مقالة منهجية

رقعة الملف الكهرومغناطيسي المرنة - تعزيز شفاء جروح الجلد الكامل في الفئران

DOI:

10.3791/69605

⸱

فبراير 27, 2026

 ,  ,  , 
1Wuxi School of Medicine, Jiangnan University, 2Engineering Research Center of the Ministry of Education for Wound Repair Technology, Jiangnan University, Affiliated Hospital of Jiangnan University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوضح هذا البروتوكول طريقة لإنشاء جروح دائرية كاملة السماكة في الفئران وتعزيز شفاءها باستخدام رقعة نحاسية مرنة ترسل مجالا كهرومغناطيسيا منبضا.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تشكل الجروح الجلدية المزمنة والواسعة تحديات سريرية كبيرة بسبب تأخر الشفاء وارتفاع خطر العدوى. العلاج بالمجال الكهرومغناطيسي النابض (PEMF) هو نهج غير جراحي يمكن أن يعزز إصلاح الأنسجة. تصف هذه الدراسة بروتوكول نموذج ملفوف الجرذان القابل للتكرار باستخدام رقعة لفائف نحاسية مطبوعة مرنة متصلة بوحدة تحكم PCB مخصصة لتوفير تحفيز PEMF موضعي للجروح الظهرية كاملة السماكة. كان الجرح المقابل يعمل كوسيلة تحكم غير معالجة. تم تقييم تقدم الشفاء من خلال التصوير الفوتوغرافي المنتظم وقياسات منطقة الجرح. يوفر البروتوكول نظاما عمليا وقابلا للتكيف لتقييم وتحسين العلاجات القائمة على PEMF في الجسم الحي عبر مختلف الحالات، مع التركيز على التطبيق الموضعي وتعديل المعلمات في الطب التجديدي. استند اختيار المعلمات إلى فحص CCK-8 المتعامد لانتشار الأرومات الليفية اختبر 0.25-1.3 مللي ترن، 10-40 هرتز، و30-90 دقيقة/يوم؛ حدد تحليل التأثير الرئيسي مستويات 1.3 mT، 30 هرتز، و60 دقيقة/يوم كأفضل مستويات، والتي تم اعتمادها للاختبار الحي .

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تعد الجروح الجلدية المزمنة (مثل قرحة السكري) مصدر قلق صحي متزايد، وغالبا ما تؤدي إلى ضعف الشفاء أو العدوى أو البتر1. العلاجات التقليدية قد تكون طويلة الأمد ومكلفة، مما يدفع الاهتمام بالعلاجات المساعدة التي يمكن أن تسرع إصلاح الأنسجة2. العلاج بالمجال الكهرومغناطيسي هو أحد هذه الأساليب، وهو غير جراحي وأظهر تأثيرات مؤيدة للشفاء في كل من البيئات ما قبل السريرية والسريرية2،3،4،5. الحقول الكهرومغناطيسية النبضية (PEMFs) في نطاق التردد المنخفض جدا (~1-100 هرتز) يمكن أن تحفز العمليات الخلوية المهمة للإصلاح، بما في ذلك تكوين الأوعية الدموية وإطلاق عامل النمو 2,6,7.

على سبيل المثال، أدى التعرض لجسم الكهرومغناطيسية المبكرة إلى تسريع إغلاق الجروح بشكل كبير لدى القوارض المصابة بالسكري والسليمة من خلال زيادة عامل نمو الأرومات الليفية-2 (FGF-2) وزيادة تكوين الأوعيةالدموية 8. وبالمثل، في نموذج الشفاء الضعيف (مثل الفئران المصابة بالسكري)، أظهر علاج PEMF تحسين معدلات الشفاء وزيادة قوة شد الأنسجة المكونةحديثا. سريريا، تم استكشاف علاج PEMF لدى المرضى الذين يعانون من جروح مزمنة. أفادت تجربة عشوائية تجريبية على مرضى قرحة القدم المصابين بالسكري عن تحسن تدفق الدم الدقيق واتجاه نحو إغلاق الجرح بشكل أسرع تحت التعرض لفيروس PEMF10. بشكل عام، أظهر PEMF أيضا تأثيرات مفيدة في أنواع أخرى من الجروح، على سبيل المثال، لوحظ تحسن في الشفاء في جروح الحروق التي عولجت بالمجالات المغناطيسية النبضية11. تؤكد هذه الدراسات مجتمعة على إمكانية التحفيز الكهرومغناطيسي كعلاج مكمل للعناية بالجروح 8,9,10,11.

مقارنة بالمحفزات السلكية التقليدية، يلغي التشغيل المغناطيسي الحاجة إلى موصلات عبر الجلد ويقلل من خطر حدوث مضاعفات متعلقة بالأجهزة. حققت الأنظمة المغناطيسية اللاسلكية تحفيزا خاصا بالأنسجة في سياقات أخرى، على سبيل المثال، يمكن لقناة توجيه العصب الموصل توليد تيارات دقيقة مستحثة تحت مجال مغناطيسي متبادل، مع تحديد سعة التيار بشكل غير مباشر بواسطة معلمات المجال12. يمكن للاستراتيجيات المغناطيسية أيضا دعم التوعية الدموية — وهو عنق زجاجة حاسم في شفاء الجلد — لأن الحقول المغناطيسية الثابتة أو الديناميكية، بمفردها أو مع مواد حيوية تستجيب مغناطيسيا، ثبت أنها تعدل سلوك البطانة والإشارات الوعائية13. هذه السوابق دفعتنا لتطوير نهج قابل للارتداء: رقعة لفائف قابلة للإزالة ومتماسكة تركز PEMF في سرير الجرح مع الحفاظ على عدم التدخل والبرمجة الخارجية12,13. في البروتوكول التالي، نفصل خطوات تنفيذ علاج PEMF هذا في نموذج جرح كامل السماكة للجرذان، بما في ذلك تطبيق الجهاز، ونظام التحفيز، وتقييم النتائج.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على جميع إجراءات الحيوانات من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوانات المؤسسية (IACUC) في جامعة جيانغنان (JN. No2025-0630S0360-915[408]). طبقنا البروتوكول باستخدام ذكور فئران SD (عمرهم 6-8 أسابيع، حوالي 200-250 جرام). قبل التجارب، كانت الفئران تعيش بشكل فردي مع وصول مجاني إلى الطعام والماء، مع الحفاظ عليها على دورة ضوئية وظلامية مدتها 12 ساعة، وفقا لدليل العناية واستخدام الحيوانات المختبرية.

