تم تنفيذ جميع إجراءات وفقا للمعايير المؤسسية المعتمدة للرعاية الإنسانية واستخدام المختبرية، وتمت الموافقة عليها رسميا من قبل لجنة أخلاقيات المؤسسية. تم اتخاذ تدابير لتقليل الانزعاج والضيق لدى كلما أمكن.
اتبعت الأعمال المتعلقة بالمركبات الكيميائية والأصباغ والعينات البيولوجية ممارسات السلامة البيولوجية المعتمدة للحد من المخاطر المحتملة. تم التعامل مع المواد الخطرة المحتملة - بما في ذلك البارافورمالديهايد، والكواشف القائمة على النحاس، وDHE - باستخدام معدات الحماية الشخصية المناسبة، بما في ذلك القفازات، وأقنعة الوجه، ونظارات السلامة. تم فصل جميع المواد النفايات، مثل المواد المستهلكة والمواد الملوثة القابلة للتخلص مرة واحدة، في حاويات مخصصة للخطر البيولوجي وتمت معالجتها لاحقا من قبل خدمات إدارة النفايات الخطرة المعتمدة وفقا للوائح السلامة المؤسسية والبيئية. التصميم التجريبي العام موضح في الشكل 1.

الشكل 1: سير عمل هذه الدراسة. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
زراعة الخلايا والتجميع
تم زراعة الخلايا النجمية في الدماغ البشري (NHA) وسلاسل الخلايا النجمية A172 وU251 وLN229 وSHG-44 (انظر جدول المواد) في وسط DMEM يحتوي على 10٪ مصل بقري جنيني (FBS) وحفظت في الحاضنة عند درجة حرارة 3 °م مع 5٪ CO₂. كان الوسط يغير كل يومين، وتمر الخلايا عندما تصل إلى حوالي 80٪ من التقاطع. تم تحديد الجرعة المناسبة ووقت التعرض ل CUM باستخدام اختبار MTT. تمت معالجة خلايا NHA وA172 وU251 وLN229 وSHG-44 بتركيزات مختلفة (0، 2.5، 5، 10، 20، و4 ميكرومول) من CUM لمدة 24، 48، و7 ساعات على التوالي،23 ساعة. ثم أضيف 2 ميكرولتر من محلول MTT. بعد الساعة، أضيف 15 ميكرولتر من ثنائي ميثيل كبريتسيد إلى كل بئر وخلطه بلطف. تم قياس الكثافة البصرية عند 45 نانومتر باستخدام قارئ الميكرولوتين. تم استخدام الخلايا غير المعالجة (مجموعة التحكم) كعناصر تحكم سلبية في جميع التجارب.
تم زرع خلايا A172 وU251 وتقسيمها إلى مجموعات: ضابطة، CUM بجرعة منخفضة (1 ميكروM)، جرعة عالية من CUM (2 ميكروM)، مثبط AKT (MK-2206)، مثبط AKT + مثبط Wnt (MK-2206 + LGK974)، وإلسم-Cu (إليسكومول + CuCl₂)، بناء على ظروف العلاج. تمت معالجة الخلايا في مجموعات CUM بجرعة 10 أو 2 ميكرومولار CUM لمدة 4 ساعات. تلقت الخلايا في مجموعة MK-2206 1 ميكرومولار MK-2206 لمدة ساعتين. تمت معالجة الخلايا في مجموعة MK-2206 + LGK974 بميكروM LGK974 للسH بعد التعرض ل MK-2206. تمت معالجة خلايا مجموعة Elsm-Cu ب Elesclomol بقوة 100 نانومالر وμM CuCl₂ لمدة 4 ساعاتو14 ساعة.
قياس التدفق الخلوي
تم حضن الخلايا المزروعة من A172 وU251 في كل مجموعة بمحلول صبغ PBS يحتوي على محلول تلوين PI بقوة 1 ميكروغرام/مل لمدة دقيقة واحدة. ثم عولجت الخلايا بنسبة 0.25٪ من التريبسين وجمعت بالطرد المركزي (20 × جم، على الأقل، درجة حرارة الغرفة). تم اكتشاف الخلايا الإيجابية ل PI باستخدام مقياس تدفق خلوي مع قناة PE (الإثارة عند 488 نانومتر)، وتم حساب معدل موت الخلية27.
