يقوم هذا البروتوكول بتقييم تصريف اللمفاوم بعد الكسر من خلال دمج التصوير القريب من الأشعة تحت الحمراء بالإندوسيانين الأخضر (ICG) مع الموجات فوق الصوتية لقياس تطهير العقد اللمفاوية الأخمصية وتضخم العقد اللمفاوية الموضعية في الفئران.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
تقييم تصريف الجهاز اللمفاوي باستخدام تصوير ICG القريب من الأشعة تحت الحمراء والموجات فوق الصوتية بعد الكسر
* These authors contributed equally
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
غالبا ما ترافق الكسور الرضحية ضعف في وظيفة تصريف الجهاز اللمفاوي. يشير انخفاض تصريف الجهاز اللمفاوي وتضخم العقد اللمفاوية بعد الكسر إلى عمليات ديناميكية مستمرة للاستجابة الالتهابية الحادة وتجنيد الخلايا المناعية. تصف هذه المقالة طريقة تم فيها حقن 6 ميكرولتر من الإندوسيانين الأخضر بجرعة 0.2 ملغ/مل في المنطقة الأخمصية للفئران التي تخضع لجراحة كسر الظنبوب أو الوهمية. قام تصوير الفلورة تحت الحمراء القريبة بقياس إشارة ICG الأخمصية عند 0 ساعة و24 ساعة لحساب معدل التخلي البالغ 24 ساعة كقراءة لتصريف اللمفاوات في الفئران. تم استخدام الموجات فوق الصوتية في الوقت نفسه لإعادة بناء العقد اللمفاوية الماصمية ثلاثية الأبعاد، ومقارنة أحجامها، وتقييم التضخم الناتج عن الكسر. أظهرت النتائج أنه بعد الكسر، انخفض معدل إزالة الجهاز اللمفاوي بشكل ملحوظ، وكانت شدة الفلورة في ICG في المنطقة الأخمصية أعلى بشكل ملحوظ، كما أن حجم الخلايا اللولية المضوية المضغوطة تضخم بشكل ملحوظ. مقارنة بالطرق السابقة لقياس الجهاز اللمفاوي، مثل المقاطع النسيجة المرضية أو التصوير اللمفاوي، والتي غالبا ما تفشل في تحقيق الملاحظة الحية، والديناميكية، والملاحظة المستمرة، تظهر هذه الطريقة استقرارا عاليا وقابلية للتكرار. ومن الجدير بالذكر أنه يتيح المراقبة الديناميكية داخل الجسم الحي. لوظيفة تصريف الجهاز اللمفاوي، مما يوفر دعما فنيا قويا للتحقيق في التغيرات في ارتجاع اللمفاوات في نماذج الكسور.
المقدمة
غالبا ما تسبب الكسور الرضحية ضررا كبيرا في الأنسجة وتورما، مما يزيد من خطر المضاعفات مثل العدوى، والنخر، وعدم التماسك في العظم 1,2. أظهر غريجورز شتشيسني وآخرون أن خلل التصريف اللمفاوي، الذي يؤدي إلى وذمة الأنسجة، مرتبط بتأخر الشفاء3. تشير الدراسات إلى أنه خلال عملية شفاء الكسر، بالإضافة إلى إصلاح أنسجة العظام، يلعب الجهاز اللمفاوي في موقع الكسر دورا مهما أيضا. الأوعية اللمفاوية مسؤولة ليس فقط عن تصريف السائل الخلالي ومنع التورم4، بل أيضا عن تنظيم هجرة الخلايا المناعية وإزالة الفضلات الأيضية. ومع ذلك، في المراحل المبكرة من الكسر، يمكن للعوامل الالتهابية مثل TNF-α، IL-1، IL-6، وعامل تحفيز مستعمرة البلاعم (MCSF) أن تتلف خلايا البطانة اللمفاوية5، مما يؤدي إلى تغيرات مرضية مثل التنكس، والوذمة، والتليف6. أظهرت الدراسات ذات الصلة وجود خلايا بطانية لمفاوية في العظم والشواهقة، بالإضافة إلى الأنسجة الدهنية والعضلية المحيطة. علاوة على ذلك، يشارك التصريف اللمفاوي أيضا في تنظيم البيئة الدقيقة للورم الدموي بعد الكسر؛ يساعد التصريف الفعال من الخلايا اللمفاوية على بقاء الخلايا العظمية العظمية وتكاثر الخلايا الجذعية الميزنشيمية لنخاع العظم (BMSCs). أثناء الكسر، تعد عوامل الالتهاب المضادة للالتهاب (TNF-α، IL-1، وIL-6) وعوامل النمو (TGFβ1 وPDGF) التي تنتجها الخلايا المناعية في الموقع التالف عوامل تنظيمية مهمة لموت الخلايا المبرمجة في الخلايا العظمية وتكاثر BMSC8. أكد حسين أرسلان وعلماء آخرون التأثير السلبي للوذمة اللمفاوية على الخلايا العظمية. تسلط هذه النتائج البحثية الضوء على الدور المهم لتصريف الجهاز اللمفاوي في شفاء الكسور. لقد سهلت التطورات الحديثة في تصوير الفلورة بالأشعة تحت الحمراء القريبة من ICG المراقبة غير الجراحية في الوقت الحقيقي لديناميكيات تدفق اللمفاوات في كل من النماذج الحيوانيةوالبشر 9,10,11. تسمح هذه التقنية بتقييم كمي لانقباض الأوعية اللمفاوية، وسرعة التصريف، وسلامة المسار10،11. أظهرت دراسة باستخدام نماذج الفأر لالتهاب المفاصل والالتهاب أن تصوير ICG-NIR يمكنه التمييز بين الاستجابات اللمفاوية الحادة والمزمنة، مما يبرز أنماط تصريف مميزة أثناء إصابة الأنسجة والتعافي. علاوة على ذلك، ثبت أن التصوير اللمفاوي التابع للأشعة الليفية فعال في مراقبة التعافي الوظيفي بعد التصريف اللمفاوي اليدوي وفي تقييم فعالية العلاجات الموجهة لللمفاويات. يوفر التصوير بالموجات فوق الصوتية طريقة كمية تكميلية لتقييم شكل وحجم العقد اللمفاوية المتصيفة، بالإضافة إلى وذمة الأنسجة المرتبطة بضعف التصريف اللمفاوي. يتيح دمج تصوير التألق الشعاعي النووي مع الموجات فوق الصوتية تقييم وظيفة الجهاز اللمفاوي والتغيرات التشريحية في الوقت نفسه، مما يوفر نهجا متعدد الوسائط للتحقيق في ديناميكيات اللمفاوية في الجسم الحي. على الرغم من الاعتراف المتزايد بالدور الحاسم لخلل الوظائف اللمفاوية في الشفاء بعد الصدمة، لا تزال الطرق الموحدة والقابلة للتكرار لتقييم تصريف الجهاز اللمفاوي بعد الكسور غير موجودة. العديد من طرق التصوير الحالية تدخلية، تفتقر إلى الدقة المكانية الكافية، أو تفشل في مراقبة تدفق اللمفاوف ديناميكيا. لذلك، من المتوقع أن يعالج تطوير بروتوكول يجمع بين ICG-NIR والتصوير بالموجات فوق الصوتية هذا النقص المنهجي ويوفر أداة فعالة لتقييم التعافي اللمفاوي ومساهمته في إصلاح العظام.
تقدم هذه الدراسة إطارا مبتكرا يجمع بين تصوير التألق ICG-NIR والموجات فوق الصوتية عالية الدقة لتقييم تصريف الجهاز اللمفاوي بعد كسور الظنبوب في الفئران. يتيح هذا النهج التحليل شبه الكمي لكفاءة التصريف ويقيس حجم العقد اللمفاوية أثناء عملية شفاء الكسر. له أيضا بعض القيود. أولا، يستخدم ICG-NIR بشكل أساسي لتقييم الأوعية اللمفاوية السطحية، وقدرته على التصوير للهياكل العميقة محدودة. ثانيا، رغم أن التغيرات في حجم العقد اللمفاوية توفر بعض المعلومات، إلا أنها تفتقر إلى التحديد ولا يمكنها استبدال القياسات الوظيفية المباشرة بالكامل. تتمتع هذه المنهجية بإمكانيات ترجمية كبيرة وتحسن فهمنا لوظيفة الجهاز اللمفاوي في تجديد العظام.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
تمت الموافقة على تجارب الحيوانات من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوانات المؤسسية في مركز شنغهاي للكائنات النموذجية (رقم الموافقة: NMB-SMP-IACUC-01-0002-R02-03). تم استخدام فئران ذكور C57 مع نموذج كسر (عمر 6–8 أسابيع) في هذه الدراسة. المواد المستخدمة والمواد المستخدمة مدرجة في جدول المواد.
1. الرعاية قبل العملية
- تعويد الفئران لمدة أسبوع على الأقل مع الوصول المناسب للطعام والماء. قم بتعيين الحيوانات عشوائيا إلى مجموعة الكسور أو الوهمية باستخدام قائمة عشوائية مولدة بالحاسوب.
- ضع الفئران على وسادة تسخين للحيوان وحافظ على درجة حرارة ثابتة تبلغ 37 درجة مئوية.
- شغل جهاز التخدير الغازي وضع الفأر في غرفة الحث لمدة 5 دقائق عند 2٪–3٪ من الإيزوفلوران.
- بعد التحفيز، انتقل إلى 1٪–2٪ من الإيزوفلوران وحافظ على التخدير عبر مخروط الأنف حتى نهاية الإجراء.
2. الإجراءات التجريبية
ملاحظة: توحيد إعدادات التخدير، وجرعة وحجم ICG، وموقع وعمق الحقن، ووقت التعرض، وتعريف العائد على العائد، ومعايير فحص الموجات فوق الصوتية عبر جميع الجلسات لتقليل التفاوت بين الحيوانات.
- تصوير NIR-ICG
ملاحظة: الإجراء خطوة بخطوة للتصوير بالأشعة تحت الحمراء القريبة من ICG موضح في الشكل 1.- يزن 0.2 ملغ من الإندوسيانين الأخضر (ICG)، ثم انقله إلى أنبوب طرد مركزي دقيق بسعة 1.5 مل، ثم أذيبه في 1 مل PBS لتحضير محلول ICG بقوة 0.2 ملغ/مل. لف الأنبوب بورق الألمنيوم لحمايته من الضوء.
- شغل نظام التصوير وافتح FluoBeam v1.46. قم بضبط ارتفاع الكاميرا حسب الحاجة.
- ترطيب قطعة قطن ب 75٪ إيثانول وقم بتعقيم سطح الأخمص للكف الخلفي المصمم.
- باستخدام حقنة دقيقة بسعة 10 ميكرولتر، استنشق 6 ميكرولتر من محلول ICG. أدخل الإبرة بعمق حوالي 1 مم في سطح الأخمص وحقن المحلول بمعدل ثابت حتى يتم تسليم الحجم الكامل.
- في البرنامج، قم بتفعيل كل من وظائف "الكاميرا" و"الليزر". انقر على "تعديل" لإنشاء مجلد جديد واضبطه كدليل حفظ. حافظ على زمن التعريض نفسه لالتقاط الصورة عند 0 ساعة و24 ساعة.
- ضع الفأرة تحت الكاميرا في وضعية الاستلقاء، مع وضع الطرف الخلفي المصمم في مجال الرؤية. تأكد من أن الطرف الخلفي المصمم في مجال الرؤية.
- اضبط وقت التعريض إلى 30 مللي ثانية وحافظ عليه متطابقا لكل من الصور 0 ساعة و24 ساعة. التقاط صور لنفس عائد الحقن الأخمصي عند 0 ساعة و24 ساعة بعد الحقن لقياس شدة إشارة ICG. حافظ على وقت التعريض نفسه عند 0 ساعة و24 ساعة.
- عندما تكون الأوعية اللمفاوية للطرف الخلفي مرئية بوضوح في مجال الرؤية، انقر على "صورة" لالتقاط الصور.
- بعد التقاط الصورة، يتم تصدير البيانات واستخدام برنامج تحليل الصور لقياس شدة الفلورة عند 0 ساعة و24 ساعة، ثم حساب معدل إزالة الفلورة.
- افتح برنامج تحليل الصور.
- استورد صور الفلورة بالنقر على ملف → فتح، وافتح صورة الأخمص بحجم 0 ساعة تتوافق مع نفس الحيوان ونفس يوم الفحص (ثم افتح الصورة المطابقة بعد 24 ساعة).
- اختر اللعبة البيضاوية، ثم اضغط على تعديل → الاختيار → التحديد؛ اضبط العرض = 30 والارتفاع = 30، اختر البيضاوي، واضغط موافق.
- ضع الدائرة فوق منطقة خلفية.
- انقر على تحليل → قياس، وسجل القيمة المتوسطة في نافذة النتائج كشدة فلورية عند 0 ساعة خلفية (FI0hbg).
- ضع الدائرة فوق موقع الرصد المستهدف، اضغط على تحليل → قياس، وسجل قيمة المتوسط في نافذة النتائج ك FI0h.
- احسب شدة الفلورة المصححة عند 0 ساعة كأن FI0h المصحح = FI0h − FI0hbg.
- افتح الصورة المطابقة لمدة 24 ساعة وكرر الخطوات 3–7 للحصول على FI24h المصححة.
- احسب معدل الإزالة باستخدام شدة الفلورة المصححة خلفيا كما يلي: معدل الإزالة = [(FI0h − FI0hbg) − (FI24h − FI24hbg)] / (FI0h − FI0hbg) × 100٪.
- تصوير الموجات فوق الصوتية بوضع B
ملاحظة: الإجراء خطوة بخطوة لتصوير الموجات فوق الصوتية وتحديد العقد اللمفاوية موضح في الشكل 2.- شغل نظام الموجات فوق الصوتية، ووصل المحول، ووضع الفأرة بحيث يكون الطرف الخلفي مرئيا بوضوح. تحت التخدير المستمر، ضع الفأر في وضعية الاستلقاء على مرحلة التصوير، بحيث يكون الرأس موجها بعيدا عن المشغل والذيل نحو المشغل. ثني الركبة بحيث تواجه الحفرة الماصبية للأعلى وقليلا جانبيا، ووضع المحول فوق انخفاض الحفرة الماصصية.
- ضع جل الربط بالموجات فوق الصوتية على الطرف الخلفي المصمم.
- قم بتدوير المحول بحيث يبقى زاويته موازية للمحور الطولي للطرف الخلفي.
- اضبط مسافة المسح إلى 4 مم وحجم الخطوة إلى 0.04 مم. حدد العقدة اللمفاوية الماصمية في الصورة حسب موقعها التشريحي.
- ثبت الفأر بإمساك الذيل والطرف الخلفي المصمم بكلتا اليدين. لا تحرك الحيوان أثناء فحص المحول.
- احصل على صور. حدد العقدة اللمفاوية الماصبية كعقدة بيضاوية صغيرة أو عقدة على شكل حبة صغيرة ذات صدى متوسط إلى منخفض، أقل قليلا من الدهون المحيطة، ومحددة بوضوح عن العضلة المجاورة ذات الشكل الداكن والمخطط.
- تصدير الصور إلى برنامج إعادة بناء ثلاثي الأبعاد لمعالجة الصور ثلاثية الأبعاد.
- بعد إكمال الفحص ثلاثي الأبعاد على وحدة تحكم نظام التصوير بالموجات فوق الصوتية، احفظ المسح كمجموعة بيانات ثلاثية الأبعاد، وسجل هوية الحيوان، ورمز المجموعة، ونقطة الزمن (0 ساعة / 24 ساعة).
- تصدير البيانات الخام من وحدة التحكم إلى حاسوب التحليل، مع الحفاظ على هيكل المجلد الأصلي دون تغيير؛ استخدم مجلد واحد لكل حيوان في كل نقطة زمنية كلما أمكن.
- افتح برنامج إعادة البناء ثلاثي الأبعاد.
- انقر على "دراسة" للدخول إلى الوحدة، ثم اختر "استيراد".
- انقر على مجلد البيانات ، وتحقق من البيانات التي سيتم استيرادها، ثم انقر مرتين لفتحه.
- في وضع العرض، اختر "معالجة الصورة" → "تحميل إلى ثلاثي الأبعاد" → "عرض عرضي" → "قياس الحجم" → "ابدأ".
- تأكد من أن اتجاه الشريحة ومعلمات الخطوة ("فوكسل/تباعد") متوافقة مع إعدادات الاستحواذ.
- استخدم عجلة الفأرة أو شريط الشريحة للتمرير من الطرف القريب إلى الطرف البعيد، وتحديد أول شريحة يظهر فيها PLN (عادة ما يظهر كهيكل بيضاوي أو على شكل حبة فاصوليا، منخفض الصدى قليلا بالنسبة للدهون المحيطة، مع حدود واضحة نسبيا).
- ابدأ بتتبع أول شريحة يظهر فيها PLN بالنقر الأيسر لبدء الكونتور.
- تتبع المنحنى المغلق نقطة بنقطة على طول حافة العقدة اللمفاوية، مع الحفاظ على الشكل قريبا قدر الإمكان من الكبسولة الخارجية وتجنب احتواء الدهون أو التجويف الوعائي المحيط.
- استخدم عجلة الفأرة للانتقال إلى الشريحة التي تظهر أقصى مساحة مقطع عرضي للشبكة الخلفية الخلفية (PLN)، وكرر الخطوة 10 لإكمال المنحني الثاني.
- استخدم عجلة الفأرة للانتقال إلى الشريحة قبل اختفاء PLN مباشرة، وكرر الخطوة 10 لإكمال المنحني الثالث.
- انقر على "إنهاء" لتوليد حجم الصوت المقسم ثلاثي الأبعاد وإخراج قياس الحجم.
- سجل حجم PLN (مم3) في لوحة النتائج.
- في لوحة نتائج القياس، اختر "تصدير" وصدر النتائج كملف .csv أو .xls.
- اختر نوع الملف وصدر الصورة ك TIFF Image Area (.tif).
- حافظ على التسمية أثناء التحليل بعرض رمز الحيوان ونقطة الزمن فقط، دون عرض تعيين المجموعة (الكسر/الوهم)، حتى يتم الانتهاء من استخراج الحجم ويتم فك ترميز المجموعات للتحليل الإحصائي.
- التحليل الإحصائي باستخدام برامج التحليل الإحصائي
- اختر جدول جديد ورسم بياني، اختر مجمعا.
- قم بتعيين تنسيق إدخال البيانات ليقوم بإدخال القيم المكررة، مكدسة في أعمدة فرعية.
- أدخل القيم الخام ل 1 / 7 / 14 و Sham / Fracture.-افتح الرسم البياني.
- غير نوع الرسم البياني إلى التشتت (القيم الفردية) + أشرطة المتوسط + الخطأ.
- تنسيق المحاور: اضبط محور Y وغير عنوان المحور.
- انقر على التحليل وقم بإجراء تحليل مكثف ثنائي الاتجاه.
- قارن بين شام وفراكشر في كل نقطة زمنية.
- أضف نتائج الدلالة إلى الرسم البياني.
3. الرعاية بعد العملية
- في نهاية التجربة، ضع الفأر على وسادة تسخين ودعه يتعافى من التخدير.
- راقب حالته عن كثب، وإذا لم تلاحظ أي شذوذات، أعده إلى القفص للاستمرار في السكن.
4. التقييم
ملاحظة: اجعل محققا أعمى عن تخصيص المجموعة ليقوم بجمع الصور والتحليلات الكمية، والاحتفاظ بجميع مجموعات البيانات مشفرة حتى الانتهاء من التحليلات الإحصائية.
- تصوير NIR-ICG
- استخدم برنامج تحليل الصور لإجراء تحليل كمي نسبي لشدة الفلورة في صور ICG التي تم جمعها من وسادات أقدام الفأرة.
ملاحظة: صيغة الحساب لمعدل إزالة ICG في وسادات القدم للفأرة هي كما يلي:
معدل التخليص (٪) = [(FI0h –FI 24h) / (FI0h)] × 100٪ - استخدم نفس الطريقة لتسجيل معدل التخليص لكل قياس، وتحليل العلاقة بين معدل التخلي اللمفاوي والوقت باستخدام برامج التحليل الإحصائي.
- استخدم برنامج تحليل الصور لإجراء تحليل كمي نسبي لشدة الفلورة في صور ICG التي تم جمعها من وسادات أقدام الفأرة.
- تصوير الموجات فوق الصوتية بوضع B
- تحليل الصور ذات الوضع B والصور ثلاثية الأبعاد باستخدام برامج إعادة البناء ثلاثية الأبعاد لتحديد حجم PLN.
- قيم التغيرات في تصريف اللمفاوات وحجم العقد اللمفاوية مع مرور الوقت من خلال إنشاء مخططات تشتت باستخدام برنامج التحليل الإحصائي.
- التحليل الإحصائي
- تحليل القياسات المتكررة التي تم الحصول عليها في الأيام 1 و7 و14 باستخدام ANO ذات القياسات المتكررة ذات الاتجاهين.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
في الأيام 1 و7 و14 بعد تأسيس نموذج الكسر، كانت شدة فلورية ICG الأخمصية على مدى 24 ساعة (FI24h) في مجموعة الكسر أعلى باستمرار من تلك الموجودة في مجموعة الجراحة الوهمية (الشكل 3). أظهر التحليل الكمي النسبي لشدة فلورة ICG من الصور الأخمصية المجمعة أن معدل إزالة الفلورة اللمفاوية في مجموعة الكسر كان أقل بشكل ملحوظ من معدل الجراحة الزائفة (p < 0.05) (الشكل 4). وفي الوقت نفسه، كشف التصوير بالموجات فوق الصوتية ثلاثي...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
يتضمن البروتوكول عدة تفاصيل يسهل تجاهلها. على سبيل المثال، زمن التعريض غير ثابت ويجب تحديده بناء على شدة الفلورة النوعية. ومع ذلك، يجب أن يبقى وقت التعرض لنفس مجموعة الفئران عند 0 ساعة و24 ساعة ثابتا؛ وإلا، فقد تكون النتائج غير موثوقة. عند استخدام الموجات فوق الصوتية للمراقبة، من الضروري تغطية أطراف الفأر السفلية بالكامل بعامل الاقتران، لأن أي مناطق مكشوفة ستسبب تشوها في الصور الناتجة عند مسح المجس لتلك المناطق. أثناء الفحص، يجب أن تبقى أطراف الفأر السفلية ثابتة. يمكن للمشغل تثبيت الفأر ...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
المؤلفون لا يفرضون أي تضارب مصالح.
شكر وتقدير
تم تمويل هذه الدراسة من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية (82174407 إلى YJZ)، وبرنامج تدريب قادة التخصصات التابع للجنة الصحة الجديدة في بودونغ في شنغهاي (PWRd2020-05)، ومشروع قادة الانضباط للجنة الصحة الجديدة في بودونغ (PWRq2020-56)، ومشروع سانمينغ الطبي في شنتشن (رقم SZZYSM202311006).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| 10 Microliter Microsyringe | Hamilton Company | 80330/00 | إن Hamilton 80330/00 microsyringe هو أداة قياس دقيقة بسعة 10 L، تتميز بإبرة مقاس 26s، بطول 51mm، ونوع 2 للنقطة. وهو مصمم لتوصيل دقيق للكميات الصغيرة في تطبيقات الكروماتوغرافيا، حقن العينات، والكيمياء التحليلية. |
| 3D Ultrasound Vevo 3100 Imaging System | Vevo 2100 | Vevo 2100 هو نظام تصوير بالموجات فوق الصوتية عالي التردد للبحث قبل السريري، يوفر تصورًا ثلاثي الأبعاد في الوقت الفعلي للحيوانات الصغيرة. يوفر دقة فائقة لدراسات القلب والأوعية الدموية، والأورام، وعلم الأحياء التطوري، ويندمج مع برنامج Vevo LAB لتحليل البيانات. | |
| 75% Ethanol | Shanghai Titan Scientific Co., Ltd. | G73537O | الإيثانول بنسبة 75% هو محلول مطهر يستخدم على نطاق واسع في المختبرات لتعقيم الأسطح، وتنظيف المعدات، ومكافحة التعقيم. يقتل بشكل فعال البكتيريا، والفيروسات، والفطريات من خلال تنكس البروتينات، ويستخدم بشكل شائع في البيئات البيولوجية والسريرية. |
| Cotton Swab | Hebei Kangji Medical Equipment Co., Ltd. | 20250303 | مسحات القطن هي أدوات تطبيق معقمة وامتصاصية تستخدم لجمع العينات بدقة، أو لتطبيق المحاليل، أو للتنظيف في الإجراءات الطبية، والتشخيصية، والمخبرية. تتضمن أعوادًا خشبية أو بلاستيكية مع أطراف قطنية للمناولة الصحية. |
| Coupling Agent | Tianjin Jinya Technology Development Co., Ltd. | 20241029 | عامل الاقتران، المعروف باسم جل الموجات فوق الصوتية، هو وسط مائي يستخدم لتعزيز الانتقال الصوتي بين محول الموجات فوق الصوتية والجلد. يزيل جيوب الهواء لتحسين التصوير، وغير مسبب للتهيج، ويتم توفيره في حاوية 250mL للاستخدام الطبي والتشخيصي. |
| Graphpad Prism | GraphPad Software | Prism 10 | برنامج علمي للرسوم البيانية والتحليل الإحصائي يستخدم لتحليل البيانات، والتصور، والعرض. |
| Image J | National Institutes of Health | ImageJ 1.54d | برنامج معالجة وتحليل الصور مبني على جافا، ومتاح للجمهور، ويستخدم على نطاق واسع لتحليل الصور البيولوجية والطبية. |
| indocyanine green | Dandong Yichuang Pharmaceutical Co., Ltd. | 8305128 | الأخضر الإنديوسياني هو صبغة أنيونية قابلة للذوبان في الماء تستخدم في التشخيص الطبي لتحديد الناتج القلبي، ووظيفة الكبد، وتدفق الدم في الكبد، وتصوير الشبكية. يتم توفيره في قوارير 25mg للإعطاء الوريدي، ويظهر توهجه في نطاق الأشعة تحت الحمراء القريبة لأغراض التصوير. |
| isoflurance | RWD | R650-IE | الأيزوفلوران هو مخدر عام مستنشق. له معامل تقسيم دم/غاز صغير. عند استخدامه لتخدير الحيوانات، يمكنه تحريض التخدير بسلاسة، وبسرعة، وبشكل مريح، مع التعافي السريع، والاسترخاء الجيد للعضلات، وعدم وجود تأثير محفز على الجهاز العصبي السمبتاوي. معدل استقلاب الأيزوفلوران في الكبد منخفض، وبالتالي فإن له سمية منخفضة على الكبد، ولا توجد آثار جانبية واضحة حتى مع الاستخدام المتكرر. لتجنب الآثار الضارة لغازات التخدير النفايات على البيئة وموظفي المختبر، يوصى باستخدامه مع نظام استعادة الغاز. |
| Microbalance | Shanghai Precision Scientific Instrument Co., Ltd. | FA1004B | الميزان الدقيق FA1004B هو أداة تحليل عالية الدقة مصممة لوزن دقيق للعينات الصغيرة، ويوفر دقة تصل إلى 0.0001g، ومناسب للتطبيقات المختبرية التي تتطلب قياسات دقيقة في البحث ومراقبة الجودة. |
| Near-Infrared Imaging System | Olympus | MVX10 | Olympus MVX10 هو نظام مجهر فلوري زووم كبير محسّن للتصوير قريب من الأشعة تحت الحمراء. يوفر تصورًا عالي الدقة لعينات كبيرة مع نطاق زووم واسع، وبصريات متقدمة لاختراق الأنسجة العميقة، وتوافق مع تقنيات الفلوريسنس في البحوث البيولوجية والمواد. |
| Vevo lab | \ | Vevo LAB | حزمة برامج تحليل التصوير المستخدمة لتحليل بيانات التصوير Vevo، بما في ذلك القياس، والحساب، وإنشاء التقارير. |
المراجع
- Zhang, S., Sheng, H., Xu, B., Lao, Y. Acute external iliac artery thrombosis following pelvic fractures: Two case reports. Medicine (Baltimore). 100 (6), e24710(2021).
- Szczesny, G., Olszewski, W. L., Gewartowska, M., Zaleska, M., Gorecki, A. The healing of tibial fracture and response of the local lymphatic system. J Trauma. 63 (4), 849-854 (2007).
- Zheng, Y., et al. A novel therapy for fracture healing by increasing lymphatic drainage. J Orthop Translat. 45, 66-74 (2024).
- Thomas, C., Le, J. T., Benson, E. Managing lymphedema in fracture care: Current concepts and treatment principles. J Am Acad Orthop Surg. 28 (18), 737-741 (2020).
- Jiang, X., Nicolls, M. R., Tian, W., Rockson, S. G. Lymphatic dysfunction, leukotrienes, and lymphedema. Annu Rev Physiol. 80, 49-70 (2018).
- Biswas, L., et al. Lymphatic vessels in bone support regeneration after injury. Cell. 186 (2), 382-397.e24 (2023).
- Dimitriou, R., Tsiridis, E., Giannoudis, P. V. Current concepts of molecular aspects of bone healing. Injury. 36 (12), 1392-1404 (2005).
- Arslan, H., et al. Effect of lymphedema on the recovery of fractures. J Orthop Sci. 12 (6), 578-584 (2007).
- Cheon, H., Kim, S. A., Kim, B., Jeon, J. Y. Investigation of optimizing indocyanine green solution for in vivo lymphatic research using near-infrared fluorescence indocyanine green lymphangiography. Sci Rep. 13 (1), 14966(2023).
- Polomska, A. K., et al. Minimally invasive method for the point-of-care quantification of lymphatic vessel function. JCI Insight. 4 (4), e126515(2019).
- Wang, F., Weng, Y., Geng, J., Zhu, J. A narrative review of indocyanine green near-infrared fluorescence imaging technique: A new application in thoracic surgery. Curr Challenges Thorac Surg. 3, 35-35 (2021).
- Zheng, Y., et al. Lymphatic platelet thrombosis limits bone repair by precluding lymphatic transporting damps. Nat Commun. 16 (1), 829(2025).
- Kim, K. M., Kim, K. Y. Lymphangiogenesis after nonvascularized lymph node transplantation: Lymphangiographic findings in mice and minipigs. PLoS One. 18 (12), e0295836(2023).
- Zhang, P. H., et al. Efficient pulmonary lymphatic drainage is necessary for inflammation resolution in ARDS. JCI Insight. 9 (1), e173440(2024).
- Kenney, H. M., et al. Persistent popliteal lymphatic muscle cell coverage defects despite amelioration of arthritis and recovery of popliteal lymphatic vessel function in TNF-TG mice following anti-TNF therapy. Sci Rep. 12 (1), 12751(2022).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
