مقالة منهجية

إجراء الوخز بالإبر الحساس المرئي لهشاشة العظام في الركبة: التقييمات السلوكية والحرارية والجزيئية

DOI:

10.3791/68967

⸱

أغسطس 29, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Acupuncture, Moxibustion and Tuina, Beijing University of Chinese Medicine, 2Department of Traditional Chinese Medicine, Air Force Medical Center

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

توضح هذه الدراسة بالتفصيل طريقة تثبيت الفئران المناسبة لتصوير الوخز بالإبر والتصوير الحراري بالأشعة تحت الحمراء. علاوة على ذلك ، فإنه يوضح أن الوخز بالإبر الكهربائية في نقاط الوخز بالوخز بالوخز بالوخز بالحساسية يثبط الألم الالتهابي الموضعي.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لا يزال هشاشة العظام في الركبة (KOA) ، وهو سبب رئيسي لآلام العضلات والعظام والإعاقة الوظيفية في جميع أنحاء العالم ، يمثل تحديا في إدارته بسبب الفعالية المحدودة للتدخلات الدوائية والجراحية الحالية في تحقيق تخفيف الآلام بشكل مستدام. على الرغم من أن الوخز بالإبر قد أظهر وعدا سريريا في تخفيف الألم المرتبط ب KOA ، إلا أن آلياته الأساسية تتطلب مزيدا من التوضيح. يمكن أن يؤدي تطبيق الوخز بالإبر على نقاط الوخز بالوخز بالوخز بالحساسية إلى تعزيز فعالية العلاج بشكل ملحوظ. ينشئ هذا البروتوكول نموذجا للفئران ل KOA من خلال الحقن داخل المفصل لأحادي يودوأسيتات الصوديوم (MIA) ويصف بشكل منهجي بروتوكول الوخز بالإبر الذي يستهدف نقاط الوخز بالوخز بالوخز بالحساسية ، بما في ذلك طرق ضبط النفس ، وتوطين نقطة الوخز بالإبر ، ومعلمات الوخز بالإبر. تم تقييم الفعالية العلاجية بشكل شامل من خلال التقييمات السلوكية للألم ، والتحليل الحراري بالأشعة تحت الحمراء لمفصل الركبة ، والكشف عن السيتوكين الالتهابي في المصل ، والفحص النسيجي المرضي لأنسجة الغضروف. تشير النتائج إلى أن الوخز بالإبر في نقاط الوخز بالوخز بالوخز بالحساسية يخفف بشكل كبير من الأنماط الظاهرية للألم في الفئران النموذجية التي يسببها MIA عن طريق تثبيط إطلاق الوسطاء المؤيدين للالتهابات ، ومنع انتقال إشارات الألم ، وتحسين دوران الأوعية الدقيقة في الدم ، وتنظيم درجة حرارة المفصل المحلي ، وتأخير تنكس المفاصل.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتميز هشاشة العظام في الركبة (KOA) ، وهو اضطراب تنكسي سائد في المفاصل ، بالتهاب مزمن وأمراض المفصل بالكامل ، بما في ذلك تآكل الغضروف ، وإعادة تشكيل العظام تحت الغضروف ، وتطور النباتات العظمية ، والالتهاب الزليلي1،2. سريريا ، يعاني المرضى عادة من الألم وضعف العضلات وعدم استقرار المفاصل وتصلب الصباح العابر والقيود الوظيفية التدريجية. يفرض KOA عبئا عالميا كبيرا على المرض ، يؤثر على ما يقرب من 365 مليون فرد من ذوي الإعاقة الوظيفية ، حيث تتنبأ النماذج الوبائية بزيادة بنسبة 74.9٪ في أعداد الحالات من خطوط الأساس لعام 2020 بحلول منتصف القرن 2050. والجدير بالذكر أنه في حين أن الألم يعمل كحافز أساسي للعلاج4 ، إلا أنه يؤدي في نفس الوقت إلى تفاقم الإعاقة الوظيفية ، مما يعرض مجالات جودة الحياة المتعددة للخطر من خلال ضعف الحركة وانخفاض قدرة النشاط اليومي. وبالتالي ، تهدف الاستراتيجيات العلاجية إلى تخفيف الألم واستعادة الوظيفة وتأخير تطورالمرض 5. يشمل العلاج الدوائي الحالي من الخط الأول المسكنات والأدوية غير الستيرويدية المضادة للالتهابات والكوندرويتين وكبريتات الجلوكوزامين والكورتيكوستيرويدات داخل المفصل لتقليل الألموالالتهابات 6. ومع ذلك ، فإن الاستخدام المطول لهذه العوامل مقيد بمخاطر علاجية المنشأ الكبيرة ، وخاصة مضاعفات الجهاز الهضمي والأحداث الضائرة للقلب والأوعيةالدموية 7 ، مما يؤكد الحاجة الماسة لبدائل علاجية أكثر أمانا واستدامة.

