تفاصيل جميع الحيوانات، والأنظمة الغذائية، والكواشف، والمجموعات، والأجهزة، والبرامج، ومزودي الخدمات المستخدمة في هذا البروتوكول موفرة في جدول المواد. أجريت جميع الدراسات على الحيوانات وفقا لإرشادات المعاهد الوطنية للصحة (NIH) لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية، وحصلت على موافقة لجنة الحيوانات التجريبية في مستشفى شاندونغ الإقليمي (الموافقة الأخلاقية رقم 2022–007، المعتمدة في 24 يناير 2022).
تحذير: يجب التعامل مع دم الحيوانات وعينات البراز والأنسجة كمواد قد تكون خطيرة بيولوجيا. يجب تنفيذ جميع الإجراءات المتعلقة بالحيوانات الحية، والعينات البيولوجية، والسائب، والمذيبات العضوية، ومواد التحليل الكيميائي وفقا للوائح السلامة البيولوجية المؤسسية، ورعاية الحيوانات، والسلامة الكيميائية. يجب جمع جثث الحيوانات والأنسجة والمواد الملوثة بالدم وعينات البراز في حاويات نفايات بيولوجية مخصصة والتخلص منها من خلال منشأة الحيوانات المؤسسية أو مكتب السلامة البيولوجية. يجب التخلص من الإبر، وإبر الجافاج، والأنابيب الشعرية، وغيرها من الحادات فورا بعد الاستخدام في حاويات الحاد المعتمدة. يجب جمع نفايات المذيبات العضوية، بما في ذلك الميثانول والأسيتونيتريل والمحاليل التي تحتوي على حمض الفورميك، في حاويات نفايات كيميائية موسومة والتخلص منها من خلال برنامج النفايات الكيميائية الخطرة المؤسسي. يجب جمع النفايات الناتجة عن اختبارات الإجهاد الكيميائي الحيوي والتأكسدي والتخلص منها وفقا لأوراق بيانات السلامة الخاصة بالشركة المصنعة وقواعد السلامة الكيميائية المؤسسية.
الحيوانات التجريبية
تم الحفاظ على الفئران الذكور ذات الستة أسابيع C57BL/6J (عدد = 4 لكل مجموعة) تحت ظروف خالية من مسببات الأمراض (SPF) محددة مع دورة ضوء/ظلام لمدة 12 ساعة عند 22 ± 2 درجة مئوية ورطوبة نسبية 50–60٪. كان للحيوانات إمكانية الوصول إلى الطعام والماء، مع وجود خمسة فئران كحد أقصى لكل قفص. تم إطعام الفئران الضابطة نظاما غذائيا قياسيا يتكون من 70٪ كربوهيدرات، 20٪ بروتين، و10٪ دهون (كيلو سعرة). لتأسيس نموذج فئران MASLD، تم إطعام الفئران نظاما غذائيا عالي الدهون لمدة 8 أسابيع يحتوي على 20٪ كربوهيدرات، 20٪ بروتين، و60٪ دهون (kcal). تم تخزين جميع الحميات عند 4 درجات مئوية وإعادة تجديدها مرتين في الأسبوع. تم توزيع الفئران عشوائيا على مجموعات تجريبية باستخدام مولد أرقام عشوائية، وتم تحديد حجم العينة (n = 4 لكل مجموعة) بناء على دراسات سابقة باستخدام نماذج فئران عالية الدهون وتجارب أولية مشابهة استندت إلى نظام غذائي عالي الدهون. تم إعطاء جميع العلاجات في نفس الوقت يوميا لتقليل التغيرات اليومية.
تم استخراج وتنقية زيت الطحالب الدقيقة بواسطة أكاديمية شاندونغ للعلوم الزراعية، بنقاء يقارب 99٪. تم تخزين زيت الطحالب الدقيقة عند −30 درجة مئوية محمي من الضوء. قبل الاستخدام، كان يحضر الزيت باستخدام مستحلب ويخلط جيدا لضمان التجانس. تحديدا، تم استحلاب زيت الطحالب الدقيقة الغنية ب DHA في صوديوم معقم يحتوي على 0.5٪ كربوكسي ميثيل سيلولوز يحتوي على 0.5٪ Tween-80 في محلول ملحي طبيعي. تم خلط زيت الطحالب الدقيقة ومركبة المستحلب بنسبة 1:9 (v/v) وتم تحويلهما إلى دوامة لمدة دقيقتين قبل التثبيت مباشرة للحصول على تعليق متجانس. تلقت الفئران في مجموعة معالجة الطحالب الدقيقة الزيوت التحضير مرة واحدة يوميا عن طريق التنقيب الفموي باستخدام إبرة تغذية معقمة بجرعة 10 ميكرولتر/جم من وزن الجسم. تم تعديل حجم الجافاج يوميا حسب وزن الجسم لضمان ثبات الجرعة. تلقت الفئران في المجموعة الضابطة حجما مكافئا من محلول ملحي طبيعي معقم تحت نفس الظروف. كان محلول ملحي مستخدم بنسبة حقن 0.9٪ من كلوريد الصوديوم.
تكون العلاج بالبروبيوتيك من تركيبة مركبة تحتوي على لاكتوباسيلوس بلانتاروم (DY-1)، لاكتوباسيلوس أسيدوفيلوس (KDB-03)، لاكتوباسيلوس كاسي (KDB-LC)، وبكتيريا التخثر (GIM 1.645). تم خلط السلالات الأربع بنسبة خلايا قابلة للحياة متساوية تبلغ 1:1:1:1. ساهمت كل سلالة بنسبة 2.5 × 107 CFU/mL في التركيبة النهائية، مما أدى إلى تركيز بكتيريا إجمالي يبلغ 1 × 108 CFU/mL. تم تصنيع خليط البروبيوتيك من قبل أكاديمية شاندونغ للعلوم الزراعية ولا يتوفر تجاريا. تكون العلاج بالبروبيوتيك من مرق تخمير بروبيوتيك مركب يحتوي على لاكتوباسيلوس بلانتاروم DY-1، ولاكتوباسيلوس أسيدوفيلوس KDB-03، ولاكتوباسيلوس كاسي KDB-LC، وباسيلوس كواجولانس GIM 1.645. كان تركيز البكتيريا في التركيبة 1 × 108 CFU/mL. تم تخزين مرق التخمير البروبيوتيك عند 4 درجات مئوية قبل الاستخدام. تلقت الفئران في المجموعة المعالجة بالبروبيوتيك تركيبة البروبيوتيك مرة واحدة يوميا عن طريق التشويش الفموي بجرعة 0.01 مل/جم من وزن الجسم طوال فترة التجارب.
تم زراعة السلالات الفردية تحت ظروف مناسبة وحصادها في مرحلة النمو المتوسطة (OD₆₀₀ ≈ 0.6)، ثم تم دمجها عند النسبة المشار إليها. تم طرد المزارع البكتيرية لإزالة الفائق، وأعيد تعليق الحبيبات في محلول ملحي معقم مخزن بالفوسفات (PBS). تم الاحتفاظ بتعليق البكتيريا المحضر حديثا في الثلاجة قبل الإعطاء للحفاظ على الصلاحية. تم تعديل التركيز النهائي للبكتيريا إلى 1 ×10 8 CFU/mL قبل الإعطاء. تلقت فئران مجموعة البروبيوتيك التركيبة عن طريق التشويش الفموي بجرعة 0.01 مل/جم من وزن الجسم مرة واحدة يوميا طوال فترة التجارب. لم يتم تطبيق أي علاج مسبق بالمضاد الحيوي قبل إعطاء البروبيوتيك. لتقليل التحيز التجريبي، أجري الباحثون الأعمى تقييم النتائج عند الحاجة. تم تأكيد MASLD من خلال تحليل كيميائي حيوي في الدم.
تحليل الدم
في نهاية فترة التجارب، صمت الفئران طوال الليل (12 ساعة) مع وصول مجاني إلى الماء قبل قياس الجلوكوز وجمع الدم النهائي. تم تخدير الفئران بعمق باستخدام الإيزوفلوران باستخدام جهاز تبخير تخدير حتى تم تأكيد فقدان رد فعل الدواسة. تم جمع عينات دم نهائية عن طريق النزيف الرجعي الحجاج. بعد جمع الدم، تم القتل الرحيم للفئران عن طريق خلع عنق الرحم أثناء التخدير العميق، وتم تأكيد الوفاة بتوقف التنفس وضربات القلب. كان يسمح للدم بالجلط في درجة حرارة الغرفة ثم يزرع في الطرد المركزي عند 3,000 × جرام لمدة 10 دقائق للحصول على المصل. تم جمع عينات المصل وتخزينها عند −80 درجة مئوية حتى التحليل. تم قياس جلوكوز المصل، والكوليسترول الكلي (TC)، والدهون الثلاثية (TG)، والكوليسترول منخفض الكثافة (LDL-c)، والكوليسترول عالي الكثافة (HDL-c)، وإزيزاز الأسبارتات أمينوترانسفيراز (AST)، وإنزيم الألينين أمينوترانسفيراز (ALT) باستخدام محلل كيميائي حيوي تلقائي، وفقا لتعليمات الشركة المصنعة. تم قياس هذه المعلمات باستخدام اختبارات الألوان الإنزيمية مع مجموعات كواشف قياسية مدمجة في نظام المحلل. تم تطبيع جميع المعايير الكيميائية الحيوية إلى حجم المصل والتعبير عنها بالوحدات التي يحددها المصنع.
اختبارات الإجهاد التأكسدي
تم قياس مؤشرات الإجهاد التأكسدي باستخدام مجموعات علاجية، بما في ذلك تلك الخاصة بالمالونديالديهايد، وإنزيم الأكسجين الفائق الأكسيد، والكاتالاز. تم إجراء الفحوصات وفقا لتعليمات الشركة المصنعة. لفترة وجيزة، تم توحيد أنسجة الكبد في حاجز بارد جدا وتم طردها للحصول على مواد فائقة للتحليل. تم تحديد مستويات المالونديالديهايد (MDA) باستخدام اختبار المواد التفاعلية لحمض الثيوباربيتوريك (TBARS)؛ تم قياس نشاط إنزيم الأكسجين الفائق (SOD) بقدرته على تثبيط التفاعلات التي تتتوسط بواسطة الأكسيد الفائق؛ وتم قياس نشاط الكتالاز (CAT) من خلال مراقبة معدل تحلل بيروكسيد الهيدروجين. أجريت القياسات باستخدام قارئ الألواح الدقيقة، وتم حساب القيم باستخدام المنحنيات القياسية أو الصيغ المقدمة في المجموعات. تم تطبيع مؤشرات الإجهاد التأكسدي إلى وزن نسيج الكبد والتعبير عنها وفقا لمواصفات الشركة المصنعة.
تسلسل 16S rRNA وتحليل الميكروبيوم
تم جمع عينات البراز في نهاية فترة التجربة مباشرة من فئران فردية تحت ظروف معقمة، وتم تجميدها فورا في النيتروجين السائل، وتخزينها عند −80 درجة مئوية حتى استخراج الحمض النووي. تم استخراج الحمض النووي الميكروبي باستخدام مجموعة تجارية وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة. تم تضخيم منطقة V3–V4 من جين 16S rRNA البكتيري باستخدام بادئات 341F/806R. تم إجراء تضخيم PCR في نظام تفاعل بسعة 25 ميكرولتر يحتوي على الحمض النووي النموذجي، ومزيج رئيسي ل PCR مرتين و0.2 ميكرومولار من كل برايمر. تكون برنامج التضخيم من إزالة الطبيعة الأولية عند 95 درجة مئوية لمدة 3 دقائق، تلتها 25 دورة بدرجة حرارة 95 درجة مئوية لمدة 30 ثانية، و55 درجة مئوية لمدة 30 ثانية، و72 درجة مئوية لمدة 45 ثانية، مع تمديد نهائي عند 72 درجة مئوية لمدة 10 دقائق. تم بناء وترتيب مكتبات Amplicon على منصة Illumina MiSeq باستخدام استراتيجية ثنائية الطرف 2 × 250 بت من قبل مزود خدمة تسلسل تجاري. تم تقييم جودة المكتبات قبل التسلسل، وتم تحميل المكتبات المجمعة وفقا لكثافة التجمعات الموصى بها من قبل الشركة المصنعة. تمت إزالة القراءات منخفضة الجودة ذات الأسس الغامضة، أو الطول غير الكافي، أو متوسط درجة الجودة أقل من Q20 قبل التحليل اللاحق.
تمت معالجة قراءات التسلسل الخام باستخدام QIIME 2 الإصدار 2019.420. باختصار، تم فك إرسال القراءات ذات الطرف المزدوج إلى التعدد، وتصفية الجودة، وإزالة الضوضاء، ودمجها، وتصفيتها بتقنية الكيميرا باستخدام DADA2 مع المعلمات الافتراضية ما لم يذكر خلاف ذلك. تم الاحتفاظ بمتغيرات تسلسل الأمبلكون غير الأحادية (ASVs) للتحليل اللاحق. تم إجراء التعيين التصنيفي باستخدام قاعدة بيانات Greengenes الإصدار 13_8 الذي تم تنفيذه في QIIME221. نظرا لقيود الدقة الجوهرية لتسلسل جينات 16S rRNA، خاصة عند استخدام قاعدة بيانات Greengenes، تم تفسير التعليقات التصنيفية حصريا على مستوى الجنس. لم يعتبر التصنيف على مستوى النوع موثوقا، وبالتالي لم يستخدم في أي تحليلات لاحقة أو مقارنات إحصائية أو تفسيرات بيولوجية. تم دمج جميع الميزات الميكروبية إلى مستوى الجنس قبل التصور والتحليل.
تم استخدام مقاييس التنوع الألفا (Chao1، الأنواع المرصودة، شانون، سيمبسون، PD فيث، وتساوي بيلو). تم إجراء مقارنات إحصائية لتنوع ألفا بين المجموعات باستخدام اختبارات غير معلمية مناسبة (مثل اختبار كروسكال–واليس). تم استخدام مسافة جاكارد واختلاف براي-كيرتس كمقاييس تنوع بيتا. تم استخدام مخططات التحليل الإحداثي الرئيسي (PCoA)، والتدرج متعدد الأبعاد غير المتري (NMDS)، وحجم تأثير التحليل الخطي المميز (LEfSe) لتوضيح التغيرات في مجتمعات الميكروبيوم، مع عتبة درجة LDA تبلغ 2.0. تم استخدام التحليل متعدد المتغيرات التبديلي للتباين (PERMANOVA) لتقييم الدلالة الإحصائية في تنوع بيتا. تم إجراء تصور البيانات والتحليلات الإحصائية باستخدام منصة GenesCloud (https://www.genescloud.cn).
تم استنتاج الملفات الوظيفية الميكروبية من بيانات تسلسل 16S rRNA بدلا من قياسها مباشرة بواسطة التسلسل الانتقالي أو الترجمة الجنونية باستخدام بندقية الصيد. استنادا إلى جدول المسار المعياري أو جدول وفرة المجموعة الوظيفية، تم تعيين الوحدات الوظيفية المتوقعة إلى قواعد بيانات شائعة، بما في ذلك KEGG وMetaCyc وCOG. تم تلخيص وفرة مسار KEGG وفقا لفئاتها الوظيفية الهرمية، مع استخدام تصنيفات المسارات من المستوى 2 للمقارنة في المراحل اللاحقة. تم حساب متوسط وفرة كل فئة مسار باستخدام برنامج R.
تحليل الأيض غير المستهدف لعينات الكبد
تم استئصال أنسجة الكبد بسرعة فور تأكيد الوفاة، وتجميدها فورا في النيتروجين السائل، وتخزينها عند −80 درجة مئوية قبل التحليل. تم تجانس حوالي 50 ملغ من نسيج الكبد المجمد في ميثانول بارد جدا (4:1، v/v) مع معايير داخلية. كانت نسبة المذيب بين الأنسجة والاستخلاص 1:10 (مع الضرب). تم تدوير العينات لمدة دقيقة واحدة، ثم صوتها على الثلج لمدة 10 دقائق، ثم حضنتها عند −20 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة لتحسين ترسيب البروتين. تم خلط النظافات المتجانسة جيدا، وخضعت للصوت على الجليد، وتم طردها المركزي عند 12,000 × جرام لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية. تم جمع المواد الفائقة بعناية، وتبخرها تحت تدفق نيتروجين خفيف، وأعيد تكوينها في 50٪ ميثانول للتحليل لاحقا.
تم توليد عينات مراقبة الجودة (QC) عن طريق تجميع أحجام متساوية من كل عينة وتم تحليلها بشكل متقطع طوال فترة التشغيل لتقييم الاستقرار التحليلي وقابلية التكرار. تم إجراء تحليل الأيض غير المستهدف باستخدام نظام كروماتوغرافيا سائل فائق الأداء مرتبط بمطيافية الكتلة عالية الدقة، يديره مزود خدمة تجاري. تم فصل المستقلبات على عمود C18 عكسي الطور باستخدام نظام مذيب ثنائي يتكون من ماء يحتوي على حمض الفورميك 0.1٪ والأسيتونيتريل بحمض الفورميك 0.1٪. كان حجم الحقن 2 ميكرولتر، وتم الحفاظ على درجة حرارة العمود عند 40 درجة مئوية، وتم ضبط معدل التدفق عند 0.30 مل/دقيقة. تم استخدام برنامج إزالة التدرج لتحقيق فصل واسع للمستقلبات. تم إجراء الكشف الطيفي الكتلي في أوضاع التأين الكهربائي الموجب والسالب عبر نطاق m/z من 70–1000 لتحقيق تغطية واسعة للمستقلبات. تم ضبط جهد رش الأيون على 3.5 كيلو فولت في الوضع الموجب و−2.5 كيلو فولت في الوضع السالب. تم الحفاظ على درجة حرارة الشعيرات الدموية عند 320 درجة مئوية، وتم جمع البيانات في وضع التصوير المتعدد الكامل مع اكتساب التصلب المتعدد/المتعدد المعتمد على البيانات لتوضيح المستقلبات. تمت معالجة البيانات الخام باستخدام برنامج استيض مخصص (MassLynx v4.1) لاكتشاف الميزات، والمحاذاة، والتطبيع. تم تحديد المستقلبات بناء على الكتلة الدقيقة، ووقت الاحتفاظ، وأنماط تجزئة التصلب المتعدد/التصلب المتعدد بالمقارنة مع قواعد البيانات العامة، بما في ذلك قاعدة بيانات المستقلبات البشرية (HMDB) وموسوعة كيوتو للجينات والجينومات (KEGG) (v2023)، حيثما كان ذلك مناسبا.
تحليل متعدد المتغيرات والمسارات
خضعت بيانات الأيض المعالجة لتحليلات إحصائية متعددة المتغيرات، بما في ذلك تحليل المكونات الرئيسية (PCA) وتحليل التمييز الجزئي للمربعات الصغرى (PLS-DA)، لتصور الفروق الأيضية بين المجموعات التجريبية. تم تحديد المستقلبات التفاضلية بناء على مزيج من درجات التقدير (VIP) المتغيرة (>1.0) والدلالة الإحصائية (p < 0.05). تم رسم خرائط مستقلبات محددة إلى مسارات أيضية باستخدام تحليل إثراء مسار KEGG لتوضيح العمليات البيولوجية المرتبطة بمكملات زيت الطحالب الدقيقة الغنية ب DHA.
التحليل الإحصائي
تم عرض البيانات كمتوسط ± SEM وتم تحليلها باستخدام تحليل التباين أحادي الاتجاه (ANOVA) تلاه اختبار المقارنات المتعددة الذي أجرته توكي. تم تعريف الدلالة الإحصائية بأنها p < 0.05. تم إجراء تحليل إثراء مستقلبات الكبد باستخدام R (الإصدار 4.4.1). تم تحليل الارتباطات الزوجية بين الأجناس الميكروبية ومستقلبات الكبد باستخدام ارتباطات رتبة سبيرمان. فقط هناك ارتباطات ذات دلالة كبيرة (معدل الاكتشاف الكاذب، FDR < 0.05) مع |ρ| تم تضمين ≥ 0.6 في تحليلات الشبكة التكاملية. تم إجراء معالجة بيانات الميكروبيوم والميتابولوميات كما هو موضح أعلاه، بما في ذلك استخدام منصة GenesCloud وإجراءات مراقبة الجودة.