مقالة مراجعة

بروتوكول تحليل لوحة الشطرنج لتخفيف الأجار لتركيبات المضادات الحيوية القائمة على فوسفوميسين ضد الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم

DOI:

10.3791/70465

يونيو 22, 2026

في هذه المقالة

ملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا، نقدم بروتوكولا لتقييم النشاط التآزري للفوسفوميسين مع السيفترياكسون، الميروبينيم، والجنتاميسين ضد عزلات الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم باستخدام طريقة تخفيف الأجار. لوحظ التآزر مع الميروبينيم والجنتاميسين، لكن ليس مع السيفترياكسون.

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نظرا لمحدودية خيارات العلاج لأنواع السرطان المقاوم للكرباببينيم، اكتسبت أنظمة العلاج المركب أهمية متزايدة. هدفت هذه الدراسة إلى دراسة معدلات مقاومة الفوسفوميسين وتقييم التفاعلات التآزرية في المختبر بين فوسفوميسين مع الميروبينيم، والجنتاميسين، والسيفترياكسون ضد عزلات الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم. تم تضمين ستين سلالة من الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم تم عزلها من عينات سريرية مختلفة (بول، دم، استنشاق، جرح، سائل دماغي شوكي، شفط داخل القصبة الهوائية) تم الحصول عليها من مرضى في الأجنحة السريرية ووحدات العناية المركزة في مستشفيات كلية الطب بجامعة ديجل. تم تحديد الأنواع باستخدام نظام تحديد ميكروبي آلي. تم إجراء اختبار قابلية المضادات الحيوية وتأكيد مقاومة الكاربابينيم عن طريق انتشار الأقراص باستخدام الإرتابينيم، الإيميبينيم، والميروبينيم. تم تقييم مقاومة فوسفوميسين والتفاعلات بين المضادات الحيوية باستخدام تخفيف الأجار. بالإضافة إلى ذلك، تم تقييم تركيبات المضادات الحيوية عبر تدرجات تركيز مزدوجة متسلسلة باستخدام بروتوكول التخفيف القائم على الأجار، وتم حساب مؤشرات التركيز المثبطة الجزئية (FICI) لتحديد التآزر أو اللامبالاة أو العداوة. كانت معدلات المقاومة 76.6٪ للفوسفوميسين، 61.6٪ للميربينيم، 85.0٪ لجنتاميسين، و98.3٪ للسيفترياكسون. لوحظت تفاعلات تآزرية في 35٪ من العزلات لتركيبة فوسفوميسين–ميروبينيم، و33.4٪ لتركيبة فوسفومايسين–جنتاميسين، و1.7٪ لتركيبة فوسفوميسين–سيفترياكسون. تم اكتشاف التناغم في عزل واحد فقط في تركيبة فوسفوميسين–ميروبينيم. أظهرت تركيبات فوسفوميسين مع الميروبينيم والجنتاميسين نشاطا تآزريا في المختبرات ضد الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم. هناك حاجة إلى المزيد من الدراسات المخبرية لتأكيد هذه النتائج.

المقدمة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تتكون عائلة الإنتوباكتيراليس من مجموعة متنوعة للغاية من العصيات سالبة الجرام، العديد منها ذو أهمية سريرية كبيرة1. من بينها، الإشريكية القولونية هي النوع الأكثر عزلة في مختبرات الأحياء الدقيقة السريرية، وترتبط على نطاق واسع بالعدوى التي تشمل تقريبا جميع أنظمة الأعضاء، بما في ذلك التهابات المسالك البولية، والتهابات الجروح، والالتهاب الرئوي لدى المرضى ذوي المناعة الضعيفة، والتهاب المعدة والأمعاء، والتهاب السحايا الوليد. كما أنه سبب رئيسي لتعفن الدم سالب الجرام والصدمة التعفنية الناتجة عن السموم الداخلية. بعيدا عن الطب البشري، يعد الإشريكية القولونية أيضا مسببا بيطريا مهما، يسبب التهابات تنفسية وجهازية في أنواع مختلفة من الحيوانات، بما في ذلك الخيول، مما يوسع منظور نطاق العائل لمرض الإشريكية القولونية عبر المضيفين البشر والحيوانيين2،3،4.