تم استخدام الوخز بالإبر والوخز بالإبر الكهربائية على نطاق واسع في إدارة هشاشة العظام ، مما يدل على فعاليتها في تخفيف آلام الركبة وتحسين وظائفالمفاصل 8،9 ، مع اعتراف منظمة الصحة العالمية (WHO) بالتهاب المفاصل كشرط ذو أولوية لعلاج الوخز بالإبر. باعتبارها أهدافا تحفيزية ومؤثرات ، تظل نقاط الوخز بالإبر مركزية في أبحاث الوخز بالإبر ، حيث تخضع مظهرها المورفولوجي وأبعادها المكانية واستجابتها الوظيفية لتغييرات ديناميكية أثناء حالات المرض ، وهي ظاهرة تسمى "حساسية نقاط الوخز بالإبر"10،11. بشكل حاسم ، تعدل عملية الحساسية هذه منطقة المجال الاستقبالي والاستجابة العلاجية لنقاط الوخز ، وبالتالي تحديد فعالية العلاج. أظهرت الدراسات قبل السريرية السابقة12،13التحسس في Yanglingquan (GB34 ، الموجود في الاكتئاب الأمامي والسفلي لرأس الشظية ، بالقرب من الجانب الجانبي من الطرف الخلفي) و Zusanli (ST36 ، الموجود على الجانب الأمامي من الساق ، يتم انخفاض الحدود الجانبية للرباط الرضفي إلى نقطة المنتصف الأمامية ، 3/16 من مفصل الكاحل) في نماذج حيوانية KOA. كشف التصوير بالبقع بالليزر عن ارتفاع نضح الدم الموضعي في نقاط الوخز هذه ، في حين أن التصوير الضوئي الصوتي لم يظهر أي تغييرات هيكلية كبيرة في دوران الأوعية الدقيقة ، مما يشير إلى أن تغيرات الدورة الدموية الدقيقة أثناء تحسس نقطة الوخز في KOA وظيفية في المقام الأول وليست هيكلية. تتطلب التحقيقات في الآليات الأساسية استخدام نماذج الفئران. ومع ذلك ، فإن الامتثال الإجرائي الضعيف في يؤدي إلى استثمار كبير في الوقت. لمعالجة هذه القيود ، تم تطوير جهاز تثبيت الفئران ، مصمم خصيصا لتسهيل الوصول إلى نقاط الوخز بالإبر في الأطراف السفلية وتعزيز كفاءة إجراءات الوخز بالإبر الكهربائية.

يستخدم التصوير الحراري بالأشعة تحت الحمراء ، كطريقة تصوير وظيفية ، مستشعرات الأشعة تحت الحمراء غير الملامسة للكشف عن الإشعاع الحراري من مناطق الاهتمام المحددة مسبقا ، مع البيانات المعالجة بالكمبيوتر التي تولد مخططات حرارة زائفة للتحليل الكمي14،15. تتيح هذه التقنية المراقبة غير الغازية للتغيرات الديناميكية الدموية الجلدية عن طريق قياس التغيرات في درجات الحرارة المرتبطة بتقلبات تدفق الدم في الأنسجة الجلدية والأوعية الدموية والعضلية16 ، وبالتالي تسهيل التقييم البصري لتغيرات الدورة الدموية الدقيقة الوظيفية في نقاط الوخز بالإبر. في هذه الدراسة ، تم التحقق من صحة حساسية الألم في نقاط الوخز بالإبر GB34 و ST36 لأول مرة باستخدام مقياس التقليم الإلكتروني ، متبوعا بالتطبيق المشترك للتلوين الأخضر السريع للسافرانين O ، وتحليل IL-1β و TNF-α ، والتصوير الحراري بالأشعة تحت الحمراء ، والتقييمات السلوكية المرتبطة بالألم للتحقيق في التأثيرات المسكنة لتحفيز الوخز بالإبر الكهربائية في نقاط الوخز بالإبر GB34 و ST36 في الفئران المصابة بالتهاب المفاصل العظمي في الركبة التي يسببها أسيتات اليود أحادية الصوديوم (MIA).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على جميع البروتوكولات التجريبية والإشراف عليها بدقة من قبل لجنة أخلاقيات بجامعة بكين للطب الصيني (ID: bucm-2024091102-3197) ، وتم الالتزام الصارم بجميع الإجراءات بدليل المعاهد الوطنية للصحة (NIH) لرعاية واستخدام المختبر. تم استخدام ثلاثين من ذكور فأر Sprague-Dawley (نطاق الوزن: 210-250 جم) في هذه الدراسة. الكواشف والمعدات المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. ومجموعات التجارب

  1. قم بإيواء في منشأة مخصصة للحيوانات.
  2. حافظ على درجة الحرارة المحيطة عند 22 درجة مئوية ± 2 درجة مئوية ، والرطوبة النسبية عند 50٪ -60٪ ، ودورة الضوء / الظلام لمدة 12 ساعة. توفير الوصول المخصص إلى الغذاء والماء طوال فترة الدراسة.
  3. بعد فترة تأقلم مدتها 7 أيام ، قسم الفئران بشكل عشوائي إلى خمس مجموعات تجريبية (ن = 6 لكل مجموعة): مجموعة التحكم الطبيعي (Con) ، ومجموعة عملية الشام (Sham) ، ومجموعة النموذج (MIA) ، والمجموعة غير الثابتة (NF) ، ومجموعة الوخز بالإبر الكهربائية (EA).

2. إنشاء نموذج KOA المستحث عن أحادي يودوأسيتات

  1. ضع الفئران في غرفة الحث. تخدير باستخدام 4٪ إيزوفلوران في الأكسجين للتحريض ، ثم الحفاظ على أقل من 1.5٪ -2.0٪ إيزوفلوران يتم تسليمه عبر قناع الوجه (باتباع البروتوكولات المعتمدة مؤسسيا).
  2. إصلاح الفئران في الاتلقاء الجانبي الأيسر. قم بإزالة الشعر باستخدام كريم لطيف لإزالة الشعر على مفصل الركبة الأيمن والمناطق المحيطة به.
  3. تطهير مفصل الركبة اليمنى ثلاث مرات باستخدام بوفيدون اليود من الداخل إلى الخارج ، متبوعا بتكرار نفس الخطوات بنسبة 75٪ من الإيثانول.
  4. حافظ على الركبة اليمنى عند ثني 90 درجة. تحديد الحدود الرضفية السفلية والحدبة الظنبوبية. تقدم إبرة 22 جم (0.7 مم × 30 مم) 3-5 مم في مساحة المفصل عبر الحدود الجانبية أو الإنسية للرباط الرضفي بزاوية اقتراب جلدية 30 درجة -45 درجة. تأكد من وضع التركيب داخل المفصل وقم بنقع 50 ميكرولتر ببطء من محلول MIA (1 مجم / 50 ميكرولتر). للضوابط الوهمية ، قم بحقن كمية مكافئة من المحلول الملحي المعقم.
  5. قم بإجراء خمسة تلاعبات سلبية بنطاق الحركة لضمان تشتت موحد للدواء داخل المفصل. أعد إلى قفص منزله للتعافي بعد الجراحة.

3. إجراءات تثبيت الفئران

  1. قم بتأمين الجرذ في غلاف أسود مقيد. قم بإنشاء فتحة دائرية بقطر 1.5 سم في الربع الأيمن السفلي يتم من خلالها إخراج الطرف الخلفي الأيمن ، كما هو موضح في الشكل 1 أ.
  2. روابط كبلات نايلون مقترنة آمنة (5 مم × 300 مم) ، متباعدة بمقدار 6.8 سم ، من خلال إطار شبكي بلاستيكي. ضع التقييد العلوي في المنطقة الإبطية وقم بتثبيت التقييد السفلي في حزام الحوض ، كما هو موضح في الشكل 1 ب ، ج ، ه.
    ملاحظة: لا تخضع مجموعة NF للإجراءات الموضحة في الخطوة 3.2.

4. علاج الوخز بالإبر الكهربائية

  1. ابدأ التدخل بالوخز بالإبر الكهربائية في اليوم الرابع بعد عملية تثبيت متتالية لمدة ثلاثة أيام.
  2. قم بإجراء التحضير المعقم في مناطق الوخز بالإبر GB34 و ST36. راجع الشكل 1D للحصول على رسم خرائط تشريحية سطحية موحدة لهذه المواقع.
  3. أدخل إبر الوخز بالإبر المعقمة التي تستخدم لمرة واحدة (القطر: 0.25 مم ؛ الطول: 13 مم) في نقاط الوخز بالإبر. قم بتوصيل GB34 بالأنود و ST36 بالكاثود وفقا لبروتوكول التحفيز الكهربائي (الشكل 1G).
  4. بعد جلسة الوخز بالإبر الكهربائية لمدة 20 دقيقة ، قم بإلغاء تنشيط الجهاز. افصل الأقطاب الكهربائية عن مقابض الإبرة وقم بإزالة إبر الوخز بالإبر بعناية لإكمال الإجراء العلاجي. إدارة التدخلات يوميا على مدار أسبوعين متتاليين.
    ملاحظة: باستثناء مجموعة NF ، لم تتلق المجموعات الثلاث المتبقية أي علاج ولكن تم تجميدها لمدة 20 دقيقة يوميا بنفس طريقة مجموعة EA.

