تمت الموافقة على جميع الدراسات من قبل لجنة رعاية وعلاج الحيوانات المؤسسية في جامعة شوزو الطبية. المواد المستخدمة والمواد المستخدمة مدرجة في جدول المواد.
1. نموذج الحيوان
تم شراء ذكور وإناث من جرذان سبرايغ-داولي (SD) البالغين الذين يتراوح وزنهم بين 250–300 جرام من مركز الحيوانات التجريبية في جامعة شوزو الطبية. تم تربية الفئران في غرفة خاصة خالية من الممرضات. اتبعت إجراءات التجارب على الحيوانات، بما في ذلك العلاج والرعاية واختيار النهاية، إرشادات "أبحاث الحيوان: الإبلاغ عن تجارب في الجسم". أجريت تجارب على الحيوانات باستخدام العشوائية. تم تقسيم فئران SD إلى أربع مجموعات (n = 8 لكل مجموعة): المجموعة الطبيعية (بدون جراحة، تغذية طبيعية) (المجموعة الطبيعية)، مجموعة الشامي (جراحة صورية: شق جلدي وعضلي بدون قطع رباط صليبي أمامي [ACLT]، تليها تمزيق محلول ملحي)، مجموعة KOA/NC (جراحة ACLT + تجويف محلول ملحي)، مجموعة KOA/OST (جراحة ACLT + تجويف OST). تم بناء نموذج KOA لركبة الجرذ باستخدام طريقة قطع الأربطة الصليبية الأمامية (ACLT) كما تم وصفهاسابقا 29. تم إعطاء مجموعة المحلول الملحي عبر الجافاج، وتم إعطاء مجموعة OST عبر الجافاج لمدة 4 أسابيع. جرعة OST هي 50 ملغ/كجم من وزن الجسم (مذاب في PEG 400 ومخففة بمحلول ملحي فسيولوجي)، وتكرار الإعطاء هو مرة واحدة يوميا لمدة 4 أسابيع في قسم الفئران. ثم تم إعدام الفئران للتحليل (وفقا لبروتوكولات معتمدة مؤسسيا). كانت الأنسجة إما مجمدة فورا في النيتروجين السائل أو مثبتة في 4٪ بارافورمالديهايد.
2. زراعة الخلايا
تم الحصول على خط الخلايا الغضروفية البشرية (C28/I2) من مجموعة الزراعة الأمريكية (ATCC، ماناساس، فيرجينيا). تم زراعة الخلايا وفقا لإرشادات ATCC واستخدامها خلال 6 أشهر.
ظروف الزراعة: وسط DMEM/F-12 مغذى ب 10٪ مصل أبقار جنيني و1٪ بنسلين-ستريبتومايسين، يحتضن عند 37 درجة مئوية في حاضنة ترطبية بتركيز ثاني أكسيد الكربون 5٪.
العلاجات: تم زرع الخلايا عند 1 ×10 6 خلايا/بئر في صفائح ذات 6 آبار؛ بعد 24 ساعة من الالتصاق، عولجوا ب LPS (1 ميكروغرام/مل) وحده أو ب OST (100 ميكرومولار) لمدة 24 ساعة.
3. اختبارات لجدوى الخلايا
تم حضانة خلايا الغضروفية مع OST أو LPS بتركيزات مختلفة في صفائح 96 بئر. يعكس اختبار CCK8 قدرة الخلايا على الاستمرار من خلال اكتشاف الامتصاص (OD450 نانومتر) باستخدام قارئ الميكروبلايت، مع القيم الأعلى للطاقة الزائدة التي تشير إلى وجود خلايا أكثر قابلية للحياة.
تدرج تركيز الموسيقى التصويرية: 0، 25، 50، 100، 200، 400 ميكرومولار (تم حضانته لمدة 24 ساعة). أظهر اختبار CCK8 >90٪ من الحيوية للخلايا في جميع التركيزات، مما أكد عدم سمية المركب.
تدرج تركيز LPS: 0، 0.1، 0.5، 1، 2 ميكروغرام/مل (تم حضانته لمدة 24 ساعة). كانت مجموعة LPS بحجم 1 ميكروغرام/مل تتمتع بحيوية خلاياي ~50٪ (مقارنة بمجموعة Ctrl)، لذا تم اختيار هذا التركيز للتجارب اللاحقة.
4. تلوين الهيماتوكسيلين والإيوزين (H&E) وتلوين السافانين O
تم تضمين الأنسجة بالبارافين، وإزالة الشمع، وإعادة ترطيبها، وصبغها بمواد H&E وSafranin O/Fast Green وفقا لتعليمات الشركة المصنعة. ظروف التلوين: تركيز العمل في AO كان 1 ميكروغرام/مل؛ تم حضانة الخلايا عند حرارة 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق في الظلام.
الطريقة الكمية: تم حساب معدل إيجابية AVO عن طريق عد الخلايا التي تحتوي على نقاط برتقالية في 5 حقول عشوائية (×تكبير 400) لكل عينة باستخدام برنامج ImageJ. ثم تم التقاط المقاطع تحت مجهر BX43 (تكبير ×400).
5. قياس التدفق الخلوي
تم جمع الخلايا وإعادة تعليقها في محلول Annexin-V FIC/PI لتحليل الاستماتة المبرمجة. ظروف الحضانة: تم إعادة تعليق الخلايا عند 1 ×10 6 خلايا/مل في محلول Annexin-V FIC/PI (KeyGEN) وحضنتها في درجة حرارة الغرفة لمدة 15 دقيقة في الظلام.
استراتيجية البوابة: التبعثر الأمامي (FSC) مقابل تم استخدام بوابات التبعثر الجانبي (SSC) لاستبعاد حطام الخلايا؛ تم تعريف خلايا Annexin-V FITC⁺/PI⁻ على أنها مبكرة الاستماتة، وخلايا Annexin-V FITC⁺/PI⁺ على أنها متأخرة الاستماتة. مخطط البوابات مدرج في الملف التكميلي 1 (بيانات قياس خلوية التدفق الخام). تم جمع الخلايا بواسطة مقياس تدفق خلوي. تم تحليل البيانات باستخدام برنامج فلو جو.
6. نقل البلازميدات والمحاكاة
تم الحصول على MiR-34a المقلد (34a-مقلد)، والقلد غير النوعي للتحكم (NC) من مصدر تجاري. تم نقل الخلايا باستخدام البلازميدات باستخدام LipofectamineTM 3000 وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
7. صبغة البرتقال الأكريدين
عادة ما كان يتم تقييم التهام الذاتي عن طريق صبغ الأكريدين البرتقالي في الخلايا. بعد معالجة الخلايا ب LPS أو OST بتركيزات محددة لمدة 24 ساعة، تم حضانها ب AO (1 ميكروغرام/مل) عند 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق في الظلام. تم التقاط الصور باستخدام مجهر ليزري كونفوكلي. تم حساب معدل إيجابية AVO عن طريق عد الخلايا التي تحتوي على نقاط برتقالية في 5 حقول عشوائية (×تكبير 400) لكل عينة باستخدام برنامج ImageJ. يتم الإبلاغ عن البيانات كمتوسط ± الديانا من ثلاث تجارب مستقلة.
8. مراقبة المجهر الإلكتروني الناقل
تم تثبيت العينات في 2.5٪ جلوتارالديهيد و1٪ رباعي أكسيد الأوزميوم، ثم جففت وشطفت وتلقب. بعد البلمرة، تم تقطيع العينات إلى مقاطع بسماكة 70 نانومتر باستخدام ميكروتوم فائق الميكرو. تمت ملاحظة البنية الفائقة للخلايا بواسطة المجهر الإلكتروني الناقل.
9. الحقن المناعي
تم شراء الأجسام المضادة وحيدة النسيلة للفأر (Abs) ضد Bcl-2 (#68103)، والأجسام المضادة متعددة النسيلة للأرنب ضد LC3 (#14600-1-AP)، وIL-6 (21865-1-AP)، والأجسام المضادة وحيدة النسيلة للفأر ضد β-أكتين (#66009-1-lg) من Proteintech. تم الحصول على عضلات بطن ثانوية مرتبطة ب IRDye 800CW ماعز (متعدد النسالات) مضاد للأرنب IgG (H+L) أو IRDye 800CW ماعز (متعدد النسالات) مضاد للفأر IgG (H+L) تجاريا. تم تحلل الخلايا في اختبار تحلل كامل للخلية، مفصولا بواسطة الرحلان الكهربائي في الرحلان الكهربائي الهلام بولي أكريلاميد SDS. تم اكتشاف البروتينات باستخدام Abs الأولية وAb الثانوية المقابلة. كان تحميل البروتين 30 ميكروغرام لكل مسار؛ تخفيف الأجسام المضادة الأولية: Bcl-2 (1:1000)، LC3 (1:1500)، β-التوبولين (1:5000); تم استخدام الأجسام المضادة الثانوية (IRDye 800CW) عند 1:10,000، IL-6 (1:800). ثم تم التقاط أشرطة البروتين بواسطة نظام التصوير بالليزر الكيميائي المعزز. تم قياس نطاقات البروتين بواسطة برنامج ImageJ.
10. تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي في الوقت الحقيقي (qRT-PCR)
تم عزل إجمالي الحمض النووي الريبي من الخلايا باستخدام كاشف تريزول. تم تصنيع cDNA المستمدة من إجمالي الحمض النووي الريبي باستخدام مجموعة cDNA regent وتحليلها بطرق SYBR Green. تم تصنيع cDNA المستمدة من miRNA باستخدام مجموعة cDNA للسلسلة الأولى miRcute plus miRNA وتم تحليلها بواسطة مجموعة qPCR miRcute plus miRNA. تم تنفيذ جميع الإجراءات وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة. تم حساب تعبير النص المستهدف باستخدام طريقة 2-△△ CT . تم استخدام GADPH وU6 كتحكم في التحميل ل mRNA و miRNA على التوالي. تسلسل البادئات مدرج في الجدول 1.
11. اختبارات مراسل لوسيفيراز
بلازميد مراسل Bcl-2-3′UTR من النوع البري (WT) وبلاسميد مراسل Bcl-2-3′UTR مع بلازميد متحول في موقع ارتباط miR-34a (Mut). تم نقل المراسلين وجهاز miR-34a المقلد معا إلى خلايا غضروفية باستخدام LipofectamineTM 3000. تم جمع الخلايا وتحللها بعد 24 ساعة من النقل. ثم تم قياس شدة اللوسيفراز باستخدام مجموعة اختبار الجين Dou-LumiTM Luciferase Reporter وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
12. اختبارات تحليل المشي
تم استخدام نظام MGT-PR لمراقبة حركات الأطراف الجريئة للفئران في كل مجموعة. قبل الاختبار، سمح للفئران بالتكيف مع بيئة المدرج. تم تسجيل بيانات المشي أثناء المشي الحر، مع تسجيل ثلاث تجارب مشي صالحة متتالية لكل فأر. شملت المعايير المحللة طول الخطوة، مدة التأرجح، والتنسيق بين الأطراف الخلفية اليمنى واليسرى.
13. التحليل الإحصائي
أجريت التجارب على ثلاث نسخ وتكررت بشكل مستقل على الأقل ثلاث مرات. تم إجراء التحليل الإحصائي باستخدام برنامج GraphPad Prism 9. تم عرض البيانات كمتوسط ± ديلا. تم تقييم الفروق الإحصائية بواسطة اختبار ANOVA أحادي الاتجاه (اختبار توكي بعد التاريخ) للمقارنات المتعددة، أو بواسطة اختبار Student t ذي الذيل لمقارنتين تجريبيين بين مجموعتين. تم قبول الفروق على أنها ذات دلالة عند p < 0.05.