يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

في الجسم الحي الفحص المجهري متحد البؤر في تشخيص وعلاج جفاف العين: التركيز على بروتوكولات التصوير والتفسير

1.4K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/69156

⸱

نوفمبر 11, 2025

 ,  , 

في هذه المقالة

ملخص

توضح هذه المقالة تشغيل وتأثير الفحص المجهري متحد البؤر في الجسم الحي في تشخيص وعلاج جفاف العين وتبحث في تطبيق ونتائج الفحص المجهري متحد البؤر في الجسم الحي لتوفير أساس للبحث المستقبلي.

الملخص

اكتسب الفحص المجهري متحد البؤر في الجسم الحي (IVCM) اهتماما كبيرا لطبيعته غير الغازية ودقته العالية. إنه يتيح المراقبة في الجسم الحي والقياس الكمي الموضوعي للعديد من هياكل سطح العين المرتبطة بمرض جفاف العين (DED) ، بما في ذلك القرنية والملتحمة وهامش الجفن والغدد الميبوميان والطفيليات مثل ديموديكس ، على المستوى الخلوي. تساعد هذه القدرة أطباء العيون في تحديد مسببات وأنواع فرعية محددة من DED ، وبالتالي تسهيل التشخيص الدقيق والعلاج المستهدف والتقييم التنبؤي. ومع ذلك، لا تزال البروتوكولات الموحدة لتشغيل IVCM والإبلاغ عنها غير موجودة. تعد الكفاءة في كل من معرفة طب العيون والتشغيل التقني أمرا ضروريا للاستخدام الفعال لهذا الجهاز وإنشاء تقارير عالية الجودة. توضح هذه المقالة بالتفصيل الخطوات الإجرائية والفروق الدقيقة في فحص IVCM لمرضى DED. هذا هو أول بروتوكول IVCM خطوة بخطوة من JoVE لدائرة التنمية الاقتصادية. يهدف إلى العمل كمرجع للأطباء ، ومساعدتهم على تجنب أوجه القصور التشغيلية والحصول باستمرار على صور عالية الجودة لسطح القرنية والعين لتوجيه الإدارة السريرية.

المقدمة

نظرا للقيود المفروضة على الموارد الطبية المحلية أو الأعباء المالية للمرضى، غالبا ما يركز التشخيص السريري لدائرة التنمية الاقتصادية على جانب أساسي فقط (على سبيل المثال، الملاحظة تحت مجهر المصباح الشقي، والشكوى من جفاف وحكة في العينين) أو حتى مؤشر واحد (على سبيل المثال، وقت تفكك الأغشية الدمعية الغازية، أو اختبار إفراز الدمع، أو الإصابة بالديموديكس). تطبيق IVCM غير متاح على نطاق واسع ، ناهيك عن توحيد البروتوكولات الخاصة به. ومع ذلك ، بالنسبة لمؤسسات طب العيون المجهزة ب IVCM ، يوصي المؤلف بأن يخضع المرضى لأول مرة لفحص مجهري شامل لتجنب الإغفال ، بما في ذلك القرنية والملتحمة وحافة الجفن. بالنسبة لحالات DED الملبسة أو للكشف عن Demodex ، فإن IVCM مناسب بشكل خاص للإجابة الصريحة.

يعرف مرض جفاف العين (DED) بأنه حالة مزمنة من سطح العين ناتجة عن تشوهات في جودة أو كمية السائل المسيل للدموع وانخفاض ثبات الفيلم المسيل للدموع. في ورشة عمل العين الجافة II (DEWS II) ، يتم تصنيف DED إلى خمسة أنواع: جفاف العين المائي (ADE) ، جفاف العين التبخيري (EDE) ، جفاف العين المختلط (MDE) ، الاستعداد لجفاف العين ، وحالة جفاف العين قبل السريرية1. لخص Ralene et al. الممارسة السريرية المهمة ل IVCM في أنواع مختلفة من جفاف العين ، بما في ذلك الأدبيات المنشورة من 2017 إلى 20222. أظهرت الأبحاث الحديثة أن الالتهاب يلعب دورا رئيسيا في التسبب في DED3،4. على وجه الخصوص ، قد تكون كثافة الخلايا المتغصنة (DCs) مؤشرا جيدا على DED المرتبطة بعملية مناعية جهازية5.