5. اختبار عتبة الانسحاب الميكانيكي (MWT)

  1. في بيئة هادئة عند درجة حرارة الغرفة 24 درجة مئوية ± درجة مئوية ، ضع الفئران على منصة اختبار للقدم ذات قاع شبكي من الفولاذ المقاوم للصدأ وجسم قفص بلاستيكي عضوي.
  2. قم بتحفيز المنطقة المركزية للمخلب الخلفي الأيمن أو نقاط الوخز بالإبر المحددة عموديا باستخدام مسبار قطر 0. مم لكاشف الألم الإلكتروني Von Frey. قم بزيادة شدة التحفيز تدريجيا وبشكل موحد حتى يتم ملاحظة استجابة تجنب سحب المخلب. سجل القيمة المعروضة في هذه اللحظة كحد سحب ميكانيكي.
    ملاحظة: يتم قياس كل فأر مرة واحدة على فترات مدتها 10 دقائق ، مع تحديد متوسط ثلاث تجارب متتالية على أنها النتيجة النهائية.

6. اختبار زمن انتقال سحب المخلب (PWL)

  1. تأقلم الفئران على المنصة الحرارية لمدة 5 دقائق قبل التقييم الرسمي.
  2. حافظ على درجة حرارة سطح المنصة عند 55.0 درجة مئوية ± 0. درجة مئوية أثناء الاختبار. ابدأ التوقيت عندما يلامس المخلب الخلفي الأيمن السطح الساخن وتوقف عن التوقيت عند ملاحظة رد الفعل الإيجابي الأول (لعق المخلب أو القفز أو الانسحاب السريع). حدد المدة المسجلة على أنها PWL.
    ملاحظة: قم بإجراء قياسات ثلاثية لكل فأر بفواصل زمنية مدتها 5 دقائق. احسب القيمة المتوسطة بصفتها PWL التمثيلية.

7. التصوير الحراري بالأشعة تحت الحمراء

ملاحظة: قم بإزالة الأطراف الخلفية في اليوم السابق للتصوير الحراري للتخلص من تأثير الشعر على قياس درجة الحرارة.

  1. حافظ على الظروف التجريبية عند درجة حرارة محيطة تبلغ 2 درجة مئوية مع رطوبة نسبية بنسبة 60٪ تحت إضاءة مخففة ومنتشرة بالصوت
  2. كبح جماح الجرذ في غلاف ضبط النفس الأسود مع تمديد الطرف الخلفي الأيمن من خلال ثقب دائري. ضعها على طاولة العمليات لمدة 10 دقائق.
    ملاحظة: إذا لم يكن الجرذ هادئا بعد 10 دقائق ، فقم بتمديد وقت الانتظار حتى يصبح هادئا قبل الانتقال إلى الخطوة التالية.
  3. احصل على صور حرارية جانبية وبطنية لمفصل الاختناق باستخدام جهاز التصوير الحراري على مسافة 5 سم ، تم تكوينه عند انبعاثية 0.97 ، ومعدل إطارات 9 هرتز ، ودقة IR 160 × 120 بكسل.
  4. قم بمعالجة البيانات الحرارية بالأشعة تحت الحمراء المكتسبة باستخدام برنامج تحليلي مخصص لتمكين القياس الكمي الدقيق للمعلمات الحرارية من خلال التحليل الطيفي المستند إلى الكمبيوتر.

8. مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA)

  1. تخدير الفئران عن طريق الحقن داخل الصفاق من محلول يوريثان 20٪ (1.2 جم / كغ). افتح تجويف البطن وأدخل إبرة أخذ عينات الدم في الشريان الأورطي البطني. أدخل نهاية الإبرة في وعاء جمع الدم المفرغ بدون مضاد للتخثر.
  2. اترك عينات الدم تتخثر لمدة 30 دقيقة. جهاز طرد مركزي عند 1006. × جم لمدة 15 دقيقة عند درجة مئوية. تحديد مستويات بروتين المصل باستخدام مقايسة BCA.
  3. قم بقياس تركيزات IL-1β و TNF-α باستخدام مجموعات ELISA التجارية وفقا لبروتوكولات الشركة المصنعة.

9. تلطيخ أخضر سريع سافرانين

ملاحظة: بعد جمع الدم الأبهري البطني ، قم باستئصال مفصل الخنق الأيمن باستخدام مقص جراحي ، مع الحفاظ على أجزاء مفصلية 1 مم من كل من عظم الفخذ القريب والظنبوب البعيد. قم بإزالة الأنسجة الرخوة حول المفصل بعناية.

  1. اغمر المفاصل الخانقة في 4٪ بارافورمالدهيد (PFA) لمدة 72 ساعة. اشطفها جيدا بمحلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) تحت تقليب لطيف لضمان إزالة PFA بالكامل.
  2. اغمر العينات في محلول إزالة الكلس من حمض الإيثيلين ديامين رباعي الأسيتيك (EDTA) عند درجة مئوية لمدة 4 أسابيع. استبدل محلول EDTA كل يومين. وخز الأنسجة برفق بإبرة ؛ يشير عدم وجود مقاومة إلى الانتهاء من إزالة الكلس. اشطف العينات منزوعة الكلس باستخدام PBS لمدة 4-6 ساعات لإزالة EDTA المتبقية.
  3. تجفيف العينات باستخدام مجفف تلقائي. قم بتضمينها في البارافين واتركها تتصلب في كتل صلبة. قسم الكتل المضمنة في البارافين باستخدام ميكروتوم للحصول على شرائح بسمك 4 ميكرومتر. انقل الشرائح إلى حمام مائي. بمجرد التوسيع ، استرجع الأقسام وضعها على شرائح زجاجية. يجف في غرفة يتم التحكم في درجة حرارتها لمدة 12 ساعة.
  4. ضع الشرائح في الزيلين (I) لمدة 10 دقائق والزيلين (II) لمدة 10 دقائق أخرى. انقع بالتتابع في الإيثانول اللامائي (I) والإيثانول اللامائي (II) و 90٪ إيثانول و 75٪ إيثانول لمدة 5 دقائق لكل منهما. اشطفه بالماء فائق النقاء.
  5. بقع الشرائح مع محلول Fast Green لمدة 2 دقيقة. اشطفها تحت ماء الصنبور حتى يبدو الغضروف شبيها بالزجاج وشفافا مع وجود ثغرات واضحة للنظر تحت الملاحظة المجهرية. تفريق في محلول حمض الأسيتيك 1٪ لمدة 10 ثوان ، مع المراقبة حتى تتم إزالة الصبغة الزرقاء المتبقية تماما. اشطفه على الفور بالماء فائق النقاء.
  6. تنزلق البقعة بمحلول Safranin O لمدة 15 دقيقة حتى تظهر مصفوفة الغضروف لونا أحمر ياقوتي مكثفا بينما تظهر أنسجة العظام باللون الوردي الباهت.
  7. انقع الشرائح بالتتابع في الإيثانول اللامائي (I) و (II) و (III) و (IV) لمدة 10 ثوان لكل منها. اغمر في الزيلين الطازج (I) والزيلين (II) لمدة 10 دقائق لكل منهما.
  8. قم بإزالة الشرائح وتطبيق الراتنج المحايد على سطح الشريحة ، وتجنب ملامسة الأنسجة بعناية. ضع حافة الغطاء على الشريحة وخفضها ببطء لمنع تكون الفقاعات. امسح الزيلين والراتنج الزائدين. ينزلق جاف بالهواء طوال الليل في درجة حرارة الغرفة. ضع الأقسام المجففة تحت المجهر البصري للتصوير.

10. التحليل الإحصائي

  1. استخدم برنامج SPSS للتحليل الإحصائي. عبر عن البيانات كمتوسط ± انحراف معياري.
  2. تحليل بيانات MWT و PWL باستخدام ANOVA المقاييس المتكررة. قارن مجموعات البيانات الأخرى عبر المجموعات باستخدام ANOVA أحادي الاتجاه.
  3. عبر عن النتائج كمتوسط ± الانحراف المعياري (SD). حدد الدلالة الإحصائية على أنها ص < 0.05.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لم يمت أي خلال التجربة بأكملها. أشارت نتائج مدة إجراء العملية وعدد انفصال الإبر لكل فأر في كل من فئتي NF و EA إلى أن مجموعة EA ، بعد التقييد باستخدام روابط كبلات النايلون ، شهدت انخفاضا في وقت التشغيل وانخفاض انفصال الإبر (P < 0.001; الشكل 1H ، I). كشف تحليل عتبات ألم الوخز بالإبر عن عدم وجود فروق ذات دلالة إحصائية في حساسية الألم الميكانيكي بين GB34 و ST36 والمناطق غير المكونة من الوخز بالإبر قبل النمذجة (P > 0.05). بعد أربعة عشر يوما من حقن MIA ، زا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

