مقالة منهجية

بروتوكول فعال من حيث التكلفة وطفيف التوغل لتسجيل تخطيط كهربية الدماغ المزمن متعدد المواقع في الفئران التي تتحرك بحرية

DOI:

10.3791/69314

⸱

أكتوبر 10, 2025

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Cellular Biology and Anatomy, Medical College of Georgia at Augusta University, 2National Institute of Biotechnology, 3Department of Neuroscience and Regenerative Medicine, Medical College of Georgia at Augusta University, 4Department of Neurology, Medical College of Georgia at Augusta University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تطوير هذا البروتوكول لإنشاء نظام موثوق به ويمكن الوصول إليه بسهولة لتسجيل مخطط كهربية الدماغ للقوارض التي تتحرك بحرية.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعمل تخطيط ككهربية الدماغ (EEG) كأداة أساسية لتتبع النشاط الكهربائي في الدماغ وأصبح ذا أهمية متزايدة في كل من التشخيص السريري والأبحاث الحيوانية قبل السريرية. بينما يوفر مخطط كهربية الدماغ للقوارض منصة قوية لنمذجة الاضطرابات العصبية البشرية ، فإن التسجيلات طويلة المدى غالبا ما تكون محدودة بسبب التكلفة العالية أو الغزو أو التعقيد التقني للأنظمة الحالية. هنا ، نقدم بروتوكولا موثوقا به ويمكن الوصول إليه وقابل للتطبيق اقتصاديا والحد الأدنى من التدخل للحصول على مخطط كهربية الدماغ القشري المزمن متعدد المواقع في الفئران التي تتحرك بحرية. تتضمن هذه التقنية تصنيع أسلاك بلاتينية وإيريديوم بأقطاب كهربائية لولبية متصلة بواجهة من نوع ناقل تسلسلي عالمي (USB) ، والتي يتم تثبيتها فوق الجافية باستخدام مسامير عظمية وتثبيتها بأسمنت لاصق وأسنان. يسمح النظام بالتقاط إشارة مستقرة على مدى عدة أشهر ، كما هو موضح في الفئران البرية C57BL / 6J مع معدل بقاء 85٪ بعد الجراحة (ن = 20). تم أخذ عينات من مخطط كهربية الدماغ عند 1,000 هرتز وتصفيتها بين 1 هرتز و 500 هرتز باستخدام إعداد مكبر للصوت التفاضلي. للتحقق من صحة النظام ، تم إعطاء بنتيلينيترازول (20 مجم / كجم) للحث على نشاط يشبه النوبات ، مما أدى إلى زيادة ملحوظة في الإفرازات الداخلية - من 2-5 في خط الأساس إلى 20-51 حدثا بعد الحقن - مصحوبة بزيادة سعة الإشارة. تم تحديد التصريفات بناء على مورفولوجيا شكل الموجة وخصائص الإشارة المطابقة للمعايير الفيزيولوجية الكهربية المعترف بها. الإعداد متوافق مع تتبع الفيديو السلوكي وخطوط أنابيب التحليل مفتوحة المصدر ، ويدعم التكامل مع الدراسات الدوائية أو الوراثية أو التعديل العصبي. توفر هذه الطريقة منصة مستقرة وقابلة للتكيف للتحقيق في ديناميكيات شبكة الدماغ في نماذج القوارض ، مع تطبيقات في أبحاث الصرع وما بعدها.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوفر تخطيط كهربية الدماغ (EEG) مقياسا مباشرا للنشاط الكهربائي للدماغ ويستخدم على نطاق واسع في تشخيص الصرع1. في السنوات الأخيرة ، تم تكييف تقنيات مخطط كهربية الدماغ بشكل متزايد لاستخدامها في نماذج الصغيرة لدراسة الاضطرابات العصبية ، وعلم وظائف الأعضاء في النوم ، وديناميكيات شبكة الدماغ2،3،4. مع ظهور نماذج الفئران المعدلة وراثيا والتقدم الكبير في تقنيات التسجيل ، أصبح مخطط كهربية الدماغ للقوارض أداة أساسية للأبحاث قبل السريرية ، حيث يقدم رؤى قيمة حول الآليات الانتقالية ذات الصلة بصحة الدماغالبشري 5،6.

يعد التقاط النشاط العصبي ومعالجته في وقت واحد أمرا بالغ الأهمية لدراسة ديناميكيات الدماغ على مستوى الدوائر الكلية والدقيقة. يتيح هذا النهج المزدوج المراقبة في الوقت الفعلي للشبكات العصبية المشاركة في بدء النوبات وتطورها. ينشأ الصرع ، الذي يتميز بنوبات متكررة وغالبا ما لا يمكن التنبؤ بها ، من اضطرابات في دوائر الدماغ المعقدة4. على الرغم من البحث المكثف ، لا تزال الآليات التي تحكم انتشار النوبات وظهورها غير مفهومة تماما ، ويرجع ذلك جزئيا إلى الاستخدام المحدود للتقنيات التي تسمح بتسجيلات متزامنة عبر مناطق دماغية متعددة7.

كشف تسجيل مخطط كهربية الدماغ من النماذج الحيوانية التي تلخص الاضطرابات العصبية البشرية عن طفرات بين العينات ، وإفرازات السنبلة والموجات ، وأنماط ظهور النوبات التي تعكس عن كثب تلك التي شوهدت في المرضى من البشر8،9 ، وبالتالي تعزيز فهمنا للتغيرات الفيزيولوجية الكهربية التي تحدث في الدماغ البشري. وبالمثل ، فإن تشوهات مخطط كهربية الدماغ المكتشفة في نماذج مرض الزهايمر واضطراب طيف التوحد والفصام توفر رؤى مهمة حول النشاط التذبذبي العصبي المتعطل وتسليط الضوء على الأهداف العلاجيةالمحتملة 10.

على الرغم من الاختلافات في تشريح الدماغ وحجمه ، تظهر مخطط كهربية الدماغ الحيواني للفأر والبشر أوجه تشابه مذهلة2،11. كلاهما يظهر نطاقات تردد تذبذبية مميزة - دلتا ، ثيتا ، ألفا ، بيتا ، وجاما - مع أطياف الطاقة التي تتبع عموما توزيع 1 / f2،11. يتم الحفاظ على التحولات بين حالات الدماغ ، مثل ظهور نشاط دلتا أثناء نوم حركة العين غير السريعة (NREM) أو زيادة تزامن جاما أثناء مهام الانتباه والذاكرة ، عبر الأنواع. علاوة على ذلك ، يظهر نشاط الصرع ، بما في ذلك التذبذبات عالية التردد (HFOs) والأنماط الجمجية ، ملامح زمنية والطيفية قابلة للمقارنة في كل من الفئران والبشر7.

تجعل السمات المحفوظة للقوارض ومخطط كهربية الدماغ البشري نماذج الفئران متعدية للغاية لدراسة اضطرابات الدماغ. يسمح مخطط كهربية الدماغ للماوس بتسجيلات غازية وعالية الدقة تتيح تحليلا مفصلا على مستوى الدائرة12. كما أنه يدعم اختبار استراتيجيات التعديل العصبي ، بما في ذلك العوامل الدوائية ، والتحكم البصري الوراثي ، والتحفيز المغلقالحلقة 13،14 ، والتي يمكن أن تقترن بأدوات سلوكية وجزيئية لاستجواب الخلل الوظيفي العصبي بدقة.

ومع ذلك ، يجب توخي الحذر عند استقراء النتائج. يمكن أن يؤثر الحجم الأصغر والبنية القشرية الأبسط لدماغ الفأر على انتشار الإشارة ، وقد تكون الإمكانات المرتبطة بالأحداث المعرفية (ERPs) أقل بروزا مقارنة بالبشر15. يعد ضمان الاتساق في وضع القطب الكهربائي ، ومرجع الإشارة ، وخطوط الأنابيب التحليلية أمرا بالغ الأهمية لتحسين قابلية التكاثر والصلاحية عبر المختبرات16.

يمثل تسجيل مخطط كهربية الدماغ في الصغيرة فرصا وتحديات. عادة ما يتم الحصول على مخطط كهربية الدماغ للفأر باستخدام أقطاب كهربائية مزروعة بشكل مزمن موضوعة إما فوق الجافية على سطح الجمجمة أو كأقطاب كهربائية عميقة يتم إدخالها في الهياكل تحت القشرية17،18. الأقطاب الكهربائية السطحية ، مثل الأقطاب الكهربائية اللولبية أو السلكية الموضوعة على الأم الجافية ، طفيفة التوغل ومناسبة للتسجيلات الطولية طويلة الأجل. تقع هذه الأقطاب الكهربائية أسفل العظم ، مما يوفر حاجزا عالي المقاومة للتسجيل. وفقا لذلك ، يمكن اعتبار الأقطاب الكهربائية الجافية في القوارض أكثر قابلية للمقارنة مع التصوير الكهربائي (eCoG) من مخطط كهربية الدماغ. على النقيض من ذلك ، توفر أقطاب العمق دقة مكانية أعلى وتمكن من الوصول إلى مناطق الدماغ العميقة مثل الحصين أو المهاد أو اللوزة ، مما يسهل الدراسات حول شبكات النوبات والاقتران التذبذبي عبر توزيع المناطق2،11.

تدعم أنظمة مخطط كهربية الدماغ الحديثة للقوارض التسجيل متعدد القنوات بدقة زمنية عالية وغالبا ما تقترن بمراقبة الفيديو للارتباط السلوكي18. بالإضافة إلى ذلك ، تسمح أنظمة مخطط كهربية الدماغ اللاسلكية بالاكتساب غير المقيد في الوقت الفعلي للحيوانات التي تتصرف بحرية ، مما يقلل من قيود الحركة والإجهاد19. على الرغم من أن هذه التحديثات أصبحت متاحة تجاريا مع مرور الوقت ، إلا أنها إما باهظة الثمن أو غازية للغاية لدراسة نموذج القوارض على مدى فترة طويلة من الزمن.

لمعالجة هذه الفجوة ، نقدم بروتوكولا متعدد الاستخدامات وفعال من حيث التكلفة للحصول على مخطط كهربية الدماغ متعدد المواقع في نماذج القوارض ، وهو مناسب للدراسات طويلة الأجل بأقل قدر من التوغل. يعد نهج تسجيل مخطط كهربية الدماغ هذا مناسبا بشكل خاص للدراسات التي تتطلب تقييما عالي الدقة للنشاط القشري في الفئران في ظل ظروف تجريبية خاضعة للرقابة. من الأفضل تطبيقه عندما (أنا) يمكن للحيوان تحمل التخدير القصير أثناء زرع القطب الكهربائي والتعافي تماما ، (ب) يتم ضمان وضع الرأس المستقر أو الحد الأدنى من الحركة أثناء التسجيلات ، (ثالثا) المراقبة طويلة الأمد أو المتكررة للنشاط العصبي مطلوبة ، و (رابعا) يمكن أن يستوعب التصميم التجريبي تسجيلا واحدا أو محدودا متعدد اعتمادا على سعة مكبر الصوت. يجب على الباحثين النظر في هذه القيود لتحديد ما إذا كانت هذه الطريقة تتماشى مع أهدافهم التجريبية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

حصل هذا البروتوكول على موافقة لجنة رعاية واستخدام بجامعة أوغوستا. تم اتباع دليل المعاهد الوطنية للصحة لرعاية واستخدام المختبر في كل خطوة من خطوات التجربة. تم تنفيذ جميع التدابير الممكنة لتقليل عدد المستخدمة في هذه الدراسة. الفئران المستخدمة في هذه الدراسة هي الفئران البرية البالغة من العمر شهرين من النوع C57Bl6J. يتم تضمين الوقت اللازم لتنفيذ كل خطوة في الخطوات المعنية.

1. تحضير دبابيس التوصيل بأقطاب كهربائية (5 دقائق)

  1. استخدم دبابيس توصيل أنثى USB من النوع B مع 5 دبابيس للحام بسلك بلاتين-إيريديوم مقاس 0.003 بوصة. قم بإزالة الطبقة من السلك قبل لحامها بالدبوس. الدبوس الرابع من بين المسامير الخمسة هو الدبوس الأرضي. لا تستخدمه للاتصال بالأقطاب الكهربائية (الشكل 1 أ). استخدم المسامير الأربعة الأخرى لتوصيل الأقطاب الكهربائية.
  2. قم بثني المسامير بحوالي 45 درجة ولف الأسلاك حول كل دبوس مرتين للتأكد من بقاء الأسلاك متصلة بشكل صحيح وعدم تنفجر (الشكل 1 أ).
  3. أضف القليل من معجون تدفق الصنوبري اللحام إلى كل دبوس لتنظيف سطح الدبوس حتى يمكن لحامه بشكل فعال.
  4. أضف قطعة صغيرة من سلك اللحام إلى كل دبوس ، واستخدم مكواة لحام لإذابة سلك اللحام ، وقم بتوصيل الدبوس بشكل دائم بسلك البلاتين والإيريديوم (الشكل 1B-D).
    ملاحظة: استخدم ملقطا بزاوية 45 درجة لتثبيت السلك واستخدم ملقطا آخر للالتفاف حول الدبوس. قم بإجراء الإجراء بأكمله تحت مجهر المجال الساطع. اقطع السلك المتبقي بعد التغليف واللحام ، واحتفظ بالطرف الآخر متصلا بالأقطاب الكهربائية.

2. زرع أقطاب كهربائية (30 دقيقة)

  1. قم بتخدير الفأر ب 0.5 مل من الصوف القطني المنقوع بالأيزوفلوران في غرفة مغلقة وقم بتركيب الماوس على مرحلة التجسيم. تأكد من عدم تناول الماوس بجرعات منخفضة قبل تركيبه على المسرح عن طريق الضغط على الساق الخلفية والانتظار حتى يتوقف عن الاستجابة للقرصة. ابدأ تشغيل جهاز التنفس الصناعي الأيزوفلوران / الأكسجين بسرعة على الأنف بمعدل 1.5٪ حجم/حجم.
  2. حقن الفأر بالكاربروفين (5 مجم / كجم) لتقليل الاستجابات الالتهابية والألم ، وديكساميثازون (0.1 مجم / كجم عضلي) لتقليل الالتهاب وتورم الدماغ. استخدم مرهم العين للحفاظ على رطوبة العينين ، لأن التعرض الطويل للتخدير قد يجفف العينين ويتلف بها.
  3. استخدم مزيل الشعر أو حلق الجزء العلوي من الجمجمة لكشف الجلد. اتبع تقنية التعقيم لتنظيف منطقة الشق باستخدام ضمادات الإيثانول واليود بنسبة 70٪.
  4. قم بعمل شق واحد واضح في منتصف الرأس باستخدام مشرط. اقطع حول الشق لكشف موقع زرع القطب. تأكد من عدم تعرض العضلات (الشكل 2 أ).
  5. يغسل بمحلول 0.9٪ كلوريد الصوديوم وجفف السطح. افرك السطح بمسحات قطنية مبللة أو مغموسة في بيروكسيد الهيدروجين. يمكن إزالة النسيج الضام الثابت على العظم باستخدام مشرط. انتظر 1 دقيقة على الأقل بعد التنظيف.
  6. اغسلها بمحلول 0.9٪ كلوريد الصوديوم وجفف السطح قبل البدء في الحفر.
  7. استخدم مثقاب الأسنان لجعل سطح الجمجمة خشنا لتعزيز التصاق الأكريليك.
  8. قياس وتوجيه مواقع زرع القطب (AP: +2 ، -4 ، ML: ±1.5) 20 (الشكل 2 ب).
  9. قم بحفر السطح باستخدام مثاقب 1.4 مم وضع 4 براغي عظمية (1.5 مم) في الحفرة باستخدام مفكات براغي دقيقة. تأكد من أن الحفر لا يحدث ثقوبا في العظام. يجب ألا تحدث البراغي ثقبا في الدماغ ، بل يجب أن تلمس السطح (الشكل 2 ج).
  10. اغسلها بمحلول 0.9٪ كلوريد الصوديوم إذا كان هناك أي دم وانتظر حتى يجف. استخدم مكنسة كهربائية إذا لزم الأمر.
  11. لف الأسلاك المتصلة بموصل USB حول كل من البراغي 2-4 مرات واقطع الأسلاك المتبقية (الشكل 2D).
  12. ضع قطرة صغيرة من الغراء الفائق (Loctite) في الجزء العلوي من كل برغي واتركه يجف لجعل الاتصال قويا. تأكد من وضع الموصل في منتصف الجمجمة وعدم لمس الجمجمة أو أي من الأقطاب الكهربائية (الشكل 2E).
  13. استخدم cyanoacrylate لبناء غطاء الرأس ببطء قليلا في كل مرة. تجنب وضع طبقة سميكة جدا ، لأنها يمكن أن تسخن العظم. قم بتوصيل برغي كبير على السطح المسطح للموصل ، والذي لا يلامس العظام أو ، باستخدام أسمنت الأسنان للمساعدة في توصيل كابل USB (الشكل 2F).
  14. اترك غطاء الرأس يجف لمدة 2 دقيقة على الأقل قبل فك الماوس من المرحلة التجسيمية. راقب الماوس لمدة 24 ساعة على وسادة حرارية.
  15. عالج الفأر بالكاربروفين لمدة 7 أيام بجرعة 5 مجم / كجم كل 12 ساعة. سيكون الماوس جاهزا لتسجيل مخطط كهربية الدماغ بعد أسبوعين من الانتظار لتعزيز نمو العظام في واجهة الأكريليك.
    ملاحظة: حاول إبقاء الموصل قريبا من الجمجمة قدر الإمكان. تأكد من أنه لا يلمس الجمجمة أو مسامير العظام. تأكد من أن الأسلاك غير متصلة ببعضها البعض في أي من الطرفين. كن حذرا بشأن دخول Cyanoacrylate إلى موصل USB والعينين.

3. تسجيل مخطط كهربية الدماغ (65 دقيقة)

  1. سجل مخطط كهربية الدماغ لكل فأر لمدة ساعة واحدة و 30 دقيقة قبل علاج Pentylenetetrazol (PTZ) و 30 دقيقة بعد علاج 20 مجم / كجم PTZ.
  2. قم بتوصيل كابل USB بالموصل. قم بتوصيل كبل USB بمضخم تيار متردد تفاضلي (AC) باستخدام مشابك التمساح مع ضبط الكسب على 10 كيلو بايت وتصفيتها بين 0.1 هرتز و 250 هرتز21. عينة إشارة مخطط كهربية الدماغ عند 1000 هرتز (الشكل 3).
  3. سجل المخرجات من مكبر الصوت في وقت واحد على الكمبيوتر واعرضها على راسم الذبذبات للمراقبة في الوقت الفعلي. قم بتوصيل مخرجات مكبر الصوت بجهاز USB للحصول على البيانات وتكييف الإشارة (على سبيل المثال ، NIDAQ) متصل بالكمبيوتر (الشكل 3).
  4. استخدم كود Python لتسجيل إشارة مخطط كهربية الدماغ (متوفرة في https://github.com/schrodi159/blakelabeeg). يقوم الرمز بتصفية الإشارة رقميا عند 0.1 هرتز و 250 هرتز.
    ملاحظة: يؤدي تسجيل مخطط كهربية الدماغ في غرفة دون تداخل كهربائي إلى تحسين جودة البيانات والتسجيل.

4. تفسير البيانات

  1. استخدم كود Python لتصور البيانات (متوفرة في https://github.com/schrodi159/blakelabeeg). حدد التصريفات البينية من كل تسجيل (الشكل 4 أ).
    ملاحظة: تم النظر في التفريغ بين الموجة إذا كان شكل الموجة ضعف خط الأساس ومدته أقل من 200 مللي ثانية22 ويتبع ما لا يقل عن 4 من المعايير الخمسة التالية - موجة ثنائية أو ثلاثية الأطوار ذات ذروة مدببة ، ومدة مختلفة عن الخلفية ، وعدم تناسق شكل الموجة ، وتعطل نشاط الخلفية بسبب الوجود ، وتليها موجة بطيئةبعد السير 8 ، 20،22.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم زرع أقطاب كهربائية في 20 فأرا على خلفية C57Bl6J ، بما في ذلك 5 فئران C57Bl6J من النوع البري ، مع معدل بقاء بعد الجراحة بنسبة 85٪ تم الحفاظ عليه لمدة تصل إلى 6 أشهر بعد الجراحة (الشكل 4 ب). بعد 6 أشهر ، بدأت أغطية الرأس في الانفصال ، وتم القتل الرحيم لجميع الفئران في عمر 8 أشهر. كان متوسط وزن مجموعة أغطية الرأس ، بما في ذلك الموصل والبراغي ، 1.13 جم (ن = 20). استعادت الفئران وعيها في غضون 30 دقيقة بعد الجراحة واستأنفت الحركة الطبيعية والتحديق في غضون 12 سا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

في هذه الدراسة ، قمنا بتطوير والتحقق من صحة بروتوكول قوي وفعال من حيث التكلفة وطفيف التوغل لتسجيل مخطط كهربية الدماغ المزمن متعدد المواقع في الفئران التي تتحرك بحرية. يوضح الزرع الناجح للأقطاب الكهربائية اللولبية وأقطاب البلاتين والإيريديوم الملحومة خصيصا بموصل USB ، جنبا إلى جنب مع معدل البقاء الملحوظ وجودة التسجيل ، جدوى وموثوقية التقنية في التسجيلات المزمنة. والجدير بالذكر أن هذا البروتوكول يسمح بجمع بيانات الفيزيولوجيا الكهربية بدقة دون تدخل جراحي مكثف أو أجهزة باهظة الثمن ، مما يجعل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

DTB هو مستشار مدفوع الأجر لمؤسسة ألفريد مان. ليس لدى المؤلفين مصالح مالية متنافسة أو تضارب مصالح آخر وفقا لهذا العمل.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتم دعم DTB من قبل R01EY036089 منح NEI ، ومنحة NIA RF1AG060754. تم دعم XF بمنح من صندوق أبحاث مرض الزهايمر جيمس فيكل ، EY028158 ، و EY032488.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
سلك بلاتين إيريديوم 0.003"أنظمة AM777000
مسامير عظمية 1.5 ممتخصصات أنترين المصغرة000-120X1/16 SL BIND MS SST
مضخم AC أنظمة AM
الكاربروفينكوفيتروس11695-6935-1
قاعدة أكريليك من Coldpac Designureشركة ييتس موتلويدhttps://www.yates-motloid.com/collections/coldpac/denture-base
مثقاب الأسنان 1.4 ممفولفير GXلا يوجد
ديكساميثازونVEDCO50989-437-12
مزلق العينأوبتيكس كيرhttps://theoptixcare.com/
بيروكسيد الهيدروجينسيغما ألدريتش7722-84-1
NIDAQ USB الآلات الوطنيةhttps://www.ni.com/en/shop/data-acquisition/entry-level-usb-daq.htmlجمع البيانات وتكييف الإشارة USB 
Pentylenetetrazolشركة كايمن للكيماويات18682
معجون تدفق الراتنج اللحامي  ويلرhttps://www.weller-tools.com/us/en/consumer/products/soldering-accessories/
سلك اللحام 0.32"راديو شاكلا يوجد
السوبر غراءلوكتايتلا يوجد
مقابس USB من النوع B الأنثويةبائع إدارة الكمX00292ABU9

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Smith, S. J. EEG in the diagnosis, classification, and management of patients with epilepsy. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 76 (Suppl 2), ii2-ii7 (2005).
  2. Buzsaki, G., Draguhn, A. Neuronal oscillations in cortical networks. Science. 304 (5679), 1926-1929 (2004).
  3. Fisher, R. S., et al. ILAE official report: A practical clinical definition of epilepsy. Epilepsia. 55 (4), 475-482 (2014).
  4. Fisher, R. S., Scharfman, H. E., deCurtis, M. How can we identify ictal and interictal abnormal activity. Adv Exp Med Biol. 813, 3-23 (2014).
  5. Vyazovskiy, V. V., Harris, K. D. Sleep and the single neuron: The role of global slow oscillations in individual cell rest. Nat Rev Neurosci. 14 (6), 443-451 (2013).
  6. Wykes, R. C., et al. Optogenetic and potassium channel gene therapy in a rodent model of focal neocortical epilepsy. Sci Transl Med. 4 (161), 161ra152(2012).
  7. Lundt, A., et al. EEG radiotelemetry in small laboratory rodents: A powerful state-of-the-art approach in neuropsychiatric, neurodegenerative, and epilepsy research. Neural Plast. 2016, 8213878(2016).
  8. Kyle, J. J., Sharma, S., Tiarks, G., Rodriguez, S., Bassuk, A. G. Fast detection and quantification of interictal spikes and seizures in a rodent model of epilepsy using an automated algorithm. Bio Protoc. 13 (6), e4632(2023).
  9. Petrucci, A. N., et al. Post-ictal generalized EEG suppression is reduced by enhancing dorsal raphe serotonergic neurotransmission. Neuroscience. 453, 206-221 (2021).
  10. Colgin, L. L. Oscillations and hippocampal-prefrontal synchrony. Curr Opin Neurobiol. 21 (3), 467-474 (2011).
  11. Amat-Foraster, M., et al. Temporally dissociable effects of ketamine on neuronal discharge and gamma oscillations in rat thalamo-cortical networks. Neuropharmacology. 137, 13-23 (2018).
  12. Sun, G., et al. Closed-loop stimulation using a multiregion brain-machine interface has analgesic effects in rodents. Sci Transl Med. 14 (651), eabm5868(2022).
  13. Kang, W., et al. Closed-loop direct control of seizure focus in a rodent model of temporal lobe epilepsy via localized electric fields applied sequentially. Nat Commun. 13 (1), 7805(2022).
  14. Armstrong, C., Krook-Magnuson, E., Oijala, M., Soltesz, I. Closed-loop optogenetic intervention in mice. Nat Protoc. 8 (8), 1475-1493 (2013).
  15. Maheshwari, A. Rodent EEG: Expanding the spectrum of analysis. Epilepsy Curr. 20 (3), 149-153 (2020).
  16. Ahuis, T. P., et al. Evaluation of variation in preclinical electroencephalographic spectral power across multiple laboratories and experiments: An EQIPD study. PLoS One. 19 (10), e0309521(2024).
  17. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG radiotelemetry: Epidural and deep intracerebral stereotaxic EEG electrode placement. J Vis Exp. (112), e54216(2016).
  18. Kadam, S. D., et al. Methodological standards and interpretation of video-electroencephalography in adult control rodents: A TASK1-WG1 report of the AES/ILAE Translational Task Force of the ILAE. Epilepsia. 58 (Suppl 4), 10-27 (2017).
  19. Zayachkivsky, A., Lehmkuhle, M. J., Dudek, F. E. Long-term continuous EEG monitoring in small rodent models of human disease using the Epoch wireless transmitter system. J Vis Exp. (101), e52554(2015).
  20. Kent, B. A., Strittmatter, S. M., Nygaard, H. B. Sleep and EEG power spectral analysis in three transgenic mouse models of Alzheimer's disease APP/PS1, 3xTgAD, and Tg2576. J Alzheimers Dis. 64 (4), 1325-1336 (2018).
  21. Luttjohann, A., Schoffelen, J. M., van Luijtelaar, G. Peri-ictal network dynamics of spike-wave discharges: Phase and spectral characteristics. Exp Neurol. 239, 235-247 (2013).
  22. Oblak, A. L., et al. Comprehensive evaluation of the 5XFAD mouse model for preclinical testing applications: A MODEL-AD study. Front Aging Neurosci. 13, 713726(2021).
  23. Osanai, H., Kitamura, T., Yamamoto, J. Hybrid microdrive system with recoverable opto-silicon probe and tetrode for dual-site high density recording in freely moving mice. J Vis Exp. (150), e60028(2019).
  24. Schroder, T., et al. The DREAM implant: A lightweight, modular, and cost-effective implant system for chronic electrophysiology in head-fixed and freely behaving mice. J Vis Exp. (209), e66867(2024).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة