الإدارة الانتقائية غير الجراحية بعد إصابات طلق ناري في البطن وانفجارات في نموذج الخنزير

ملخص

يصف هذا العمل إنشاء نماذج خنزير للخنازير لإصابات الطلقات البطنية والانفجارية، ويوفر نتائج الإدارة الانتقائية غير الجراحية (SNOM) وفتح البطن الفوري في الخنازير المصابة، ويؤكد على الحاجة إلى مراقبة دقيقة ومعايير محددة مسبقا للتحويل إلى الجراحة.

الملخص

لقد تم الاعتراف بشكل متزايد بدور الإدارة الانتقائية غير الجراحية بعد إصابات الطلقات أو الانفجارات، لكنه لم يستكشف في نماذج الحيوانات. بشكل عام، تم تجهيز 24 خنزيرا ذكرا، استخدم 12 منهم لإنشاء نموذج جروح الطلقات النارية، وال12 المتبقين نموذج إصابة الانفجار. تم تقسيم الحيوانات في كل نموذج إصابة عشوائيا إلى مجموعات جراحة فورية وSNOM باستخدام تسلسل عشوائي مولد بالحاسوب. حدثت إصابة الطلقات النارية عند إطلاق كرة فولاذية عيار 7 مم وزنها 1.45 جرام على الجزء العلوي الأيمن من البطن من عمق 10 سم تحت 170 بار. تحدث إصابة الانفجار عن طريق تعريض الجزء العلوي الأيمن من البطن لموجة صدمة عالية الضغط من عمق 6 سم تحت 170–190 بار. في مجموعة SNOM، تم إجراء التقييم المركز مع التصوير بالموجات فوق الصوتية للصدمات (FAST) مباشرة بعد النمذجة وتكرار ذلك عند الاشتباه في عدم الاستقرار الديناميكي الدموي أو التدهور السريري. تم تحفيز التحول إلى الجراحة بسبب الصدى غير المتجانس المستمر أو السائل المنخفض الصدى على FAST، أو عدم الاستقرار الديناميكي الدموي، أو التدهور السريري التدريجي. كانت النتيجة الأساسية هي نتيجة SNOM لمدة 7 أيام. تم تعريف فشل SNOM بأنه التحول إلى جراحة أو الوفاة. بعد نمذجة إصابة الطلقات النارية، بلغ معدل البقاء على قيد الحياة خلال 7 أيام 91.67٪ (11/12). في مجموعة الجراحة المباشرة، خضع خنزيرتان لفتح البطن العلاجي، وخضعت 4 خضعت لعملية بطن سلبية. في مجموعة SNOM، خضع خنزير واحد للتحويل إلى جراحة، وتوفي واحد بسبب صدمة نزفية في اليوم الأول بعد النمذجة، وأكمل 4 خنزير بنجاح عملية SNOM. بعد نمذجة إصابات الانفجار، كان معدل البقاء على قيد الحياة خلال 7 أيام 100٪ (12/12). في مجموعة الجراحة المباشرة، خضع 3 خنازير لفتح البطن علاجيا، وخضعت 3 خضعت لعملية فتح البطن سلبية. في مجموعة SNOM، خضع خنزيران لتحويل إلى جراحة، وأكمل 4 خنزيرين عملية SNOM بنجاح. يصف هذا العمل إنشاء نماذج أولية للخنازير المصابة، ويقدم نتائج تمثيلية لاستراتيجيات SNOM وعمليات البطن الفورية، ويؤكد الحاجة إلى مراقبة دقيقة عند استخدام استراتيجية SNOM.

المقدمة

خلال الحرب العالمية الأولى، اعتبر استئصال البطن الإجباري العلاج القياسي لإصابات البطن المخترقة لتقليل الوفيات¹. في عام 1974، أبلغ نانس وآخرون لأول مرة عن مزايا الإدارة الانتقائية غير الجراحية (SNOM) مقارنة بالجراحة الروتينية لإصابات اختراق البطن². منذ ذلك الحين، أصبحت استراتيجية SNOM معروفة بشكل متزايد، لأنها قد تقلل من تكاليف الإقامة في المستشفى وتكاليف الاستشفاء، وتتجنب خطر المضاعفات المرتبطة بقطع البطن غير العلاجي ^3,4,5. وقد أبلغ أن SNOM يمكنه تجنب 25–47٪ من عمليات البطن غير العلاجية بشكل فعال.⁶. ومع ذلك، فإن تطبيقه السريري في إصابات الطلقات الناتجة عن البطن والانفجارات لا^{يزال أقل تحديدا 7,8}. لا يزال بعض الجراحين يفضلون استكشاف البطن كاستراتيجية علاجية أولية، حتى لدى المرضى الذين يستوفون معايير الإدارة غير الجراحية⁹. بين المرضى البالغين الذين يعانون من إصابات بطلقات نارية في البطن، يخضع 73.00٪ منهم لعملية فتح البطن، منها 10٪ تعتبر غير ضرورية¹⁰. يمكن أن تصل نسبة حدوث المضاعفات بعد استئصال البطن السلبي إلى 20.00–40.00٪ ¹¹.

حتى الآن، ركزت الدراسات القائمة حول تطبيق SNOM على المرضى الذين يعانون من إصابات بطلقات نارية في البطن وإصابات الانفجار على السيناريوهات السريرية^{8،12،13،14،15}. حسب علمنا، لم تتوفر سوى عدد قليل جدا من الدراسات الحيوانية المتعلقة ب SNOM. في نماذج الحيوانات، يمكن التحكم في الظروف التجريبية وتعديلها؛ على النقيض من ذلك، في السيناريوهات السريرية، توجد عوامل معقدة وعديدة مشوشة. بالإضافة إلى ذلك، في النماذج الحيوانية، يسمح بالقياسات التسلسلية المتكررة خلال فترة قصيرة نسبيا، مما يوفر بيانات أساسية لتقييم استراتيجيات الإدارة السريرية الجديدة؛ ومع ذلك، لا يمكن تكرار تعقيد الصدمات القتالية البشرية متعدد الأنظمة بالكامل. مقارنة بنماذج الحيوانات الصغيرة أو الدراسات الرصدية السريرية، تسمح نماذج الخنازير بتقييم مركز البطن مع التصوير بالموجات فوق الصوتية للصدمات (FAST)، والبطن، وأخذ عينات الدم المتسلسل في ظروف تجريبية مضبوطة. تهدف هذه الدراسة إلى إنشاء نماذج خنازير لإصابات الطلقات النارية في البطن والانفجارات ومقارنة نتائجها بعد SNOM والجراحة الفورية.

البروتوكول

تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل اللجنة الفرعية لأخلاقيات الحيوانات التابعة للمستشفى العام لقيادة المسرح الشمالي (رقم الموافقة الأخلاقية: 2024–23) وأجريت وفقا لإرشادات ARRIVE (الحيوانات في البحث: الإبلاغ عن تجارب في الحي)¹⁶. تم توفير وصيانة جميع الخنازير من قبل مركز الحيوانات المختبرية التابع للمستشفى العام لقيادة المسرح الشمالي.

1. التجميع

1. استخدم 24 خنزيرا لاندراس ذكرا عمرهم 4 أشهر، بمتوسط وزن جسم 27.7 كجم ونطاق 25–30 كجم.
2. ضع كل خنزير في قفص عادي لمدة لا تقل عن 48 ساعة قبل التجربة.
3. قم بتعيين 24 خنزيرا عشوائيا لمجموعة نموذج إصابة الطلقات (n = 12) أو مجموعة نموذج إصابة الانفجار (n = 12) باستخدام تسلسل عشوائي مولد بواسطة الحاسوب.
4. علاوة على ذلك، تم تعيين الخنازير في كل مجموعة نموذج إصابة عشوائيا إلى مجموعة الجراحة الفورية (n = 6) أو مجموعة الإدارة الانتقائية غير الجراحية (SNOM) (n = 6) باستخدام نفس طريقة العشوائية (الشكل 1).
5. حدد نتائج الجراحة ونتائج SNOM كما يلي: تشير الجراحة الفورية إلى جراحة البطن المخطط لها التي تجرى مباشرة بعد نمذجة الإصابة؛ يشير استئصال البطن العلاجي إلى إجراء إجراء جراحي نشط يتطلب تدخلا جراحيا نشطا في حالة نزيف مستمر أو إصابة حشوية قابلة للعلاج جراحيا؛ يشير قطع البطن السلبي إلى قطع البطن بدون نزيف نشط أو إصابة بطن قابلة للعلاج جراحيا؛ التحويل إلى جراحة يشير إلى قطع البطن الذي يجرى بعد بداية SNOM؛ يشير فشل SNOM إلى التحول إلى جراحة أو الوفاة خلال فترة المراقبة التي تستمر 7 أيام؛ ويشير نجاح SNOM إلى إكمال فترة المراقبة التي مدتها 7 أيام دون التحول إلى جراحة أو وفاة.

2. التخدير والتحضير قبل النمذجة

1. صوم كل خنزير لمدة لا تقل عن 12 ساعة قبل نمذجة الإصابة وترك الماء متاحا بحرية.
2. تحفز التخدير العام عبر الوريد الأذني باستخدام بروبوفول بنسبة 1٪ بجرعة 0.8 مل/كغ. أعط 2–4 مل إضافية من البروبوفول عند الحاجة لتحقيق تخدير كاف.
3. حافظ على التخدير طوال فترة التجربة عن طريق الحقن المستمر للبروبوفول بجرعة 1.2 ملغ/كجم/ساعة.
4. تأكد من وجود تخدير كاف من خلال غياب رد فعل القرنية، واتساع حدقة العين مع انخفاض رد فعل الضوء، والاسترخاء الطبيعي للأطراف.
5. ضع كل خنزير في وضعية الاستلقاء على الظهر بعد الحصول على تخدير كاف.
6. قم بتنيب كل خنزير باستخدام أنبوب التهوية بقطر 7.5F تحت تنظير الحنجرة للحفاظ على ثبات مجرى الهواء.
7. حافظ على التنفس التلقائي عندما تبقى العلامات الحيوية مستقرة، وقدم تهوية بالضغط الإيجابي في حالات انقطاع التنفس أو صعوبة التنفس أو فقدان تشبع الأكسجين.
8. تأكد من وجود علامات حيوية مستقرة لمدة 10 دقائق قبل عرض الأصابة.
9. لا تقوم بتحميل السائل الوقائي قبل نمذجة الإصابة. خلال فترة ما قبل العملية، أعط محلول ملحي دافئ طبيعي فقط كسائل صيانة أو إنقاذ عند الحاجة السريرية. يستخدم انخفاض ضغط الدم المستمر أو التدهور التدريجي السريري كمؤشر على الاستكشاف الجراحي الفوري أو التحويل إلى جراحة، بدلا من الإنعاش التحفظي المطول.
10. لا تعطى منتجات الدم أثناء التجربة. عند تحديد النزيف، تحقق السيطرة على النزيف عن طريق الجراحة الدقيقة في الحيوانات التي تم تعيينها لجراحة فورية أو تم تحويلها إلى جراحة، بدلا من الإنعاش القائم على نقل الدم.

3. تأسيس النموذج

1. ضع كل خنزير مخدر في وضعية الديكوبيتوس الجانبي الأيمن.
2. نقل الخنزير إلى منصة نمذجة صدمات الحيوانات متعددة الوظائف في المؤسسة (الشكل 2).
3. حدد الموقع المستهدف في الربع العلوي الأيمن، مباشرة أسفل الحافة الساحلية اليمنى.
4. حدد نقطة الهدف على بعد حوالي 27 سم فوق الارتباط الجنسي العانة (النطاق: 25–30 سم) و2 سم جانبيا إلى خط المنتصف.
5. حدد نموذج إصابة الطلقات النارية عن طريق إطلاق كرة فولاذية صغيرة عموديا، قطرها 7 مم ووزنها 1.45 جم، عند نقطة البطن المحددة من مسافة 10 سم باستخدام ضغط 170 بار.
6. إنشاء نموذج إصابة الانفجار عن طريق توجيه موجة صدمة عالية الضغط عند نقطة البطن المحددة من مسافة 6 سم باستخدام ضغط 170–190 بار.
7. تشغيل منصة نمذجة الصدمات باستخدام نظام التحكم عن بعد.
8. احتفظ جميع الباحثين بمنطقة مراقبة منفصلة محمية أثناء إنشاء النموذج لمنع التعرض للضغط العالي والصدمات الصوتية.
   ملاحظة: اسمح لتحديد عمق الاختراق بواسطة الضغط المعياري ومقاومة الأنسجة الفردية. عرف فشل النموذج بأنه الوفاة الفورية عند الاصطدام.

4. إدارة مجموعة الجراحة الفورية

1. نقل كل خنزير في مجموعة الجراحة المباشرة إلى غرفة العمليات فور نمذجة الإصابة.
2. ضع الخنزير في وضعية الاستلقاء على الظهر.
3. جهز منطقة البطن باليودوفور وغط منطقة الجراحة بطريقة معقمة.
4. قم بعمل شق أفقي بطول حوالي 10–15 سم بالقرب من موقع الجرح لدخول تجويف البطن.
5. استخدم مزاد معدني لفتح جدار البطن بشكل كاف وكشف الأعضاء والهياكل داخل البطن.
6. إخلاء الدم المجسم باستخدام جهاز شفط عند ملاحظة دم الصفاق.
7. تقدير إجمالي فقدان الدم من خلال دمج حجم الدم الممتص مع زيادة وزن الإسفنجات الجراحية المشبعة بالدم.
8. فحص تجويف البطن بشكل منهجي بعد إخراج الدم داخل الصفاق، مع التركيز بشكل خاص على الكبد والأعضاء المصابة الأخرى.
9. تحديد الإدارة الجراحية اللاحقة وفقا للنتائج أثناء العملية.
10. استخدم التخثر الكهربائي الجراحي بقوة تقارب 40 واط لإدارة النزيف المستمر في إصابة الكبد.
11. قم بإجراء استئصال جزئي للكبد عندما يفشل التخثر الكهربائي في السيطرة على النزيف أو عندما يتعرض نسيج الكبد لضعف شديد في النشاط.
12. تجنب التدخل الجراحي الإضافي عندما لا يتم تحديد نزيف نشط أو إصابة حشوية قابلة للعلاج جراحيا أثناء الاستكشاف.
13. أغلق الشق البطني على طبقات باستخدام غرز 0 مقياس (0 gauge).

5. إدارة مجموعة SNOM

1. قم بأداء سريع مباشرة بعد تأسيس النموذج.
2. قم بقياس وتسجيل العلامات الحيوية بعد النمذجة، بما في ذلك درجة حرارة الجسم، وضغط الدم، وتشبع الأكسجين.
3. راقب العلامات الحيوية باستمرار خلال أول ساعتين بعد نمذجة الإصابة. سجل العلامات الحيوية كل 4 ساعات بعد أول ساعتين من المراقبة المستمرة.
4. إجراء المسح الأولي FAST مباشرة بعد نمذجة الإصابة باستخدام نظام تشخيص الموجات فوق الصوتية الملون دوبلر المحمول مزود بمسبار مصفوفة محدبة بنطاق ترددي من 1 إلى 7 ميجاهرتز وتردد مركزي 3.2 ميجاهرتز.
5. أجر فحوصات FAST متكررة عند الاشتباه في التدهور السريري أو عدم الاستقرار الديناميكي الدموي.
6. تعيين فحوصات FAST لأخصائي تصوير بالموجات فوق الصوتية ذو خبرة أعمى عن المعايير الفسيولوجية الأولية للحيوانات.
7. قم بإجراء فحوصات FAST وفقا لبروتوكول الموجات فوق الصوتية القياسي.
8. السماح لجراح الإصابات الأول باتخاذ القرار النهائي بشأن التحول من SNOM إلى التدخل الجراحي وفقا للعتبات الموصوفية أو الديناميكية الدموية المحددة مسبقا.
9. نقل الخنزير إلى غرفة العمليات للتدخل الجراحي عندما يكشف FAST عن صدى مستمر غير متجانس في نسيج الكبد، أو توسع تدريجي للسائل الحر داخل الصفاق، أو تضخم الورم الدموي الكبدي.
10. انقل الخنزير إلى غرفة العمليات للتدخل الجراحي عندما يحدث عدم الاستقرار الديناميكي الدموي، المعروف بضغط الدم الانقباضي <90 ملم زئبق).
11. استمر في الإدارة المحافظة عندما تبقى العلامات الحيوية مستقرة، ولا تظهر FAST أي نتائج غير طبيعية.

6. أخذ عينات الدم

1. اجمع حوالي 2 مل من الدم في كل سحب من وريد الأذن الهامشي والشريان السباتي قبل النمذجة (القاعدة الأساسية)، 24 ساعة، 3 أيام، 5 أيام، و7 أيام بعد النمذجة.
2. اجمع عينات الدم في أنابيب مناسبة وفقا لمتطلبات كل اختبار مختبري.
3. عالج جميع عينات الدم خلال 30 دقيقة بعد الجمع.
4. افصل المصل عن طريق الطرد المركزي عند 3000 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق.
5. تخزين عينات المصل عند -80 درجة مئوية حتى إجراء تحليلات إضافية.
6. استبعد العينات المفقودة الناتجة عن الوفاة المبكرة أو الفشل التقني في أوقاتها المقابلة.
7. قم بتحليل غازات الدم الشريانية باستخدام جهاز تحليل غازات الدم. حلل عداد الدم الكامل باستخدام محلل أمراض الدم. قياس زمن البروثرومبين (PT) ومستويات الفيبرينوجين (FIB) باستخدام محلل تخثر. تحليل مستويات البروتين التفاعلي مع C (CRP)، والبيليروبين الكلي (TBIL)، والبيليروبين غير المباشر (IBIL)، وإنزيم الأسبارتات أمينوترانسفيراز (AST)، وإنزيم الألينين أمينوترانسفيراز (ALT) باستخدام محلل كيميائي حيوي آلي.
8. قم بقياس مستويات عامل نخر الورم في المصل α (TNF-α)، والإنترلوكين-6 (IL-6)، والإنترلوكين-10 (IL-10) باستخدام مجموعات اختبار منشط مناعي مرتبط بإنزيم الخنزير (ELISA) المحدد.
9. معايير الفحص والعينات مكررة. استخدم متوسط الكثافة الضوئية للآبار المكررة لإنشاء منحنيات قياسية وحساب تركيزات عوامل الالتهاب.

7. الإدارة بعد النمذجة

1. ضع كل خنزير في قفص منفصل بعد عرض الإصابات. أعط 0.75 جرام من سيفوروكسيم الصوديوم عن طريق الحقن العضلي مرة واحدة يوميا خلال أول 5 أيام بعد النموذج لمنع العدوى.
2. تقديم مسكنات بعد العملية تحت إشراف أفراد مدربين. قيم السلوكيات المرتبطة بالألم، بما في ذلك انخفاض النشاط، ووضعية غير طبيعية، وانخفاض تناول الطعام، على الأقل ثلاث مرات يوميا. أعط مسكنات الألم عند ملاحظة سلوكيات مرتبطة بالألم.
3. قم بتعقيم الجرح الجراحي بصبغة اليود ثلاث مرات يوميا. وفر الطعام والماء ثلاث مرات يوميا.
4. راقب الحالة الجسدية والعقلية لكل خنزير باستمرار خلال فترة المراقبة التي تستمر 7 أيام.
5. في اليوم السابع بعد النمذجة، قم بقتل كل خنزير ناجي عن طريق جرعة زائدة عن طريق الوريد من 1٪ بروبوفول.
6. قم بعمل شق بطني في منتصف الخط لكشف تجويف البطن بالكامل. قم بإجراء تشريح شامل لتأكيد شدة وتوزيع إصابات البطن.
7. تقييم شدة الإصابة باستخدام مراجعة مقياس الإصابات المختصرة لعام 2015 (AIS)¹⁷.
8. تعيين جراحين ذوي خبرة اثنين غير مدركين عن تعيينات مجموعات التجارب والنتائج السريرية لإجراء تقييم AIS بشكل مستقل وحل أي اختلافات من خلال النقاش حتى يتم التوصل إلى توافق.

8. التحليل الإحصائي

1. قدم المتغيرات المستمرة كوسطات ذات نطاقات رباعية (IQR).
2. قدم المتغيرات التصنيفية كترددات ونسب مئوية.
3. قارن المتغيرات المستمرة باستخدام اختبار مان-ويتني U.
4. قارن المتغيرات الفئوية باستخدام اختبار فيشر الدقيق.
5. قم بإجراء جميع التحليلات الإحصائية باستخدام برامج إحصائية.
6. استخدم قيمة P مقدارها <0.05 للدلالة على الدلالة الإحصائية.
7. استبعاد الحيوانات التي لديها معدل وفاة مبكر من التقييمات الفسيولوجية والكيميائية الحيوية المتسلسلة اللاحقة والتقييم النهائي ل AIS.

النتائج

في جميع الخنازير ال 24، ظلت العلامات الحيوية مستقرة خلال ساعة إلى ساعتين بعد النمذجة.

نموذج إصابة الطلقات النارية

في مجموعة الجراحة المباشرة، أصيب جميع الخنازير الستة بإصابات اختراق (الجدول 1). كشفت الاستكشاف الجراحي أن خنزير واحد (16.67٪) تعرض لاختراق الصفاق دون إصابة في الأعضاء، و1 (16.67٪) إصابة اختراق كبد، و4 (66.67٪) تمزقات في الكبد (الشكل 3A). خضع خنزيرتان (33.33٪...

المناقشة

وفقا للمسار الباليستي، يمكن تصنيف إصابات الطلقات النارية إلى إصابات الأنابيب المخترقة وإصابات الأنابيب العمياء. تصنف إصابات الانفجارات عموما إلى أربعة أنواع: 1) الأضرار الناتجة فقط عن موجة الانفجار؛ 2) الأضرار الناتجة أساسا عن الحطام الناتج عن الجهاز المتفجر أو البيئة المحيطة؛ 3) الأضرار الناتجة عن إزاحة الضحية أو الهياكل البيئية؛ و4) الحروق، والتسمم، والتلوث الإشعاعي¹⁵. حاكيت الدراسة الحالية إصابات الطلقات النارية والانفجار المخترقة الناتجة عن موجة انفجارية. تطور...

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة

الاسم	الشركة	رقم فهرسي	التعليقات
Adjustable single-channel pipette, 20–200 µL	Thermo Labsystems	4642080
AU5800 Series Clinical Chemistry Analyzers	Beckman Coulter	B23279
Automated Blood Coagulation Analyzer CS-5100	Sysmex	BY990757
BC-6800Plus Auto Hematology Analyzer	Mindray	BC-6800Plus
Cefuroxime Sodium for Injection, 0.75 g/vial	Guangzhou Baiyunshan Tianxin Pharmaceutical Co., Ltd.	NMPA approval No. H10940187
Coated braided silk suture	Covidien Healthcare International Trading (Shanghai) Co., Ltd.	N/A
Continuous dispenser	TOMOS Life Science Group	1008004
Convex array probe	SonoScape Medical Corp	Model 3C-A
Denley Dragon Wellscan MK-3 Microplate Reader	Thermo Labsystems	Wellscan MK-3
Digital-display water-jacketed electric thermostatic incubator	Shanghai Yuejin Medical Instrument Factory	PYX-DHS
Electric thermostatic blast drying oven	Shanghai Jinghong Experimental Equipment Co. Ltd.	DHG-9023A
Endotracheal Tube, Size 7.5 mm	Teleflex	5-10114
GEM Premier 3500 Blood Gas Analyzer	Werfen	26000000
High-speed tabletop centrifuge	Shanghai Anting Scientific Instrument Factory	TGL-168
K2 EDTA vacuum blood collection tube	Jiangsu Yuli Medical Instrument Co., Ltd.	N/A
Multifunctional animal trauma modeling platform	Chongqing Zhishangyun Technology Co., Ltd.	23X-FH
Porcine IL-10 Elisa Kit	Aimeng Youning	LV70245
Porcine IL-6 Elisa Kit	Aimeng Youning	LV70293
Porcine TNF-α Elisa Kit	Aimeng Youning	LV70500
Portable color Doppler ultrasound diagnostic system	SonoScape Medical Corp	Model E3
Preset heparinized arterial blood collection syringe	BD	364390
Propofol 1% (10 mg/mL)	Fresenius Kabi	N/A
RM800 Veterinary Multi-parameter Monitor	RWD Life Science Co., Ltd.	RM800
Safety closed IV catheter	Shandong Ande Healthcare Apparatus Co., Ltd.	N/A
Serum separator tube (SST), clot activator + gel	Jiangsu Yuli Medical Instrument Co., Ltd.	N/A
Sodium Chloride Injection 0.9%, 500 mL	Anhui BBCA Pharmaceutical Co., Ltd.	NMPA approval No. H34021876
SPSS	IBM Corp, Armonk, New York, USA	26
Sterile disposable syringe, 10 mL	Shandong Ande Healthcare Apparatus Co., Ltd.	N/A
Sterile disposable syringe, 5 mL	Shandong Ande Healthcare Apparatus Co., Ltd.	N/A
Sterile surgical forceps (straight and curved)
Sterilization wrapping sheet (non-woven fabric)	MPACK	A082700
Vacuum blood collection tube, sodium citrate	Jiangsu Yuli Medical Instrument Co., Ltd.	N/A
Vortex mixer	Shanghai Qingpu Huxi Instrument Factory	XW-80A
Wellwash 4 MK 2 Microplate Washer	Thermo Labsystems	N/A