي للكشف عن عث ديموديكس على هامش الجفن

DOI:

10.3791/68534

⸱

يوليو 3, 2025

 ,  , 
1National Clinical Research Center for Ocular Diseases, Eye Hospital, Wenzhou Medical University, 2Eye Hospital of Wenzhou Medical University at Hangzhou

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الفحص المجهري متحد البؤر في الجسم الحي هو تقنية تصوير واعدة بدقة عالية. نقدم الإجراء التالي للأطباء للكشف عن Demodex على هامش الجفن في الجسم الحي.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يمكن أن تسبب الإصابة بعث ديموديكس التهاب هامش الجفن ، ويمكن أن يؤدي التهاب الجفن ديموديكس إلى سلسلة من حالات العين في الحالات السريرية. يقوم العديد من الأطباء بتشخيص الإصابة العينية بعث ديموديكس من خلال إزالة شعر الرموش ومراقبة الرموش تحت الفحص المجهري الضوئي في المختبر. ومع ذلك ، فإن وجود العث المتبقي بعد إزالة الرموش والألم المرتبط بالإجراء هي قيود على الرعاية السريرية القياسية.

الفحص المجهري متحد البؤر في الجسم الحي (IVCM) هو تقنية تصوير غير جراحية تسمح للأطباء بمراقبة عث ديموديكس على هامش الجفن بالتفصيل دون إزالة الشعر. تتيح هذه التقنية التحليل غير المؤلم الذي يمكن إكماله في <30 دقيقة. على الرغم من الاهتمام المتزايد بهذا الفحص ، فقد يتعذر على العديد من أطباء العيون الوصول إليه دون خبرة واسعة. تقدم هذه الورقة إجراء تشغيليا قياسيا لتصور عث ديموديكس على هامش الجفن باستخدام IVCM لتعزيز زيادة اعتماد هذه الطريقة في العمل السريري.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

التهاب الجفن هو أحد أكثر تشخيصات العيون شيوعا في الممارسة السريرية. تشير الدلائل إلى وجود ارتباط كبير بين وجود عث ديموديكس والتهاب الجفن1. تتضمن الإصابة بالعث كلا من الضرر المباشر الناجم عن Demodex2 والاستجابات المناعية التي تسببها إفرازاته ، والتي قد تعمل كناقل للبكتيريا وربما تساهم في تطور التهاب الجفن3. يتسبب التهاب الجفن ديموديكس (DB) في مجموعة من الأحداث غير المرضية ، بما في ذلك تلف القرنية وسطح العين1 ، مما يؤثر سلبا على نوعية حياة المريض4،5.

Demodex هو سوس طفيلي يسكن بصيلات الشعر والغدد الدهنية ، وكذلك المناطق القريبةمنها 6. يمكن أن يساعد اكتشاف Demodex في بصيلات الرموش أو حولها في تشخيص DB7. يتضمن التشخيص السريري ل DB إزالة شعر الرموش ومراقبة Demodex تحت المجهر الضوئي. ومع ذلك ، فمن المسلم به أن العديد من العث الموجود في أعماق المسام قد يبقى في الفتحة بعد إزالة الرموش8،9،10 ، مما قد يؤدي إلى التقليل من عدد العث. يقدم الفحص المجهري متحد البؤر في الجسم الحي (IVCM) ، وهو أداة تصوير غير جراحية في طب العيون ، نهجا بديلا لتصور Demodex في أو حول بصيلات الرموش في الجسم الحي11. توفر هذه التقنية نظرة ثاقبة على الهياكل المجهرية لسطح العين والجفون بدقة تشبهالأنسجة 11. يمكن التعرف على العث بصريا بناء على مورفولوجيته وحركته المميزة. ومع ذلك ، قد يمثل IVCM تحديات تقنية لأطباء العيون الذين يفتقرون إلى الخبرة الواسعة في طريقة التصويرهذه 12.

لتسهيل اعتماد IVCM في التطبيقات السريرية الروتينية ، بما في ذلك التشخيص التفريقي ومتابعة الجفون السليمة بالإضافة إلى DB ، نقترح إجراء تشغيل قياسي (SOP) لمراقبة عث Demodex على هامش الجفن. يوفر هذا البروتوكول للأطباء نهجا منهجيا للكشف عن العث في الجسم الحي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يركز هذا البروتوكول على الإجراء التشغيلي الموحد المستخدم لمراقبة Demodex على هامش الجفن باستخدام IVCM (الشكل 1). تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل مجلس المراجعة المؤسسية (IRB) التابع لمستشفى العيون بجامعة ونتشو الطبية (موافقة مجلس المراجعة المؤسسية رقم H2023-022-K-20) ، وتم التنازل عن شرط الموافقة الفردية لهذا التحليل بأثر رجعي بسبب الطبيعة بأثر رجعي. تشير الإجراءات الموضحة هنا إلى الأوصاف التي تم الإبلاغ عنها سابقا11،13،14،15،16.

figure-protocol-1
الشكل 1: جهاز التصوير المقطعي. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

1. تحضير الجهاز والبرنامج

  1. قم بتشغيل الكمبيوتر.
    1. بعد ظهور سطح المكتب ، قم بتبديل مفتاح الروك الموجود في الجزء الخلفي من الجهاز من O إلى I. ابحث عن التوهج الأخضر لمفتاح الروك الذي يشير إلى أن الجهاز قيد التشغيل قبل بدء أي فحوصات.
      ملاحظة: قد يؤدي تشغيل الجهاز قبل بدء تشغيل الكمبيوتر إلى فشل الاتصال.
    2. ابدأ تشغيل البرنامج واضبط إعدادات البرنامج قبل الفحص. في قائمة الإعداد ، حدد الخيارات (الملف التكميلي 1: الشكل التكميلي S1)؛ ثم حدد مربع إظهار أرقام الصور لعرض رقم الصورة لكل صورة. بالإضافة إلى ذلك، حدد المربع إظهار المعلومات عند الخروج لمنع إيقاف التشغيل غير المقصود للبرنامج.
      ملاحظة: يسهل عرض الصور المصغرة كرموز كبيرة المراقبة المباشرة للنتائج. لا تقم بتغيير الإعدادات بشكل متكرر.
  2. الاستعدادات قبل الفحص
    1. نظف العدسة بمناديل تنظيف العدسة. قم بتطهير مسند الرأس ومسند الذقن بكرات قطنية مبللة بالكحول لتجنب العدوى الناتجة عن الجراثيم المسببة للأمراض التي تنتقل عن طريق أجزاء الجهاز المتسخة.
    2. اضبط مسند الذقن. تأكد من صحة الموضع الأفقي لمسند الذقن: اضغط معا على الرافعين الأسودين لسحب مسند الذقن للأمام حتى يلتقط.
    3. حرك الكاميرا للخلف. أدر برغي الضبط للتأكد من أنه يبتعد عن المريض قبل الفحص.
    4. ضع قطرة (حوالي 0.02 مل) من جل العين القائم على الكربومير كجل تلامس على السطح الأمامي لعدسة المجهر الخاصة بالجهاز.
      ملاحظة: تأكد من خلو جل التلامس من فقاعات الهواء وأنه يتم استخدام كمية صغيرة فقط. يمكن أن يتدفق الكثير من هلام التلامس المطبق على السطح الأمامي لعدسة المجهر للجهاز إلى الهدف ويلتصق بالمكونات الميكانيكية ، مما يؤدي إلى تلف الجهاز.
    5. قم بإزالة غطاء بولي ميثيل ميثاكريلات معقم يمكن التخلص منه (PMMA) من غلافه الواقي واضغط على جوانب الغطاء بقوة على عدسة المجهر الخاصة بالجهاز دون لمس السطح الأمامي للغطاء (الشكل 2).
      ملاحظة: لتناسب غطاء PMMA بشكل صحيح ، تأكد من أن جل التلامس ملامس للسطح الخلفي للغطاء دون أي فقاعات هواء. يتم تخزين الأغطية في الحاوية المخصصة لمنع تلف العبوة المعقمة. لا تستخدم الأغطية ذات العبوات التالفة ، والتي قد تنطوي على خطر الإصابة بالعدوى أثناء الفحص.
    6. ضع قطرة واحدة من بديل المسيل للدموع على السطح الأمامي للغطاء كجسر هلامي بين الغطاء والجفن (الشكل 2).
      ملاحظة: لتجنب الخلط بين المواد الهلامية ، نستخدم نفس جل العين القائم على الكربومير لكلا التطبيقين: بديل تمزق الهلام والهلام المستخدم كعامل بين عدسة المجهر والغطاء.
    7. قم بإنشاء ملف مريض جديد أو حدد ملف مريض موجود.

figure-protocol-2
الشكل 2: التركيب الصحيح لغطاء PMMA وتطبيق الجل. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

2. تحضير المريض

ملاحظة: لا تقم بإجراء هذا الفحص إذا كانت سلامة القرنية مشكوك فيها.

  1. للحصول على تعاون المريض وتقليل المخاطر المحتملة ، اشرح للمريض ما يلي:
    1. أكد للمريض أن الفحص بالجهاز آمن على الرغم من أنه يلامس الجفن. أبلغ المريض أنه سيتم تخدير عينه بقطرة من مخدر موضعي على هامش الجفن.
    2. عند بدء الفحص ، اطلب من المريض وضع ذقنه على مسند الذقن وإمالة جبهته على مسند الجبهة طوال إجراء الفحص للحصول على أفضل جودة للصورة.
    3. أبلغ المريض أنه سيتم تحريك الجهاز بالقرب من جفنه حتى يلمسه غطاء PMMA. أكد لهم أنهم لن يشعروا بأي ألم أثناء لمس الجهاز لجفنهم ، على الرغم من أنهم سيشعرون بملامسة غطاء PMMA. اطلب منهم إخبار الطبيب على الفور إذا شعروا بأي ألم أثناء الفحص.
    4. أبلغ المريض أنه يجب عليه إبقاء نظره ثابتا بينما يحصل الطبيب على صور لهامش الجفن لمراقبة Demodex. اطلب من المريض إخبار الطبيب إذا شعر بأي تعب. سيسمح لهم بالجلوس والراحة لفترة من الوقت قبل استمرار الفحص. سيتم إبلاغهم بمجرد انتهاء الامتحان.
  2. اتبع التعليمات الموجودة على عبوة التخدير الموضعي و / أو جل العين لتجنب موانع الدواء. اسأل المريض عما إذا كان لديه أي حساسية للتأكد من أن حساسية المريض ليست موانع للتخدير الموضعي و / أو جل العين.
    ملاحظة: قد تحدث ردود فعل تحسسية تجاه التخدير الموضعي و / أو جل العين نتيجة لحساسية غير محددة.
  3. ضع قطرة من بروباراكايين هيدروكلوريد، وهو مخدر موضعي على هامش الجفن المراد فحصه.
    ملاحظة: في حالة حدوث رد فعل تحسسي ، اشطفه بالمحلول الملحي على الفور.

3. إجراء فحص

  1. راقب العين اليمنى أولا. حرك كاميرا المسح الضوئي إلى اليسار من وجهة نظر المشغل. سيتم تحديد OD تلقائيا في قسم الإعدادات من خلال التعرف على الكاميرا من اليمين إلى اليسار.
  2. حرك كاميرا CCD إلى اليسار. أدر العدسة الموضوعية لكاميرا CCD لضبط صورة كاميرا CCD (صورة التحكم) بشكل عمودي على المحور البصري لكاميرا ليزر الماسح الضوئي.
  3. ابدأ فحصا جديدا.
    1. راقب مربع الحوار بيانات الفحص وفي علامة التبويب بيانات الفحص ، حدد Heidelberg Retina Retina Tomograph-Cornea من القائمة المنسدلة الجهاز (الملف التكميلي 1: الشكل التكميلي S2) ، ولاحظ مربع الحوار إعدادات وحدة القرنية الذي يظهر.
    2. حدد مجال الرؤية 400 من القائمة المنسدلة Field Lens وانقر فوق موافق للتأكيد (الملف التكميلي 1: الشكل التكميلي S3).
    3. انتظر حتى تفتح نافذة الاستحواذ ؛ يتم عرض الصورة الحية لكاميرا الليزر للمسح الضوئي وصورة التحكم. إذا لم يتم عرض صورة التحكم، فتأكد من توصيل كبل كاميرا CCD بشكل صحيح بكاميرا CCD، ثم أعد تشغيل نافذة الاكتساب.
  4. قم بتعيين العوامل في نافذة الاستحواذ (الملف التكميلي 1: الشكل التكميلي S4): حدد 1x من القائمة المنسدلة CCD Zoom Factor لتعيين حجم صورة التحكم. حدد مربع السطوع التلقائي ومربع تلقائي للتحكم تلقائيا في سطوع الصور الحية والتحكم فيها. ومع ذلك، إذا تم إلغاء تنشيط التحكم التلقائي في السطوع، فاستخدم شريط التمرير للتحكم في سطوع عنصر التحكم والصور الحية. تحقق من تحديد نوع المسح الضوئي للقسم بحيث يتم الحصول على صورة واحدة وتخزينها في كل مرة يتم فيها الضغط على مفتاح القدم.
  5. الحصول على صورة مرجعية.
    1. قبل البدء في عملية الاستحواذ ، قم بإيقاف تشغيل التحكم التلقائي في السطوع وحرك شريط التمرير إلى اليسار لضبط سطوع الصورة. اضبط المستوى البؤري باستخدام دبوس الضبط بحيث يتم عرض الانعكاس الساطع الأولي في الصورة الحية لكاميرا الليزر بعد التحول إلى الظلام ، مما يشير إلى السطح الأمامي لغطاء PMMA.
      ملاحظة: يسمح المجهر بإجراء تعديلات بؤرية 10 ميكرومتر.
    2. انقر فوق إعادة تعيين في قسم موضع التركيز البؤري [μm] وانتظر حتى تتحول قيمة موضع التركيز البؤري [μm] إلى 0; يشار إلى الصورة الحالية على أنها الصورة المرجعية. قم بإيقاف تشغيل إعادة الضبط التلقائي ، وحدد مربع السطوع التلقائي ؛ سيتم التحكم في سطوع الصورة الحية تلقائيا.
    3. إذا تم عرض خطوط متقطعة بدلا من القيم في قسم موضع التركيز البؤري [μm ]، أو إذا لم تتغير القيم المعروضة على الرغم من التعديلات على المستوى البؤري، فتأكد من توصيل كابل عدسة المجهر بشكل صحيح.
      ملاحظة: يعرض موضع التركيز البؤري [μm] لقياس السرعة موضع المستوى البؤري للصورة المعروضة حاليا بالميكرون. إذا تم نقل المستوى البؤري لاحقا ، يتم حساب موقع المستوى البؤري الفعلي فيما يتعلق بموضع الصورة المرجعية.
  6. رفع أو خفض ارتفاع طاولة الفحص للمريض. ضع ذقن المريض على مسند الذقن والجبهة مقابل مسند الجبهة (الشكل 3 أ ، ب). اضبط ارتفاع مسند الذقن عبر برغي الضبط الأسود المخصص للجهاز بحيث تتماشى الجفون العلوية للمريض مع العلامات الحمراء الموجودة على عمود مسند الرأس.
  7. اطلب من المريض أن ينظر إلى الأسفل أمام مصدر الضوء الثابت للمؤشر وأن يحافظ على نظره ثابتا (الشكل 3 أ ، ب).
    ملاحظة: قد تؤدي حركة العين أثناء جمع الصور إلى سوء جودة الصورة وتلف سطح العين.
  8. استخدمي قطعة قطن لقلب الجفن العلوي ، مع تعريض جذر الرموش وهامش الجفن بالكامل. ضع انعكاس شعاع الليزر على مستوى الجفن العلوي للمريض عن طريق تدوير برغي الضبط الخاص بالجهاز. حرك كاميرا الليزر الممسحة الضوئية ببطء باتجاه هامش الجفن العلوي للمريض حتى تلامس بلطف مركز غطاء PMMA عموديا (الشكل 3C). إذا أبلغ المريض عن عدم الراحة ، فتوقف مؤقتا وتحقق من محاذاة غطاء PMMA.
    ملاحظة: لا تضغط كثيرا على جفن المريض. قد يؤدي التلامس بين غطاء PMMA وجفن المريض بسبب عدم كفاية الجسر الهلامي وحركة العين والرأس للمريض و / أو حركة الكاميرا القوية جدا للمشغل إلى إصابة سطح العين والجفن.
  9. امسح جذر الرموش من الجانب الصدغي باتجاه الجانب الأنفي من هامش الجفن بعناية بحركات أفقية دقيقة لحاف الجفن ، مما يسمح بتقييم الرموش وبصيلاتها. قم بمسح الصور والحصول عليها عن طريق تدوير عدسة مجهر الجهاز في اتجاه عقارب الساعة أو عكس اتجاه عقارب الساعة ، وتعديل مستوى التركيز تدريجيا لمراقبة البصيلات بأكملها وجذر الرموش ، وتدوين الأعماق المختلفة المعروضة في الصورة الحية لكاميرا الليزر المسح. احصل على الصور عن طريق مسح ستة إلى عشر بصيلات شعر رمش لكل عين ، مع توزيع العينات عبر المناطق الصدغية والوسطى والأنفية من هامش الجفن.
    ملاحظة: إذا تم عرض رد فعل صغير في الصورة الحية لكاميرا الليزر المستمرة واستمر عند تغيير موضع المستوى البؤري ، فقد يشير ذلك إلى وجود فقاعات هواء في هلام التلامس. لحل هذه المشكلة، قم بتجديد هلام جهات الاتصال.
  10. احفظ الصور يدويا وسجل جميع الصور المشتبه بها لعث ديموديكس بالضغط على دواسة القدم. قم بتمكين الملاحظات الصوتية للدواسة للتحقق من الحصول على الصور بنجاح. إذا لم يتم عرض هياكل الجفن ولم تظهر سوى الطبقات الحدودية عالية الانعكاس في الصورة الحية لكاميرا الليزر المسح الضوئي ، فقد يشير ذلك إلى أن التلامس بين غطاء PMMA وهامش جفن المريض قد انقطع. لحل هذه المشكلة، أعد محاذاة الكاميرا حتى يلامس غطاء PMMA هامش جفن المريض بشكل صحيح.
  11. إذا ظهرت الصورة الحية غير واضحة أو مشوهة أو لا تعرض بنية بصيلات الشعر ، فقد تشير هذه المشكلات إلى أن المريض يحرك رأسه أو يرمش. ذكر المريض بالتركيز على ضوء التثبيت لتقليل الحركة. إذا أمكن ، اضبط السطوع والمستوى البؤري وموضع المسح الضوئي لتحسين جودة الصورة.
  12. إذا كانت كاميرا ليزر المسح الضوئي بحاجة إلى الضبط أو كان المريض يعاني من التعب أو أي ألم ، فاطلب من المريض الجلوس وحرك كاميرا الليزر للخلف وإعادة ضبط الكاميرا. إذا استمر المريض في الشعور بعدم الراحة أثناء الفحص ولم تظهر عليه أي علامات على تخفيف الأعراض بعد الراحة ، فتوقف عن الإجراء وأعد جدولته لضمان سلامة المريض.
  13. إذا تم فحص المريض عدة مرات على مدار اليوم ، فقم بتخزين جميع الصور في نفس علامة تبويب الفحص في نافذة عرض الصورة.
  14. افحص العين اليسرى، وحرك الكاميرا إلى اليمين من وجهة نظر المشغل، وانتظر حتى يتم تحديد نظام التشغيل تلقائيا. قم بإزالة غطاء PMMA من الجهاز ، وقم بتركيب غطاء PMMA جديد على عدسة المجهر الخاصة بالجهاز ، وكرر الخطوات السابقة.

figure-protocol-3
الشكل 3: وضع المريض. (أ ، ب) يتم وضع المريض. (ج) يتم ضبط الغطاء ليلمس الجفن. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

4. بعد الفحص

  1. إنهاء الامتحان. تأكد من تخزين صور بصيلات الرموش وأن الصور المكتسبة معروضة في نافذة عرض الصورة. إذا لم يكن الأمر كذلك، فقد يكون الحصول على الصورة قد فشل، أو ربما لم يتم حفظ البيانات. أولا ، استبعد الأعطال المحتملة في المعدات ، مثل مشكلات اتصال البرنامج أو فشل الدواسة. بعد استكشاف الأخطاء وإصلاحها ، اشرح الموقف للمريض وكرر الفحص.
  2. اطلب من المريض عدم فرك عينيه بعد الفحص حتى يتضاءل تأثير التخدير الموضعي.
  3. قم بإزالة غطاء PMMA من الجهاز.
  4. نظف عدسة المجهر بمناديل تنظيف العدسة.
  5. حدد فرز حسب وقت الاستحواذ (سريع) في مربع حوار الخيارات ولاحظ الصور المكتسبة لبصيلات الرموش المعروضة بالترتيب من الجانب الصدغي إلى الأنف (الملف التكميلي 1: الشكل التكميلي S5) - ترتيب مسح جذر الرموش على طول هامش الجفن. راجع جميع الصور ، وحدد الصور عالية الجودة لتحليلها (الشكل 4) ، واحذف الصور منخفضة الجودة. اطلب من المراقب تقييم الصور لوجود العث وتسجيل عدد بصيلات الرموش مع عث ديموديكس في المجموع لكل عين.
    ملاحظة: تظهر الصور عالية الجودة مورفولوجيا العث الواضحة ، ويجب أن يكون الجزء المصور من العث كبيرا قدر الإمكان ، ويفضل أن يكون أكبر من 100 ميكرومتر. إذا لم تكن الصور عالية الجودة متوفرة، يلزم إجراء تقييم مستقل من قبل مراقب ثان. وإذا كانت نتائج المراقبين غير متسقة، فيجب على مراقب ثالث أن يبت في حل التناقض وتحديد النتيجة النهائية لإدراجها في التقرير.
  6. قم بإنشاء تقارير عن طريق وضع الصورة عالية الجودة من الجانب الصدغي إلى الجانب الأنفي في المربع المبسط للتقرير. من قوالب التقارير وتنسيقات عد العث (انظر الملف التكميلي 2) ، حدد نموذج تقرير مناسب لوصف النتائج بناء على نتائج الفحص.

figure-protocol-4
الشكل 4: Demodex داخل بصيلات الرموش. (الصور: 400 ميكرومتر × 400 ميكرومتر). (أ)لوحظ ثلاثة عث ديموديكس داخل المسام (السهم الأصفر) ، ويتم وضع علامة على رمش واحد (سهم أبيض). (ب) لوحظ خمسة عث ديموديكس داخل المسام (السهم الأصفر) ، ويتم وضع علامة على رمش واحد (سهم أبيض). نظرا لأن العث قد يهاجر عبر أعماق مختلفة ، فقد يلتقط التصوير على مستوى بؤري واحد أجزاء مجزأة من العث الفردي ، مما يؤدي إلى تمثيل مورفولوجي غير مكتمل. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

5. قم بإيقاف تشغيل الجهاز بعد العمل كل يوم

  1. بعد إغلاق جميع مربعات الحوار والنوافذ، أغلق البرنامج.
  2. قم بإيقاف تشغيل الكمبيوتر.
  3. قم بإيقاف تشغيل الجهاز عن طريق تبديل مفتاح التأرجح الموجود في الجزء الخلفي من الجهاز من I إلى O. للحصول على أفضل أداء للنظام وأمان البيانات ، قم أولا بإيقاف تشغيل البرنامج ثم قم بإيقاف تشغيل الجهاز.
    ملاحظة: لا ينبغي إبقاء الجهاز قيد التشغيل بشكل مستمر لفترة طويلة ، خاصة لأكثر من يوم كامل.
  4. حافظ بانتظام على مصدر الطاقة غير المنقطع (UPS) المتصل بالجهاز وتأكد من تشغيله بشكل صحيح لمنع فقدان البيانات أو عطل الجهاز الناجم عن انقطاع التيار الكهربائي المفاجئ.
  5. قم بإجراء نسخ احتياطية منتظمة مثل استخدام تخزين التخزين المتصل بالشبكة (NAS).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

باتباع الإجراء التشغيلي الموحد الموصوف أعلاه ، قمنا بفحص المرضى الذين يشتبه في إصابتهم ب Demodex في عام 2024. وبالإضافة إلى ذلك، قارنا البيانات من عام 2023 عندما لم يطبق هذا الإجراء التشغيلي الموحد. كما هو موضح في الشكل 5 ، فإن عدد المرضى الذين خضعوا لفحص IVCM للكشف عن Demodex في عام 2024 أعلى بكثير من العام السابق. يسمح هذا الإجراء التشغيلي الموحد بفحص المرضى من مختلف الأعمار ، من 4 سنوات إلى 92 عاما.

<...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الطفيلي الخارجي Demodex هو أحد أكثر الطفيليات شيوعا عند البشر. تعيش هذه العث في بصيلات الرموش والغدد الميبوميان (MGs) والغدد الدهنية وهي شفافة وممدودة الشكل ويبلغ طولها 0.15-0.4 مم17. يوفر IVCM الذي يتم إجراؤه باستخدام الجهاز صورا في الوقت الفعلي 400 ميكرومتر × 400 ميكرومتر بدقة جانبية تبلغ 1 ميكرومتر / بكسل وتكبير 800x. من خلال IVCM ، يمكن الحصول على صور مفصلة ل Demodex في بصيلات الرموش. يمكن أيضا مراقبة التغييرات في استجابة المريض للعلاج على ها...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإفصاح عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا البحث بمنحة من الإدارة الوطنية للطب الصيني التقليدي قسم علوم وتكنولوجيا - إدارة مقاطعة تشجيانغ للطب الصيني التقليدي خطة العلوم والتكنولوجيا المشتركة (GZY-ZJ-KJ-23086). تم إجراء الفحص المجهري متحد البؤر في الجسم الحي باستخدام Heidelberg Retina Tomograph III مع إضافة وحدة قرنية روستوك. يود المؤلفون الإعراب عن امتنانهم لشركة هايدلبرغ الهندسية وجميع المشاركين والأشخاص الذين يعملون على إجراء التشغيل القياسي هذا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
جل العيون القائم على الكربومر، فيديسيك  Bausch and Lomb ، برلين ، ألمانيا8187195
برنامج مستكشف العين هايدلبرغ  شركة هايدلبرغ الهندسية GmbH ، هايدلبرغ ، ألمانياالإصدار 1.3.3.0
هايدلبرغ شبكية العين المقطعية III  شركة هايدلبرغ الهندسية GmbH ، هايدلبرغ ، ألمانياHRT3-08398
بروباراكايين هيدروكلوريدمختبرات ألكون ، فورت وورث ، تكساس ، الولايات المتحدة8387271
توموكاب  شركة هايدلبرغ الهندسية GmbH ، هايدلبرغ ، ألمانيا18829غطاء PMMA

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cheng, A. M., Sheha, H., Tseng, S. C. Recent advances on ocular Demodex infestation. Curr Opin Ophthalmol. 26 (4), 295-300 (2015).
  2. Czepita, D., Kuźna-Grygiel, W., Czepita, M., Grobelny, A. Demodex folliculorum and Demodex brevis as a cause of chronic marginal blepharitis. Ann Acad Med Stetin. 53 (1), discussion 67 63-67 (2007).
  3. Clifford, C. W., Fulk, G. W. Association of diabetes, lash loss, and Staphylococcus aureus with infestation of eyelids by Demodex folliculorum (acari: Demodicidae). J Med Entomol. 27 (4), 467-470 (1990).
  4. O'Dell, L., et al. Psychosocial impact of Demodex blepharitis. Clin Ophthalmol. 16, 2979-2987 (2022).
  5. Yeu, E., Holdbrook, M. J., Baba, S. N., Gomes, P. J. Psychosocial impact of Demodex blepharitis. Invest Ophthalmol Vis Sci. 62 (8), 1261-1261 (2021).
  6. Wu, M., Wang, X., Han, J., Shao, T., Wang, Y. Evaluation of the ocular surface characteristics and Demodex infestation in paediatric and adult blepharokeratoconjunctivitis. BMC Ophthalmol. 19 (1), 67(2019).
  7. Zou, D., et al. Characteristics of bacterial community in eyelashes of patients with Demodex blepharitis. Parasit Vectors. 17 (1), 64(2024).
  8. Coston, T. O. Demodex folliculorum blepharitis. Trans Am Ophthalmol Soc. 65, 361-392 (1967).
  9. Mastrota, K. M. Method to identify Demodex in the eyelash follicle without epilation. Optom Vis Sci. 90 (6), e172-e174 (2013).
  10. Gao, Y. Y., et al. High prevalence of demodex in eyelashes with cylindrical dandruff. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (9), 3089-3094 (2005).
  11. Randon, M., et al. In vivo confocal microscopy as a novel and reliable tool for the diagnosis of Demodex eyelid infestation. Br J Ophthalmol. 99 (3), 336-341 (2015).
  12. Muntz, A., Purslow, C., Wolffsohn, J. S., Craig, J. P. Improved Demodex diagnosis in the clinical setting using a novel in situ technique. Cont Lens Anterior Eye. 43 (4), 345-349 (2020).
  13. Kojima, T., et al. In vivo evaluation of ocular demodicosis using laser scanning confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (1), 565-569 (2011).
  14. Tas, A. Y. Interobserver and intraobserver agreements of the detection of Demodex infestation by in vivo confocal microscopy. Beyoglu Eye J. 7 (3), 173-180 (2022).
  15. Wang, Y. -J., Ke, M., Chen, X. -M. Prospective study of the diagnostic accuracy of the in vivo laser scanning confocal microscopy for ocular demodicosis. Am J Ophthalmol. 203, 46-52 (2019).
  16. hrt3 rostock cornea module user manual v. 1.5 english. , Heidelberg Engineering GmbH. http://www.HeidelbergEngineering.com (2025).
  17. Lee, S. H., Chun, Y. S., Kim, J. H., Kim, E. S., Kim, J. C. The relationship between Demodex and ocular discomfort. Invest Ophthalmol Vis Sci. 51 (6), 2906-2911 (2010).
  18. Sattler, E. C., et al. Noninvasive in vivo detection and quantification of Demodex mites by confocal laser scanning microscopy. Br J Dermatol. 167 (5), 1042-1047 (2012).
  19. Duncan, N., Sood, P., Khandelwal, S. Demodex blepharitis: Its role and treatment in ocular surface disease. Curr Ophthalmol Rep. 10 (4), 107-113 (2022).
  20. Luo, X., Li, J., Chen, C., Tseng, S., Liang, L. Ocular demodicosis as a potential cause of ocular surface inflammation. Cornea. 36 Suppl 1 (Suppl 1), S9-S14 (2017).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة