تم إجراء جميع الإجراءات المتعلقة بالحيوانات وفقا للإرشادات المؤسسية وتمت الموافقة عليها من لجنة أخلاقيات الحيوان في جامعة نانجينغ للطب الصيني (رقم الموافقة الأخلاقية 202108A006). تم جمع جميع النفايات الناتجة أثناء عمليات زراعة الخلايا والتلوين في حاويات محكمة الإغلاق وأكياس مخاطر بيولوجية والتخلص منها من قبل خدمة إدارة نفايات طبية مرخصة.
نموذج الحيوانات والتدخلات العلاجية
لتقليل التباين بين الأفراد، تم تقسيم 40 فأرا عشوائيا إلى خمس مجموعات (عدد = 8 لكل مجموعة) وخضعوا للتدخلات التالية: (1) مجموعة التحكم: تلقت إعطاء 0.2 مل من محلول ملحي داخل المعدة لكل فأر; (2) مجموعة النموذج: تلقى حقن يومية تحت الجلد من D-جالاكتوز (250 ملغ/كغ)، وأعطيت بجرعة 0.2 مل من محلول 25 ملغ/مل لكل فأر؛ (3) مجموعة CCP منخفضة الجرعة: تلقوا حقن D-galactoze مع إعطاء CCP داخل المعدة بجرعة 50 ملغ/كغ (0.2 مل من محلول 5 ملغ/مل لكل فأر); (4) مجموعة CCP عالية الجرعة: تلقوا حقن D-galactose مع إعطاء CCP داخل المعدة بجرعة 100 ملغ/كغ (0.2 مل من محلول 10 ملغ/مل لكل فأر); (5) مجموعة فيتامين E: تلقى حقن D-galactose مع إعطاء داخل المعدة لفيتامين E بجرعة 100 ملغ/كجم (0.2 مل من محلول 10 ملغ/مل لكل فأر). بعد 8 أسابيع من العلاج، تم قتل الفئران رحيما، وجمعت عينات من المصل والبول والأنسجة الكلوية لإجراء تحليلات لاحقة.
تحليل وظائف الكلى
تم تقييم وظيفة الكلى باستخدام مجموعات الفحص التجارية لقياس الكرياتينين، حمض اليوريك، والبروتين البولي وفقا لتعليمات الشركات المصنعة. تم قياس قيم الامتصاص عند 505 نانومتر للكرياتينين، و510 نانومتر لحمض اليوريك، و585 نانومتر للبروتين البولي باستخدام قارئ ميكرولوح متعدد الوظائف.
صبغة مقطع الأنسجة
تم تقسيم الأنسجة الكلوية المدمجة في البارافين بسماكة 4 ميكرومتر. تم إزالة البارافين من القطع، وحضنها بالهيماتوكسيلين لمدة 5 دقائق، وشطفها بالماء الجاري، وتمييزها باستخدام كحول حمضي بنسبة 1٪ لمدة 5 ثوان، ثم شطفت مرة أخرى. بعد غسيل محلول ملحي (PBS) لمدة دقيقة واحدة، تم تلوين الأجزاء بالإيوزين لمدة 3 دقائق، ثم جففت وتم تركيبها. في تلوين ماسون الثلاثي الألوان، تم إزالة البارافينين من القطع وصبغها بالهيماتوكسيلين كما هو موضح أعلاه، تلاها صبغة بونسو S لمدة 5 دقائق وأزرق أنيلين لمدة 5 دقائق. ثم تم تجفيف الأقسام وتركيبها.
اختبار بقاء الخلايا
تم زرع خلايا HK-2 في صفائح بئر 12 بئر بحجم 1 × 10⁵ خلية لكل بئر. بعد التعرض لمدة 24 ساعة لدي-جالاكتوز ومضادات كورديسيبس، أضيف محلول CCK-8 بنسبة 10٪ إلى كل بئر14. بعد الحضانة عند 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة، تم تسجيل الامتصاص عند 450 نانومتر باستخدام قارئ الميكرولوبلايت. يتم توفير توثيق مراقبة الجودة لأنظمة كورديسيبس بوليسكاريدات ومصادقة STR لخلايا HK-2 في الملف التكميلي 1.
تفاعل بوليميراز الكمية العكسي بالنسخ العكسي
بعد 24 ساعة من زراعة الخلايا، تمت إزالة وسط الزراعة، وتم استخراج إجمالي الحمض النووي الريبي باستخدام كاشف الاستخلاص. تم تحديد تركيز الحمض النووي الريبي باستخدام مطياف الميكرولوح الفوتوفوتوميتر، وتم التحقق من سلامة الحمض النووي الريبي بواسطة الرحلان الكهربائي الهلامي للأجاروز بنسبة 2٪. تمت إزالة الحمض النووي الجيني، وتم تصنيع cDNA عن طريق النسخ العكسي. تسلسلات البرايمر مدرجة في جدول المواد.
قياس مستويات ROS داخل الخلايا
تم زرع خلايا HK-2 في صفائح بئر 12 بئر بحجم 1 × 10⁵ خلية لكل بئر. عند الوصول إلى التقاء بنسبة 60-70٪، خضعت الخلايا للمعالجة المبدئية ب D-galactose لمدة 12 ساعة. بعد 24 ساعة من التعرض للدواء، تم التخلص من الوسط وغسل الخلايا مرة واحدة ب PBS. تم اكتشاف ROS داخل الخلية عن طريق الحضانة باستخدام مسبار فلوري حساس ل ROS عند 37 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة، وتم التقاط صور فلورية عند أطوال موجية للإثارة/الانبعاث 488/525 نانومتر15.
البقعة الغربية
تم تحلل البروتينات الخلوية باستخدام مخزن RIPA وتصفيتها بالطرد المركزي عند 13,000 × جرام لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية. تم تفكيك البروتينات عن طريق الغليان لمدة 10 دقائق، وخضعت كميات متساوية من البروتين (20 ميكروغرام لكل عينة) للفصل الكهربائي ونقلها إلى أغشية PVDF. بعد الانسداد لمدة ساعة واحدة، تم حضن الأغشية طوال الليل مع الأجسام المضادة الأولية. تبع غسلات PBST اللاحقة حضانة باستخدام الأجسام المضادة الثانوية المتوافقة مع HRP، وتم الكشف باستخدام ركيزة16 من التولأ الكيميائي المعزز (ECL). تفاصيل الأجسام المضادة ومعرفات المواد مدرجة في جدول المواد.
صبغة شيخوخة SA-β جالون
تم طلاء خلايا HK-2 في صفائح مكونة من 12 بئر بكثافة 1 × 10⁵ خلية لكل بئر. عندما وصلت الخلايا إلى 60-70٪ من التقاء الجسم، تم معالجتها مسبقا ب D-جالاكتوز لمدة 12 ساعة. تم إجراء تلوين SA-β-gal وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة، ولوحظت الخلايا الملونة باستخدام المجهر البصري17.
قياس جهد غشاء الميتوكوندريا
تم تقييم جهد الغشاء الميتوكوندري باستخدام مسبار الفلورسنت JC-1 وفقا لتعليمات المورد. تم اكتشاف مونومرات JC-1 عند أطوال موجية للإثارة/الانبعاث 490/530 نانومتر، بينما تم اكتشاف تجمعات JC-1 عند 525/590 نانومتر. تم التقاط الصور عندما تمت ملاحظة إشارات فلورية حمراء أو خضراء واضحة.
التحليل الإحصائي
تم عرض البيانات كمخططات شريطية أو نقطية وتم تحليلها باستخدام البرنامج المشار إليه. تم قياس شدة نطاق النقاط الغربية باستخدام ImageJ. تم تحليل البيانات من خلال تحليل التباين (ANOVA) مع اختبارات t لاحقة للمقارنات بين المجموعات. تم تعريف الدلالة الإحصائية بأنها قيمة P < 0.05. تشير الرموز إلى المقارنات مع مجموعة التحكم (*) أو مجموعة D-gal (#) (*P < 0.05، **P < 0.01، ***P < 0.001).