اختبار كاربوكسي فلوريساين سوكسنيميديل الإستر الأميني (CFSE)
تم حضن خلايا A172 وU251 بصبغة CFSE من نوع CellTrace بمقدار ميكرومول/لتر عند درجة حرارة 3 °م لمدة دقيقة واحدة في الظلام. ثم تم تحييد الوسط، وتم طرد الخلايا على حرارة 20 × جرام للدنى في درجة حرارة الغرفة. بعد الجمع، كانت الخلايا تزرع وتعالج وفقا لتجميعاتها. تم تحليل شدة الفلورة في CFSE باستخدام قياس تدفق الخلايا (الإثارة عند 488 نانومتر)27.
اختبار تكوين نسخ الخلايا
تم هضم الخلايا المزروعة A172 وU251، وإعادة تعليقها، وعددها. تمت إضافة ملليترين من نظام التعليق الخلوي المحضر. بعد خلط لطيف، تم حضن الخلايا لمدة تقارب 14 يوما. ثم تم تثبيت الخلايا ب4٪ بارافورمالديهايد لمدة 3 دقائق، وتم التخلص من المثبت. بعد التلوين بلون بنفسجي كريستالي بنسبة 0.1٪. تم التقاط صور المستعمرات، وتم حساب معدل تكوين المستنسخين14.
اختبار خدش الخلية
تم زراعة خلايا A172 وU251 (1 ×10 6 خلايا/بئر) حتى وصلتا إلى 90٪ من التلاقط. تم خدش طبقة الخلية الأحادية مرة واحدة باستخدام رأس معقم بسعة 2 ميكرولتر لتكوين جرح ثم عولجت بتركيزات مختلفة من ال CUM لكل H و48 ساعة. تم التقاط الصور باستخدام المجهر. تم تقييم معدل شفاء الخدوش باستخدام برنامج ImageJ. تم تحويل الصور إلى صيغة 8-بت، وتم تعيين عتبة موحدة لتمييز منطقة الخدش عن منطقة الخلية، وتم حساب مناطق الخدش عند 0 ساعة و48 ساعة باستخدام دالة تحليل الجسيمات . معدل شفاء الخدوش (٪) = (مسافة 0 ساعة − مسافة 48 ساعة) / مسافة 0 ساعة × 100٪23.
تجربة ترانسويل
تم تعريض خلايا A172 وU251 للمعالجات المحددة، ثم تم فصلهما إنزيميا وطردهما المركزي عند 200 × جرام لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. تم تعليق الخلايا في وسط خال من المصل. تم تخفيف المادة بنسبة 1:8 في وسط خال من المصل، وخلطها جيدا، وتم تطبيق 5 ميكرولتر على الغرفة العلوية لإدخال ترانسويل، تلاها حضانة لمدة 4 ساعات. تمت إضافة ما مجموعه 5 ×10 4 خلايا لكل بئر إلى الحجرة العليا، بينما تم وضع 60 ميكرولتر من الوسط مع 20٪ FBS في الحجرة السفلية. بعد 48 ساعة من الحضانة، تم تثبيت الخلايا باستخدام بارافورمالديهايد وصبغها باللون البنفسجي البلور. تم اختيار خمسة مجالات بصرية من مركز ومحيط كل بئر. تمت ملاحظة الخلايا وتصويرها تحت المجهر. تم حساب الخلايا الغازية باستخدام ImageJ. تم تحويل الصور إلى صيغة 8-بت، وطبقت عتبات لتمييز الخلايا الملونة عن الخلفية، وقامت وظيفة تحليل الجسيمات بعدد الخلايا التي هاجرت عبر الغشاء23.
كشف جهد الغشاء الميتوكوندري (MMP)
تم حضان الخلايا المزروعة من A172 وU251 في كل مجموعة بمحلول JC-1 العامل لمدة 30 دقيقة في الظلام. تم غسل الخلايا بلطف باستخدام مخزن JC-1 المبرد مسبقا، ومراقبتها، وتصويرها باستخدام مجهر فلوري. باستخدام إثارة 488 نانومتر، تم جمع إشارات البوليمر والمونومر JC-1 باستخدام مرشحات انبعاث 590 نانومتر و530 نانومتر على التوالي. تم تحليل نسبة الفلورة الحمراء/الخضراء (تجمعات JC-1 إلى المونومر) باستخدام برنامج ImageJ لتقييم تغييرات MMP28. تم استخراج صور القنوات الحمراء والخضراء بشكل منفصل، وتم قياس متوسط شدة الفلورة في نفس المنطقة.
كشف معدل استهلاك الأكسجين (OCR)
تم زرع خلايا A172 وU251 المزروعة. تم وضع اللوح في محلل مسخن مسبقا عند 3 درجات مئوية للتكيف. وبعد التكييف، أضيف وسيط العزم. بعد المعايرة التلقائية، تم تعديل اللوحة لمدة 15-2 دقيقة عند 3 درجات مئوية دون ثاني أكسيد الكربون. تم قياس السجل الضوئي الواضح في الأساس (OCR) الأساسي، وتم ضبط برنامج التحليل لتسجيل السجل الضوئي الضوئي الميتوكوندري على فترات محددة. تم تصدير البيانات للتحليل اللاحق28.
كشف الأكسجين التفاعلي بواسطة MitoSOX الفلوري (ROS)
تم تعديل خلايا A172 وU251 إلى كثافة 1 × 104 خلايا/مل، وتم زرع 1 مل لكل بئر في طبق الكونفوكالي، ثم تم إجراء التدخل الدوائي. تم التخلص من المادة الفائقة للخلية، وأضيف 1 مل من مسبار MitoSOX المخفف (1:1,000). تم حضن الخلايا في الظلام عند درجة حرارة 3 درجات مئوية لمدة دقيقة واحدة. تم التقاط إشارة الفلورة باستخدام مجهر الفلورة (الإثارة/الانبعاث: 510/580 نانومتر) لتقييم مستويات ROS الميتوكوندرية29.
التألق المناعي
تم غسل أغطية الغطاء مرة واحدة باستخدام وسط زراعة DMEM. ثم وضعت في صفائح بستة آبار لزراعة الخلايا والتدخل الدوائي. بعد 24 ساعة، تم تثبيت الخلايا في 4٪ بارافورمالديهايد، ثم تم حجبها بألبومين مصل البقري بنسبة 5٪ (BSA) لمدة 30 دقيقة. تمت إزالة محلول الحظر، وتم تطبيق الأجسام المضادة الأولية المخففة التي تستهدف إنزيم أستيل ترانسفيراز ديهيدروليبواميد (DLAT) و β-كاتينين، تلاها الحضانة الليلية عنددرجة مئوية 30. ثم تم إدخال الأجسام المضادة الثانوية الموسومة بالفلورية وحضانتها عند 3 درجات مئوية لمدة 30 دقيقة. تم تلوين نوى الخلايا باستخدام DAPI، وتم تركيب شرائح باستخدام مادة مضادة للتلاشي. تم التقاط صور الفلورة باستخدام مجهر الفلورة، وتم قياس شدة الإشارة باستخدام برنامج ImageJ. تم تحويل الصور إلى صيغة 8-بت، وتم تطبيق عتبة ثابتة لتمييز إشارات الهدف عن الضوضاء الخلفية. تم استخدام أداة المستطيل لاختيار المناطق الخلوية المرغوبة، وتم قياس متوسط شدة الفلورة27. لرؤية الميتوكوندريا، تم علاج الخلايا ب 20 نانومالتر MitoTracker Red CMXRos لمدة 30 دقيقة ثم ثبتت ببارافورمالديهايد30.
مجموعة تقرير TCF/LEF1 من لوسيفيراز
تم تقييم تنشيط Wnt/β-كاتينين داخل خلايا A172 وU251 باستخدام مجموعة تقرير لوسيفيراز TCF/LEF1. يحتوي ناقل الإبلاغ TCF/LEF على صندوق TATA وعناصر استجابة عامل الخلايا التائية/عامل تعزيز لمفاوي (TCF/LEF)، مما يتيح الكشف غير المباشر عن نشاط النسخ β-كاتينين عبر التعبير عن البروتين الفلوري الأخضر (GFP). تم نقل الخلايا المزروعة من A172 وU251 بشكل عكسي باستخدام ناقل TCF/LEF بقوة 5 نانوغرام. بعد ستة عشر ساعة من النقل، تم تسجيل شدة الفلورة باستخدام قارئ ميكرولوح مع إعدادات إثارة وانبعاث 488 و51 نانومتر على التوالي،31.
الفئران الحاملة للأورم
تم الحفاظ على عشرة ذكور من فئران BALB/c عارية (عمرها 7 أسابيع، 2 ± 2 جم) في ظروف خالية من الممرضات المحددة (2 درجة مئوية، 65٪ رطوبة) مع وصول غير مقيد إلى الطعام والماء القياسيين. تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل لجنة مراجعة الأخلاقيات في المستشفى الأول التابع لجامعة اليانغتسي (رقم 2023092؛ تاريخ الموافقة: 18.10.2023).
لتأسيس نموذج زينوغرافت GBM، تم تعليق خلايا A172 (4 × 106 خلايا/مل) في وسط خال من المصل، وتم حقن 0.1 مل تحت الجلد في الجانب الأيمن لكل فأر. تم توزيع الحيوانات عشوائيا إما إلى مجموعة ضابطة أو مجموعة علاج CUM (عدد = 5 لكل مجموعة). تلقت مجموعة CUM 60 ملغ/كجم كوركمين يوميا عبر التمهيد الفموي، بينما تلقت مجموعة الضابطة كمية مماثلة من المحلول الملحي. تم تسجيل أقطار الأورام كل 7 أيام باستخدام جهاز فيرنييه، وتم حساب حجم الورم باستخدام الصيغة 1/2 طول × × عرض2 (مم3). بعد 5 أسابيع، تم القتل الرحيم للفئران بسبب خلع عنق الرقب، وتم جمع الأورام تحت ظروف معقمة لقياس الوزن32.
اختبار تونيل
تم تثبيت أنسجة الورم في بارافورمالديهيد بنسبة 4٪ لمدة 24 ساعة، وجففت بالإيثانول، وغرست في البارافين، وقطعت بسماكة ميكرومتر. تم إزالة الشمع من الأقسام وإعادة ترطيبها، وشطفها ب PBS، وعالجت ببروتيناز K لمدة 50 دقيقة لاسترجاع المستضد، وحضنتها ببيروكسيد الهيدروجين بنسبة 3٪. تم تطبيق خليط تفاعل TUNEL لمدة ساعة واحدة، تلاها تركيب كاشف مضاد للتلاشي. تم التقاط صور الفلورة بواسطة المجهر، وتم قياس خلايا TUNEL الموجبة في كل حقل باستخدام برنامج ImageJ.
الكيمياء المناعية النسية
تم خبز أقسام الأورام المدمجة بالبارافين عند 6 درجات مئوية، وإزالة الشمع من الزيلين، وإعادة ترطيبها عبر سلسلة إيثانول متدرجة. تم استرجاع المستضدات باستخدام مخزن EDTA الساخن، تلاه تقييد نشاط البيروكسيداز الداخلي. تم حضن الشرائح بجسم مضاد أولي مضاد Ki-67 خلال الليل عند درجة مئوية. بعد الحضانة مع جسم مضاد ثانوي لمدة 20 دقيقة، تم صبغ الأقسام بديامينوبينزيدين (DAB) لمدة 5 دقائق ثم صبغت بالهيماتوكسيلين معاكس. بعد الجفاف وتركيبه على الراتنج المحايد، تم تصوير الشرائح تحت المجهر. تم تحديد التلوين الإيجابي بواسطة ترسيب بني مائل إلى الأصفر، وتم قياس خلايا Ki-67 الموجبة باستخدام ImageJ27.
صبغة الفلورة بديهيدروإيثيديوم (DHE)
تم تقييم مستويات ROS باستخدام صبغة فلورية DHE. تم شطف أقسام الأنسجة الورمية المجمدة باستخدام PBS. تم إخماد فلورة الخلفية، وأضيف ميكرومولار DHE لكل قسم لمدة 3 دقائق. بعد غسل PBS، تم إغلاق الأجزاء في الظلام. تمت ملاحظة الفلورة باستخدام المجهر (الإثارة/الانبعاث: 518/605 نانومتر)، وتم جمع خمس صور عشوائية لكل مجموعة. تم استخدام ImageJ لقياس مستويات ROS.
اكتشاف المحتوى Cu2+
تم تقييم تركيز Cu2+ في خلايا GBM وأنسجة الأورام باستخدام مجموعة كشف لونية. تم جمع خلايا A172 وU251 بعد المعالجة وطرد مركزها على حرارة 1,500 × جرام لمدة 10 دقائق عند درجة مئوية. تم إعادة تعليق حبيبات الخلايا في 0. مل من الماء المقطر، تم تحويله على الثلج، ثم تم تركيبه بالطرد المركزي مرة أخرى. تم تجانس أنسجة الورم في ماء مقطر وتم طرد مركزها بالمثل عند 4 درجات مئوية لمدة 10 دقائق. تم نقل المواد الفائقة (1 ميكرولتر) إلى صفيحة تحتوي على 96 بئرا، وخلطت مع 23 ميكرولتر من المادة الكروموجينية، وأغلقت، وحضنتها لمدة 5 دقائق. تم قياس الكثافة البصرية (OD) عند 58 نانومتر باستخدام قارئ ميكرولوبلايت، وتم حساب مستويات Cu2+ بمقدار 14.
ويسترن بلوت (WB)
تم عزل البروتينات من الخلايا المزروعة وأنسجة الورم. تم الحصول على المواد الفائقة عن طريق الطرد المركزي عند 12,000 × جرام لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية، وتم قياس تركيزات البروتين باستخدام اختبار BCA. بعد إزالة الطعم، تم فصل العينات بواسطة SDS-PAGE، ونقلها إلى أغشية PVDF، وحجبها بحليب خالي الدسم بنسبة 5٪ لمدة ساعة واحدة. تم غسل الأغشية في TBST وحضانتها طوال الليل عند درجة مئوية مع الأجسام المضادة الأولية ضد FDX1، LIAS، DLAT، DLD، AKT، p-AKT، Wnt3a، GSK-3β، p-GSK-3β، β-كاتينين، p-β-كاتينين، و β-أكتين (انظر جدول المواد)14،33. بعد غسلات إضافية من TBST، تم حضن الأغشية بأجسام مضادة ثانوية متقاربة ب HRP لمدة ساعة واحدة، تم تطويرها باستخدام كاشف ECL، وتم رؤيتها بواسطة التلوين الكيميائي. تم استخدام برنامج ImageJ لقياس شدة الإشارة باستخدام أداة اختيار المستطيل ودالة تحليل الجل . تم حساب التعبير البروتيني النسبي كنسبة قيمة الرمادي للشريط المستهدف إلى الضابط الداخلي (GAPDH). تم تحضير المستخلصات النووية من خلايا A172 وU251 باستخدام مجموعة استخراج البروتين النووي. تم تقييم تعبير β-كاتينين ولامين B1، حيث خدم لامين B1 كوحدة تحكم في التحميل النووي34.
التحليل الإحصائي
تعكس النتائج الكمية متوسط ثلاثة نسخ مستقلة. تم تقييم جميع البيانات من حيث التوزيع الطبيعي وتجانس التباين. تم استخدام اختبار ANOVA أحادي الاتجاه تلاه اختبار توكي بعد الاختبار للمقارنات عبر عدة مجموعات. تعرض البيانات كمتوسط ± انحراف معياري (SD). تم اعتبار قيمة P أقل من 0.05 ذات دلالة إحصائية. تم استخدام هذه الإجراءات لضمان متانة البيانات ودعم موثوقية الاستنتاجات.