يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة بحثية

التأثيرات الكيميائية الحيوية والنسيجية للعلاج بالهيرودو-بيث في نموذج الفئران للتوتر الفسيولوجي الناتج عن التمرين المزمن

124 مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/70494

⸱

مايو 22, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Faculty of Medicine, Department of Medical Parasitology, Kırşehir Ahi Evran University, 2Faculty of Medicine, Department of Histology and Embriyology, Kırşehir Ahi Evran University, 3Faculty of Sports Sciences, Department of Coaching Education, Kırşehir Ahi Evran University, 4Faculty of Medicine, Department of Medical Biochemistry, Kırşehir Ahi Evran University, 5Faculty of Medicine, Department of Physiology, Kırşehir Ahi Evran University

في هذه المقالة

ملخص

يؤسس هذا البروتوكول نموذج الفئران للتوتر الفسيولوجي المزمن الناتج عن التمارين الرياضية لدراسة استجابات التوتر. يتيح التقييم المسيطر عليه لتفاعلات العلاج بالهيرودوبيولوجيا والتمارين من خلال التحليل الكيميائي الحيوي في المصل والتحليل النسيجي المرضي. يوفر إطارا قابلا للتكرار لدراسة آليات التعافي بعد التمرين.

الملخص

يمكن أن تسبب التمارين الرياضية المزمنة ضغوطا فسيولوجيا يتميز بتلف العضلات، واختلال التوازن التأكسدي، وتغيرات هرمونية، مما قد يؤثر على التعافي والأداء. العلاج بالهيرودو، وهو تدخل بيولوجي تقليدي يحتوي على مكونات مضادة للالتهاب، ومضادة للأكسدة، وتعزز الدورة الدموية، جذب الاهتمام كاستراتيجية محتملة للتعافي الطبيعي. هدفت هذه الدراسة إلى تقييم التأثيرات الكيميائية الحيوية والنسيجية للعلاج بالهيرودوجابي بعد التمارين المزمنة في نموذج الفئران للضغط الفسيولوجي الناتج عن التمرين. تم توزيع اثنين وثلاثين فأرا ذكرا على أربع مجموعات: التحكم، العلاج بالتصبغات الهوائية، التمارين، والعلاج بالتصبغات مع التمارين. تم تحليل معايير الكيمياء الحيوية في المصل ومؤشرات الإجهاد التأكسدي، كما فحصت أنسجة العضلات الهيكلية والكبد بشكل نسيجي لتقييم التغيرات الناتجة عن التمارين والتأثيرات المحتملة للتعديل الناتج عن العلاج بالهرودو. أظهرت الفئران التي تعرضت للتمارين المزمنة مؤشرات كيميائية وهيكلية حيوية للتوتر الفسيولوجي. ارتبط العلاج بالهيرودو-علاج بتخفيف جزئي لهذه التغييرات، خاصة في النتائج النسيجية المرضية، بينما لم تكن التغيرات في مؤشرات الإجهاد التأكسدي ذات دلالة إحصائية. تشير هذه النتائج إلى أن العلاج بالهيرودورابي قد يكون له تأثير معدل على عمليات التعافي بعد التمرين؛ ومع ذلك، هناك حاجة إلى مزيد من الدراسات لتوضيح تأثيره على مسارات الإجهاد التأكسدي.

المقدمة

تم استخدام الممارسات الطبية التقليدية في مجموعة واسعة من السياقات السريرية لإدارة مختلف الحالات الحادة والمزمنة 1,2. من بين هذه المواد، يتمتع علاج العلقات الطبية (العلاج بالتصبغات الهوائية) بتاريخ طويل من الاستخدام عبر ثقافات وأنظمة طبية مختلفة. في السنوات الأخيرة، استعاد هذا النهج التقليدي الاهتمام العلمي بسبب تأثيراته العلاجية المحتملة في مختلف الحالات السريرية، بما في ذلك الأمراض الالتهابية، والتهاب المفاصل العظمي، واضطرابات الأوعية الدموية 1,2,3. تعزى هذه التأثيرات بشكل أساسي إلى الخليط المعقد من الجزيئات الحيوية النشطة الموجودة في لعاب العلقة، والتي تظهر خصائص مضادة للتخثر ومضادة للالتهابات ومضادة للميكروبات 3,4,5. بالإضافة إلى ذلك، أظهرت الدراسات التجريبية في نماذج حيوانية أن العلاج بالهرودورابي قد يمارس تأثيرات وقائية ضد إصابات الأنسجة من خلال آليات مضادات الأكسدة والمضادة للالتهابات ومضادة للموتالمايتية 6.

يحتوي لعاب هيرودو فيربانا، النوع الأكثر استخداما في العلاج، على مجموعة متنوعة من المكونات النشطة حيويا، بما في ذلك الهيرودين، بديلين، إغلين، وكالين، بالإضافة إلى إنزيمات مثل الهيالورونيداز ومختلف المستقلبات منخفضة الوزن الجزيئي. تظهر هذهالمكونات مضادات تخثر، مضادة للالتهابات، مضادات للأكسدة، تحلل الفيبراينو، مسكنة الألم، ومضادة للسرطان. يشير هذا الملف الواسع للنشاط البيولوجي إلى أن لعاب العلقة (LS) قد يكون أداة علاجية مكملة في التطبيقات الطبية الحيوية الحديثة؛ ومع ذلك، فإن تأثيراته الجهازية تحت ظروف الإجهاد الفسيولوجي المحددة لا تزال غير مفهومة بشكل كامل3.

النشاط البدني المكثف أو المطول يمكن أن يسبب ضررا دقيقا لأغشية العضلات، مما يؤدي إلى زيادة كبيرة في مستويات إنزيمات مثل الكرياتين كيناز (CK)، وإنزيم اللاكتات للهيدروجيناز (LDH)، وإنزيم الأسبارتات أمينوترانسفيراز (AST). قد يزداد أيضا ألانين أمينوترانسفيراز (ALT) استجابة لإصابة العضلات، وإن كان عادة بدرجة أقل من AST 5,8,9. بالإضافة إلى ذلك، تؤدي التمارين عالية الشدة أو طويلة الأمد إلى ارتفاع الكورتيزول، وهو هرمون توتر رئيسي، مع اختلاف الاستجابات حسب شدة التمرين، ومدتها، والحالة الفسيولوجية الفردية10،11. قد تحدث زيادات في مستوى السكر في الدم بعد التمرين، ويرجع ذلك إلى حد كبير إلى تكون الجلوكوز بوساطة الكورتيزول، وهو ما يمثل سمة مميزة لاستجابة الإجهاد الأيضي12. تظهر هذه النتائج مجتمعة أن كل من العلامات الكيميائية الحيوية لتلف العضلات ومؤشرات الإجهاد الأيضي تميل إلى الارتفاعبعد التمارين الشاقة.

تم دراسة استراتيجيات مختلفة، بما في ذلك التدليك، الغمر في الماء البارد، والمكملات الغذائية الغنية بمضادات الأكسدة (مثل البوليفينولات، مستخلص الكرز الحامض، والكركمين)، لقدرتها على دعم التعافي بعد التمرين. تشير المراجعات المنهجية إلى أن هذه التدخلات قد تؤثر على الإجهاد التأكسدي ومعايير تلف العضلات؛ ومع ذلك، تختلف فعاليتها بشكل كبير بين الأفراد وقد لا توفر باستمرار حماية كيميائية حيوية كافية 13,14,15. وبناء عليه، هناك اهتمام متزايد باستكشاف طرق بديلة أو تكميلية قد توفر فوائد إضافية في ظروف الإجهاد الفسيولوجي الناتج عن التمارين. في هذا السياق، تم الإبلاغ عن المركبات النشطة الحيوية الموجودة في لعاب العلقات على تعديل الإجهاد التأكسدي والاستجابات الالتهابية7. بالإضافة إلى ذلك، تشير الملاحظات السريرية إلى أن العلاج بالهرودوجابي قد يقلل الألم والالتهاب، خاصة في الحالات العضلية الهيكلية والأوعية الدموية1.

تساهم عدة مركبات تم تحديدها في LS، بما في ذلك الفلافونويدات والجزيئات الفينولية ومكونات نشطة بيولوجيا أخرى، في تخفيف الاستجابات الالتهابية من خلال تعديل مسارات الإجهاد التأكسدي. قد تعمل هذه الخصائص المضادة للأكسدة بشكل تآزري مع مكونات لعابية أخرى، مما يعزز الإمكانات المضادة للالتهاب في العلاج بالهيرودوثيرو. بالإضافة إلى ذلك، ثبت أن مثبطات البروتيز مثل البدلين والإجلين تقلل من نشاط الإنزيمات المشتقة من العدلات، مما يحد من تلف الأنسجة4. علاوة على ذلك، تم الإبلاغ عن وجود ببتيدات وجزيئات مشتقة من الدهون في أنسجة العلقات على تأثيرات مثبطة على مسارات الإشارات الالتهابية17.

على الرغم من هذه النتائج، لا يزال الدور المحتمل للعلاج بالتثمر في الإجهاد الفسيولوجي الناتج عن التمرين غير مستكشف بشكل كاف، خاصة ضمن النماذج التجريبية المحكمة 1,2,4. على الرغم من أن الدراسات السابقة أظهرت تأثيراته المضادة للالتهابات، ومضادات التخثر، والدورة الدموية الدقيقة، كما أن التمارين معروفة بأنها تسبب تلف العضلات واستجابات الإجهاد التأكسدي، إلا أن الدراسات التي تدمج النتائج الكيميائية الحيوية والهرمونية والنسيجية ضمن إطار تجريبي واحد محدودة.

لذلك، صممت الدراسة الحالية لتقديم تقييم تجريبي شامل للعلاج بالهرودوتريب في نموذج مسيطر عليه للإجهاد الفسيولوجي الناتج عن التمرين من خلال دمج النتائج الكيميائية الحيوية والهرمونية والنسيجية المرضية. يهدف هذا النهج متعدد الأبعاد إلى المساهمة في فهم التأثيرات التعديلية المحتملة للعلاج بالهيرودو، وتوفير إطار عمل قابل للتكرار لتقييم التدخلات العلاجية الحيوية التكميلية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم إجراء جميع الإجراءات التجريبية وفقا لإرشادات ARRIVE19. تمت مراجعة بروتوكول الدراسة والموافقة عليه من قبل لجنة الأخلاقيات المحلية لتجارب الحيوانات بجامعة كيرشهير آهي إيفران (رقم الموافقة: 06/03/2025-05-1، تركيا). جميع الإجراءات كانت تتوافق مع الإرشادات المؤسسية لرعاية واستخدام حيوانات المختبر. المواد المستخدمة والمواد المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. اختيار الحيوانات والإسكان

تم استخدام اثنين وثلاثين ذكرا من فئران ويستار المهحب (RRID: RGD_2308852؛ عمره 8–12 أسبوعا، وزنها 200–250 جم). كانت الحيوانات توضع بشكل فردي في أقفاص من البولي كربونات (40 سم × 25 سم × 20 سم) مع فراش حلاقة خشبي. تم الحفاظ على الظروف البيئية عند 22–24 درجة مئوية مع دورة ضوء 12 ساعة و12 ساعة ظلام. تم توفير الطعام والماء بحرية تامة.

تم إجراء فترة تأقلم لمدة أسبوع قبل التجربة. خلال هذه الفترة، كانت الحيوانات تراقب يوميا من حيث تناول الطعام، وحالة الترطيب، وسلوك العناية بالأطفال، والنشاط الحركي. تم تضمين الحيوانات التي تظهر سلوكا فسيولوجيا طبيعيا فقط في الدراسة.

2. المجموعات التجريبية والعشوائية

تم توزيع الحيوانات عشوائيا على أربع مجموعات تجريبية (n = 8 لكل مجموعة) باستخدام تسلسل عشوائي مولد بالحاسوب. تم ضمان إخفاء التخصيص من خلال تعيين معرفات رقمية للحيوانات قبل تخصيص المجموعات. تكونت مجموعات التجربة من مجموعة الضابط (C)، التي لم تتلق أي تدخل؛ مجموعة التمارين (E)، التي خضعت فقط لتمارين جهاز المشي؛ مجموعة العلاج بالانقسام (H)، التي تلقت العلاج بالانقسام الهرودوغرابي فقط ثلاث مرات في الأسبوع؛ ومجموعة العلاج بالهيرودو-ترابي والتمارين (HE) المركبة، التي خضعت لكلا التدخلين وفقا لبروتوكول الدراسة. أجريت جميع التدخلات على مدى فترة أسبوعين. لتقليل التباين اليومي، أجريت جميع الإجراءات بين الساعة 09:00 و11:00 صباحا.

3. بروتوكول التمارين المزمنة

تم أداء التمرين باستخدام جهاز مشي للقوارض بمحرك مزود بشبكة تحفيز كهربائي قابلة للتعديل. تم وضع الحيوانات في مسارات فردية من جهاز جهاز المشي (الشكل 1). تم إجراء مرحلة تكيف لمدة يومين بسرعة 15 م/دقيقة لمدة 15 دقيقة يوميا. بعد فترة التكيف، زادت شدة التمارين إلى 20 م/دقيقة، وخضعت الحيوانات لجلسات جري يومية لمدة 45 دقيقة يوميا لمدة أسبوعين. تم تطبيق محفز كهربائي خفيف (1.0 مللي أمبير) عبر الشبكة عند الحاجة للحفاظ على التشغيل المستمر.

  1. معايير الاستنفاد
    تم تعريف الإرهاق بأنه عدم القدرة على مغادرة شبكة الصدمات لثلاث محفزات متتالية (~5 ثوان لكل منها). كانت الحيوانات التي تصل إلى هذا الحد تتم إزالتها فورا. تم تكييف هذا البروتوكول من نماذج تمارين على جهاز المشي المعروفة سابقا مع معايير تحديد التكيف، وتطور الشدة، والإرهاق20.
  2. تطبيق العلاج بالهيرودورابي
    تم الحصول على العلق الطبي (Hirudo verbana، ~2 جرام) من مصدر معتمد مؤسسيا. قبل التطبيق، كان يتم حلق المنطقة الظهرية لكل حيوان بمحلق كهربائي، ويتم تنظيف الجلد بلطف باستخدام محلول ملحي معقم دون مطهرات، لتجنب التصاق العلقات. ثم وضعت الحيوانات في أنبوب شفاف من الأكريليك للحد من الحركة وتقليل الإجهاد. تم وضع علقة واحدة على الخط الأوسط الظهري، وتم تأكيد نجاح الالتصاق بصريا من خلال تثبيت المصاص الفموي. تم السماح بالتغذية لمدة 10 دقائق (الشكل 2). بعد فترة التطبيق، تم فصل العلقات عن طريق تعريض منطقة التثبيت لبخار الإيثانول بنسبة 70٪ باستخدام أداة تطبيق قطنية تثبت على بعد حوالي 1–2 سم من الموقع. بعد الانفصال، تم التحكم في النزيف الموضعي باستخدام شاش معقم بضغط خفيف لمدة تقارب دقيقة إلى دقيقتين، ولم يتم تطبيق أي خياطة. تم إجراء الطلبات ثلاث مرات في الأسبوع لمدة أسبوعين. تم إجراء هذا الإجراء بناء على بروتوكولات العلاج بالهيرودو-روبي التجريبية والسريرية الموصوفة سابقا مع معايير تطبيق موحدة21.

4. القتل الرحيم وجمع الدم

في نهاية التجربة (بعد 24 ساعة من آخر تدخل)6، تم تخدير الحيوانات داخل الصفاق بالكيتامين (75 ملغ/كغ) وزيلازين (10 ملغ/كغ). تم تأكيد عمق التخدير الكافي من خلال غياب انسحاب الدواسات وردود فعل القرنية. ثم تم جمع الدم داخل القلب باستخدام حقنة معقمة بقطر 5 مل عبر ثقب البطين الأيسر. تم الانتهاء من القتل الرحيم بفقدان الدم تليها فتح الصدر. لاحقا، تم جمع أنسجة عضلة الهضمي الوسطى وأنسجة الكبد لمزيد من التحليلات. تمت معالجة عينات الدم خلال ساعة واحدة من الجمع عن طريق نقلها إلى أنابيب تنشيط الجلطات والطرد المركزي عند 1000 × جرام لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية. ثم تم تقسيم المصل المفصول إلى أجزاء بسعة 200 ميكرولتر وتخزينه عند −80 درجة مئوية حتى التحليل.

5. تحليل الكيمياء الحيوية وتحليل ELISA

تم تحليل المعايير الكيميائية الحيوية، بما في ذلك ALT، AST، LDH، CK، الجلوكوز، الإلكتروليتات، والكورتيزول، باستخدام محلل كيميائي حيوي آلي وفقا لإجراءات مختبرية موحدة. تم إجراء جميع اختبارات ELISA ل CAT وSOD وMDA وGPX وفقا لتعليمات الشركة المصنعة وتحت ظروف موحدة. تم تخفيف عينات المصل بنسبة 1:5 مع مخزن عينات عند الحاجة لبروتوكول المجموعة. لاحقا، أضيفت 50 ميكرولتر من عينات المصل و50 ميكرولتر من عينات المصل إلى الآبار المخصصة وحضنتها عند 37 درجة مئوية لمدة 60 دقيقة. بعد الحضانة، تم غسل الألواح خمس مرات باستخدام مخزن الغسيل المقدم لإزالة المكونات غير المربوطة. ثم أضيف الجسم المضاد للكشف (50 ميكرولتر) إلى كل بئر وحضنه عند حرارة 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة. بعد ذلك، أضيف محلول الركيزة، وحضن خليط التفاعل لمدة 10–15 دقيقة تحت ظروف مظلمة للسماح بتطور اللون. تم إنهاء التفاعل بإضافة 50 ميكرولتر من محلول التوقف، وتم قياس الكثافة البصرية عند 450 نانومتر باستخدام قارئ الميكرولوتين. تم تحليل جميع العينات بشكل مكرر لضمان الموثوقية التحليلية وقابلية التكرار.

6. التحليل الأنسجي المرضي

للتقييم النسيجي المرضي، تمت معالجة عينات الأنسجة وفقا للإجراءات النسيجية القياسية22. تم تثبيت الأنسجة في البداية بفورمالين مخزن 10٪ محايد لمدة 72 ساعة، تلاها الجفاف عبر سلسلة إيثانول متدرجة تتكون من 50٪، 70٪، 80٪، 96٪، و100٪ إيثانول، مع حضانة لمدة ساعة في كل تركيز. بعد الجفاف، تم تنظيف الأنسجة في الزيلين لفترتين متتاليتين مدة كل منهما 30 دقيقة، ثم تم تضمينها في كتل البارافين. تم الحصول على مقاطع بسماكة 5 ميكرومتر باستخدام ميكروتوم دوار وصبغت بالهيماتوكسيلين وإيوزين (H&E) وثلاثي كروم ماسون للفحص الأنسيجي. وأخيرا، تم فحص الشرائح الملونة باستخدام مجهر ضوئي مزود بنظام تصوير رقمي.

7. التحليل الإحصائي

تم إجراء تحليل البيانات باستخدام برامج إحصائية. تم تقييم توزيع البيانات باستخدام اختبار كولموغوروف–سميرنوف. بالنسبة للبيانات الموزعة عاديا، تم تطبيق تحليل أنوفاز أحادي الاتجاه يليه اختبار توكي بعد الاختبار. بالنسبة للبيانات غير الموزعة بشكل طبيعي، تم استخدام اختبار كروسكال–واليس يليه اختبار مان–ويتني U. تم اعتبار قيمة p < 0.05 ذات دلالة إحصائية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تلف العضلات ومعايير الإرهاق

كشفت مؤشرات تلف عضلات المصل أن مستويات إنزيم الكرياتين كيناز (CK) تختلف بشكل ملحوظ بين المجموعات (p < 0.05). على الرغم من أن قيم LDH وAST وALT أظهرت اتجاهات تصاعدية في مجموعة التمارين (E)، إلا أن هذه التغيرات لم تكن ذات دلالة إحصائية (p > 0.05). كانت تركيزات CK أعلى في مجموعة E، في حين أظهرت مجموعة HE مستويات أقل بشكل ملحوظ، تقترب من مجموعات المجموعة الضابطة وH، مما يشير إلى تأثير مخفف للعلاج بالتص...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

أظهرت هذه الدراسة أن العلاج بالهرودوتراب مرتبط بتغيرات قابلة للقياس في معايير مختارة مرتبطة بالتوتر الفسيولوجي الناتج عن التمارين. تعكس الارتفاعات في CK، LDH، AST، وALT في مجموعة التمارين اضطراب الساركول وتسرب الإنزيمات، متوافقة مع التقارير السابقة التي وصفت هذه العلامات كمؤشرات على إجهاد عضلي23،24،25. أما مجموعة HE فقد أظهرت مستويات إنزيمات أقرب إلى قيم التحكم (الشكل 3A

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

شكر وتقدير

نشكر موظفي مختبر أبحاث التجارب بجامعة كيرشهير آهي إيفران على دعمهم في رعاية الحيوانات وجمع العينات. كما نكرر المساعدة الفنية القيمة التي تقدمها مختبرات الأنسجة والكيمياء الحيوية أثناء معالجة الأنسجة والتحليلات الكيميائية الحيوية. وقد دعمت هذه الدراسة وحدة تنسيق مشاريع البحث العلمي بجامعة كيرشهير آهي إيفران (BAP) ضمن المشروع رقم TIP. 25.004.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
-80&0; فريزر C العميق (موديل DF590)Nü veDF590تخزين العينات عند وناقص الحساب؛ 80&0; C
أنبوب تقييد أكريليكلا يوجدلا يوجدمقيد أكريليك شفاف (قطر 6 سم، طول 20 سم) يستخدم لتثبيت العضلات أثناء العلاج بالهيرودوثيرابي
المحلل الكيميائي الحيوي الآلي (Alinity)أبوتلا يوجديستخدم لتحليل معلمات الكيمياء الحيوية في المصل
معالج الأنسجة الأوتوماتيكيلايكا بيوسيستمزلا يوجدجفاف الأنسجة وتسرب البارافين
جهاز طرد مركزي (موديل FC5706)شركة OHAUSFC5706السرعة القصوى: 6000 دورة في الدقيقة (≈ 4,000 ×; g، حسب نصف قطر الدوار)
كاميرا المجهر الرقمي (أكسيوكام 208 ملونة)كارل زايسلون أكسيوكام 208الحصول على الصور لعلم الأنسجة المرضية
إيوسين واي (أصفر)ميرك / سيغما-ألدرتش1.15935.0025H& صبغة E (مكون الإيوزين)
إيثانول أبسولوت (99.5٪)تيكيم كيمياTK.200655.05001يستخدم في سلسلة تجفيف الإيثانول
محلول الفورمالديهايد (~37٪)ميرك / سيغما-ألدرتش1.04002.2500يستخدم لتثبيت الأنسجة
محلول هاريس هيماتوكسيلينبيست لابBS-002H& التلوين الإلكتروني (مكون الهيماتوكسيلين)
هيدروكلوريد الكيتاميندرجة صيدلانية (المصدر التجاري غير محدد)لا يوجديستخدم للتخدير داخل الصفاق (75 ملغ/كغ)
المجهر الضوئي (نجم بريمو)كارل زايسنجم بريموالتصوير النسيجي المرضي
ماسون مجموعة التلوين الثلاثية الألوانGBLالمرجع 5022يستخدم لتلوين الأنسجة الضامة
جهاز المشي القوارض الآليةكولومبوس إنسترومنتسإكسر-3/6يستخدم في تمرين جهاز المشي القياسي مع سرعة محكومة وتحفيز كهربائي
كاتالاز الجرذان (CAT) مجموعة إليسامختبر BTE0869Raلوحة ب 96 بئر؛ قياس نشاط الأشعة المقطعية في المصل
مجموعة ELISA من نوع رات جلوتاثيون بيروكسيداز (GPX1)ريد بيوتيكRE2557Rلوحة ب 96 بئر؛ قياس نشاط الأشعة المقطعية في المصل
مجموعة ELISA ELISA للفئران المالونديالديهايد (MDA)مختبر BTE0156Raلوحة ب 96 بئر؛ قياس نشاط الأشعة المقطعية في المصل
مجموعة ELISA لمادة الجرذان الفائق الأكسيدي (SOD)مختبر BTE0168Raلوحة ب 96 بئر؛ قياس نشاط الأشعة المقطعية في المصل
الميكروتوم الدوار (أوتوكت)لايكا بيوسيستمزRM أوتوكتالقطع 5 & mu; أقسام M البارافين
سخان المنزلقاتلايكا بيوسيستمزHI1210شرائح الأنسجة التجفيف
هيدروكلوريد الزيلزيندرجة صيدلانية (المصدر التجاري غير محدد)لا يوجديستخدم للتخدير داخل الصفاق (10 ملغ/كغ)
زيلين (خليط من المتشاكل)تيكيم كيمياTK.090270.05003تنظيف الأنسجة قبل دمج البارافين

المراجع

  1. Hosseini, M., Jadidi, A., Derakhshan Barjoei, M. M., Salehi, M. Applications of leech therapy in medicine: A systematic review. Front Med. 11, 1-7 (2024).
  2. Shakouri, A., Wollina, U. Time to change theory: medical leech from a molecular medicine perspective; leech salivary proteins playing a potential role in medicine. Adv Pharm Bull. 11 (2), 261-270 (2021).
  3. Alaama, M., et al. Development of leech extract as a therapeutic agent: A chronological review. Pharmacol Res - Mod Chin Med. 10, 100355(2024).
  4. Sig, A. K., Guney, M., Uskudar Guclu, A., Ozmen, E. Medicinal leech therapy–an overall perspective. Integr Med Res. 6 (4), 337-343 (2017).
  5. Brancaccio, P., Lippi, G., Maffulli, N. Biochemical markers of muscular damage. Clin Chem Lab Med. 48 (6), 757-767 (2010).
  6. Davoodi, F., et al. Leech therapy (Hirudo medicinalis) attenuates testicular damages induced by testicular ischemia/reperfusion in an animal model. BMC Vet Res. 17 (1), 1-15 (2021).
  7. Bilden, A., et al. Investigating the therapeutic potential of crude leech saliva based on its anticancer, antioxidant, and anti-inflammatory effects. Curr Issues Mol Biol. 47 (5), 328(2025).
  8. Ozkan, I., Ibrahim, C. H. Dehydration, skeletal muscle damage and inflammation before the competitions among the elite wrestlers. J Phys Ther Sci. 28 (1), 162-168 (2016).
  9. Röcker, L., Kiesewetter, H. Effect of physical exercise on laboratory test results. Clinical Laboratory Diagnostics. Thomas, L. , Frankfurt. Available from: https://clinical-laboratory-diagnostics.com/k51.html 51(2020).
  10. Torres, R., Koutakis, P., Forsse, J. The effects of different exercise intensities and modalities on cortisol production in healthy individuals: A review. J Exerc Nutr. 4 (4), 19(2021).
  11. Soslu, R., et al. Effects of high-intensity interval training program on pituitary function in basketball players: A randomized controlled trial. Front Physiol. 14, 1-10 (2023).
  12. Gordon, B. A., Taylor, C. J., Church, J. E., Cousins, S. D. A comparison of the gluco-regulatory responses to high-intensity interval exercise and resistance exercise. Int J Environ Res Public Health. 18 (1), 1-11 (2021).
  13. Zhang, X., Zhong, Y., Rajabi, S. Polyphenols and post-exercise muscle damage: A comprehensive review of the literature. Eur J Med Res. 30 (1), 260(2025).
  14. Martin, J. An evidence-based approach for optimising sports recovery practices following DOMS-inducing exercise: A systematic review and meta-analysis. , (2023).
  15. Wang, H., Wang, L., Pan, Y. Impact of different doses of cold water immersion (duration and temperature variations) on recovery from acute exercise-induced muscle damage: A network meta-analysis. Front Physiol. 16, 1-15 (2025).
  16. Cuevas-Cianca, S. I., Romero-Castillo, C., Gálvez-Romero, J. L., Juárez, Z. N., Hernández, L. R. Antioxidant and anti-inflammatory compounds from edible plants with anti-cancer activity and their potential use as drugs. Molecules. 28 (3), 1488(2023).
  17. Meriaux, C., et al. Multiple changes in peptide and lipid expression associated with regeneration in the nervous system of the medicinal leech. PLoS One. 6 (4), e18359(2011).
  18. Nédélec, M., et al. Recovery in soccer: Part 1. Sports Med. 42 (12), 997-1015 (2012).
  19. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: The ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLoS Biol. 8 (6), 6-10 (2010).
  20. Liu, Y., et al. Treadmill exercise alleviates neuroinflammation, demyelination, and apoptosis induced by hyperactivation of microglia in the hippocampus of senescent mice by regulating the SIRT1/PPARγ pathway. Neurochem Res. 50 (6), 330(2025).
  21. Bilden, A., et al. Effects of hirudotherapy on liver functions, lipid profile, and insulin sensitivity in rats with metabolic syndrome. BMC Complement Med Ther. 26 (1), 34(2026).
  22. Henderson, M. X. Hematoxylin and eosin stain for paraffin-embedded tissue sections. , (2023).
  23. Tiller, N. B., Wills, W. S. Exercise-induced increases in “liver function tests” in a healthy adult male: Is there a knowledge gap in primary care? J Fam Med Prim Care. 6 (2), 169-170 (2017).
  24. Chen, R., Ma, X., Ma, X., Cui, C. The effects of hydrotherapy and cryotherapy on recovery from acute post-exercise induced muscle damage: A network meta-analysis. BMC Musculoskelet Disord. 25 (1), 749(2024).
  25. Xiao, F., Kabachkova, A. V., Jiao, L., Zhao, H., Kapilevich, L. V. Effects of cold water immersion after exercise on fatigue recovery and exercise performance: Meta-analysis. Front Physiol. 14, 1-15 (2023).
  26. Gholami, M. The effect of massage on the exhausted aerobic exercise-induced muscle damage indicators in healthy young men. J Heal Reports Technol. 9 (4), e137253(2023).
  27. Bayram, S. Ş, Kızıltan, G. The role of omega-3 polyunsaturated fatty acids in diabetes mellitus management: A narrative review. Curr Nutr Rep. 13 (3), 527-551 (2024).
  28. Ni, C., et al. Effect of exercise and antioxidant supplementation on cellular lipid peroxidation in elderly individuals: Systematic review and network meta-analysis. Front Physiol. 14, 1113270(2023).
  29. Lamichhane, G., et al. Twelve-week curcumin supplementation improves glucose homeostasis and gut health in prediabetic older adults: A pilot, double-blind, placebo-controlled trial. Nutrients. 17 (13), 1-15 (2025).
  30. Zinkow, A., Grodzicki, W. Molecular mechanisms linking omega-3 fatty acids and the gut–brain axis. Molecules. 30, 71(2025).
  31. Ihsan, M., Abbiss, C. R., Allan, R. Adaptations to post-exercise cold water immersion: Friend, foe, or futile? Front Sports Act Living. 3, 2013-2020 (2021).
  32. Jackson, M. J. Exercise-induced adaptations to homeostasis of reactive oxygen species in skeletal muscle. Free Radic Biol Med. 225, 494-500 (2024).
  33. Powers, S. K., Jackson, M. J. Exercise-induced oxidative stress: Cellular mechanisms and impact on muscle force production. Physiol Rev. 88 (4), 1243-1276 (2008).
  34. Mason, S. A., Trewin, A. J., Parker, L., Wadley, G. D. Antioxidant supplements and endurance exercise: Current evidence and mechanistic insights. Redox Biol. 35, 101471(2020).
  35. Reed, E. L., et al. Cardiovascular and mood responses to an acute bout of cold water immersion. J Therm Biol. 118, 103727(2023).
  36. Ahmed, V., Marinova, D. Study of the effect of massage therapy on serum cortisol concentration in a patient with chronic stress. Eurasia Proc Heal Environ Life Sci. 16, 35-41 (2024).
  37. Wang, L., Meng, Q., Su, C. H. From food supplements to functional foods: Emerging perspectives on post-exercise recovery nutrition. Nutrients. 16 (23), 1-29 (2024).
  38. Hatakeyama, N., et al. Mechanical stimulation of the lower extremities with a textile-based pneumatic massager increases parasympathetic activity and lowers blood glucose levels. J Soc Fiber Sci Technol. 80 (2), 23-32 (2024).
  39. Hackney, A. C., Walz, E. A. Hormonal adaptation and the stress of exercise training: The role of glucocorticoids. Trends Sport Sci. 176 (5), 139-148 (2018).
  40. Hill, E. E., et al. Exercise and circulating cortisol levels: The intensity threshold effect. J Endocrinol Invest. 31 (7), 587-591 (2008).
  41. Kuo, T., Harris, C. A., Wang, J. C. Metabolic functions of glucocorticoid receptor in skeletal muscle. Mol Cell Endocrinol. 380 (1-2), 79-88 (2013).
  42. McKenna, M. J., et al. A century of exercise physiology: Effects of muscle contraction and exercise on skeletal muscle Na+,K+-ATPase, Na+ and K+ ions, and on plasma K+ concentration—historical developments. Eur J Appl Physiol. 124, 681-751 (2024).
  43. Baker, L. B., et al. Mild dehydration does not alter acute changes in sweat electrolyte concentrations during exercise. Physiol Rep. 12, 1-11 (2024).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

اتصل بنا
أوصِ بها للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

2026 © حقوق الطبع والنشر MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.