MIA ، وهو مثبط أيضي ، يعطل بشكل انتقائي تحلل السكر الهوائي الخلوي ، مما يؤدي إلى موت الخلايا المبرمج للخلايا الغضروفية17،18،19. يؤدي إعطاء MIA داخل المفصل إلى استنفاد الخلايا الغضروفية وتنكس الغضروف المفصلي اللاحق ، والذي يتميز بمخالفات مورفولوجية وتغيرات نسيجية مرضية تشبه إلى حد كبير أمراض التهاب المفاصل البشري20. وبالتالي ، يتم استخدامه على نطاق واسع في البحث عن آليات ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

أعلن جميع المؤلفين عن عدم وجود تضارب محتمل في المصالح.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا البحث من قبل البرنامج الوطني للبحث والتطوير الرئيسي في الصين (منحة 2023YFC3502700) وصناديق البحوث الأساسية للجامعات المركزية (2025-JYB-XJSJJ014)

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0-10ul ماصة قابلة للتعديل الحجمسيرفيسبيوIC012395160823
0-200ul ماصة قابلة للتعديل الحجمسيرفيسبيوIC021029160323
1.5 مل أنابيب إيبندورفسيرفيسبيوEP-150-م
طرف ماصة دقيقة 10ulسيرفيسبيوتي بي -10
حقنة 1 ملشنغهاي Zhiyu المعدات الطبية المحدودةZSQ-1
طرف ماصة دقيقة سعة 200 لترسيرفيسبيوتي بي -200
إبرة قياس 22   ؛كروس112416ج
2 مل أنابيب إيبندورفسيرفيسبيوEP-150-م
أنبوب دم أحمر 5 ملشنغهاي شينلي للتكنولوجيا الحيوية المحدودةسي إكس جي -5 آر
75٪ كحولشاندونغ أنجي جاوك تكنولوجيا التطهير المحدودة75-500 مل
شريحة ملتصقةسيتوتست188105
غسالة الألواح الأوتوماتيكيةريتوRT-3100C
إبرة جمع الدمجيانغشي رويبانغ المجموعة الصناعية المحدودةCXZ-07
أنسجة العظام سافرانين ومحلول تلطيخ أخضر صلبشنغهاي يوان يي التكنولوجيا الحيوية المحدودة32730 راند
غطاء زجاجيCitotest مختبر التصنيع المحدودة10212432 ج
مجففدياباثدوناتيلو
الميزان الإلكترونيميتلر توليدوME203E/02
فرن تجفيف الانفجار الكهروحراريةلابوتيريجل 70
آلة التضمينووهان جونجي للإلكترونيات المحدودةجي بي - ف5
صديقة للبيئة إزالة الشمع السائل الشفافسيرفيسبيوجي 1128-1 لتر
كاشف ملصق الإنزيمبيوتكعصر
ايثانولمركز أبحاث المركز100092683
حمض الإيثيلين ديامين رباعي الخليت ماكلين60-00-4
كرة قطنية خالية من الدهونCaoxian Hualu المواد الصحية المحدودةتزم كيو-500
جهاز طرد مركزي مبرد عالي السرعةتنينD3024R
مطحنة الأنسجة عالية السرعةسيرفيسبيوكيزو - III - إف
مقياس تسكين اللوح الساخنأساس كيوKW-CT-1
نظام التصويرنيكوننيكون DS-U3
جهاز تصوير حراري بالأشعة تحت الحمراءتستو إيه جيتستو 865
اليودوفورشاندونغ أنجي جاوك تكنولوجيا التطهير المحدودةDF-500
الأشعة تحت الحمراء سوفتتستو إيه جي
إيزوفلورانRWD علوم الحياة510-22-10
قفازات اللاتكسبكين روجينغ منتجات اللاتكس المحدودةRJJC-S
جهاز اختبار وخز مخلب ميكانيكيأساس كيوKW-RB
مياسيغما206-165-7
اللثة المحايدةمركز أبحاث المركز10004160
البيوتانول العاديمركز أبحاث المركز100052190
محلول ملحي عاديشيمنSLYS-500 مل
سائل البارافينماكلين8012-95-1
مثبت بارافورمالديهايد (محايد)سيرفيسبيوجي 1101
قطاعة علم الأمراضشنغهاي لايكا أداة المحدودةريزي 2016
الفئران IL-1 beta  مجموعة إليسا GER0002-96 طنسيرفيسبيوAC30253754
طقم الجرذ TNF-alpha ELISA GER0004-96tسيرفيسبيوAC40253711
فئران SDبكين سيبيفي التكنولوجيا الحيوية المحدودةSCXK (جينغ) 2024-0001 
آلة تخدير الصغيرة  يويان إيه بي إم
قناع جراحيكاسب[وجكز-1]
موزع الأنسجةتشجيانغ Kehua أداة المحدودة  دينار كويتي
نظام تلميع المياه عالي النقاءمياه أيكن ElAK-RO-C2
مجهر بصري مستقيمنيكوننيكون ECLIPSE E100
يوريتانماكلين2621-79-6
خلاط دوامةسيرفيسبيوإم في 100
الزيلينمركز أبحاث المركز10023418