ارتبطت الأنتوباكتيرالات المنتجة لبيتا-لاكتامايز الطيف الممتد (ESBL)، وخاصة الإشريكية القولونية وكليبسيلا الرئوية، بزيادة الوفيات، وطول مدة الاستشفاء، وارتفاع تكاليف الرعاية الصحية. الاستخدام الواسع للمضادات الحيوية هو محرك رئيسي لمقاومة الأدوية المتعددة (MDR) بين هذه الكائنات1. تشمل آليات المقاومة إنتاج الكاربابينيماز، وESBLs، وإنزيمات تعديل الأمينوجليكوزيد (AMEs)، والطفرات التي تمنح مقاومة للكينولونات، وتغيرات في أنظمة البورين والتدفق العالي. في الإشريكية القولونية وكليبسييلا الرئوية، تكون المقاومة بشكل رئيسي بواسطة البلازميدات، مما يسهل نقل الجينات الأفقي. كما يتم الإبلاغ بشكل متزايد عن مثل هذه الصفات المقاومة في الإشريكية القولونية ذات الأصل الحيواني، بما في ذلك معزولات الأبقار، مما يدعم مفهوم الصحة الواحدة ويشير إلى خطر محتمل للانتقال من الحيوانات المنشأ2،3.

تعتبر الكاربابينيم العوامل الأخيرة للعدوى الشديدة المقاومة للأدوية المتعددة. ومع ذلك، ظهرت الحشرات المقاومة للكاربابينيم (CRE) كمصدر قلق صحي عالمي رئيسي4. تتساهم هذه المقاومة بشكل رئيسي مع الكاربابينيمات، بما في ذلك الميتالو-بيتا-لاكتامازات من الفئة B، مما يساهم في ظهور الأنماط الظاهرية المقاومة للأدوية والبان5.

سلالات MDR E. coli تحد بشكل كبير من الخيارات العلاجية وتعقد إدارة العدوى. وهذا يبرز الحاجة إلى استراتيجيات علاجية بديلة مثل العلاجات المركبة لتحسين النتائج السريرية. علاوة على ذلك، يتم الإبلاغ بشكل متزايد عن هذه السلالات المقاومة ليس فقط من الأماكن السريرية بل أيضا من مصادر غذائية مثل منتجات الألبان. هذا يوسع السياق الوبائي لانتشار مقاومة المضادات الميكروبية ويدعم العلاج المركب كاستراتيجية محتملة للحد من انتشاره وتأثيره السريري 6,7. الأمينوجليكوسيدات، التيجسيكلين، والبوليميكسينات هي عوامل علاجية شائعة الاستخدام في عدوى MDR8. كما أظهر فوسفوميسين نشاطا ضد الإشريكية القولونية المنتجة ل ESBL، خاصة في التهابات المسالكالبولية.

الفوسفوميسين، الذي اكتشف لأول مرة في عام 1969، يثبط تخليق جدار الخلايا البكتيري المبكر وقد عاد للظهور كعامل واعد في العلاج المركب10. تم الإبلاغ عن تأثيرات تآزرية بين الفوسفوميسين والأمينوجليكوسيدات أو β-لاكتام في الكائنات MDR11,12. بالإضافة إلى ذلك، تم تقييم فوسفوميسين في مجموعات سريرية كبيرة، مما أظهر فعالية في العدوى الشديدة عند استخدامه منفردا أو في أنظمة مركبة13. ومع ذلك، فإن معظم الدراسات السابقة تشمل مجموعات بكتيرية غير متجانسة، ولا تزال البيانات التي تتناول الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم محدودة.

تشمل طرق اختبار الحساسية المضادة للميكروبات القياسية تخفيف الأجار، وتخفيف المرق، وانتشار القرص. تمكن اختبارات التركيبات القائمة على تخفيف الأجار من التقييم الكمي للتفاعلات المضادة للميكروبات من خلال تحديد الميكروبات الدقيقة وحساب FICIs. توفر الطرق البديلة مثل إيقاف الزمن والانتشار التدرج بيانات تفاعل ديناميكية أو مبسطة، لكنها قد تختلف في قابلية التكرار والتوحيد13،14. هذا البروتوكول مناسب جدا لتقييم التركيبات المحددة من المضادات الحيوية في المختبر. ومع ذلك، لا يعكسبشكل كامل الحالات الدوائية الحية. من بين هذه الاستخدامات، يعتبر تخفيف الأجار طريقة مرجعية لتحديد MIC؛ ومع ذلك، لا يزال استخدامه في تقييم نشاط تركيبات فوسفوميسين ضد الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم محدودا.

توفر هذه الدراسة تقييما منهجيا للتوليفات القائمة على الفوسفوميسين مقابل عزلات الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم المثبتة سريا. تم استخدام نهج لوحة شطرنج تخفيف الأجار الموحد، حيث يولد بيانات تفاعل مقارن مباشرة تحت ظروف مدارية مضبوطة.

لذلك، تختبر الدراسة الحالية فرضية أن فوسفوميسين مع الميروبينيم أو الجنتاميسين أو السيفترياكسون يظهر نشاطا تآزريا في المختبر ضد عزلات الإشريكية القولونية المزمنة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

مراجعة ومنظور

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم الحصول على الموافقة على هذه الدراسة من لجنة أخلاقيات البحث السريري غير التدخلي في كلية الطب بجامعة ديجله (القرار رقم: 100، التاريخ: 01.01.2021).
البروتوكول أدناه يصف طريقة مربعة موحدة لتخفيف الأجار لتقييم تآزر تركيبات الفوسفوميسين ضد عزلات الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم.

مجموعة المعزولات
بين 15.02.2021 و15.12.2021، تم تضمين ما مجموعه 60 سلالة من الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم تم جمعها من عينات سريرية مختلفة (بول، دم، شفاط، جرح، سائل دماغي شوكي، واستنشاق داخل القصبة الهوائية) تم الحصول عليها من المرضى الداخليين في مستشفيات كلية الطب بجامعة ديجل. تم التعرف على الهوية باستخدام نظام مطيافية الكتلة MALDI-TOF. عندما تم استرداد عدة عزلات من نفس المريض، تم تضمين العزل الأول فقط. تم استبعاد عينات من العيادات الخارجية والمرضى الذين تم إدخالهم للمستشفى لأقل من 48 ساعة. تم تضمين جميع عزلات الإشريكية القولونية المقاومة للكاربابينيم التي استوفت معايير الإدراج المحددة مسبقا خلال فترة الدراسة بشكل متتالي؛ لذلك، تم تحديد حجم العينة بناء على إجمالي عدد العزلات المؤهلة المتاحة، ولم يتم إجراء حساب مسبق لحجم العينة. تم استخدام سلالات التحكم في الجودة من E. coli ATCC 13846 وE. coli ATCC 25922. تم اختبار سلالات مراقبة الجودة بالتوازي مع العزلات السريرية تحت ظروف تخفيف آجار متطابقة. تم تقييم جميع الجولات من قبل مراقبين مستقلين. أظهرت نتائج سلالات مراقبة الجودة أنماط تثبيط النمو المتوقعة في جميع التجارب، ولم تلاحظ نتائج خارج النطاق أو غير صالحة.

تم تنفيذ جميع الإجراءات المتعلقة بالعزلات السريرية تحت ظروف السلامة البيولوجية المستوى 2 (BSL-2). تم استخدام معدات الحماية الشخصية المناسبة (معطف المختبر، القفازات، وحماية العين)، وأجريت جميع عمليات التلاعب في خزانة سلامة بيولوجية معتمدة.

تحديد الأنواع واختبار الحساسية المضادة للميكروبات
تم إجراء اختبار مقاومة الكاربابينيم وقابلية الميكروبات باستخدام نظام آلي للتعرف على الميكروبات واختبار القابلية. تم تأكيد مقاومة الكاربابينيم التي اكتشفها النظام من خلال اختبار انتشار الأقراص باستخدام أقراص الإرتابينيم، الإيميبينيم، والميروبينيم. تم تفسير أقطار المناطق وفقا لنقاط التوقف EUCASTرقم 16,17 (الجدول 1). تم حفظ جميع العزلات في مرق الصويا التريبتيكي الذي يحتوي على 20٪ جليسرول وتم تخزينه عند −20 درجة مئوية.

الجدول 1: نقاط انقطاع قطر المنطقة للكاربابينيم التي تم تحديدها للإشريكية القولونية بواسطة اختبار انتشار القرص (DDT). معايير تفسير انتشار القرص المستخدمة في اختبار قابلية الكاربابينيم. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الجدول.

تم حضن زجاجات زراعة الدم المناسبة لعينات الأطفال والهوائية في نظام زراعة دم آلي. تم زراعة زجاجات إيجابية على EMB Agar، و5٪ Sheep Blood Agar، وSaboraud Dextrose Agar.

تم زراعة عينات البول والسحب الداخلي باستخدام طرق كمية، بينما تمت معالجة عينات أخرى بطرق شبه كمية. تم تقييم عينات الشفط الداخلي الهوائي باستخدام صبغة جرام، ولم تعتبر العينات ذات الأهمية إلا العينات التي حصلت على درجة بارتليت > 0 ودرجة موراي > 3 وكانت18 منها ذات دلالة.

بالنسبة لعينات الجروح، تم إجراء تقييم صبغة الجرام وفقا لنظام تقييم Q؛ تم تضمين عينات بدرجة Q أعلى من 019.

تم تحديد عزلات البكتيريا باستخدام تحليل الليزر المدعوم بالمصفوفة أو التأين في زمن الطيران الكتلي. اعتبرت درجة ≥2.0 موثوقة في تحديد الجنس ومستوى الأنواع، بينما أشارت الدرجات بين 1.7 و2.0 إلى تحديد موثوق على مستوى الجنس20,21. تم تضمين العزلات فقط التي حصلت على درجات ≥2.0.

تحديد قابلية الفوسفوميسين باستخدام طريقة تخفيف الأجار
وفقا للجنة الأوروبية لاختبار الحساسية المضادة للميكروبات (EUCAST)، يوصى باستخدام طريقة تخفيف الأجار لتحديد قابلية الفوسفوميسين لدى أفراد عائلة الإنتروباكتيراليس16.

تحضير فوسفوميسين ومحاليل فعالة أخرى من المضادات الحيوية
لطريقة تخفيف الأجار، استخدم مسحوق فوسفوميسين ثنائي الصوديوم من الملح هيدرات، واستخدم ماء مقطر معقم لإنتاج التخفيف. تم التخطيط لثمانية تخفيفات مختلفة لكل مضاد حيوي، تتراوح بين أربعة أضعاف تحت وثلاثة أضعاف فوق قيمة الحد الأقصى لتقنية MIC التي يحددها EUCAST.

تم تحضير محلول مخزون فوسفوميسين (يحتوي على 2560 ميكروغرام/مل فوسفوميسين) عن طريق إذابة 51.2 ملغ من فوسفوميسين ديسوديوم المعقم، وتم حسابه باستخدام صيغة الحجم/الوزن/الفعالية (الحجم (ملليتر) = الوزن (ملغ) × الفعالية (ميكروغرام/ملغ)/ التركيز (ميكروغرام/مل)) ووزن تحت ظروف معقمة، في 20 مل من الماء المقطر المعقم. كان من المخطط أن يكون التركيز النهائي 256 ميكروغرام/مل، نتيجة تخفيف محلول المخزون بمقدار 10 أضعاف عند إضافة MHA.

وبناء عليه، تم تحديد نطاقات التخفيف للفوسفوميسين (2-256 ميكروغرام/مل)، الميروبينيم والجنتاميسين (0.125–16 ميكروغرام/مل)، وسيفترياكسون (0.0625–8 ميكروغرام/مل).

تم تحضير التخفيفات بواسطة تخفيفات مزدوجة متسلسلة في أنابيب مخروطية معقمة تحتوي على 10 مل من الماء المقطر المعقم. تم إجراء ما مجموعه 7 عمليات تخفيف ثنائية متسلسلة في الأنابيب حتى تم الوصول إلى تركيز 2 ميكروغرام/مل. تم التخلص من ال 10 مل المتبقية في الأنبوب الأخير. وقد أدى ذلك إلى ثمانية تركيزات مختلفة للمضادات الحيوية: 256، 128، 64، 32، 16، 8، 4، و2 ميكروغرام/مل.

تم استخدام نفس الطريقة المستخدمة للفوسفوميسين مع المضادات الحيوية الأخرى لتحضير المحلول الأصلي. تم وزن 1.6 ملغ من المضاد الحيوي المسحوق للسيفترياكسون و3.2 ملغ للميروبينيم والجنتاميسين باستخدام ميزان دقيق. تم عمل سبع تخفيفات لكل مضاد حيوي. وبالتالي، تم الحصول على ثمانية تركيزات مختلفة من تخفيفات المضادات الحيوية للميروبينيم، والجنتاميسين، والسيفترياكسون (الشكل 1).

figure-protocol-1
الشكل 1: خطوات تحضير محاليل تخفيف الفوسفوميسين. خطوات التخفيف التسلسلي المستخدمة للحصول على تركيزات عاملة. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

تحضير وسط الأجار
تم تجهيز مولر-هينتون أغار (CAMHA) المعدل بنظام كاتيون وفقا لتعليمات الشركة المصنعة. تم تعقيمه عند 121 درجة مئوية و1 درجة حرارة لمدة 15–20 دقيقة باستخدام جهاز تعقيم (أوتوكلاف)، ثم تم الحفاظ عليه عند 45–55 درجة مئوية في حمام ماء.

تم تعقيم جميع المواد البيولوجية عن طريق التعقيم عند 121 درجة مئوية لمدة 15–20 دقيقة قبل التخلص منها. تم التخلص من النفايات المحتوية على المضادات الحيوية وفقا لبروتوكولات السلامة البيولوجية المؤسسية والنفايات الكيميائية.

خطوة حاسمة: حافظ على درجة حرارة الأجار بين 45–55 درجة مئوية قبل إضافة المضاد الحيوي. قد يقلل الحرارة الزائدة من نشاط الفوسفوميسين ويؤثر على نتائج MIC.

إضافة G6P إلى الوسط
لتحديد قابلية الفوسفوميسين، توصي EUCAST بإضافة 25 ميكروغرام/ملتر جلوكوز-6-فوسفات (G6P) إلى وسط الأجار والمرق5. مقابل كل لتر من الأجار، تم إذابة 25 ملغ من G6P في 20 مل من MHA، ثم تصفيت لتعقيمها، ثم خلطت في دفعة الأجار الرئيسية.

تحضير ألواح تخفيف الأجار
لتحديد قيم MIC الأحادية للفوسفوميسين، الميروبينيم، الجنتاميسين، والسيفتريأكسون، تم استخدام صفيحة بتري واحدة لكل تخفيف (مثلا، 8 تخفيفات للفوسفوميسين، تتراوح بين 2–256 ميكروغرام/مل). تم تسجيل تركيزات المضادات الحيوية على الطبقات.

في الدراسة المركبة، لوحظت تركيزات الفوسفوميسين والمضاد الحيوي الآخر الذي يتم التحقيق فيه على الصفائح (مثل فوسفوميسين 256 ميكروغرام/مل وميروبينيم 32 ميكروغرام/مل). وهكذا، تم تجهيز 64 طبقا لكل تركيبة، وتم تسجيل تركيز الفوسفوميسين والمضاد الحيوي الآخر المستخدم على الأطباق. تم تجهيز ما مجموعه 32 صفيحة ميروبينيم-جنتاميشينيتري للعلاج الأحادي و192 للدمج. تم رسم رسم قياسي يحتوي على 56 مربعا صغيرا بقطر 1 سم على سطح رخامي. تم تطعيم جميع الألواح مباشرة على هذا الرسم. لذا، تم توحيد القراءة والتطعيم (الشكل 2 والشكل 3).

figure-protocol-2
الشكل 2: مخطط قياسي تم إنشاؤه لأغراض التطعيم والقراءة. نظام موحد يستخدم للتطعيم والتقييم. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

figure-protocol-3
الشكل 3: طريقة تقييم ألواح تخفيف الأجار. تقييم نمو البكتيريا لتحديد MIC. F = فوسفوميسين; M = ميروبينيم. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

تم خلط ملليتر من محلول المضاد الحيوي مع 18 مل من محلول CAMHA المنصهر للحصول على التركيز النهائي العامل. تم إعداد هذا الوسط وفقا لإدخال العبوة من الشركة المصنعة، وتم تبريده إلى 45−55 درجة مئوية في حمام ماء ساخن. تم استخدام جزء واحد (2 مل) من خليط المضاد الحيوي، وخلط 9 أجزاء (18 مل) من MHA في أطباق البتري (تم تخفيف المضاد الحيوي بنسبة 1/10). تم توحيد حجم صفيحة الأجار النهائي إلى حوالي 20 مل لكل صفيحة (18 مل أجار + 2 مل محلول مضاد حيوي)، وتم حساب التركيزات النهائية للمضادات الحيوية بعد التخفيف. وبهذه الطريقة، تم تحقيق تركيزات مضادات حيوية في صفائح تخفيف الأجار (2–256 ميكروغرام/مل للفوسفوميسين، 0.0625–8 ميكروغرام/مل للسيفتريأكسون، و0.125–16 ميكروغرام/مل للميروبينيم والجنتاميسين). تم استخدام الألواح المحضرة من وسط بدون محلول مضاد حيوي كضوابط نمو (الشكل 4). تم السماح للخلطات المكونة من وسط ومحلول مضاد حيوي بالتصلب في درجة حرارة الغرفة.

figure-protocol-4
الشكل 4: وسط التحكم بدون محلول مضاد حيوي. يستخدم وسط بدون مضادات حيوية لتأكيد فعالية البكتيريا. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

الخطوة الحرجة: عمق الأجار غير المتساو أو خلط غير كاف للمضادات الحيوية قد يؤدي إلى تفسير غير دقيق لتقنية MIC ونتائج تفاعل خاطئة.

تحضير وتطعيم العزلات
تم تمرير السلالات النقية المخزنة سابقا على أغار دم الأغنام بنسبة 5٪ في درجة حرارة الغرفة وحضنتها عند 37 درجة مئوية لمدة 16–24 ساعة. تم تعليق مستعمرات الزراعة الجديدة في محلول ملحي معقم، وتم تحقيق عكارة مكفارلاند بنسبة 0.5 باستخدام قارئ بصري.

كانت طريقة تخفيف الأجار تتطلب لقاح بكتيري بمقدار حوالي 104 وحدة CFU لكل نقطة. قيمة مكفارلاند 0.5 تحتوي على حوالي 108 CFU/mL من البكتيريا. تم تحقيق كثافة بكتيرية تبلغ 107 وحدة CFU/mL عن طريق تخفيف المحلول بنسبة 1:10 باستخدام محلول ملحي معقم.

تم جمع 2 ميكرولتر من كل تعليق بكتيريا من الأنبوب باستخدام ماصة أوتوماتيكية. هذا الحجم يعادل تقريبا 2 × 104 وحدة CFU لكل مكان. تم إجراء التطعيم على مناطق مستهدفة من سطح الأجار، بدءا من الصفيحة التي تحتوي على أقل تركيز من فوسفوميسين وتدريجيا إلى الأعلى.

لذا، تم تعريف التطعيم بأنه CFU لكل نقطة، حيث تحتوي كل نقطة تطعيم على حوالي 104 وحدة CFU. تم الانتهاء من تطعيم كل تعليق بكتيريا خلال 15 دقيقة.

قبل تلقيح الألواح التي تحتوي على فوسفوميسين، تم تلقيح صفيحة مكافحة النمو للتحقق من وجود تلوث. تم السماح للتلقيح ليجف في درجة حرارة الغرفة. أجريت الحضانة عند 35–37 درجة مئوية لمدة 16–24 ساعة تحت ظروف هوائية، وتم قياس العكارة باستخدام مقياس كثافة معاير.

قد تسبب كثافة اللقاح الزائدة نموا متأخرا وصعوبة في تحديد نقطة النهاية. أعد ضبط العفارة إلى 0.5 ماكفارلاند وكرر التطعيم إذا حدث نمو متزامن.

اختبار التركيبة
تم استخدام المضادات الحيوية المطحونة ميروبينيم، فوسفوميسين، جنتاميسين، سيفترياكسون، وجلوكوز-6-فوسفات.

تم حساب كميات المضادات الحيوية باستخدام صيغة الحجم/الوزن/الفعالية. بعد تحضير المحاليل المخزنة، تم تحضير المحاليل المضادة الحيوية بتركيزات من ثلاثة تخفيفات ثنائية الأعلى وأربعة تخفيفات ثنائية تحت نطاق MIC الحساس. تم حساب ناطات التخفيف على النحو التالي: 2–256 ميكروغرام/مل للفوسفومايسين، 0.0625–8 ميكروغرام/مل للسيفترياكسون، و0.125–16 ميكروغرام/مل للجنتاميسين والميروبينيم (الجدول 2، الجدول 3، والجدول 4).

الجدول 2: تحضير المحاليل المضادة الحيوية لتركيبة فوسفوميسين-جينتاميسين. خطوات التحضير والتركيزات المستخدمة في المخزون والحلول العاملة. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الجدول.

الجدول 3: تحضير محاليل المضادات الحيوية لتركيبة فوسفوميسين-ميروبينيم. خطوات التحضير والتركيزات المستخدمة في المخزون والحلول العاملة. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الجدول.

الجدول 4: تحضير المحاليل المضادة الحيوية لتركيبة فوسفومايسين-سيفترياكسون. خطوات التحضير والتركيزات المستخدمة في المخزون والحلول العاملة. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الجدول.

في هذه الدراسة، تم إعداد محاليل منفصلة من مخزون فوسفوميسين للعلاج الأحادي والتجارب المركبة لتعويض الفروق في عوامل التخفيف النهائية أثناء الاختبارات القائمة على الأجار. تم استخدام محلول مخزون قياسي في تجارب العلاج الأحادي، بينما استخدم محلول مخزن معدل بتركيز أعلى في التجارب المركبة لتعويض التخفيف الإضافي أثناء خلط المضادات الحيوية مسبقا.

تم إعداد حلول المخزون كخطوة أولى للتخفيف التسلسلي. بالنسبة للفوسفوميسين، تم وزن 256 ملغ من المسحوق بدقة باستخدام ميزان تحليلي في ظروف معقمة وذاب في 50 مل من الماء المقطر المعقم مع خلط مستمر (محرك مغناطيسي) حتى يتم تحقيق الذوبان الكامل، مما أدى إلى تركيز نهائي يبلغ 5120 ميكروغرام/مل من فوسفوميسين ديسوديوم. تم تحضير محاليل منفصلة من جينتاميسين، ميروبينيم، وسيفترياكسون.

للتخفيف التسلسلي ذو الطبقات، تم تحضير سبعة أنابيب مخروطية معقمة تحتوي على 25 مل من الماء المقطر المعقم. من المحلول الأصلي، تم نقل 25 مل إلى الأنبوب الأول باستخدام ماصة قابلة للتعديل، تليها نقل متسلسل إلى أنابيب لاحقة لتحقيق تخفيف تسلسلي مزدوج. كان كل أنبوب يخلط جيدا مع خلاط دوامة لمدة 5–10 ثوان بعد كل خطوة نقل. من الأنبوب النهائي، تم التخلص من 25 مل للحفاظ على حجم متساو. وبهذه الطريقة، تم الحصول على سلسلة تخفيف، مما أدى إلى أدنى تركيز يبلغ 40 ميكروغرام/مل، وتم إعداد ثمانية تركيزات مختلفة من الفوسفوميسين.

تم تطبيق نفس الإجراء على جنتاميسين، الميروبينيم، والسيفترياكسون. ومع ذلك، وبسبب اختلافات في نطاقات التركيز المستهدفة، تم وزن 16 ملغ من جنتاميسين وميروبينيم (بنطاق 0.125–16 ميكروغرام/مل) و8 ملغ من سيفترياكسون (لنطاق 0.0625–8 ميكروغرام/مل) وإذابته بشكل منفصل في مياه مقطرة معقمة بحجم 50 مل تحت ظروف معقمة ودرجة حرارة الغرفة. تم إجراء تخفيفات ثنائية متسلسلة كما هو موضح أعلاه. أدنى تركيزات نهائية كانت 2.5 ميكروغرام/مل للجنتاميسين والميروبينيم، و1.25 ميكروغرام/مل للسيفترياكسون. لكل مضاد حيوي، تم تجهيز ثمانية أنابيب تحتوي على 25 مل بتركيزات مختلفة. وبما أن فوسفوميسين تم اختباره مع ثلاثة مضادات حيوية، تم تجهيز ما مجموعه 24 أنبوب تخفيف فوسفوميسين (8 × 3).

لتحضير الأجار، تم تبريد 18 مل من أغار مولر-هينتون مع جلوكوز-6-فوسفات (25 ميكروغرام/مل) مسبقا إلى 45–50 درجة مئوية ويتم تفريغها في أطباق بترى معقمة. بعد ذلك، أضيف 1 مل من محلول الفوسفوميسين و1 مل من المحلول المضاد الحيوي الثاني باستخدام ماصات معقمة. تم خلط الألواح بلطف بدوران دائري لضمان توزيع متجانس وتركها لتتصلب في درجة حرارة الغرفة. بسبب الخلط بنفس الحجم وإضافة الأجار، انخفضت تركيزات المضادات الحيوية بحوالي 9 أضعاف.

لاختبار التركيبة، تم دمج 1 مل من أدنى تركيز فوسفوميسين (40 ميكروغرام/مل) مع 1 مل من كل من ثمانية مخففات جنتاميسين (2.5–320 ميكروغرام/مل)، ثم أضيف إلى أطباق بتري منفصلة وخلطها بلطف. تم تكرار نفس الإجراء لتركيز الفوسفوميسين التالي (80 ميكروغرام/مل)، واستمر تدريجيا حتى 5120 ميكروغرام/مل، لضمان اختبار جميع تركيبات التركيز الممكنة. تم استخدام رأس ماصة معقمة جديد في كل عملية نقل لمنع التلوث المتبادل. تم إعداد 64 طبقا من بتري (8 × 8 تركيبات) لتركيبة فوسفوميسين–جنتاميسين (الجدول 5).

تم تطبيق نفس الإجراء على فوسفوميسين مع الميروبينيم والسيفترياكسون، مما أدى إلى 64 صحيحة لكل تركيبة مضاد حيوي (الجدول 6 والجدول 7).

الجدول 5: ترتيب تركيبة فوسفوميسين-جنتاميسين على وسط MHA. ترتيب تركيزات المضادات الحيوية على مولر-هينتون آجار. FF = فوسفوميسين؛ GN = جنتاميسين. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الجدول.

الجدول 6: ترتيب تركيبة فوسفوميسين-ميروبينيم على وسط MHA. ترتيب تركيزات المضادات الحيوية على مولر-هينتون آجار. FF = فوسفوميسين؛ MEM = meropenem. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الجدول.

الجدول 7: ترتيب تركيبة فوسفوميسين-سيفترياكسون على وسط MHA. ترتيب تركيزات المضادات الحيوية على مولر-هينتون آجار. FF = فوسفوميسين؛ CRO = سيفترياكسون. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الجدول.

بعد تحضير خلطات المضادات الحيوية، أضيف 18 مل من آجار مولر-هينتون المنصهر (45–50 درجة مئوية) إلى كل طبق يحتوي على 1 مل من خليط المضاد الحيوي، لضمان عدم تأثير ظروف الحرارة على نشاط المضاد الحيوي. وقد أدى ذلك إلى تخفيف تقريبي بمقدار 9 أضعاف لمحلول المضاد الحيوي الأولي.

للتقييم المنهجي، تم ترتيب الألواح بصيغة رقعة الشطرنج (تخفيف ثنائي الأبعاد). تم تنظيم تركيزات فوسفوميسين على المحور الرأسي (الصفوف A إلى H)، مع أعلى تركيز في الصف A وانخفاض التركيز نحو الصف H. تم ترتيب المضاد الحيوي الثاني على المحور الأفقي (الأعمدة 1–8)، مع تركيزات متزايدة من العمود 1 إلى العمود 8. لذلك، كان كل وضع مكافئ جيدا يمثل مزيجا فريدا من تركيزين من المضادات الحيوية، مما يسمح بتقييم شامل لتأثيرات التفاعل.

تقييم النتائج
تم تقييم نتائج التركيز المثبط الأدنى وفقا لتوصيات EUCAST v.11. أظهرت ألواح التحكم في النمو نموا بكتيريا مرئيا، بينما لم تظهر ألواح التحكم في التعقيم (غير الملقحة) أي نمو. تم تعريف MIC بأنه أدنى تركيز لا يحدث فيه نمو مرئي. في اختبارات التركيبة، تم تفسير تأثيرات التفاعل باستخدام قيم FICI. تم تعريف التآزر بأنه FICI ≤ 0.5، واللامبالاة > 0.5–4، والعداء بأنه > 4. بالنسبة للفوسفوميسين، اعتبرت قيم MIC ≤ 32 ميكروغرام/مل معرضة، وقيم 32 ميكروغرام/مل > مقاومة للتأثير. بالنسبة للجنتاميسين والميروبينيم (في التهابات التهاب السحايا)، اعتبرت قيم MIC ≤ 2 ميكروغرام/مل معرضة، وقيم 2 ميكروغرام/مل > مقاومة للخطر. بالنسبة للميروبينيم (في العدوى غير المرتبطة بالتهاب السحايا)، اعتبرت قيم MIC ≤ 2 ميكروغرام/مل معرضة للإصابة. اعتبرت القيم > 8 ميكروغرام/مل مقاومة، واعتبرت ≤ 1 ميكروغرام/مل للسيفترياكسون (للعدوى غير السحايا) معرضة للخطر، واعتبرت ≤ 2 ميكروغرام/مل للسيفترياكسون (لعدوى السحايا) معرضة للخطر، واعتبرت MIC > 1 ميكروغرام/مل للسيفترياكسون (لعدوى السحايا) مقاومة16.

تم إجراء التحليل الإحصائي لبيانات الدراسة باستخدام برامج إحصائية.
الإحصائيات: تم التعبير عن المتغيرات التصنيفية كأرقام ونسب مئوية. تم استخدام اختبار كاي-تربيع لبيرسون للمقارنات التي كانت فيها جميع أعداد الخلايا المتوقعة ≥5. تم استخدام اختبار فيشر الدقيق للتحليلات ذات العينات الصغيرة أو عندما كان عدد الخلايا المتوقع <5. على وجه التحديد، استخدم اختبار كاي تربيع للمقارنات العامة لمعدلات مقاومة الفوسفوميسين، بينما استخدم اختبار فيشر الدقيق لتحليلات المجموعات الفرعية لمعدلات التفاعل التآزري والإضافي والعداء بسبب التوزيعات منخفضة التردد في بعض التركيبات. تم اعتبار قيمة P ≤ 0.05 ذات دلالة إحصائية.

ملاحظة تفسير: لم تعتبر المستعمرات الصغيرة المنفردة ضمن مناطق التثبيط تنمو إلا إذا كانت متلاقية أو قابلة للتكرار في اختبارات متكررة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الاستنتاجات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تضمين ما مجموعه 60 عزلة مقاومة للكاربابينيم من الإشريكية القولونية في الدراسة. تم الحصول على جميع العزائل من المرضى المقيمين في وحدات العناية المركزة أو الأجنحة السريرية في مستشفيات كلية الطب بجامعة ديجل. شكل المرضى البالغون 83.3٪ من الحالات، بينما شكل المرضى الأطفال 16.7٪ (الجدول 8 والجدول 9). لوحظت مقاومة متعددة الأدوية في 80٪ (n = 48) من العزل.

الجدول 8: توزيع عزلات الإشريكية القولونية حسب مكان الدخول إل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن المؤلفون أنهم لا يواجهون تضارب مصالح.

شكر وتقدير

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وقد دعمت هذه الدراسة وحدة تنسيق مشاريع البحث العلمي بجامعة ديجله (DÜBAP) برقم المشروع SBE.21.004.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Agar DilutionCheckerboard AnalysisFosfomycin CombinationsCarbapenem Resistant Escherichia ColiAntibiotic SynergyAntibiotic ResistanceFractional Inhibitory ConcentrationMeropenem CombinationGentamicin CombinationCeftriaxone Combination

مقالات ذات صلة