1. خلق جروح استئصالية كاملة السماكة

  1. جهز المجال الحيواني والجراحي.
    1. تحفز التخدير باستخدام 3-4٪ من الإيزوفلوران في غرفة التحفيز. بعد فقدان رد الفعل التصحيحي، حافظ على التخدير عند ~2٪ عبر مخروط الأنف.
    2. ضع الفأر في وضعية الاستلقاء على سطح جراحي معقم. احلق منطقة الصدر الظهري (من لوحي الكتف إلى منتصف منطقة أسفل الظهر، بما في ذلك الجانبين) باستخدام مقص كهربائي.
    3. ملاحظة: قم بإزالة الفراء من منطقة لا تقل عن 5 × 5 سم على كل جانب من الخط الأوسط للسماح بالوصول الجراحي الواضح ووضع اللفائف.
    4. قم بتعقيم المنطقة المحلوقة بنسبة 70٪ إيثانول ثم محلول يودوفور. كرر فرك الإيثانول/اليود ثلاث مرات، وانتهى باليود.
    5. غط ساحة الجراحة بشاش معقم، تاركا فقط مواقع الجروح المخططة مكشوفة.
  2. اصنع جروحا استئصالية ثنائية السماكة كاملة.
    1. حدد دائرتين بقطر 2 سم على الجوانب الظهرية باستخدام علامة جراحية معقمة، مع وضع واحدة على كل جانب من الخط الأوسط خلف الأطراف الأمامية.
      ملاحظة: تأكد من أن كلا الدائرتين متساويتان في الحجم وموضوعهما بشكل متماثل لتمكين المقارنة داخل الحيوانات14،15.
    2. قم بإزالة المنطقة الدائرية المحددة باستخدام مقص معقم أو مشرط. إزالة البشرة والأدمة والبانيكولوس كارنوزوس لإنشاء جرح كامل السماكة (~3.14 سم²).
    3. حقق التعقيم الدموي بتطبيق ضغط لطيف باستخدام شاش معقم. أنشئ جرح مماثل بطول 2 سم على الجانب المقابل باستخدام نفس التقنية.
      ملاحظة: يجب أن يتكون سرير الجرح من لفافة مكشوفة أو عضلة بدون وجود أدمة متبقية.
    4. أعط مسكنات بعد العملية فورا بعد تكوين الجرح (مثل ليدوكائين 4 ملغ/كغ تحت الجلد).
  3. تعيين مجموعات تجريبية.
    1. استخدم تصميما داخل الموضوع حيث يتلقى أحد الجروح علاج PEMF ويعمل الجرح المقابل كضابط.
    2. أضف مجموعة منفصلة تستقبل جهازا وهاما (ملف غير مزود بالطاقة مطابقة) للتحكم في وجود الجهاز.
    3. حافظ على ضوابط غير معالجة أو معالجة بشكل زائف لتمييز التأثيرات الكهرومغناطيسية عن تأثيرات التعامل أو الضماد.

2. تطبيق جهاز PEMF

  1. قم بتضميد الجرح ووضع الملف في مكانه.
    1. ضع شاشا رقيق معقم أو غشاء نصف نفاذ مباشرة فوق الجرح المخصص لعلاج PEMF. تأكد من التغطية الكاملة لسرير الجرح.
    2. ضع رقعة الملف النحاسي المرنة فوق الجرح المضمد (الشكل 1). قم بتمركز الملف بحيث يكون الجرح تحت منتصف الملف.
      ملاحظة: قد يمتد قطر الملف (~5 سم) إلى ما بعد حواف الجرح؛ تأكد من بقاء الجرح ضمن منطقة المجال المغناطيسي الفعال.
  2. ثبت الملف.
    1. ثبت الملف باستخدام شريط لاصق طبي ملفوف برفق حول الجذع. حافظ على اتصال وثيق بين الملف والضمادة دون الضغط على الصدر.
    2. ضع شريط ألمنيوم مرن فوق الملف لتثبيت الوضعية إذا لزم الأمر. تجنب تقييد التنفس أو تدفق الدم الموضعي.
    3. توجيه الأسلاك الرصاصية بعيدا عن الجسم (مثلا نحو الرأس) لمنع التشابك.
  3. قم بإعطاء تحفيز PEMF.
    1. وصل الملف بوحدة تحكم PCB (الشكل 2) وفعل الجهاز. اضبط معايير التحفيز على تردد 30 هرتز وشدة المجال المغناطيسي ~1.3 mT لمدة 60 دقيقة في اليوم.
    2. قم بجلسات التحفيز في نفس الوقت يوميا (±ساعة واحدة) للحفاظ على فترات منتظمة.
      ملاحظة: تم اختيار هذه المعايير بناء على فحص CCK-8 بشكل متعامد (0.25-1.3 مللي تراز، 10-40 هرتز، 30-90 دقيقة/يوم، الجدول 1) وحدد 1.3 مللي ت، 30 هرتز، و60 دقيقة/يوم كأفضل (الجدول 2).
    3. ضع نفس الملف غير النشط فوق الجرح المتحكم لمدة ساعة واحدة لتوفير علاج وهم. من الواضح أن ضع علامة على الملف الوهمي لتجنب الالتباس.
  4. أزل الجهاز وافحص الجرح.
    1. أطفئ وحدة التحكم بعد 60 دقيقة. أزل الملف والمواد اللاصقة بعناية.
    2. افحص الجرح بحثا عن نزيف أو وذمة أو آثار جانبية. استبدل الشاش المعقم إذا لزم الأمر.
      ملاحظة: تبقى درجة حرارة سطح الملف قريبة من البيئة خلال تحفيز لمدة ساعة واحدة؛ لم يلاحظ أي تدفئة كبيرة.
  5. تقديم الرعاية بعد العلاج.
    1. ركبوا طوقا من الطراز الإليزابيثي لمنع الإصابة الذاتية. تأكد من اللياقة الصحيحة دون الإضرار بالتنفس أو التغذية.
    2. لف الشاش برفق حول الأطراف الخلفية لتقليل خدش الجروح الظهرية.
    3. راقب الفأر حتى يتعافى تماما من التخدير. استمر في تناول المسكنات (مثلا، ليدوكائين 4 ملغ/كغ كل 12 ساعة لمدة 2-3 أيام أو حسب بروتوكول مؤسسي).
    4. كرر علاجات PEMF اليومية طوال مدة الدراسة (مثلا 14 يوما).

3. مراقبة الجروح وجمع البيانات

  1. التقط صور الجروح.
    1. صور الجروح في الأيام 0، 3، 7، 10، و14 بعد الإصابة. تخدير الحيوانات بخفة إذا لزم الأمر لمنع الحركة.
    2. أدرج مقياس قياس في كل صورة ووضع الكاميرا عموديا على الجرح على مسافةثابتة 14,15.
  2. قس منطقة الجرح.
    1. قم بمعايرة مقياس الصورة في ImageJ باستخدام المسطرة المرجعية. تتبع هوامش الجرح لحساب المساحة بالمليمتر مربع.
    2. سجل مساحة الجرح في كل نقطة زمنية وحساب نسبة إغلاق الجرح بالنسبة للخط الأساسي.
    3. قارن الجروح المعالجة بالميكانيكا الخارجية والجروح المعالجة من حيث السيطرة على الجروح كميا.
  3. حصاد الأنسجة لعلم الأنسجة (اختياري).
    1. قم بقتل الحيوانات في نقطة التجربة وفقا لإجراءات معتمدة من IACUC.
    2. إزالة عينات من أنسجة الجرح وتثبيتها في الفورمالين للمعالجة النسيجة.
    3. قم بدمج وتلوين البارافين (مثل H&E، ثلاثي الكروم لماسون) لتقييم ترسيب الكولاجين، وإعادة الظهارة، وتكوين الأوعية الدموية13،16.

4. تحليل البيانات وتفسيرها

  1. توليد منحنيات إغلاق الجرح.
    1. نسبة إغلاق الجروح في الحبكة مع مرور الوقت لكل مجموعة.
    2. احسب معدل الشفاء والوقت حتى عتبات الإغلاق المحددة مسبقا.
  2. قم بإجراء تحليل إحصائي.
    1. اجمع بيانات منطقة الجرح لجميع الحيوانات واحسب متوسط SD ± كل نقطة زمنية.
    2. تأكيد الطبيعية (اختبار شابيرو-ويلك) وتجانس التباين (اختبار ليفين).
    3. حلل الفروقات باستخدام تحليل التنويف الإيجابي ثنائي الاتجاه مع عوامل "العلاج" و"الوقت". قم بإجراء اختبار ما بعد الحدث من Tukey إذا تم اكتشاف تفاعل كبير.
    4. عرف الدلالة الإحصائية بأنها *p < 0.05 و **p < 0.01.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

في هذا النموذج الكامل السماكة لجروح الفئران، أدى علاج PEMF اليومي عبر رقعة لفائف مرنة إلى إغلاق الجرح بشكل أسرع بكثير مقارنة بالمراقبين. لتقييم التأثير بدقة، تم تقسيم الفئران إلى ثلاث مجموعات بناء على التصميم التجريبي الموضح في قسم البروتوكول: مجموعة ضابطة داخل الشخص (حيث كان لكل فأر جرح معالج ب PEMF وجرح آخر غير معالج، تم جمع البيانات للتحليل)، ومجموعة تحكم وهمية (PATCH: جرح مغطى بملف غير مدعوم)، ومجموعة ضابطة غير معالجة (CTRL: العناية القياسية بالجروح فقط). الشكل ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تشمل الخطوات الحاسمة إنشاء جروح كاملة السماكة متماثلة، وضمان استقرار رقعة الملف فوق حاجز معقم بدون فجوات، والحفاظ على تعرض يومي ثابت؛ يمكن أن تقلل الانحرافات من التوصيل الميداني وتزيد من التفاوت في نتائج الشفاء.

لهذا العمل عدة قيود يجب أخذها في الاعتبار عند تفسير النتائج وتقييم الإمكانات التحويلية. أولا، تم إثبات البروتوكول في فئران SD الذكور الأصحاء (6-8 أسابيع، 200-250 جرام) الذين يعانون من جروح استئصالية حادة، وبالتالي لا يعكس بالكامل بيئات الشفاء المتعثرة ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن المؤلفون أنه لا توجد لديهم تضارب مصالح أو مصالح مالية في المنتجات أو الأجهزة المستخدمة في هذه الدراسة. الجهاز المخصص لنظام PEMF الموصوف لأغراض البحث وليس مرتبطا تجاريا.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نشكر الدكتور تشانغ على النقاشات العميقة والدكتورة فو على مساعدتها في رعاية الحيوانات وعلم الأنسجة. وقد دعم هذا العمل (2022YFC3006200) برنامج البحث والتطوير الوطني للمفاتيح في الصين. كما يشكر المؤلفون موظفي منشأة الحيوانات في كلية ووكسي للطب بجامعة جيانغنان على دعمهم خلال التجارب الحية المحيطة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
ألواح زراعة الخلايا ذات 96 بئرباي ديH908002لاختبار CCK-8
شرائح المجهر المعالجة  سيتوتيستوالرقم 80312-3161المعدات ل  H& تلوين E/Masson
مسكن الألم (حقن هيدروكلوريد الليدوكائين)هوامو70011657مسكن الأفيون، 4 ملغ/كغ (للتحكم في الألم)
جهاز التخديرRWD علوم الحياة (شنتشن، كونواثن)R520-Iso جهاز تبخير إيزوفلوران مع إمداد الأكسجين
آلة التلوين الكيميائية المناعية الآليةلايكا21.2201  التلوين المناعي الكيميائي الآلي  
ثقب الخزعة (20 مم)إنتيجرا ميلتكس#33-37ثقب جلدي دائري، قطره 2 سم
الكاميرا، الرقميةهواوي ميت 70 برولا يوجد≥ 12 ميجابكسل لتصوير الجروح
الأجسام المضادة CD31أبكامab182981علامة البطانة لالتهاب الرحم الهوائي (الشكل 4B)
الجسم المضاد CD34أبكامab81289علامة البطانة لالتهاب الرحم الهوائي (الشكل 4B)
مجموعة عد الخلايا-8 (CCK-8)بايوشاربBS350Bيستخدم لفحص معلمات PEMF في المختبر (OD450)
طبق زراعة الخلايا (10 سم)باي ديH802004طبق زراعة الأنسجة بطول 10 سم (100 مم) لزراعة الأرواح الليفية 
وسط زراعة الخلايا (مثل DMEM + FBS)باي ديL100-500لزراعة الأرومات الليفية في شاشة CCK-8
حاضنة ثاني أكسيد الكربونالترموBB150-2TCS-Lلزراعة الأرومات الليفية
لولب، نحاس مرنمصنع خصيصا (داخليا)لا يوجدملف مطبوع حلزوني (قطر 5 سم، بولي إيميد)
لوحة التحكم (مولد PEMF)تصميم مخصص (تصميم داخلي)لا يوجدلوحة دوائر مخصصة تشغل ملف عند 30 هرتز، ~1.3 mT
مقص الشعر الكهربائيوال أو أوستر (العناية بالحيوانات الأليفة)موديل 9160 ماكينة تنظيف الحيوانات لحلاقة الفرو
طوق إليزابيثي (قارض)MukeBioMK-EC-01منع تداخل الجرح
محطة التضمينإبريديا هيستوستارA81000002المعالجة لعلم الأنسجة (إذا تم إجرائها)
  قناع الوجهفيدينغV531596الحفاظ على التخدير
الأرومات الليفية (خط الخلية L929)بروسيلCL-0137الخلايا المستخدمة في فحص تكاثر CCK-8
برامج محاكاة العناصر المحدودة (مثل COMSOL Multiphysics)كومسولCM010004محاكاة المجال المغناطيسي (الشكل 5B-C)
جبيرة شريط ألمنيوم مرنةعزيزي1592الدعم لمنع إزاحة الملف
الملقطماجيستيك01625للتعامل مع الجلد والضمادات أثناء الجراحة
الهيماتوكسيلين والمواد إيوسين (H& ه) الجامعة للصباغة والختم التلقائيDRS-Prisma-P+FILM61770249قابل للاستهلاك في التلوين الروتيني للنسيج
برنامج تحليل الصورالمعاهد الوطنية للصحةالإصدار 1.54 لقياس مساحة الجرح (مثل ImageJ)
برنامج تحليل الصورالمعاهد الوطنية للصحةالإصدار 1.54لقياس مساحة الجرح (مثل ImageJ)
غرفة الحثRWD علوم الحياة (شنتشن، كونواثن)802-00132-00تحفيز التخدير بالإيزوفلوران
كاميرا التصوير الحراري بالأشعة تحت الحمراءHIKMICROH11درجة حرارة سطح ملف المراقبة (الشكل 5A)
مطهر اليود بوفيدون 10٪هينوتلا يوجدمطهر الجلد (يودوفور)
إيزوفلورانRWD علوم الحياة (شنتشن، كونواثن)20037015مخدر استنشاق (درجة USP)
حقن ليدوكائين 10٪سانمالا يوجدلتخفيف الألم بعد العملية
مجموعة التلوين ثلاثية الألوان الخاصة بماسونباسوC250202مادة استهلاكية لتصوير الكولاجين/ECM
علامة الجلد الطبية والمسطرةتونداوسلا يوجدتضمين الحجم في صور الجروح
قارئ الميكروبليتالترموA51119500Cلقياس OD450 في اختبار CCK-8
ميكروتومإبريديا HM 340E23900670التقسيم لعلم الأنسجة/التحليل الهوائي (إذا تم إجراءه)
مثبت نسيج متعدد الفورمالديهايدالسيرة الذاتية المشاركةSB-C009تثبيت عينات الأنسجة الحيوانية
قفص سكن الفئرانفنغ تشياوCP-JMقفص سكن الفئران القياسي للسكن الفردي.
راتس، سبراج داولي (ذكر، 6&200؛ 8 أسابيع)وي جينغيو سوتشوSCXK2024-0004200– 250 جم؛ مسكنا بشكل فردي؛ الاستخدام المعتمد من IACUC
المشرطجينهوان35W0602لخلق جرح استئصالي
تغليف الفيلم شبه النافذZDس20189حاجز جرح بديل
برامج التحليل الإحصائي (مثل GraphPad Prism أو R)برمجيات ماكييف10.6.9(890)ANOVA ثنائي الاتجاه ومقارنات متعددة بعد الوقوع
الشاش المعقمZD3141626تضميد الجروح/الحاجز الواقي
ستائر جراحية معقمةZDV271617لتغطية الحقل الجراحي بعد تجهيز الجلد
المقص الجراحيماجيستيك01627لخلق جرح استئصالي
الحقن والإبرمينانك20193141643لإعطاء مسكنات تحت الجلد
ماسح الشرائح الكامل3DHISTECHلا يوجدالمسح الرقمي للشرائح

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Guo, S., Dipietro, L. A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 89 (3), 219-229 (2010).
  2. Pilla, A. A. Nonthermal electromagnetic fields: From first messenger to therapeutic applications. Electromagn Biol Med. 32 (2), 123-136 (2013).
  3. Gualdi, G., Costantini, E., Reale, M., Amerio, P. Wound repair and extremely low frequency-electromagnetic field: Insight from in vitro study and potential clinical application. Int J Mol Sci. 22 (9), 5037(2021).
  4. Su, D. B., Zhao, Z. X., Yin, D. C., Ye, Y. J. Promising application of pulsed electromagnetic fields on tissue repair and regeneration. Prog Biophys Mol Biol. 187, 36-50 (2024).
  5. Markov, M. S. Pulsed electromagnetic field therapy history, state of the art and future. Environmentalist. 27 (4), 465-475 (2007).
  6. Funk, R. H., Monsees, T., Ozkucur, N. Electromagnetic effects-from cell biology to medicine. Prog Histochem Cytochem. 43 (4), 177-264 (2009).
  7. Peng, L., et al. The effect of pulsed electromagnetic fields on angiogenesis. Bioelectromagnetics. 42 (3), 250-258 (2021).
  8. Callaghan, M. J., et al. Pulsed electromagnetic fields accelerate normal and diabetic wound healing by increasing endogenous FGF-2 release. Plast Reconstr Surg. 121 (1), 130-141 (2008).
  9. Goudarzi, I., Hajizadeh, S., Salmani, M. E., Abrari, K. Pulsed electromagnetic fields accelerate wound healing in the skin of diabetic rats. Bioelectromagnetics. 31 (4), 318-323 (2010).
  10. Kwan, R. L., et al. Pulsed electromagnetic field therapy promotes healing and microcirculation of chronic diabetic foot ulcers: A pilot study. Adv Skin Wound Care. 28 (5), 212-219 (2015).
  11. Tabakan, I., Yuvacı, A. U., Taştekin, B., Öcal, I., Pelit, A. The healing effect of pulsed magnetic field on burn wounds. Burns. 48 (3), 649-653 (2022).
  12. Liu, S., et al. Magnetic field-assisted conductive nerve guidance conduit enabling peripheral nerve regeneration with wireless electrical stimulation. Adv Funct Mater. 35 (34), 2416548(2025).
  13. Zhu, S., et al. Magnetically controlled strategies for enhanced tissue vascularization. Adv Funct Mater. 34 (34), 2401856(2024).
  14. Trujillo, A. N., Kesl, S. L., Sherwood, J., Wu, M., Gould, L. J. Demonstration of the rat ischemic skin wound model. J Vis Exp. (98), e52637(2015).
  15. Galiano, R. D., Michaels, J. T., Dobryansky, M., Levine, J. P., Gurtner, G. C. Quantitative and reproducible murine model of excisional wound healing. Wound Repair Regen. 12 (4), 485-492 (2004).
  16. Strauch, B., et al. Pulsed magnetic fields accelerate cutaneous wound healing in rats. Plast Reconstr Surg. 120 (2), 425-430 (2007).
  17. Lv, H., et al. Magnetic fields as a potential therapy for diabetic wounds based on animal experiments and clinical trials. Cell Prolif. 54 (3), e12982(2021).
  18. Yin, Y., et al. The effects of a pulsed electromagnetic field on the proliferation and osteogenic differentiation of human adipose-derived stem cells. Med Sci Monit. 24, 3274-3282 (2018).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة