تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل لجنة أخلاقيات الحيوان في شركة قوانغتشو مايلز للتكنولوجيا الحيوية المحدودة، برقم الموافقة IACUC-MIS2023076. الشركة المذكورة هي مركز تجارب على الحيوانات؛ تجرى تجاربنا على الحيوانات هنا، ولذلك تخضع لمراجعة لجنة الأخلاقيات في المركز.
الحيوانات وتصميم التجارب
تم شراء ثلاثين فأرا من نوع BALB/c (ذكر، عمره 8 أسابيع، ووزنها 22 ± 2 جرام) تجاريا. معايير التحريض والتحقق من النموذج: تم تأسيس نموذج التهاب عضلة القلب الناتج عن مثبط نقاط التحقق المناعي (ICI) عن طريق الحقن الوريدي لدواء إيبيليموماب (5 ملغ/كغ) ونيفولوماب (10 ملغ/كغ) لمدة أسبوعين متتاليين. تم إجراء الجرعات كل 3 أيام لمدة نمذجة إجمالية بلغت أسبوعين. وقد ثبت سابقا أن هذا البروتوكول يسبب إصابة قلبية مناعية كبيرة10. بعد 24 ساعة من الحقن النهائي، تم جمع عينات دم عبر الضفيرة الرجعية الحجاجية وتم طرد مركزها بحرارة 300 × جرام لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية لعزل المصل؛ لاحقا، تم قياس مستويات cTnT في المصل باستخدام مجموعة ELISA محددة، تتضمن خطوات متسلسلة من تحميل العينات، وحضانة الأجسام المضادة المتقاربة ب HRP، والغسل الآلي، وتفاعل كروموجين TMB، مع قياس الكثافة البصرية عند 450 نانومتر لحساب التركيزات بناء على منحنى لوجستي من أربعة معاملات، واعتبر تركيز cTnT ≥10 نانوغرام/مل نجاحا في تأسيس النموذج.
تم تقسيم ستة فئران نموذجية ذات أقرب وزن جسم وتركيز cTnT عشوائيا إلى مجموعتين: مجموعة ضابطة ومجموعة العلاج (n=3 لكلتا المجموعتين، أي التكرار البيولوجي). تلقت المجموعة الضابطة حقن يومية عن طريق الوريد من محلول ملحي طبيعي بجرعة 5 مل/كغ. تلقت مجموعة العلاج حقن يومية عن طريق الوريد من مستحلب الدهون القائم على زيت الزيتون 5٪ (OOLE) بجرعة 5 مل/كغ عبر وريد الذيل لمدة 6 أيام (وهذا يمثل الجرعة التي نستخدمها للعلاج السريري داخل مؤسستنا؛ وقد تم تعميمها للاستخدام في الفئران بناء على نسب مساحة الجسم). أجريت الاختبارات التالية على نافذة مراقبة مدتها 6 أيام: تم تقييم وظيفة القلب في البداية (اليوم 0) وما بعد العلاج (اليوم 6) باستخدام نظام تصوير صوتي بالموجات فوق الصوتية. تم جمع الدم عبر الوريد الخلفي في اليوم السادس، وتم قياس السيتوكينات في المصل بواسطة ELISA. بعد القتل الرحيم للحيوانات بجرعة زائدة من التخدير، تم تجميد نسيج القلب بسرعة لتحليل البروتين.
عزل الخلايا التائية
تم قتل الفئران في المجموعة الضابطة بجرعة زائدة من التخدير. تم استئصال الطحال معقم بعد تعقيم سطحي لمدة 5 دقائق بإيثانول 75٪، وتمت إزالة جميع الأنسجة الضامة. تم تفكيك الطحال ميكانيكيا باستخدام مصفاة خلايا بحجم 70 ميكرومتر مع PBS مع 2٪ FBS لإنشاء تعليق خلية واحدة. ثم تم طرد هذا التعليق بحرارة 300 × g.، و4 °C لمدة 5 دقائق، وتحلل كريات الدم الحمراء ب 1 مل من محلول ACK Lysing Buffer لمدة دقيقتين في درجة حرارة الغرفة. تم إنهاء عملية التحلل بالغسل باستخدام PBS. تم إثراء الخلايا التائية سلبا لمنع التنشيط باستخدام مجموعة عزل خلايا تائية من الفأر. لكل 10 ملايين خلية، يضاف 50 ميكرولتر من كوكتيل الانتقاء ويحتضن في درجة حرارة الغرفة لمدة 10 دقائق. تبع ذلك إضافة 75 ميكرولتر من خرز السترابتافيدين المغناطيسي لكل 10 ملايين خلية، مع حضانة لمدة 5 دقائق. تم الاحتفاظ بالخلايا المرتبطة بالخرزات باستخدام مغناطيس لمدة 3 دقائق، وتم جمع الخلايا التائية المخصبة (بأكثر من 94٪ نقاة) من الفائق. لفرز مجموعات CD4⁺ وCD8⁺، تم صبغ الخلايا المخصبة بأجسام مضادة مضادة ل CD3ε-PE، ومضاد CD4-APC، ومضاد CD8-FITC لمدة 15 دقيقة في الظلام، ثم غسلها ثلاث مرات باستخدام PBS المبرد مسبقا. تم إجراء الفرز على جهاز قياس تدفق الخلايا باستخدام استراتيجية البوابات التالية: الخلايا اللمفاوية (FSC/SSC)، ثم CD3⁺، ثم CD4⁺ أو CD8⁺ الفرعية. تم فرز الخلايا في وضع النقاء في أنابيب جمع مملوءة مسبقا ب 200 ميكرولتر من PBS، مما أعطى مجموعات أهداف بنقاء تزيد عن 98٪.
بناء وعلاج نموذج خلية التهاب عضلة القلب
تم زراعة خلايا HL-1 في وسط DMEM/F12 مع مكمل 10٪ مصل أبقار جنيني (FBS) و1٪ بنسلين-ستربتوميسين (PS) تحت ظروف قياسية (37 درجة مئوية، 5٪ CO₂). تم تقسيم الخلايا إلى ثلاث مجموعات: مجموعة التحكم (غير معالجة)، مجموعة النموذج (خلايا HL-1 عولجت بخلايا T CD4+/CD8+ لمدة 24 ساعة)، ومجموعة OOLE (مجموعة النموذج عولجت معا ب 10٪ OOLE لمدة 24 ساعة).
ELISA للكشف عن البروتينات المرتبطة بإصابات عضلة القلب في المصل
حضن 50 ميكرولتر من عينة المصل في آبار الصفائح الدقيقة الغنية بالأجسام المضادة المطلية مسبقا في المجموعة لمدة 30 دقيقة، ثم اغسلها ثلاث مرات باستخدام PBST لإزالة المكونات غير المرتبطة. أضف محلول الأفيدين المحضر الموسوم ببيروكسيداز الفجل الحار (HRP) للحضانة الثانية. اغسل ثلاث مرات أخرى باستخدام PBST، أضف 100 ميكرولتر من ركيزة 3,3',5,5'-تتراميثيلبنزيدين (TMB) لبدء التفاعل اللوني، وأنهي التفاعل بمحلول توقف 100 ميكرولتر خلال 30–45 دقيقة من بدء التفاعل. قياس الامتصاص (OD) عند 450 نانومتر باستخدام قارئ الميكرولوح وقياس تركيز المحلل المستهدف باستخدام منحنى معياري مرسوم بمعايير مرجعية معروفة.
البقعة الغربية
تم سحق أنسجة القلب باستخدام مادة تجانس الأنسجة مع النيتروجين السائل. بعد ذلك، تم تحلل عينات الأنسجة والخلوية في 200 ميكرولتر من حاجز RIPA على الجليد لمدة 30 دقيقة. تم طرد الكميات على اللائسات بحرارة 12,000 × جرام لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية لجمع المواد الفائقة البروتينية. تم تحديد تركيزات البروتين باستخدام مجموعة اختبار بروتين BCA. بعد تعديل تركيز البروتين إلى 5 ميكروغرام/ميكرولتر، تم خلط العينات مع حاجز تحميل 5× وتم تفكيكها عن طريق التسخين عند 95 درجة مئوية لمدة 10 دقائق. تم فصل البروتينات على جل SDS-PAGE بنسبة 10٪ (تم تشغيلها بجهد 100 فولت لمدة 90 دقيقة) ثم نقلت لاحقا إلى أغشية PVDF عبر الكهرباء شبه الجاف عند 15 فولت لمدة 30 دقيقة. تم حجب الأغشية بحليب خالي من الدسم بنسبة 5٪ ثم تم فحصها طوال الليل عند درجة حرارة 4 درجات مئوية باستخدام الأجسام المضادة الأولية (بما في ذلك IL-1β، NLRP3، MyD88، NF-κB p65، وتوبولين؛ تخفيف بنسبة 1:1,000). بعد غسل الأغشية ثلاث مرات لمدة 10 دقائق لكل منها بمحلول ملحي مخزن بتريس يحتوي على 0.1٪ Tween 20 (TBST)، تم حضانها بأجسام مضادة ثانوية متقاربة ببيروكسيداز الفجل الحار (HRP) (تخفيف 1:10,000) لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة. تم عرض أشرطة البروتين من خلال تطبيق ركيزة الإضاءة الكيميائية المعززة (ECL)، وتم التقاط الإشارات باستخدام نظام تصوير الإضاءة الكيميائية. وأخيرا، تم تحليل مستويات التعبير النسبي كميا من خلال تطبيع القيم الكثافة القياسية لأشرطة البروتين المستهدفة إلى التحكم الداخلي لتوبولين باستخدام برنامج ImageJ.
اختبار الاستماتة الخلوية باستخدام قياس تدفق الخلايا
تم غسل خلايا HL-1 مرتين باستخدام محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS). لتفكك الخلية، أضيف 1 مل من التريبسين وحضنته لمدة دقيقة واحدة، تلاها مباشرة تعادلها ب 2 مل من وسط الزراعة الكامل. ثم تم طرد التعليق الخلوي عند 250 × جرام لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية، وتم التخلص من المادة الفائقة. تم غسل الحبيبات الخلوية المجمعة مرتين باستخدام PBS بارد جدا وأعيد تعليقها في مخزن ارتباط 1x لتحقيق كثافة خلوية تبلغ 1 × 106 خلايا/مل. تم نقل 100 ميكرولتر من هذا التعليق الخلوي إلى أنبوب قياس خلوي تدفق، تلاه إضافة 5 ميكرولتر من FITC-Annexin V و5 ميكرولتر من يوديد البروبيديوم (PI). بعد دوامة لطيفة، تم حضن الخليط لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة (25 درجة مئوية) في الظلام. وأخيرا، أضيف 400 ميكرولتر من مخزن ارتباط 1x لكل أنبوب، وتم تحليل موت الخلايا المبرمج لاحقا باستخدام جهاز قياس تدفق الخلية. في استراتيجية البوابة، تم تحديد الأحداث أولا على التشتت الأمامي (FSC) والتشتت الجانبي (SSC) لاستبعاد الحطام تحت الخلوي وعزل مجموعة خلايا HL-1 السليمة. داخل هذه البوابة الأولية، تم قياس الخلايا المبوتة باستخدام تحليل الربعي، حيث عرفت الخلايا المبوتة المبكرة بأنها FITC-Annexin V⁺/PI⁻، وخلايا الاستماتة المتأخرة بأنها FITC-Annexin V⁺/PI⁺.
التحليل الإحصائي
تم إجراء كل تجربة على ثلاث نسخ، وأجري التحليل الإحصائي باستخدام برامج إحصائية. تم تحليل الفروق بين مجموعتين باستخدام اختبار t العينات المستقلة؛ تم تحليل الفروقات بين ثلاث مجموعات أو أكثر باستخدام تحليل التحليل العميق أحادي الاتجاه تلاها اختبار بونفيروني بعد الاختبار. تعبر البيانات كمتوسط ± خطأ معياري (SEM). تم اعتبار P < 0.05 ذات دلالة إحصائية.