يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

استئصال المعدة بكم الميكروفون في الفئران باستخدام مشابك رباط قابلة للاستخدام مرة واحدة

265 مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/69996

⸱

فبراير 20, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of General Surgery, Guangzhou Red Cross Hospital of Jinan University, 2College of Clinical Medicine, Guizhou Medical University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

هنا، نقدم بروتوكولا يستخدم مشبك ربط يمكن التخلص منه لإنشاء نموذج لاستئصال المعدة بغلاف الفأر. يظهر هذا النموذج انخفاض معدل الوفيات بعد العملية، وقصر وقت العملية، ونتائج علاجية مماثلة لتقنيات الخياطة التقليدية.

الملخص

نماذج الفأر الحالية لاستئصال المعدة بأكمام (SG) تعتمد بشكل كبير على الخياطة اليدوية — وهي إجراء تقني يتطلب وقتا طويلا للجراحة، ومعدل وفيات مرتفع حول العملية، ومنحنى تعلم حاد. وهذا يحد من وصولها للباحثين غير الجراحيين. لمعالجة هذا الاختناق، طورنا بروتوكول SG مبسط باستخدام مشابك رباط قابلة للتصرف، تستخدم عادة في الجراحة السريرية للجهاز الهضمي. في فئران C57BL/6J السمنة الناتجة عن النظام الغذائي، قلل النهج القائم على المقطع متوسط وقت العملية بنسبة >50٪ (20.9 ± 3.2 مقابل 43.9 ± 3.0 دقيقة) وحسن بشكل ملحوظ فترة البقاء خلال 12 أسبوعا مقارنة بالخياطة التقليدية. حققت الطريقة نتائج أيضية متكافئة تشمل فقدان الوزن المستمر، وتحسين تحمل الجلوكوز، وزيادة حساسية الأنسولين، وتقليل تعقيم الكبد. ومن الجدير بالذكر أن النموذج لا يتطلب خبرة متخصصة في الجراحة المجهرية أو أجهزة التدبيس، والتي غالبا ما تكون غير متوفرة لتطبيقات الفئران. نوصي بهذه الطريقة المعتمدة على المقطع للباحثين، خصوصا أولئك الذين ليس لديهم تدريب جراحي متقدم، الذين يعطون الأولوية للكفاءة الإجرائية وقابلية التكرار في الدراسات الميكانيكية لجراحة السمنة. بالنسبة للجراحين الذين يبحثون عن قابلية ترجمة سريرية مباشرة، تظل تقنيات الخياطة مفضلة، وإن كانت مع إدارة أكثر صرامة حول العملية.

المقدمة

تعتبر جراحة السمنة على نطاق واسع التدخل الأكثر فعالية للسمنة الشديدة ومضاعفاتها المرتبطةبها 1. نموذج استئصال المعدة بكم الفأر (SG) هو أداة قيمة لدراسة التغيرات الفسيولوجية المرضية والآليات المحتملة المرتبطة بجراحة السمنة. هذا النموذج مفيد لأنه يسمح باستخدام سلالات الفئران المعدلة وراثيا، مثل تلك التي تحتوي على تعطيل جيني أو زيادة في التعبير. نماذج الفئران التي يسهل تكرارها، وتمكن من التحكم الصارم في ظروف التجريب، وتسهل التلاعب التجريبي، ضرورية للترجمة السريرية2.

يستخدم نموذج SG التقليدي للفئران تقنيات تعتمد على الغرز لصنع كيس معدي أنبوبي. تتضمن هذه المنهجية عدة خطوات جراحية دقيقة وعادة ما تتطلب كفاءة تقنية كبيرة. تشمل التقنيات التمثيلية SG-طبقةواحدة 3,4 وSG-Lembert 5,6، مع متوسط وقت جراحي يتراوح بين 30 إلى 45 دقيقة7. وبالتالي، يتطلب إجراء الجرعة النفسية في مجموعة من عشرة فئران عادة ما 5-7.5 ساعات من وقت العمليات. في الدراسات التي تشمل عدة مجموعات تجريبية، قد تمتد الجلسات الجراحية التراكمية على مدى 2-3 أيام متتالية. يمكن أن تؤدي الجداول الإجرائية الطويلة إلى إدخال قيود لوجستية وتغيرات في ظروف ما قبل العملية، مما يؤثر على الاتساق التجريبي والمراقبة بعد العملية. استكشف الباحثون طرقا بديلة لتطوير نماذج فأر-SG أكثر سهولة في الوصول. تمثل الأساليب المدعومة بالدبابيس (SG-stapler)7,8 والقائمة على المشبك (SG-clip)9,10,11 تحسينات ملحوظة. تسهل هذه الطرق جوانب محددة من تكوين كيس المعدة وتقلل من المتطلبات التقنية المرتبطة بالخياطة اليدوية، مما يدعم التبني الأوسع عبر بيئات البحث ذات مستويات الخبرة الجراحية المتفاوتة. تواجه تقنية دباسة SG محدودية عملية في تطبيقات الفأر بسبب محدودية توفر أجهزة التدبيس بالحجم المناسب، مما أدى إلى استخدامها بشكل أكثر تكرارا في نماذج الفئران. فيما يتعلق بمنهج مشبك SG، كانت الدراسات السابقة تستخدم عادة مشابك إلى اثنين من التيتانيوم مع غرز إضافية 9,10,11. يوفر السطح الداخلي الأملس لمشابك التيتانيوم القياسية توازنا غير مثالي للأنسجة، مما يتطلب تثبيتا إضافيا لضمان موثوقية الإجراءات وسلامة المعدة.

استنادا إلى ميزات نماذج SG-stapler وSG-clip، يقدم هذا البروتوكول نموذج SG للفئران تم تطويره باستخدام مشابك ربط قابلة للتصرف. تستخدم هذه المشابك عادة في استئصال المرارة، واستئصال الزائدة الدودية، وغيرها من جراحات الجهاز الهضمي. في هذه الإجراءات، يتم تثبيت نسيج مثل القناة الكيسية المتبقية، وجذر الزائدة الدودية، والأوعية الدموية بإحكام، مما يلغي الحاجة إلى تعزيز إضافي بالخياطة. تتوفر أحجام تناسب طول بطن الفأر. هذا النموذج الجديد لمشبك SG بسيط وموثوق ويظهر فعالية علاجية مماثلة لنموذج الغرز التقليدي.

ومن الجدير بالذكر أن الدماغ القائم على الغرز يظل مفضلا عندما يهدف البحث إلى تكرار تقنية الجراحة السريرية، أو دراسة التأثيرات البيوميكانيكية أو البيولوجية الخاصة بالخياطة، أو عندما يتطلب دقة تشريحية قصوى. بالنسبة للباحثين ذوي المهارات المتقدمة في الجراحة الدقيقة، تعكس طرق الخياطة اليدوية الإجراءات البشرية، وبالتالي فهي أكثر ملاءمة للدقة الانتقالية. على النقيض من ذلك، يقدم نموذج المشبك المربوط بديلا مبسطا وفعالا وسهل الوصول يحافظ على الدقة التجريبية مع توسيع قابلية تطبيق مشابك الجرور في بيئات بحثية متنوعة - خاصة عندما تكون الخبرة الجراحية محدودة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

يلتزم هذا البروتوكول بإرشادات أخلاقيات رعاية الحيوان الدولية وقد تمت الموافقة عليه من قبل لجنة رعاية وأخلاقيات الحيوان التجريبية بجامعة جينان (رقم الموافقة: 20240227-0073).

ملاحظة: تم إيواء ثلاثين فأرا بري من نوع C57BL/6J (عمره ثمانية أسابيع)، يزن 22-25 جرام، في بيئة خالية من مسببات الأمراض (SPF) مع درجة حرارة غرفة تتراوح بين 20-26 درجة مئوية و12/12 ساعة بالتناوب بين النهار والليل. بعد التكيف مع نظام غذائي عالي الدهون لمدة 4 أسابيع، تم توزيع الفئران عشوائيا إلى مجموعات SC (SG مع clip)، SS (SG مع خياطة)، وSH (الوهم) مع 10 فئران في كل مجموعة.

1. التحضير قبل العملية

  1. غير نظامك الغذائي إلى نظام غذائي سائل لمدة يومين ولا تصوم قبل الجراحة.
    ملاحظة: يمكن أن يسهل الانتقال قبل العملية إلى النظام الغذائي السائل تفريغ الطعام الصلب من معدة الفئران، مما يقلل من التلوث أثناء العملية. بالإضافة إلى ذلك، يعزز التكيف بشكل أفضل مع التغذية السائلة بعد العملية، مما يضمن كمية كافية من الطاقة.
  2. ثبت وسادة التدفئة على طاولة العمليات المزودة بقناع تخدير واضبط درجة الحرارة إلى ~37 درجة مئوية.
  3. نظف الطاولة بالكحول بنسبة 75٪.
  4. استخرج 1 مل من 100 مل من المحلول الملحي العادي لإذابة مسحوق البنسلين. ثم يحقن محلول البنسلين المذاب بالكامل في ال 99 مل المتبقية من المحلول الملحي العادي لتحضير محلول بنسلين بتركيز 800,000 وحدة دولية/100 مل.
  5. قم بتخدير الفئران ب 3٪ من الإيزوفلوران و0.5 لتر/دقيقة من الأكسجين لمدة تقارب 30 ثانية، ثم وضع الرأس في قناع تخدير مع الحفاظ على تركيز الإيزوفلوران عند 1.5٪.
  6. قم بتعقيم جلد الصدر والبطن بمحلول أنيرديان وغطه بمنشفة معقمة.

2. الإجراءات الجراحية

  1. استئصال البطن الوسيط: ارفع الجلد حوالي 2 سم تحت النتوء الزيفوئيد وقم بعمل شق بطول 1.5 سم على طول الخط الأوسط. افتح المنطقة الخالية من العضلات على طول الخط الألبا بما يكفي لتناسب الرافعة (حوالي 1.5 سم).
  2. الخروج من المعدة: باستخدام مسحة قطنية مبللة، ادفع القولون وجزء من الأمعاء الدقيقة نحو تجويف الحوض. ارفع البطن بلطف إلى شق البطن باستخدام ملقط عريض الطرف وغطه بمنشفة ثقب جديدة مقطوعة من الشاش المبلل. قم بتشريح الرباط الكبدي المعدي، والرباط الطحالي، والاتصال الجزئي للأوعية الدموية بين الجيب المعدي والبنكرياس وقطع بجهاز تخثر كهربائي.
    ملاحظة: وضع ستائر جديدة إضافية أو كرات قطنية مبللة في الوقت المناسب أثناء الخروج والشق في المعدة يمكن أن يقلل بشكل فعال من التلوث الناتج عن محتويات المعدة.
  3. حدد مدى الاستئصال على طول الانحناء الأكبر للمعدة، بحيث يكون قاع الرحم على بعد 3 مم من المريء والأنف 3 مم قريبا من البواب.
  4. بالنسبة لمجموعة SC:
    1. ضع مشبك الرباط القابل للاستخدام مرة واحدة مع أداة تطبيق على طول المسافة المحددة مسبقا للاستئصال؛ أعد تحديد مسافة موقع المشبك بعناية بين المريء والبواب، ثم قم بتثبيت المشبك.
      ملاحظة: قبل القص، يجب تأكيد خط الاستئصال بشكل تعاوني من قبل كل من المساعد والمشغل لضمان هوامش الاستئصال الدقيقة.
    2. ضع كرة قطنية مبللة حول المعدة لمنع تلوث تجويف البطن بمحتويات المعدة المتسبكة؛ ثم قطع بسرعة حوالي 80٪ من نسيج المعدة في الجانب الأكبر من الانحناء من مشبك الربط.
    3. قم بتعقيم الشق ثلاث مرات باستخدام مسحات أنيردية وامسح مرة واحدة بمسحة ملحية (الشكل 1).
  5. بالنسبة لمجموعة الإس إس:
    1. ثبت جسم المعدة على طول المسافة المحددة مسبقا للاستئصال.
    2. ضع كرة قطنية مبللة حول المعدة لمنع تلوث تجويف البطن بمحتويات المعدة المتسبكة؛ ثم استخدم مقص العيون لقطع حوالي 80٪ من نسيج المعدة بسرعة في جانب الانحناء الأكبر.
    3. افتح الملقط ونظف محتويات المعدة بمسحات ملحية.
    4. قم بخياطة الشق مرتين باستخدام غرز جراحية ممتصة بحجم 6-0 باستخدام تقنية مستمرة من طبقة واحدة. قم بأول غرزة مستمرة بإدخال الإبرة بشكل عمودي على حافة الشق، على مسافة 2-3 مم، مرورا بسماكة جدار المعدة، والخروج عند نقطة متساوية المسافة على الجانب المقابل. ثبت الغرزة الأولى بعقدة جراحية، واستمر في الغرز باستخدام عضات متناوبة بطول 2 مم تحت توتر منتظم لمنع تجعد الأنسجة أو الفجوات، وإنهاء بعقدة مربعة (3-4 رميات).
    5. نفذ الغرز المستمر الثاني بالتوازي مع الأول باستخدام نمط إزاحة لتعزيز التغطية والحفاظ على تباعد وتوتر العضات الثابتين مع تجنب التداخل أو التواء.
      ملاحظة: احمرار كرات القطن أو الشاش يشير إلى نزيف كبير، خاصة في موقع الشق المعدي؛ يتطلب الأمر تخثر كهربائي كاف للشق قبل الخياطة لتحقيق التخفيص.
    6. قم بتعقيم الشق ثلاث مرات بمسحات أنيردية وامسح مرة واحدة بمسحة ملحية (الشكل 2).
  6. بالنسبة لمجموعة SH:
    1. قم فقط بعملية تثبيت المعدة وأطلق بعد 10 دقائق.
    2. أعد المعدة إلى تجويف البطن في الموضع الصحيح وخياطة عضلية العموم والجلد بغرز جراحية 5-0، ثم التعقيم، وإنهاء الإجراء.
      ملاحظة: تم إجراء عمليات لجميع الفئران خلال أسبوع واحد لتسهيل المراقبة الفعالة للوزن وتناول الطعام بعد العملية.

3. الرعاية بعد العملية

  1. ضع الفئران في صندوق حث من الأكسجين النقي. يمكن إيقاظها بعد حوالي دقيقتين. أزل الفئران وضعها على وسادة تدفئة. راقب حالة الوعي والتنفس عن كثب، ثم أعدهم إلى القفص عندما يستطيعون الحركة.
  2. أعط حقنة تحت الجلد واحدة من محلول الجلوكوز الملحي (5٪ جلوكوز و4.5٪ كلوريد الصوديوم) بجرعة 20 مل/كغ.
  3. أعط حقنة تحت الجلد من الميلوكسيكام بجرعة 4 ملغ/كغ (تركيز: 0.4 ملغ/مل) مباشرة قبل استعادة الفئران للوعي بعد الجراحة. كرر هذه الحقنة كل 24 ساعة لمدة ثلاثة أيام متتالية.
  4. توفير محلول غذائي لأبوت ونظاما غذائيا عالي الدهون خلال الأيام الثلاثة الأولى بعد الجراحة؛ استبدل المحلول الغذائي بالماء في اليوم الرابع بعد العملية.
  5. أعط البنسلين (30,000 وحدة حركية/كغ) داخل العضلات لمدة 3 أيام متتالية بعد العملية لمنع العدوى.
  6. راقب الفئران يوميا للحالات العامة وقدم علاجا سريعا للأعراض عند الحاجة.

4. مؤشرات الكشف

ملاحظة: البقاء على قيد الحياة لمدة 4 أسابيع دون مضاعفات كبيرة بعد العملية في الفئران يعتبر جراحة ناجحة.

  1. سجل وزن ومدة الجراحة وقت العملية، وراقب الوزن، وتناول الطعام، معدل الوفيات، وحدوث المضاعفات الشديدة كل أسبوع لكل مجموعة لمدة 12 أسبوعا بعد العملية.
  2. إجراء تقييمات الأيض وعبور الأمعاء مثل اختبار تحمل الجلوكوز داخل الصفاق (ipGTT)، اختبار تحمل الأنسولين (ITT)، واختبار عبور الأمعاء الدقيقة في الأسبوع الثاني عشر.
    1. بالنسبة ل ipGTT: فأرة سريعة لمدة 12 ساعة. قص قطعة بحجم 1 مم من طرف الذيل وقس مستوى السكر في الدم الصائم (الوقت 0). أعط محلول جلوكوز بنسبة 20٪ داخل الصفاق بجرعة 2 جرام/كجم من وزن الجسم. قس مستويات سكر الدم عند 15، 30، 60، 90، و120 دقيقة بعد الجرعة.
    2. بالنسبة ل ITT: فأرة سريعة لمدة 6 ساعات. قس مستويات الجلوكوز في الدم أثناء الصيام. أعط محلول الأنسولين (0.075 U/mL) عن طريق الحقن داخل الصفاق بجرعة 0.5 U/kg وزن الجسم. قس مستويات الجلوكوز في الدم عند 15، 30، 60، 90، و120 دقيقة بعد الحقن.
    3. للعبور عبر الأمعاء الدقيقة: فئران سريعة لمدة 12 ساعة. أعط 10٪ تعليق مسحوق كربون عبر الزجاج الفموي بجرعة 10 مل/كجم من وزن الجسم. بعد 30 دقيقة، قم بقتل الفئران. قم بإزالة الأمعاء الدقيقة السليمة من البواب إلى الطرف القريب من الأثثارة. قس نسبة عبور الأمعاء كأنها المسافة من البواب إلى الحافة الأمامية لتعليق الكربون مقسوما على إجمالي طول الأمعاء الدقيقة.
  3. التضحية بالفئران لمراقبة البنية التشريحية لمعدة الأكمام وشكل الأمعاء الدقيقة.
  4. قم بصبغ عينات الكبد بصبغ الهيماتوكسيلين-إيوزين (HE) وصبغ زيت أحمر O باللون الأحمر، وجمع عينات الدم للكشف عن الكوليسترول الكلي في المصل (TC)، والدهون الثلاثية (TG)، والأحماض الدهنية الحرة (FFA).

5. التحليل الإحصائي

  1. عبر عن جميع المتغيرات المستمرة (وزن الجسم، كمية الطعام، نسبة عبور الأمعاء الدقيقة، مستويات الجلوكوز في الدم، والمعايير المصلية) كمتوسط ± انحراف معياري.
  2. تحليل وزن الجسم الطولي وبيانات تناول الطعام باستخدام قياسات متكررة ثنائية الاتجاه ANOVA (عوامل: المجموعة والوقت).
  3. تحليل نسب عبور الأمعاء الدقيقة والمعلمات المصلية باستخدام تحليل التحليل السطحي أحادي الاتجاه.
  4. للحصول على بيانات اختبار تحمل الجلوكوز داخل الصفاق (ipGTT) واختبار تحمل الأنسولين (ITT)، احسب المساحة تحت المنحنى (AUC) لكل شخص وقارن قيم AUC المجموعة باستخدام تحليل الحمض الداخلي الأحادي الاتجاه.
  5. قم بإجراء مقارنات زوجية بعد الحدوث مع تصحيح بونفيروني بعد نتائج مرور قلوب النوم العميق المهمة.
  6. عرف الدلالة الإحصائية ك p < 0.05. أجر جميع التحليلات الإحصائية باستخدام GraphPad Prism 9 (GraphPad Software، سان دييغو، كاليفورنيا، الولايات المتحدة الأمريكية).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم تعريف معيار نجاح الجراحة بأنه الفئران التي تعيش لأكثر من 4 أسابيع بعد الجراحة دون التعرض لمضاعفات خطيرة. الوفاة التي حدثت بعد الأسبوع الرابع بعد العملية تعزى إلى مضاعفات. خلال 12 أسبوعا متتاليا من المراقبة بعد العملية، تم تسجيل وفاة واحدة في مجموعة SC في اليوم الرابع والعشرين بعد العملية بسبب عدوى في الجرح والبطن ناجمة عن الغرز، بينما نجت الفئران التسعة المتبقية حتى الأسبوع الثاني عشر. في مجموعة SS، مات خمسة فئران إجمالا، وكانت نقاط الوفاة في الأيام الخامسة والسابعة والثانية عشرة بعد ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تم إنشاء نموذج للفأر باستخدام مشابك رباط ذات مرة واحدة، مما أدى إلى إجراء جراحي بسيط وفعال وقابل للتكرار. أظهرت التقنية المعتمدة على المقطع فعالية علاجية مماثلة لنموذج SG التقليدي المعتمد على الخياطة، مع تقليل كبير من وقت العملية وتحسين معدلات البقاء بعد العملية.

التقنية الجراحية لنموذج غرز SG للفأر ليست معقدة بطبيعتها، ويمكن للعديد من الجراحين ذوي الخبرة في خياطة الأوعية الدموية إجراء هذه العملية بنجاح. أفادت مراجعة شملت 82 دراسة عن معدل وفيات متوسط بعد العمل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

المؤلفون لا يفرضون أي تضارب مصالح.

شكر وتقدير

وقد دعم هذا العمل مؤسسة العلوم الطبيعية في مقاطعة قوانغدونغ (2021A1515011261)، ومؤسسة قوانغتشو للبحوث الأساسية والتطبيقية (2024A03J0659)، ومشروع قوانغتشو للعلوم والتكنولوجيا الصحية (20251A011020).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الحل الأنيرديبروسبيريشHC-3566تعقيم جلد الصدر والبطن
75٪ كحولماكلينE885996-500 ملنظف طاولة الجراحة
آلة تخدير الحيواناتيويان بايويويان-ABSمعدات تخدير الفئران
المطبقهانغتشو كانغجيΦ 10 مم ومرة؛ 330 ممأداة تطبيق مشبك رباط ذات مرة واحدة
مشبك رباط قابل للتخلصهانغتشو كانغجيKJ-JZJ02XLأنشئ كمة معدية
قلم الرصاص الكهربائي الجراحييويان بايوجيميني (تعمل بالبطارية)التخثر الكهربائي أثناء العملية.
تأكدمختبرات أبوتH20181147النظام الغذائي السائل
جهاز قياس الجلوكومتر وشرائط الاختبارACCU-CHEKأرشدنيمراقبة سكر الدم
برنامج جراف بادسان دييغو، كاليفورنيا، الولايات المتحدة الأمريكيةجراف باد بريزم 9إحصائيات البيانات والتحليل
وسادة التدفئةRTtechRT-jr01حافظ على درجة حرارة جسم الفأر دافئة أثناء الجراحة
النظام الغذائي عالي الدهونشركة ريسيرش دييتس، إنكD1249260 كيلو سائل نسبة دهون
إيزوفلورانالدفع الخلفيR510-22أدوية التخدير
ميلوكسيكامعلاء الدينM129228-25 جرامأدوية مسكنة بعد العملية
أدوات الجراحة المجهريةبيوتايمFS500إجراء جراحة حيوانية
مسحب الفأرةتشيو بوكCP-ckqسحب البطن الجراحي في الفئران
الغرز الجراحيةجينهوان الطبيCR537/KCR631الغرز الجراحية

المراجع

  1. Ghiassi, S., Morton, J. M. Safety and efficacy of bariatric and metabolic surgery. Curr Obes Rep. 9 (2), 159-164 (2020).
  2. Lutz, T. A., Bueter, M. The use of rat and mouse models in bariatric surgery experiments. Front Nutr. 3, 25(2016).
  3. Kucharczyk, J., Nestoridi, E., Kvas, S., Andrews, R., Stylopoulos, N. Probing the mechanisms of the metabolic effects of weight loss surgery in humans using a novel mouse model system. J Surg Res. 179 (1), e91-e98 (2013).
  4. Yin, D. P., et al. Assessment of different bariatric surgeries in the treatment of obesity and insulin resistance in mice. Ann Surg. 254 (1), 73-82 (2011).
  5. Bachmann, R., Meile, T., Lange, J., Widmayer, P., Königsrainer, A., Küper, M. A. Surgical technique of a vertical sleeve gastrectomy in mice. J Investig. Surg. 26 (5), 261-265 (2013).
  6. Hao, Z., Townsend, R. L., Mumphrey, M. B., Morrison, C. D., Münzberg, H., Berthoud, H. -R. RYGB produces more sustained body weight loss and improvement of glycemic control compared with VSG in the diet-induced obese mouse model. Obes Surg. 27 (9), 2424-2433 (2017).
  7. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nat Protoc. 10 (3), 495-507 (2015).
  8. Chambers, A. P., et al. The effects of vertical sleeve gastrectomy in rodents are ghrelin independent. Gastroenterology. 144 (1), 50-52.e5 (2013).
  9. Schlager, A., et al. A mouse model for sleeve gastrectomy: applications for diabetes research. Microsurgery. 31 (1), 66-71 (2011).
  10. Jahansouz, C., Staley, C., Bernlohr, D. A., Sadowsky, M. J., Khoruts, A., Ikramuddin, S. Sleeve gastrectomy drives persistent shifts in the gut microbiome. Surg Obes Relat. Dis. 13 (6), 916-924 (2017).
  11. Wei, J. -H., Yeh, C. -H., Lee, W. -J., Lin, S. -J., Huang, P. -H. Sleeve gastrectomy in mice using surgical clips. J Vis Exp. (165), e60719(2020).
  12. Stevenson, M., Lee, J., Lau, R. G., Brathwaite, C. E. M., Ragolia, L. Surgical mouse models of vertical sleeve gastrectomy and Roux-en Y gastric bypass: a review. Obes Surg. 29 (12), 4084-4094 (2019).
  13. Frohman, H. A., Rychahou, P. G., Li, J., Gan, T., Evers, B. M. Development of murine bariatric surgery models: lessons learned. J Surg Res. 229, 302-310 (2018).
  14. Kawano, Y., Ohta, M., Hirashita, T., Masuda, T., Inomata, M., Kitano, S. Effects of sleeve gastrectomy on lipid metabolism in an obese diabetic rat model. Obes Surg. 23 (12), 1947-1956 (2013).
  15. Yousaf, M. S., et al. Short-Term Outcomes of Laparoscopic Sleeve Gastrectomy for Weight Loss and Gastroesophageal Reflux Disease. Cureus. 17 (1), e76943(2025).
  16. Aktekin, A., Kazan, K., Gunes, P., Yekrek, M., Muftuoglu, T., Saglam, A. Hematological, biochemical, and immunological laboratory and histomorphological effects of sleeve gastrectomy on female rats. Indian J Surg. 77 (S2), 557-562 (2015).
  17. Himel, A. R., et al. Feature article: splenectomy fails to attenuate immuno-hematologic changes after rodent vertical sleeve gastrectomy. Exp Biol Med. (Maywood). 244 (13), 1125-1135 (2019).
  18. Blok, N. B., et al. Towards a better mouse model of vertical sleeve gastrectomy. Surg Obes Relat. Dis. 21 (11), 1198-1209 (2025).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

اتصل بنا
أوصِ بها للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

2026 © حقوق الطبع والنشر MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.