يستخدم IVCM تقنية التصوير المقطعي بالليزر متحد البؤر. يوفر دقة أفقية ورأسية تبلغ 1 ميكرومتر. تم توثيق المواصفات الفنية التفصيلية للجهاز في تقرير جيريمي وآخرون6. أثناء فحص سطح العين ، يتم تطبيق IVCM أولا على القرنية7 ، تليها الغدد الملتحمة والميبوميان8. حظي التهاب الجفن ديموديكس باهتمام سريري متزايد في السنوات الأخيرة9،10. يوفر IVCM صورا واضحة للقرنية والملتحمة وحافة الجفن. تسمح هذه الصور للأطباء بتقييم حالة المرض وتسهيل تصوير الخلايا الالتهابية والمناعية وتقديرها.

في تقييم دائرة التنمية الاقتصادية ، يشمل تركيزنا: الخلايا الظهارية للقرنية (CEC). الألياف العصبية تحت الظهارية (SNF); الخلايا الالتهابية / المناعية بين الظهارة وتحت الظهارة; خلايا كأس الملتحمة (CGCs) ؛ الخلايا الالتهابية / المناعية في الملتحمة. غدة ميبوميان acini وفتحات. Demodex folliculorum و Demodex brevis; والخلايا الالتهابية داخل الأنسجة المحيطة. ينبع هذا التركيز من الفيزيولوجيا المرضية: يؤدي الخلل الوظيفي في غدة ميبوميان إلى انخفاض إفراز أو تغيير تكوين الطبقة الدهنية للغشاء المسيل للدموع ، مما يؤدي إلى تسريع التبخر المسيل للدموع وتلف سطح العين. تساهم الإصابة بالديموديكس في حكة العين وعدم الراحة. تفرز CGCs الميوسين ، وهو مكون حاسم للغشاء المسيل للدموع. يمكن أن يتسبب نضوفها في نقص الميوسين. على العكس من ذلك ، فإن DED نفسها تلحق الضرر بهياكل سطح العين ، بما في ذلك CEC و SNF ، وبالتالي ترفع كثافة الخلايا الالتهابية / المناعية في أنسجة القرنية والملتحمة. بعد الحصول على الصور المثالية ، يمكننا استخدام الأدوات الكمية المدمجة في البرنامج بشكل فعال لحساب الخلايا المتعددة المذكورة (الشكل 1). ولكن بالنسبة للتنوع المورفولوجي ل SNF ، نحتاج إلى الاعتماد على البرامج التحليلية للمساعدة في القياس الكمي11،12.

لا غنى عن IVCM للتقييم في الوقت الفعلي لطبقات القرنية والألياف العصبية والخلايا الالتهابية / المناعية في أنسجة سطح العين. لتقييم CGCs ، يعمل علم الخلايا الانطباعي كطريقة بديلة. تستهدف هذه التقنية الملتحمة العصبية ، حيث تصل كثافة خلايا الكأس إلى ذروتها ، مما ينتج عنه قيم أعلى عادة من قياسات IVCM13،14. ومع ذلك ، تخضع النتائج لتقلبات التلوين وخبرة المشغل ، في حين أن البروتوكول الذي يستغرق وقتا طويلا يحد من التنفيذ السريري الروتيني. يمكن ملاحظة انسداد فتحة غدة ميبوميان مباشرة عن طريق الفحص المجهري للمصباح الشقي ، ومع ذلك لا يمكن لهذه الطريقة اكتشاف الانسدادات التي يسببها Demodex brevis ، والتي يحددها IVCM بدقة. لتشخيص الإصابة بالديموديكس ، يوفر إزالة الشعر بالرمش باستخدام الفحص المجهري الضوئي طريقة منخفضة التكلفة. على الرغم من بساطة هذا النهج من الناحية الفنية ، إلا أنه يحمل قيودا كبيرة: إزعاج المريض يقيد أخذ العينات المتعددة ، ويظل العث الموجود في عمق بصيلات الرموش أو فتحات غدة ميبوميان غير قابل للاكتشاف15. في المقابل ، يتيح IVCM فحصا شاملا لمواقع هامش الجفن المتعددة ، بما في ذلك بصيلات الرموش وفتحات غدة ميبوميان ، مع الحد الأدنى من إزعاج المريض. يحقق هذا النهج معدلات إيجابية تشخيصية أعلى بكثير من خلال التصور في الوقت الفعلي في الجسم الحي للطفيليات داخل موائلها الدقيقة16،17.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على إجراء الفحص من قبل لجنة الأخلاقيات في مستشفى هانكو آير للعيون ، وتم الحصول على موافقة مستنيرة من جميع المرضى.

ملاحظة: تشمل معايير الإدراج لاختيار المريض المرضى الذين يقدمون شكاوى من جفاف العين وحكة العين ، والأفراد الذين يسعون إلى إجراء فحوصات روتينية للعين. تشمل معايير الاستبعاد لاختيار المريض المرضى الذين يعانون من ثقب في القرنية أو ثقب وشيك في القرنية ، وأولئك الذين لديهم حساسية من التخدير العيني الموضعي ، والأفراد الصغار جدا (على سبيل المثال ، أقل من 3 سنوات) أو أكبر من أن يتعاونوا ، والمرضى الذين يعانون من شقوق جفنية ضيقة غير قادرة على استيعاب منظار الجفن ، والنساء الحوامل ، والأفراد غير القادرين على التعاون لأسباب أخرى. يمكن العثور على مخطط موجز لسير العمل في الشكل 2. وخطوات التشغيل التفصيلية هي كما يلي.

1. الفحص المسبق

  1. تحضير المواد: جهاز IVCM ، غطاء تلامس القرنية ، مخدر موضعي للعين ، عامل اقتران ، مسحات قطنية طبية ، منظار الجفن ، كرات الكحول ، خزان الكحول ، قطرات العين المضادة للالتهابات (الشكل 3).
  2. فهم المكونات الرئيسية لمعدات IVCM (وحدة التصوير المقطعي للشبكية في هايدلبرغ روستوك كورنيا (HRT-RCM)) ، ومقبض التركيز ، وكاميرا المراقبة ، وضوء توجيه النظرة ، ومسند الذقن ، ومسند الجبهة ، وزر التبديل بين العينين اليسرى / اليمنى ، والمقابض الدوارة لتحريك HRT-RCM ثلاثي المحاور ، وزر التقاط الصور ودواسة القدم ، والكمبيوتر المزود ببرنامج IVCM المخصص) ، وإعداد جهاز IVCM مع هلام التوصيل.
  3. إعداد الفاحص: ارتد قناعا وتطهير اليدين بالهلام الذي يحتوي على الكحول أو ارتد قفازات تستخدم لمرة واحدة.
  4. تطهير الجهاز: امسح مساند الجبهة والذقن للجهاز بمسحات كحولية.
  5. شرح الإجراء: اشرح بإيجاز للمريض أن الفحص غير مؤلم لتخفيف القلق.

2. أثناء الفحص

  1. تحقق من سجل مريض جديد وأنشئ باستخدام البرنامج المصاحب على الكمبيوتر.
  2. تطبيق مخدر موضعي: يتم تطبيق قطرتين منه في الجزء السفلي من القبو بفاصل 3 دقائق قبل العملية.
  3. قم بإعداد وحدة القرنية الروستوكية (RCM) لجهاز IVCM: قم بتغطية المنطقة الباعثة بالليزر في RCM بهلام الاقتران (تأكد من عدم وجود فقاعات هواء) (الشكل 4 والشكل 5) ، وفقط كمية كافية من عامل التوصيل (عادة قطرة أو قطرتين ، وليس كثيرا) يمكن أن تضمن التلامس الكامل مع غطاء تلامس القرنية ، وتحقيق واجهة التصفير المثالية في النهاية. قم بتوصيل غطاء تلامس القرنية القابل للتصرف.
  4. وضع الجهاز: اسحب RCM بالكامل. قم بتأمين مسند الجبهة أفقيا. اضبط كاميرا المراقبة على الجانب الزمني للهدف. أوجد موضع نقطة توقف الكاميرا ، والتي تكون عمودية على المحور البصري ل RCM.
  5. معايرة التركيز البؤري: قم بتدوير مقبض التركيز البؤري حتى يعرض البرنامج فتحة بيضاء مكبرة بقيمة جودة الصورة عند 100 بالضبط. إعادة تعيين قيمة العمق إلى صفر (تصفير).
  6. حدد وضع المسح الضوئي: افتراضي إلى وضع القسم ما لم ينص على خلاف ذلك. لمراقبة نشاط عث Demodex ، يمكن استخدام وضع التسلسل للتسجيل المستمر للصور الديناميكية.
  7. ضع المرضى: ضع ذقنهم بقوة على مسند الذقن. اضغط على جبهتهم على مسند الجبهة. اضبط طاولة الفحص ومسند الذقن على ارتفاع المريض.
  8. أدخل منظار الجفن: اطلب من المريض أن ينظر إلى الأسفل أثناء استخدام قطعة قطن لرفع الجفن العلوي لوضعه ، واطلب من المريض أن ينظر لأعلى أثناء سحب الجفن السفلي برفق باستخدام قطعة قطن لوضعه.
  9. التعليمات النهائية: أعد تأكيد وضع الرأس بشكل صحيح. ذكر المريض بالبقاء مسترخيا وتجنب الحركة. أبلغ عن أي إزعاج على الفور.
  10. بروتوكول فحص القرنية
    1. ابدأ بالمحاذاة العيانية: اضبط RCM بصريا لتقريب قمة القرنية (الشكل 6). قم بالتبديل إلى كاميرا مراقبة الجهاز للضبط الدقيق مع اقتراب RCM من القرنية. توجيه المريض لتدوير نظره عن القرنيات الآفية, توسيط الآفة تحت RCM. حافظ على ملامسة لطيفة لتجنب تلف القرنية.
    2. التقنية الرئيسية: غطاء تلامس القرنية له حجم مادي كبير ولكن منطقة بصرية صغيرة للغاية (تقتصر على المنطقة المركزية الباعثة لليزر). المتطلبات الحرجة: تحقيق اتصال عالي الدقة بين الغطاء والأنسجة المستهدفة ، لأن ضعف الالتصاق يتسبب في التصوير (على سبيل المثال ، الفقاعات أو تداخل الزيت أو فقدان الإشارة بالكامل).
      ملاحظة: للتصوير المستمر، اضغط على دواسة القدم للمسح الضوئي لفترات طويلة لالتقاط صور عمق متسلسلة وتجنب فقدان البيانات الهامة.
  11. تقييم القرنية متعدد الطبقات: المسح من الطبقات السطحية إلى العميقة بهذا الترتيب: CEC ، SNF ، الخلايا الالتهابية تحت الظهارية.
    1. ركز على الدوامة السفلية ، وهي المعلم الموصى به ، والمناطق العلوية / السفلية المجاورة18.
  12. فحص الملتحمة الأنفية
    1. إعادة تعيين المستوى البؤري إلى قيمة العمق الصفر. ضع جل التوصيل على الغطاء. اطلب من المريض التحديق مؤقتا أو سفلي. تقدم RCM برفق على سطح الملتحمة. المناورات المتزامنة: اضبط موضع RCM للحصول على مجال رؤية مثالي باليد اليمنى. قم بتدوير مقبض التركيز البؤري لتحديد خلايا الكأس في طبقة الملتحمة الخارجية باليد اليسرى.
  13. إزالة منظار الجفن: اطلب من المريض النظر إلى الأسفل ، واستخدام قطعة قطن لرفع الجفن العلوي لإزالته. ووجه المريض للنظر لأعلى ، واضغط برفق على الجفن السفلي بمسحة لإزالتها.
  14. إعادة ضبط الجهاز: حرر مسند الجبهة ورفعه. صفر مقبض التركيز البؤري. أعد وضع جل التوصيل على سطح RCM.
  15. تقييم غدة ميبوميان وبصيلات الرموش
    1. وضع المريض: توجيه النظرة إلى الأسفل. مناورة الفاحص: ارفع جلد الجفن العلوي برفق واضغط عليه إلى الداخل لمحاذاة هامش الجفن بالتوازي مع مستوى غطاء القرنية. حرك RCM أفقيا لعرض المزيد من الصور من نفس نوع الهيكل ؛ حرك RCM عموديا (من الأسفل إلى الأعلى) للتبديل من فحص فتحات غدة ميبوميان إلى الغدة acini ثم إلى جذور الرموش.
      ملاحظة: يمكن للمبتدئين أن يقوموا بإزالة الجفن بشكل أفضل عند فحص فتحات غدة ميبوميان. نقترح موقع الفحص في 1/3 الجفن العلوي المركزي لهذا الجزء.
    2. المعايير الكمية (البروتوكول المؤسسي): تقييم 8 بصيلات متتالية مع acini15 المجاورة ، وفحص 4-8 فتحات غدة متسلسلة. معايرة العمق: للحصول على صور واضحة للبصيلات ، ركز حتى يظهر عث Demodex حدودا حادة (إن وجدت). للحصول على صور واضحة من acinis ، تبلغ القيمة الموصى بها حوالي عمق 30-50 ميكرومتر. وبالنسبة للفتحات ، تبلغ حوالي 30 ميكرومتر (اضبط رؤية Demodex brevis إذا كانت موبوءة)19.

3. الفحص اللاحق

  1. رعاية ما بعد العملية: قم بنظافة اليدين وتطهير اليدين جيدا. امسح برفق بقايا جل التوصيل أو الدموع أو الحطام من سطح العين باستخدام قطعة قطن. تطبيق قطرات العين المضادة للمضادات الحيوية لمنع العدوى.
  2. تعليمات المريض: ينصح المريض بتجنب فرك العينين في يوم الفحص.
  3. إعداد التقارير: تحليل جميع الصور المكتسبة بشكل شامل وإنشاء تقرير تشخيصي. متطلبات إعداد التقارير: قم بتضمين صورة واحدة على الأقل لكل بنية الأنسجة، مع إضافة المزيد للحصول على نتائج غير طبيعية حسب الحاجة. يجب ترتيب جميع الصور المختارة حسب تسلسل الفحص وقيمة العمق ، متبوعة بأوصاف وقياسات دقيقة.
  4. تعليمات التخلص من النفايات: بالنسبة للمواد التي تستخدم لمرة واحدة (أغطية التلامس ، المسحات ، حاويات التخدير) ، يرجى رميها في سلة النفايات الطبية لمزيد من التخلص من النفايات المهنية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم الحصول على جميع الصور المجهرية IVCM بدقة 384 بكسل × 384 بكسل ، ومجال مراقبة 400 ميكرومتر × 400 ميكرومتر. عند "تصفير" هذا الفحص بشكل صحيح ، سيعرض ثلاث نتائج محتملة فقط في إطار الصورة: أنا) لا توجد صورة على الإطلاق (تجربة غير ناجحة): لم تقم المنطقة البصرية المركزية بأي اتصال بالأنسجة المستهدفة. ب) صورة جزئية فقط (الشكل 7) أو حالات غير طبيعية أخرى (الشكل 8) (تجربة غير ناجحة): أقامت المنطقة البصرية المركزية اتصالا غير مكتمل أو فض...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

أسفر بحث في أدبيات PubMed باستخدام الكلمات الرئيسية "في الجسم الحي للفحص المجهري متحد البؤر" و "مرض جفاف العين" (تم استرجاعه في يونيو 2025) عن > 300 منشور. والجدير بالذكر أن معدلات النشر السنوية قد استقرت عند حوالي 40 ورقة سنويا منذ عام 2021. أنتجت التطبيقات الأوسع نطاقا ل IVCM في اضطرابات سطح العين > 2,000 دراسة على مدار العقدين الماضيين (2004-2024). سريريا ، أحدث IVCM ثورة في التقييم الخلوي لأمراض سطح العين. تتيح هذه التقنية الكشف عن مظاهر الأمراض تحت الإكلينيكية ، مما يسهل ال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن المؤلفون عدم وجود تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

يشكر المؤلفون لينا جين في مستشفى هانكو آير للعيون ومين تشن في قسم طب العيون في مستشفى ووهان آسيا للقلب على المساعدة في بعض الصور ، وجميع المشاركين والموظفين العاملين في إجراء العملية. تم دعم هذا البحث بمنحة من مشاريع البحث العلمي من لجنة الصحة في بلدية ووهان (WX23A20).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
كرات القطن الماصةجيان تشي، الصينhttp://www.hnjianqi.comلصنع كرات الكحول، صغيرة
الجل المعتمد على الكحوللي كانغ، شنغهاي، الصين31107904جل مطهر اليدين بدون شطف، 500 مل
قطرات العين الكربومريةفيديسيتش، ألمانيا8187195جل العيون المعقم لعامل الاقتران، 10 جرام
غطاء تلامس القرنية (TomoCap)هايدلبرغ، ألمانيا18829الوسط البصري والقرنية المتلامسة بشكل معقم
منظار الجفنأسيكون، الصين6102Aلفتح العيون
برنامج مستكشف العيون في هايدلبرغهايدلبرغ، ألمانياالإصدار 1.5.2.0البرنامج المرفق مع جهاز IVCM
جهاز IVCMهايدلبرغ، ألمانياHRT-?,08398المعدات الرئيسية للامتحان
عواد القطن الطبيةإيساوند ميد، الصينwww.e-soundmed.comلتنظيف عيني المريض والمساعدة في فتح العيون، 10 سم
75٪ كحول طبيهوي تشانغ، الصينwww.huichang888.cnلصنع كرات الكحول، 75٪ وأكثر؛ 5٪ 500 مل
قطرات عين أوكسيبوبروكائين هيدروكلوريد بنسبة 0.4٪سانتن، اليابانhttp://www.santen.co.jpمخدر موضعي للعيون، 0.4٪ (0.5 مل: 2 ملغ)
قطرات العين توبراميسينتوبريكس، بلجيكا8453824قطرات العين المضادة للالتهابات، 0.3٪ (5 مل: 15 ملغ)

المراجع

  1. Craig, J. P., et al. TFOS DEWS II definition and classification report. Ocul Surf. 15 (3), 276-283 (2017).
  2. Ralene, S., Kenneth, Y., Yu-Chi, L., Louis, T. In vivo confocal microscopy in different types of dry eye and meibomian gland dysfunction. J Clin Med. 11, 2349(2022).
  3. Bron, A. J., et al. TFOS DEWS II pathophysiology report. Ocul Surf. 15, 438-510 (2017).
  4. Kheirkhah, A., Rahimi, D. R., Cruzat, A. Corneal epithelial immune dendritic cell alterations in subtypes of dry eye disease: a pilot in vivo confocal microscopic study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 56, 7179-7185 (2015).
  5. Jodi, H., Harrison, D., Anat, G. Can in vivo confocal microscopy differentiate between subtypes of dry eye disease? A review. Clin Exp Ophthalmol. 49 (4), 373-387 (2021).
  6. Jeremy, C. B. C., et al. In vivo corneal confocal microscopy: imaging analysis, biological insights and future directions. Commun Biol. 6 (1), 652(2023).
  7. Lemp, M. A., Dilly, P. N., Boyde, A. Tandem-scanning (confocal) microscopy of the full-thickness cornea. Cornea. 4 (4), 205-209 (1985).
  8. Kobayashi, A., Yoshita, T., Sugiyama, K. In vivo findings of the bulbar/palpebral conjunctiva and presumed meibomian glands by laser scanning confocal microscopy. Cornea. 24 (8), 985-988 (2005).
  9. Yiran, H., et al. Demodex folliculorum infestation in meibomian gland dysfunction-related dry eye patients. Front Med (Lausanne). 24 (9), 833778(2022).
  10. Orla, M., Veronica, O. D., Aoife, L. M. Ocular Demodex folliculorum: prevalence and associated symptoms in an Irish population. Int Ophthalmol. 39 (2), 405-417 (2019).
  11. Al-Aqaba, M. A., et al. Corneal nerves in health and disease. Prog Retin Eye Res. 73, 100762(2019).
  12. Liu, Y. C., Lin, M. T. Y., Mehta, J. S. Analysis of corneal nerve plexus in corneal confocal microscopy images. Neural Regen Res. 16, 690-691 (2021).
  13. Zhixin, W., Xuguang, S. Progress in the study of conjunctival goblet cell. Int Rev Ophthalmol. 4 (3), 1673-5803 (2005).
  14. Bilian, K., et al. Quantitative study of goblet cells in human conjunctiva. Chin J Anat. 3 (10), 1001-1633 (2001).
  15. Yan, T., Dai, Q., Yu, G. In vivo confocal microscopy: a standard operating procedure for the detection of Demodex mites at the eyelid margin. J Vis Exp. (221), e68534(2025).
  16. Matthieu, R., et al. In vivo confocal microscopy as a novel and reliable tool for the diagnosis of Demodex eyelid infestation. Br J Ophthalmol. 99 (3), 336-341 (2015).
  17. Jalbert, I., Rejab, S. Increased numbers of Demodex in contact lens wearers. Optom Vis Sci. 92 (6), 671-678 (2015).
  18. Patel, D. V., McGhee, C. N. J. Mapping of the normal human corneal sub-basal nerve plexus by in vivo laser scanning confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46, 4485-4488 (2005).
  19. Nanyu, Z., et al. Lid margin score is the strongest predictor of meibomian area loss. Cornea. 41 (6), 699-708 (2022).
  20. Cañadas, P., Alberquilla, G. V. M., Hernández, V. J. L., Teus, M. A. Update on corneal confocal microscopy imaging. Diagnostics. 13, 46(2023).
  21. Xu, J., et al. In vivo confocal microscopic evaluation of corneal dendritic cell density and subbasal nerve parameters in dry eye patients: a systematic review and meta-analysis. Front Med. 8, 578233(2021).
  22. Baikai, M., et al. Quantification of increased corneal subbasal nerve tortuosity in dry eye disease and its correlation with clinical parameters. Transl Vis Sci Technol. 10, 26(2021).
  23. Michael, J. D. On the in vivo assessment of goblet cells of the human bulbar conjunctiva by confocal microscopy: a review. Cont Lens Anterior Eye. 43 (4), 315-321 (2020).
  24. Allgeier, S., et al. A novel approach to analyze the progression of measured corneal sub-basal nerve fiber length in continuously expanding mosaic images. Curr Eye Res. 42, 549-556 (2017).
  25. Matuszewska-Iwanicka, A., et al. Mosaic vs single image analysis with confocal microscopy of the corneal nerve plexus for diagnosis of early diabetic peripheral neuropathy. Ophthalmol Ther. 11 (6), 2211-2223 (2022).
  26. Kryszan, K., et al. Artificial-intelligence-enhanced analysis of in vivo confocal microscopy in corneal diseases: a review. Diagnostics. 14, 694(2024).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

مرض جفاف العينتصوير سطح العينتقييم القرنيةتصوير الغدد الميبوميةكثافة الخلايا الكأسيةألياف الأعصاب تحت القاعديةالكشف عن ديموديكسالتشخيص على المستوى الخلوي