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Giorgino, R., et al. Knee osteoarthritis: Epidemiology, pathogenesis, and mesenchymal stem cells: What else is new? An update. Int J Mol Sci. 24 (7), 6405(2023).
  2. Li, J., et al. MRI-based texture analysis of infrapatellar fat pad to predict knee osteoarthritis incidence. Radiology. 304 (3), 611-621 (2022).
  3. Yang, G., et al. Burden of knee osteoarthritis in 204 countries and territories, 1990-2019: Results from the global burden of disease study 2019. Arthritis Care Res (Hoboken). 75 (12), 2489-2500 (2023).
  4. Vincent, T. L. Peripheral pain mechanisms in osteoarthritis. Pain. 161 Suppl 1 (1), S138-S146 (2020).
  5. Kolasinski, S. L., et al. American College of Rheumatology/arthritis foundation guideline for the management of osteoarthritis of the hand, hip, and knee. Arthritis Care Res (Hoboken). 72 (2), 149-162 (2020).
  6. Kongtharvonskul, J., et al. Efficacy and safety of glucosamine, diacerein, and NSAIDs in osteoarthritis knee: A systematic review and network meta-analysis. Eur J Med Res. 20 (1), 24(2015).
  7. Brophy, R. H., Fillingham, Y. A. Aaos clinical practice guideline summary: Management of osteoarthritis of the knee (nonarthroplasty), third edition. J Am Acad Orthop Surg. 30 (9), e721-e729 (2022).
  8. Corbett, M. S., et al. Acupuncture and other physical treatments for the relief of pain due to osteoarthritis of the knee: Network meta-analysis. Osteoarthritis Cartilage. 21 (9), 1290-1298 (2013).
  9. Ahsin, S., Saleem, S., Bhatti, A. M., Iles, R. K., Aslam, M. Clinical and endocrinological changes after electroacupuncture treatment in patients with osteoarthritis of the knee. Pain. 147 (1-3), 60-66 (2009).
  10. Wang, X., et al. Knowledge mapping of acupoint sensitization and acupoint specificity: A bibliometric analysis. Front Neurosci. 17, 1292478(2023).
  11. Ding, N., et al. Mast cells are important regulator of acupoint sensitization via the secretion of tryptase, 5-hydroxytryptamine, and histamine. PLoS One. 13 (3), e0194022(2018).
  12. Ding, N., et al. Laser speckle imaging of sensitized acupoints. Evid Based Complement Alternat Med. , 7308767(2018).
  13. Ding, N., et al. Lack of association between acupoint sensitization and microcirculatory structural changes in a mouse model of knee osteoarthritis: A pilot study. J Biophotonics. 12 (6), e201800458(2019).
  14. Schiavon, G., et al. Infrared thermography for the evaluation of inflammatory and degenerative joint diseases: A systematic review. Cartilage. 13 (2_suppl), 1790s-1801s (2021).
  15. Tattersall, G. J. Infrared thermography: A non-invasive window into thermal physiology. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 202, 78-98 (2016).
  16. Zheng, S. Y., et al. Lumbar temperature change after acupuncture or moxibustion at weizhong (bl40) or chize (lu5) in healthy adults: A randomized controlled trial. J Integr Med. 23 (2), 145-151 (2025).
  17. Pitcher, T., Sousa-Valente, J., Malcangio, M. The monoiodoacetate model of osteoarthritis pain in the mouse. J Vis Exp. (111), e53746(2016).
  18. Bove, S. E., et al. Weight bearing as a measure of disease progression and efficacy of anti-inflammatory compounds in a model of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 11 (11), 821-830 (2003).
  19. Kwon, M., Nam, D., Kim, J. Pathological characteristics of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Tissue Eng Regen Med. 20 (3), 435-446 (2023).
  20. De Sousa Valente, J. The pharmacology of pain associated with the monoiodoacetate model of osteoarthritis. Front Pharmacol. 10, 974(2019).
  21. Neugebauer, V., Han, J. S., Adwanikar, H., Fu, Y., Ji, G. Techniques for assessing knee joint pain in arthritis. Mol Pain. 3, 8(2007).
  22. Wang, J., Jia, R., Zheng, X., Liu, R., Zong, W. Superoxide dismutase response and the underlying molecular mechanism induced by iodoacetic acid. Chemosphere. 234, 513-519 (2019).
  23. Hyllested, J. L., Veje, K., Ostergaard, K. Histochemical studies of the extracellular matrix of human articular cartilage--a review. Osteoarthritis Cartilage. 10 (5), 333-343 (2002).
  24. Pauli, C., et al. Comparison of cartilage histopathology assessment systems on human knee joints at all stages of osteoarthritis development. Osteoarthritis Cartilage. 20 (6), 476-485 (2012).
  25. Ohashi, Y., Uchida, K., Fukushima, K., Inoue, G., Takaso, M. Mechanisms of peripheral and central sensitization in osteoarthritis pain. Cureus. 15 (2), e35331(2023).
  26. Arendt-Nielsen, L., Skou, S. T., Nielsen, T. A., Petersen, K. K. Altered central sensitization and pain modulation in the CNS in chronic joint pain. Curr Osteoporos Rep. 13 (4), 225-234 (2015).
  27. Kim, Y., et al. The effects of intra-articular resiniferatoxin on monosodium iodoacetate-induced osteoarthritic pain in rats. Korean J Physiol Pharmacol. 20 (1), 129-136 (2016).
  28. Neugebauer, V., Schaible, H. G. Evidence for a central component in the sensitization of spinal neurons with joint input during development of acute arthritis in cat's knee. J Neurophysiol. 64 (1), 299-311 (1990).
  29. Zhang, M., et al. Acupoint sensitization is associated with increased excitability and hyperpolarization-activated current (i(h)) in c- but not aδ-type neurons. Neuroscience. 404, 499-509 (2019).
  30. Li, R., Liu, M., Lv, Y., Jing, F. Mast cells in acupoint sensitization: Mechanisms and research advances. Am J Chin Med. 53 (5), 1265-1284 (2025).
  31. Tu, J. F., et al. Thermal sensitization of acupoints in patients with knee osteoarthritis: A cross-sectional case-control study. J Integr Med. 23 (3), 289-296 (2025).
  32. Li, S., et al. Metabolic profiling of dialysate at sensitized acupoints in knee osteoarthritis patients: A study protocol. Medicine (Baltimore). 98 (45), e17843(2019).
  33. Yang, J., et al. Effects of acupuncture on serotonin, histamine, substance P, and tryptase levels at sensitized points in model rats with knee osteoarthritis. J Tradit Chin Med Sci. 11 (04), 500-512 (2024).
  34. Redfors, B., Shao, Y., Omerovic, E. Influence of anesthetic agent, depth of anesthesia and body temperature on cardiovascular functional parameters in the rat. Lab Anim. 48 (1), 6-14 (2014).
  35. Wu, J., et al. Engineering exosomes derived from tnf-α preconditioned IPFP-MSCs enhance both yield and therapeutic efficacy for osteoarthritis. J Nanobiotechnology. 22 (1), 555(2024).
  36. Liao, C. R., et al. Advanced oxidation protein products increase tnf-α and il-1β expression in chondrocytes via NADPH oxidase 4 and accelerate cartilage degeneration in osteoarthritis progression. Redox Biol. 28, 101306(2020).
  37. Kapoor, M., Martel-Pelletier, J., Lajeunesse, D., Pelletier, J. P., Fahmi, H. Role of pro-inflammatory cytokines in the pathophysiology of osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 7 (1), 33-42 (2011).
  38. De Marziani, L., et al. Symptoms and joint degeneration correlate with the temperature of osteoarthritic knees: An infrared thermography analysis. Int Orthop. 49 (1), 101-108 (2025).
  39. De Marziani, L., et al. Infrared thermography in symptomatic knee osteoarthritis: Joint temperature differs based on patient and pain characteristics. J Clin Med. 12 (6), 2319(2023).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة