يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة بحثية

إثراء الفيبرين الغني بالصفائح الدموية باستخدام الكوبالامين وألفا-توكوفيرول لتنظيم إطلاق عامل النمو

116 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/71016

⸱

مايو 22, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Periodontology, Faculty of Dentistry, University of Cukurova, 2Department of Biology, Faculty of Medicine, University of Cukurova

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول نهجا لضبط الفيبرين الغني بالصفائح الدموية بيولوجيا من خلال التخصيب بالكوبالامين وألفا-توكوفيرول قبل الطرد المركزي، مما يمكن من تعديل عامل النمو وإطلاق السيتوكين تحت ظروف المختبر .

الملخص

الفيبرين الغني بالصفائح الدموية (PRF) هو مادة حيوية ذاتية الاستخدام تستخدم على نطاق واسع في طب الأسنان التجديدي بسبب توافقه الحيوي وإفراره المستمر لعوامل النمو. تحولت الأبحاث الحديثة نحو تعديل PRF بيولوجيا لتعزيز أدائه التجددي دون تغيير مبادئ التحضير الأساسية. تقدم هذه الدراسة بروتوكولا لضبط PRF بيولوجيا بدقة من خلال إثراء الكوبالامين والألفا-توكوفيرول قبل الطرد المركزي، وتقيم تأثيراتها على عامل النمو وإفراز السيتوكين الالتهابي تحت ظروف المختبر . تمت معالجة عينات الدم الطرفية التي تم الحصول عليها من متطوعين أصحاء باستخدام بروتوكول طرد مركزي ثابت. تمت إضافة الكوبالامين أو ألفا-توكوفيرول إلى الدم الكامل قبل الطرد المركزي للحصول على مصفوفات PRF المعدلة بيولوجيا. تم قياس ملفات إفراز عامل النمو المشتق من الصفائح الدموية (PDGF)، عامل النمو المحول-β1 (TGF-β1)، عامل النمو البطاني الوعائي (VEGF)، عامل النمو الشبيه بالأنسولين-1 (IGF-1)، عامل نمو الأرومات الليفية-2 (FGF-2)، الإنترلوكين-1β (IL-1β)، وعامل نخر الورم-α (TNF-α) عند 24 ساعة و72 ساعة باستخدام اختبار منشط مناعي مرتبط بالإنزيم. ارتبط PRF الغني بالكوبالامين بفروق كبيرة بين المجموعات في مستويات TGF-β1 وانخفاض إطلاق السيتوكينات المضادة للالتهابات، مما يشير إلى تحول نحو بيئة ميكروية تجديدية أكثر ملاءمة. على النقيض من ذلك، كانت الزيادات التي لوحظت في FGF-2 وIGF-1 تعتمد على الزمن وتم اكتشافها عبر جميع المجموعات، دون إظهار تأثير خاص بالكوبالامين. أظهر PRF الغني بألفا توكوفيرول زيادة انتقائية في إفراز VEGF، مما يشير إلى تأثير مبكر محتمل. تظهر هذه النتائج أن التخصيب المستهدف للفيتامينات يمكن من التحكم في ضبط النشاط الحيوي ل PRF مع الحفاظ على طبيعته الذاتية والخالية من مضادات التخثر. يوفر هذا البروتوكول إطارا عمليا لضبط PRF بيولوجيا ويدعم استخدامه كمنصة تجديدية قابلة للتعديل للتطبيقات الانتقالية والسريرية المستقبلية.

المقدمة

الفيبرين الغني بالصفائح الدموية (PRF) هو مركز من الجيل الثاني من الصفائح الدموية الذاتية، وقد تم اعتماده على نطاق واسع في أمراض اللثة، وطب أسنان الزرعات، وجراحة الفم بسبب توافقه الحيوي، وسهولة تحضيره، وقدرته علىإطلاق عوامل النمو بشكل مستمر 1,2. يتم الحصول على PRF عن طريق الطرد المركزي للدم الكامل دون استخدام مضادات التجلط أو المنشطات الخارجية، مما ينتج عنه مصفوفة فيبرين ثلاثية الأبعاد تحبس الصفائح الدموية وكريات الدم البيضاء (الكريات البيضاء الدقيقة). تعمل هذه المكونات الخلوية كمستودعات داخلية لعوامل النمو، بما في ذلك عامل النمو المستخرج من الصفائح الدموية (PDGF)، وعامل النمو المحول-β1 (TGF-β1)، وعامل النمو البطاني الوعائي (VEGF)، وعامل النمو الشبيه بالأنسولين-1 (IGF-1)، وعامل نمو الأرومات الليفية-2 (FGF-2)، والتي تنظم معا تكوين الأوعية، وهجرة الخلايا، والتكاثر، وإعادة تشكيل المصفوفة خارج الخلية أثناء تجديد الأنسجة 3,4.

بعيدا عن تركيبه البيولوجي، يتأثر الأداء التجديدي ل PRF بشكل كبير ببنية شبكة الفيبرين والنشاط البيولوجي لمكوناته الخلوية. لهذا السبب، تجاوزت التحقيقات الحديثة بروتوكولات التحضير التقليدية وبدأت تصور PRF كنظام ناقل قابل للتعديل بيولوجيا بدلا من هيكل سلبي 5,6. أظهرت استراتيجيات التعديل الهيكلي، مثل دمج المواد الحيوية مثل حمض الهيالورونيك والكولاجين، أن الخصائص الفيزيائية والميكانيكية ل PRF يمكن تغييرها، مما يؤدي إلى تغييرات في تنظيم الفيبرين، والاستقرار الميكانيكي، وحركية إفراز عوامل النمو7. ساهمت هذه النتائج في تزايد الأدلة التي تدعم قدرة PRF على التكيف مع متطلبات التجدد المحددة.

بالتوازي مع الأساليب القائمة على المواد الحيوية، ظهر التخصيب القائم على الفيتامينات كاستراتيجية ذات صلة بيولوجية لتنظيم النشاط البيولوجي لPRF. تعرف الفيتامينات بتنظيم العمليات الخلوية الأساسية مثل الأيض، وتوازن الأكسدة والاختزال، وتخليق الكولاجين، وتكوين الأوعية، والإشارات الالتهابية. على وجه الخصوص، أثبتت الفيتامينات مثل حمض الأسكوربيك، والكوليكالسيفيرول، والكوبالامين، والألفا-توكوفيرول تأثيرها على سلوك الخلايا وشفاء الأنسجة من خلال مسارات جزيئية مميزة8. أظهرت الدراسات المختبرية السابقة أن تركيبات PRF الغنية بالفيتامينات يمكن أن تعدل ملفات إفراز عامل النمو، وتعبير السيتوكين الالتهابي، والخصائص البيوميكانيكية لمصفوفة الفيبرين، مما يشير إلى أن مكملات الفيتامينات تمثل وسيلة فعالة لتعديل PRF بيولوجيا دون تغيير طبيعته الذاتية9.

الكوبالامين (فيتامين B12) والألفا-توكوفيرول (فيتامين E) هما من المغذيات الدقيقة الأساسية المشاركة في العمليات البيولوجية الرئيسية المتعلقة بتوازن وإصلاح الأنسجة. يلعب فيتامين B12 دورا حيويا في تخليق الأحماض النووية، والأيض الخلوي، وتكوين الريثروبويز، وقد ارتبط نقصه بتغيرات في الغشاء المخاطي الفموي وتحلل أنسجة اللثة10,11. يعمل فيتامين E كمضاد أكسدة قوي يحد من تأكسد الدهون، ويقلل من الإجهاد التأكسدي، ويساهم في استقرار الكولاجين وتنظيم الاستجابات الالتهابية12,13. ومن المهم أنه، على الرغم من أن العمل الحالي يبني على التحقيقات السابقة التي تستكشف معدلات بيولوجية وفسيولوجية مختلفة ل PRF، إلا أن الدراسة الحالية تقدم بروتوكولا مميزا مخصصا للإثراء بالكوبالامين والألفا-توكوفيرول قبل الطرد المركزي. وبناء عليه، فإن هدف هذه الدراسة هو وصف بروتوكول قابل للتكرار لتحضير PRF غني بالكوبالامين والألفا-توكوفيرول وتقييم تأثيرات هذا النهج النشط بيولوجيا على عامل النمو وإفراز السيتوكين الالتهابي تحت ظروف المختبر.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

أجريت هذه الدراسة التجريبية وفقا للمبادئ الأخلاقية المنصوص عليها في إعلان هلسنكي وحصلت على موافقة لجنة أخلاقيات البحث السريري في جامعة تشوكوروفا (رقم الموافقة: 139/25؛ التاريخ:8 ديسمبر 2023). قبل المشاركة، تم إبلاغ جميع الأفراد بإجراءات الدراسة، وتم الحصول على موافقة مستنيرة كتابية من كل مشارك. تم تنفيذ جميع الإجراءات المتعلقة بعينات دم بشرية وفقا للوائح السلامة البيولوجية المؤسسية. تم استخدام معدات الحماية الشخصية المناسبة (PPE)، بما في ذلك القفازات والكمامات ومعاطف المختبر، طوال عملية التجربة. تم التعامل مع المواد البيولوجية باستخدام تقنيات المطهر، وتم التخلص من جميع النفايات وفقا لبروتوكولات إدارة المخاطر البيولوجية المعتمدة. جميع المواد الكيميائية والمواد الاستهلاكية والمعدات المستخدمة في هذه الدراسة مدرجة في جدول المواد، بما في ذلك تفاصيل الشركة المصنعة والمواصفات ذات الصلة لضمان قابلية التكرار.

1. اختيار المشاركين
تم اختيار المشاركين من بالغين أصحاء جهازيا تتراوح أعمارهم بين 20 و30 عاما وأظهروا التزاما كافيا بإجراءات الدراسة. الأفراد الذين لديهم تاريخ من الأمراض الجهازية أو اضطرابات الدم أو الحالات المعروفة بتأثيرها على وظيفة الصفائح الدموية أو شفاء الجروح لم يعتبروا مؤهلين. شملت معايير الاستبعاد الإضافية الحمل أو الرضاعة، التدخين الحالي، العدوى الحديثة، فرط الحساسية المعروف للكوبالامين أو ألفا-توكوفيرول، واستخدام مكملات الفيتامينات أو الأدوية التي قد تتداخل مع نشاط الصفائح خلال الأشهر الستة السابقة. لتقليل التباين البيولوجي، تم تسجيل المتطوعين فقط الذين لديهم نتائج دموية أساسية طبيعية، وتم تقييم جميع المشاركين قبل الإدراج لضمان ملاءمتهم للتحضير ل PRF. كإجراء استكشافي أولي للتحقيق، استخدمت هذه الدراسة حجم عينة بناء على الجدوى وتوفر المشاركين المؤهلين خلال فترة الدراسة، وتم تحليل عينات من اثني عشر مشاركا.

2. جمع الدم وتوزيع المجموعات
تم جمع دم وريدي محيطي من كل مشارك باستخدام أنابيب زجاجية خالية من الإضافات بحجم 10 مل في ظروف معقمة. تم الحصول على خمسة أنابيب لكل مشارك. تم تخصيص أنبوب واحد لتحليل كامل لعدد الدم، واستخدم أنبوب آخر لتحديد مستويات الكوبالامين في المصل الأساسي ومستويات ألفا-توكوفيرول. تم تخصيص الأنابيب الثلاثة المتبقية لتحضير الفيبرين الغني بالصفائح الدموية (PRF). من بين هذه المواد، خدم أنبوب واحد كمجموعة PRF الضابطة دون أي إضافات، وتلقى أنبوب واحد كوبالامين (1 مل) قبل الطرد المركزي للحصول على PRF الغني بالكوبالامين، وتلقى أنبوب واحد ألفا-توكوفيرول (0.5 مل) قبل الطرد المركزي للحصول على PRF غني بألفا توكوفيرول. تم إعطاء الكوبالامين كمحلول حقن معقم (1000 ميكروغرام/مل)، واستخدم ألفا-توكوفيرول في شكل أمبول (2 مل). تمت معالجة جميع العينات فور جمع الدم لتجنب التخثر المبكر.

3. PRF التحضير
تم جمع عينات دم وريدي محيطي من كل مشارك باستخدام أنابيب زجاجية معقمة خالية من مضادات التخثر. مباشرة بعد الجمع، وضعت الأنابيب في جهاز طرد مركزي ومعالجتها دون تأخير لمنع التخثر المبكر. تم إجراء الطرد المركزي عند 2700 دورة في الدقيقة (708 × جم) لمدة 12 دقيقة (في درجة حرارة الغرفة) باستخدام نظام دوار بزاوية ثابتة. عند الانتهاء من الطرد المركزي، لوحظت ثلاث طبقات مميزة: جزء سفلي لخلايا الدم الحمراء، طبقة بلازما علوية فقيرة بالصفائح الدموية، وجلطة فيبرين وسيطة تمثل الفيبرين الغني بالصفائح الدموية (PRF). تم فصل جلطة PRF بعناية عن طبقة خلايا الدم الحمراء باستخدام أدوات معقمة وعزلها لمزيد من المعالجة. لتحضير مجموعات PRF المخصبة، تم إدخال الإضافات المخصصة إلى عينات الدم مباشرة قبل الطرد المركزي في ظروف موحدة. مكن هذا النهج من دمج المركبات النشطة الحيوية في مصفوفة الفيبرين النامية أثناء تكوين الجلطات (الشكل 1).

figure-protocol-1
الشكل 1: مخطط تدفق يوضح البروتوكول المنهجي لأخذ عينات PRF. تمت إضافة 1 مل من الكوبالامين (A) و0.5 مل من ألفا-توكوفيرول (B) إلى عينات الدم قبل الطرد المركزي. عينات PRF الناتجة في الأنابيب (C) وبعد فصلها عن طبقة خلايا الدم الحمراء (D). النتيجة النهائية PRF المغنية بالكوبالامين (E) وPRF المغنية بألفا-توكوفيرول (F). يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

4. الحضانة المخبرية لعينات PRF
تم نقل كل جلطة PRF إلى أنبوب معقم، وأضيف وسط زراعة الخلايا بنسبة موحدة 1 مل لكل 1 جرام من الجلطة (1:1، ضض/بض) لضمان بيئة انتشار متسقة عبر جميع العينات. وضعت الأنابيب على جهاز هزاز مداري وحضنتها عند 37 درجة مئوية لمدة إجمالية تبلغ 72 ساعة لتسهيل إطلاق عوامل النمو والسيتوكينات تدريجيا من مصفوفة PRF. تم جمع المواد الفائقة عند 24 ساعة و72 ساعة، ثم نقلت إلى أنابيب دقيقة معقمة، وتخزينها عند −80 درجة مئوية حتى إجراء تحليلات إضافية. تم استخدام وسط زراعة الخلايا دون مكملات مصل لتجنب التداخل من عوامل النمو الخارجية ولضمان أن جميع الجزيئات الحيوية المقاسة نشأت فقط من مصفوفة PRF.

5. تحليل ELISA لعامل النمو
تم قياس تركيزات عامل النمو المستخرج من الصفائح الدموية (PDGF)، عامل النمو المتحول β1 (TGF-β1)، عامل النمو البطاني الوعائي (VEGF)، عامل النمو الشبيه بالأنسولين-1 (IGF-1)، عامل نمو الأرومات الليفية-2 (FGF-2)، الإنترلوكين-1β (IL-1β)، وعامل نخر الورم-α (TNF-α) في المواد المجمعة باستخدام مجموعات اختبار منشطات مناعية مرتبطة بالإنزيمات وفقا لتعليمات المصنعين. تم قياس قيم الامتصاص عند 450 نانومتر باستخدام قارئ ميكرولوح، وتم حساب تركيزات التحليل بناء على منحنيات المعايرة القياسية.

6. التحليل الإحصائي
تم إجراء تحليلات إحصائية باستخدام إحصائيات IBM SPSS لنظام ويندوز (الإصدار 20.0). تم التعبير عن البيانات كمتوسط ± انحراف معياري ومتوسط (أدنى–أعظم)، حسب الاقتضاء. تم تقييم معدل توزيع البيانات باستخدام اختبار شابيرو-ويلك. أجريت مقارنات داخل المجموعات بين النقاط الزمنية باستخدام اختبار t المزدوج أو اختبار ويلكوكسون لتصنيف الموقع، بينما أجريت المقارنات بين المجموعات باستخدام تحليل التباين بمقاييس متكررة أو اختبار فريدمان، حسب الاقتضاء. تم اعتبار قيمة p <0.05 ذات دلالة إحصائية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم تحقيق تحضير ناجح للفيبرين الغني بالصفيحات الدموية (PRF) الغني بالكوبالامين، والمغني بالألفا توكوفيرول، لدى جميع المشاركين. أكد الفحص الماكروسكوبي تكوين جلطات PRF منظمة جيدا مع سلامة الفيبرين المحفوظة واستقرار ميكانيكي كاف، مما سمح بالتعامل المعياري، والحضانة، والتحليلات الكيميائية الحيوية اللاحقة (الجدول 1).

المتغيرات

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تظهر الدراسة الحالية أن الفيبرين الغني بالصفائح الدموية (PRF) يمكن ضبطه بيولوجيا بدقة من خلال تخصيب مستهدف بالكوبالامين وألفا توكوفيرول قبل الطرد المركزي، مما يؤدي إلى تعديل مميز وقابل للتكرار لعوامل النمو وملفات إطلاق السيتوكينات. تعزز هذه النتائج المفهوم المتطور بأن PRF ليس مجرد هيكل سلبي ذاتي بل هو مصفوفة متجاوبة بيولوجيا يمكن تعديل سلوكها التجديدي من خلال تدخلات نشطة بيولوجية مختارة بعناية دون تغيير مبادئ تحضيرها الأساسية.

يمارس PRF إمكاناته التجديدية بشكل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

المؤلفون ليس لديهم ما يكشفون عنه.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
ألفا-توكوفيروس (فيتامين E)أكسو فارما، إسطنبول، تركياA11HA03أمبولة EVIGEN 2 مل
الطرد المركزي (40 درجة؛ دوار بزاوية ثابتة)عملية PRF، نيس، فرنسا913023410238جهاز الطرد المركزي الثنائي
كوبالامين (فيتامين ب12)ديفا هولدينغ، إسطنبول، تركيا B03BA01أمبول DODEX 1000 ميكروغرام/مل��سبورد;
أنابيب إيبندورفأكسجينPCR-02-C200 قطعة
أنابيب جمع الدم الزجاجيهيما & تيوب (إسطنبول، تركيا)HNM8080  (10 مل) لا يوجد مضاد تخثر
حل الموارد البشريةمشمولة في مجموعة ELISA
مجموعة ELISA البشرية - FGFووهان فاين بيوتيكEH0541اختبار جيد
مجموعة إليسا البشرية - IGF-1ووهان فاين بيوتيكER0030اختبار ممتاز 
مجموعة إليسا البشرية - PDGFووهان فاين بيوتيكER1240اختبار ممتاز 
مجموعة ELISA البشرية - TGFβ-1ووهان فاين بيوتيكEH0287اختبار جيد
مجموعة ELISA البشرية - VEGFووهان فاين بيوتيكEH0327اختبار جيد
إنسان: IL-1&beta؛ مجموعة إليساووهان فاين بيوتيكEH0185اختبار جيد
بشري TNF-&; مجموعة إليساووهان فاين بيوتيكEH0302اختبار جيد
الميكروبايتات والميكروبايتات نصائحإبندورف3123000063مجموعة واحدة
قارئ اللوحة الدقيقةالبيوكرومEZ Read 400450 نانومتر
هزز المداراتستيوارت SSM3ميني جيرو-روك
مقياس الدقةسارتوريوسH51-Dقطعة واحدة
وسط زراعة الخلايا RPMI-1640هايكلون، سايتيفا، الولايات المتحدة الأمريكيةSH30027.01500 مل
مقص معقمASA لطب الأسنان (إسطنبول، تركيا)0305-1قطعة واحدة
حل الإيقافمشمولة في مجموعة ELISA
محلول الركيزةمشمولة في مجموعة ELISA
مخزن الغسيلمشمولة في مجموعة ELISA

المراجع

  1. Dohan, D. M., Choukroun, J., Diss, A., Dohan, S. L., Dohan, A. J. J., et al. Platelet-rich fibrin (PRF): a second-generation platelet concentrate. Part I: technological concepts and evolution. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 101 (3), e37-e44 (2006).
  2. Miron, R. J., Zucchelli, G., Pikos, M. A., Salama, M., Lee, S., et al. Use of platelet-rich fibrin in regenerative dentistry: a systematic review. Clin Oral Investig. 21 (6), 1913-1927 (2017).
  3. Kobayashi, E., Flückiger, L., Fujioka-Kobayashi, M., Sawada, K., Sculean, A., et al. Comparative release of growth factors from PRP, PRF, and advanced-PRF. Clin Oral Investig. 20 (9), 2353-2360 (2016).
  4. Choukroun, J., Diss, A., Simonpieri, A. Platelet-rich fibrin (PRF): a second-generation platelet concentrate. Part IV: clinical effects on tissue healing. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 101 (3), e56-e60 (2006).
  5. Miron, R. J., Fujioka-Kobayashi, M., Bishara, M., Zhang, Y., Hernandez, M., Choukroun, J. Platelet-rich fibrin and soft tissue wound healing: a systematic review. Tissue Eng Part B Rev. 23 (1), 83-99 (2017).
  6. Ghanaati, S., Booms, P., Orlowska, A., Kubesch, A., Lorenz, J., et al. Advanced platelet-rich fibrin: a new concept for cell-based tissue engineering by means of inflammatory cells. J Oral Implantol. 40 (6), 679-689 (2014).
  7. Demirbilek, F., Alkaya, B., Ucak Turer, O., Yilmaz, M. B., Haytac, M. C., Ozcan, M. Enhancing platelet-rich fibrin: influence of hyaluronic acid and collagen on growth factor release and biomechanical properties in vitro. J Vis Exp. (222), e68693 (2025).
  8. Fawzy El-Sayed, K. M., Cosgarea, R., Sculean, A., Doerfer, C. Can vitamins improve periodontal wound healing/regeneration?. Periodontol 2000. 94 (1), 539-602 (2024).
  9. Ozcan, M., Topcu, B. E., Alkaya, B., Yilmaz, M. B., Ucak Turer, O., Haytac, M. C. Effects of ascorbic acid and cholecalciferol on growth factor release, cytokines, and biomechanical properties of platelet rich fibrin: in vitro. study. BMC Oral Health. 26 (1), 262 (2026).
  10. Kozlak, S. T., Walsh, S. J., Lalla, R. V. Reduced dietary intake of vitamin B12 and folate in patients with recurrent aphthous stomatitis. J Oral Pathol Med. 39 (5), 420-423 (2010).
  11. Alekhya, K., Muppirala, S. Oral manifestations of vitamin B12 (cobalamin) deficiency: a review. Int Healthc Res J. 3 (1), 9-15 (2019).
  12. Pavithra, R., Ramaprabha, G., Rajasekar, S., Lakshmi Sree, S. Vitamin deficiency and periodontal disease: a tie-in relationship. Sch J Appl Med Sci. 5 (1A), 74-81 (2017).
  13. Singh, N., Chander Narula, S., Kumar Sharma, R., Tewari, S., Kumar Sehgal, P. Vitamin E supplementation, superoxide dismutase status, and outcome of scaling and root planing in patients with chronic periodontitis: a randomized clinical trial. J Periodontol. 85 (2), 242-249 (2014).
  14. Miron, R. J., Fujioka-Kobayashi, M., Sculean, A., Zhang, Y. Optimization of platelet-rich fibrin. Periodontol 2000. 94 (1), 79-91 (2024).
  15. Miron, R. J., Estrin, N. E., Ahmad, P., Farshidfar, N., Fujioka-Kobayashi, M., et al. Thirty years of autologous platelet concentrates: from platelet-rich plasma to platelet-rich fibrin. J Periodontal Res. , (2025).
  16. Caruana, A., Savina, D., Macedo, J. P., Soares, S. C. From platelet-rich plasma to advanced platelet-rich fibrin: biological achievements and clinical advances in modern surgery. Eur J Dent. 13 (2), 280-286 (2019).
  17. Pietruszka, P., Chruścicka, I., Duś-Ilnicka, I., Paradowska-Stolarz, A. PRP and PRF-subgroups and divisions when used in dentistry. J Pers Med. 11 (10), 944 (2021).
  18. Dohan Ehrenfest, D. M., Bielecki, T., Jimbo, R., Barbé, G., Del Corso, M., et al. Do the fibrin architecture and leukocyte content influence the growth factor release of platelet concentrates? An evidence-based answer comparing a pure platelet-rich plasma (P-PRP) gel and a leukocyte- and platelet-rich fibrin (L-PRF). Curr Pharm Biotechnol. 13 (7), 1145-1152 (2012).
  19. Schär, M. O., Diaz-Romero, J., Kohl, S., Zumstein, M. A., Nesic, D. Platelet-rich concentrates differentially release growth factors and induce cell migration in vitro. Clin Orthop Relat Res. 473 (5), 1635-1643 (2015).
  20. Isobe, K., Watanebe, T., Kawabata, H., Kitamura, Y., Okudera, T., et al. Mechanical and degradation properties of advanced platelet-rich fibrin (A-PRF), concentrated growth factors (CGF), and platelet-poor plasma-derived fibrin (PPTF). Int J Implant Dent. 3 (1), 17 (2017).
  21. El Bagdadi, K., Kubesch, A., Yu, X., Al-Maawi, S., Orlowska, A., et al. Reduction of relative centrifugal forces increases growth factor release within solid platelet-rich-fibrin (PRF)-based matrices: a proof of concept of LSCC (low speed centrifugation concept). Eur J Trauma Emerg Surg. 45 (3), 467-479 (2019).
  22. Yaşar, N. &. #. 1. 9. 9. ;., Ünsal, G., Kocaelli, H. A., Orhan, K., Sağ, F. B. Comparative analysis of local application of titanium-platelet rich fibrin (T-PRF) and leukocyte-platelet rich fibrin (L-PRF) in bone defect healing: a micro-CT and histopathological study in rabbit models. Microsc Res Tech. 88 (7), 2073-2084 (2025).
  23. O'Leary, F., Samman, S. Vitamin B12 in health and disease. Nutrients. 2 (3), 299-316 (2010).
  24. Traber, M. G., Atkinson, J. Vitamin E, antioxidant and nothing more. Free Radic Biol Med. 43 (1), 4-15 (2007).
  25. Ozcan, M., Arçay Polat, G., Alkaya, B., Uçak Türer, O., Yilmaz, M. B., Haytac, M. C. Evaluation of circadian variation in growth factors of platelet-rich fibrin: a pilot study. J Vis Exp. (224), e68902 (2025).
  26. Ozcan, M., Ciritci Kabaklı, S., Alkaya, B., Isler, S. C., Ucak Turer, O., Oksuz, H., et al. The impact of local and systemic penicillin on antimicrobial properties and growth factor release in platelet-rich fibrin: in vitro. study. Clin Oral Investig. 28 (1), 61 (2024).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.