تحليل كمي ثلاثي الأبعاد غير مدمر للرباط اللثوي المتبقي على ضواصك ما قبل الإنسان المستخرجة باستخدام الفحص داخل الفم

ملخص

يشرح هذا البروتوكول طريقة رقمية ثلاثية الأبعاد غير مدمرة وكمية لتقييم الأربطة اللثومة المتبقية على الأسنان المستخرجة. باستخدام برامج الفحص داخل الفم والهندسة العكسية، أنشأنا سير عمل خارج الجسم لتقييم اللثة، مما وفر أساسا منهجيا لمقارنة تقنيات الاستخلاص في الأبحاث ما قبل السريرية.

الملخص

إعادة زراعة الأسنان المتعمدة هي علاج قيم للحفاظ على الأسنان الطبيعية التي تعاني من آفات جذورية. يعتمد نجاحه بشكل حاسم على مدى صلاحية وسلامة هيكلية الرباط اللثوي المتبقي (PDL). طرق التقييم التقليدية، مثل التقسيم النسيجي أو التصوير ثنائي الأبعاد، إما مدمرة أو محدودة بأخطاء الإسقاط. لمعالجة هذه القيود، يقدم هذا البروتوكول طريقة كمية غير مدمرة لتقييم PDL المتبقي باستخدام المسح داخل الفم عالي الدقة. تم تلوينها من الأسنان المخلوعة لرؤية نسيج PDL ومسحها ثلاثي الأبعاد لإنتاج نماذج رقمية عالية الدقة. تم تحليل البيانات باستخدام برامج الهندسة العكسية، حيث تم تحديد منطقة اهتمام، وتم قياس تغطية PDL المتبقية عبر عتبة الألوان. حسب هذا النهج مساحة التغطية ثلاثية الأبعاد الحقيقية ل PDL دون التأثير على العينة البيولوجية. لتقييم حساسية وفائدة هذا البروتوكول، تم تطبيقه لمقارنة الاستخلاصات طفيفة التوغل (MI) باستخدام البيريتومات مع استخراجات الملقط التقليدية. كشف التحليل الرقمي أن طريقة الالتهاب العضلي حافظت على عدد أكبر بكثير من نسيج PDL (61.99٪) مقارنة بالطريقة التقليدية (50.46٪). علاوة على ذلك، أكد اختبار بقاء الخلايا لاحقا النتائج الرقمية، وأظهر نشاطا أيضيا أعلى بكثير في مجموعة الممرضين بالخلايا العضلية. في النهاية، يؤسس هذا العمل سير عمل إثبات مفهوم لتقييم PDL الكمي خارج الجسم الحي ، مما يوفر أساسا منهجيا قويا لمقارنة تقنيات الاستخراج في الأبحاث ما قبل السريرية.

المقدمة

أصبح إعادة زراعة الأسنان المتعمدة معروفة بشكل متزايد كوسيلة علاجية عملية وحل أخير للحفاظ على الأسنان الطبيعية التي كانت ستعتبر ميؤوسا منها لولا ذلك. يوصف لإدارة الآفات المحيطة بالعدسة المستمرة، أو الحفر غير المتاحة في القنوات، أو الآفات الامتصاصية الواسعة التي لا يمكن إدارتها بدون جراحة ^1,2. تتضمن الإجراء القياسي خلع السن المتأثر عمدا، يليه فحص بصري خارج الفم، تدخل علاجي (بما في ذلك استئصال نهاية الجذر، التحضير، وحشوة نهاية الجذر)، ثم إعادة الزرع في التجويف الأصلي ^1,2.

وجود وسلامة نسيج الرباط اللثوي المتبقي القابل للحياة على سطح الجذر هما العوامل التنبؤية الأكثر أهمية التي تحدد نمط الشفاء بعد إعادة زراعة الأسنان ^3,4. يعد حاجز PDL الصحي وسليما ضروريا لإعادة تأسيس الحركة الفسيولوجية ومنع المضاعفات مثل امتصاص الاستبدال (الانقليلة) أو امتصاص الجذر الالتهابي. ومع ذلك، فإن انفصال السن من التجويف السنخي، سواء كان رضحا أو مقصودا، يعطل بشكل بطبيعتي ارتباط ألياف PDL ويقطع الإمداد العصبي الوعائي⁵. وبالتالي، فإن إعادة البناء البيولوجي لPDL أمر بالغ الأهمية لشفاء الأسنان المعاد زرعها في اللثة³. أثبتت أبحاث موسعة أن تعظيم حيوية وحجم الأنسجة المتبقية من PDL أثناء الإجراءات السريرية خارج الفم يشكل عاملا تنبؤيا حاسما، وأهميته لبقاء الأسنان المعاد زرعها وظيفيا على المدى الطويل موثقة جيدا في الأدبيات ^6,7.

نظرا لأن الاستخلاص يعطل التصاق PDL بطبيعته، فإن اختيار تقنية الاستخلاص يؤثر بشكل مباشر على حجم وفعالية نسيج PDL المتبقي على سطح الجذر. الاستخراج التقليدي باستخدام الملقط يطبق قوى دوران وجر يمكن أن تسحق PDL على العظم السنخي أو تجرده من خلال الاحتكاك. لتقليل هذه الصدمة، تم تطوير طرق استخراج طفيفة التوغل (MI). أفادت دراسات سابقة أن طرق التهاب الأسنان يمكن أن تقلل بشكل كبير من الإصابة الجراحية في دواعم الأسنان^{المصابة.} تم تطوير تقنيات تستخدم البيريوتوم لقطع ارتباط PDL، أو أنظمة استخراج رأسية تتجنب قوى الرافعة، للحفاظ على بقايا PDL على سطح الجذر. على سبيل المثال، وثقت تقارير الحالات نتائج سريرية محسنة في إعادة زراعة الأسنان المتعمدة والبرز الجراحي عند استخدام أنظمة العضلة العضلية (MI) ^9,10. تشير هذه النتائج إلى أن تقليل إصابات الخلع قد يحسن احتباس نسيج PDL المتبقي على سطح الجذر.

ومع ذلك، وعلى الرغم من الإجماع السريري حول فوائد الاستخلاص غير الجراحي، هناك أدلة مباشرة محدودة تحدد مدى حفظ نسيج PDL المتبقي عند استخدام طرق العضل العضلي مقارنة بالتقنيات التقليدية. ينبع هذا الفجوة في المعرفة إلى حد كبير من محدودية منهجيات التقييم المتاحة. تستخدم الأبحاث الحالية بشكل رئيسي طرق تقييم ذاتية أو مدمرة لتقييم بقية PDL على سطح الجذر. لا يزال التقسيم النسيجي هو المعيار لتحليل الخلايا¹¹، لكنه بطبيعته مدمر، مما يجعل العينة غير صالحة للدراسات المستقبلية. بدلا من ذلك، تم استخدام التلوين مع التصوير ثنائي الأبعاد (ثنائي الأبعاد) لتوصيف بقايا PDL¹². ومع ذلك، فإن هذه الطرق غير كافية لقياس نسيج PDL المتبقي لسطح الجذر بأكمله. لا يمكن للصورة ثنائية الأبعاد رسم خريطة دقيقة لمساحة سطح جذر ثلاثي الأبعاد معقد ومنحني؛ لا مفر من أن يؤدي ذلك إلى أخطاء الإسقاط والتشويه، مما يؤدي إلى قياسات غير دقيقة.

في السنوات الأخيرة، تطورت تقنية المسح الرقمي داخل الفم بشكل كبير، حيث قدمت دقة عالية وسرعة جمع البيانات. تم استخدام الطريقة الرقمية في دراسات سابقة لقياس الانطباعات وتغيرات الأنسجة الرخوة، أو لتقييم تآكل الأسنان لدى الشباب^{في سن 13}. توسعت التطبيقات حتى لتشمل التحليلات الحجمية المعقدة، مثل تقييم تورم الوجه في جراحة الفم¹⁴. تسمح هذه التقنيات بإنشاء نماذج ثلاثية الأبعاد عالية الدقة يمكن التلاعب بها وقياسها في برامج الهندسة العكسية، مما يوفر حلا محتملا للتحليل الكمي غير التدميري. ومع ذلك، حتى الآن، لم يتم استكشاف إمكانية تطبيق الفحص داخل الفم لتقييم بقية PDL للأسنان المخلوعة.

الهدف العام لهذا البروتوكول هو إنشاء سير عمل موحد وغير مدمر يجمع بين التلوين البيولوجي والمسح داخل الفم عالي الدقة والهندسة العكسية ثلاثية الأبعاد. من خلال إنشاء نماذج رقمية عالية الدقة مع خرائط سطحية ملونة، تسمح هذه الطريقة بقياس أكثر موضوعية وقابلية للتكرار لبقايا PDL عبر كامل سطح الجذر. تطبق هذه الدراسة سير العمل المقترح لمقارنة التغطية المتبقية ل PDL لتقنيتين للخلع، وهما استخراج العضلة العضلية بمساعدة بيريوتوم مقابل استخراج الملقط التقليدي، في الضواحيس الأمامية البشرية. يفترض أن طريقة MI تحافظ على نسبة أكبر من تغطية PDL المتبقية مقارنة بالطريقة التقليدية.

ومن المهم أن هذا البروتوكول مصمم فقط كأداة بحثية خارج الجسم الحي للبيئات المخبرية أو ما قبل السريرية. تشمل العملية التلوين، والتجفيف بالهواء، والمسح الرقمي، والتقسيم المعتمد على البرمجيات، مع وقت تحليل إجمالي لا يتوافق مع الاستخدام أثناء العملية أثناء إعادة الزراعة المتعمدة، حيث يجب تقليل الوقت خارج الفم. وبالتالي، فإن هذه الطريقة مناسبة ل (1) مقارنة فعالية تقنيات الاستخراج المختلفة التي تحافظ على PDL تحت ظروف مضبوطة؛ (2) التدريب والمعايرة في البيئات التعليمية؛ و(3) دراسات التحقق التي تربط مقاييس تغطية PDL الرقمية بالنتائج البيولوجية. تطبيقه على الأسنان متعددة الجذور ذات التشريح المعقد يتطلب المزيد من البحث.

البروتوكول

تم تنفيذ بروتوكول البحث وفقا لإرشادات لجنة الأخلاقيات في كلية طب الأسنان بجامعة بكين (PKUSSIRB-202054022).

1. اختيار المرضى وتوزيع المجموعات

1. اختر المرضى الذين يحتاجون إلى خلع الضواحك للأغراض التقويمية. تأكد من أن الضوراس الأمامية تستوفي معايير الإدراج مع عدم وجود تسوس أو أمراض اللثة.
2. استبعد المرضى الذين يعانون من ارتفاع ضغط الدم، السكري، تاريخ التدخين، أو من هم دون 16 سنة أو أكثر من 45 عاما.
3. توزيع الضواكس الأمامية عشوائيا إلى مجموعتين تجريبيتين: مجموعة الضابطة (الخلع التقليدي) ومجموعة الضواحي طفيفة التوغل (MI) (الاستخلاص بمساعدة البيريتوم).
4. قم بتخصيص الأسنان من كل مجموعة عشوائيا إلى مسار تحليل المسح ثلاثي الأبعاد أو مسار التحقق البيولوجي (CCK-8)، لضمان استخدام عينات مستقلة لكل طريقة تقييم.

2. إجراءات خلع الأسنان

1. قم بإجراء جميع عمليات الخلع تحت التخدير الموضعي القياسي.
2. الطريقة أ: الاستخراج التقليدي (مجموعة التحكم)
   1. قم بفصل اللثة حول عنق السن.
   2. ضع الملقط السني في منطقة عنق الرحم من تاج السن.
   3. طبق قوى دوران حتى يتم ارتخاء السن. قم بإزالة السن من تجويف السنيخ باستخدام الملقط.
3. الطريقة ب: الاستخلاص طفيف التوغل (مجموعة MI)
   1. قم بفصل اللثة.
      تحذير: تعامل مع البيريوتوم بحذر لتجنب إصابة الأنسجة الرخوة أو كسر الأداة.
   2. أدخل بيريوتوم في فضاء PDL بأعمق عمق شكل ممكن، ليصل إلى ثلثي طول الجذر على الأقل.
   3. اقطع ألياف PDL حول الجذر بشكل محيطي باستخدام البيريوتوم. فك السن.
   4. اسحب السن عموديا من تجويف السنيخ باستخدام ملقط الأسنان.

3. تحضير العينات والتلوين

1. فور الخلع، اشطف الأسنان بمحلول ملحي معقم لمدة 10 دقائق لإزالة الدم والحطام.
   تحذير: تولويدين بلو مادة كيميائية خطيرة. ارتد معدات الحماية الشخصية المناسبة (قفازات، نظارات) عند التعامل.
2. صبغ سطح الجذر عن طريق غمر السن في محلول تولويدين أزرق بنسبة 0.1٪ (معد في محلول ملحي مخبأ بالفوسفات، PBS) لمدة 40 دقيقة لرؤية نسيج PDL.
3. اشطف بالمحلول الملحي لمدة 10 دقائق لإزالة محلول الصبغة وجفف السطح بلطف باستخدام حقنة ثلاثية الاتجاهات لإزالة الرطوبة الزائدة.
   ملاحظة: من المتوقع أن يظهر سطح الجذر لونا أزرق بنفسجي موحد، بينما يجب أن يبقى الأسمنتوم المكشوف غير مصبوغ، ليبدو بلون بيج فاتح.

4. 3D المسح الرقمي

1. قم بمعايرة الماسح الرقمي داخل الفم وفقا لتعليمات الشركة المصنعة لضمان دقة 0.02 مم.
2. ثبت تاج السن باستخدام ملقط دموي لتجنب إعاقة رؤية سطح الجذر.
3. امسح سطح الجذر بالكامل تحت ظروف المسح القياسية. قم بإجراء مسح مكمل للتاج لإكمال النموذج ثلاثي الأبعاد.
4. استخدم برنامج المسح الخاص لتصدير بيانات المسح الرقمي كملف كائن ثلاثي الأبعاد عالي الدقة (OBJ) وحزمة بيانات مرتبطة؛ يتم حفظ صورة الخامة بصيغة JPG.
   ملاحظة: يجب أن تعرض المعاينة الحية شبكة مستمرة عالية الكثافة خالية من أي ثقوب أو عيوب على سطح الجذر. يجب أن تميز صورة الملمس بوضوح المناطق الملونة بالزرق عن سطح الجذر غير المصبوغ.

5. 3D إعادة بناء النموذج والتحليل الكمي

1. معالجة الصور المسبقة
   1. معايرة العتبة
      1. استيراد خريطة خامة JPG إلى برنامج تحرير الصور. حول الصورة إلى تدرج رمادي 8-بت.
      2. افتح أداة العتبة (الصورة > تعديل > العتبة) وفحص المدرج لتسجيل الحد الأدنى للقيمة الرمادية التي تلتقط جميع بكسل PDL المصبوغ بالزرقاء. حدد الحد الأدنى للعتبة الرمادية باستخدام ثلاثة مراقبين مستقلين.
   2. استيراد خريطة النسيج الأصلية في JPG إلى برنامج تحرير الصور. انتقل إلى اختيار نطاق الألوان >. اختر وضع الظلال واضبط النطاق على 65 والتحمل على 20٪ (معايرة من بيانات العتبة 5.1.1).
      ملاحظة: تحقق من أن جميع مناطق PDL المصبوغة بالزرقاء محددة بالكامل وأنه لا يوجد سطح جذر غير مصبوغ.
   3. انسخ المناطق المختارة والمصبوغة بالزرق والصقها على طبقة بيضاء جديدة لتوليد قناع ثنائي (الأزرق ل PDL، الأبيض للجذر العاري). احفظ صورة النسيج المعالجة لاستبدال ملف JPG الأصلي.
2. القياس الكمي
   1. استيراد النموذج ثلاثي الأبعاد المعالج إلى برنامج الهندسة العكسية.
   2. استخدم المضلعات > التريم لتحديد منطقة الاهتمام (ROI) لاستبعاد الأنسجة اللثية وحول النقطة. حدد الحد العلوي للعائد على العائد على بعد 2 مم أسفل وصلة السيمنتو المينا (CEJ). استبعد القمة 3 مم من التحليل.
   3. اختر "المناطق الزرقاء المحسنة" داخل العائد على الاستثمار. بعد الاختيار، يتم إبراز نسيج PDL المتبقي باللون الأحمر.
   4. انتقل إلى قسم التحليل > حساب > مساحة الحساب لحساب إجمالي مساحة السطح للعائد على الاستثمار ومساحة سطح المناطق الزرقاء (PDL المتبقي).
   5. احسب نسبة تغطية PDL باستخدام المعادلة 1:
      تغطية PDL (٪) = (مساحة PDL المتبقية/إجمالي مساحة العائد على الاستثمار) × 100
3. التصور
   1. التقط صورا لأسطح الجذور الأربعة (الوجث، اللسانية، المتوسطة، والبعيدة) العمودية على محور السن لتقييم بصري مفصل.

6. التحقق البيولوجي (اختبار قابلية بقاء الخلية)

ملاحظة: يصف هذا القسم خطوات التحقق التي أجريت على مجموعة فرعية من العينات (n = 8 لكل مجموعة) لتأكيد التحليل الرقمي.

1. مباشرة بعد الخلع، ضع الأسنان في أنبوب طرد مركزي معقم يحتوي على وسط زراعة مسخن مسبقا (37 درجة مئوية).
2. انقل العينات إلى المختبر في صندوق ثلج عند درجة حرارة 4°C خلال ساعة واحدة. استخدم وسط النسر المعدل من دولبيكو، مع إضافة 10٪ مصل أبقار جنيني، و100 وحدة U/mL بنسلين، و100 ميكروغرام/مل ستريبتوميسين لنقل العينات واختبار حيوية الخلايا.
3. اشطف الأسنان بمحلول ملحي معقم مع فوسفات (PBS) في خزانة أمان حيوي فور وصولك.
4. قم بكشط نسيج PDL بعناية من الثلث الأوسط للجذر (يتم تعريف العائد على النقاط بواسطة مسبار اللثة المتدرج) باستخدام شفرة مشرط معقمة في درجة حرارة الغرفة خلال 10 دقائق من الوصول لتعظيم بقاء الخلية.
5. هضم الأنسجة المجمعة بنسبة 0.25٪ من تريبسين-EDTA لمدة 30 دقيقة. قم بعمل الطرد المركزي لتعليق الخلية عند 120 × جرام لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة (22–25 درجة مئوية) للحصول على الترسيب الذي يحتوي على الخلية.
   ملاحظة: بعد الطرد المركزي، يجب أن تتكون كرة بيضاء واضحة في أسفل الأنبوب. إذا لم يلاحظ أي حبيبة، يجب إعادة الطرد المركزي للعينة عند 120 × جرام لمدة دقيقة إضافية.
6. أعد تعليق الترسيب في خليط من محلول ووسط من مجموعة عد الخلايا 8 (CCK-8) بسعة 600 ميكرولتر بنسبة 1:10 (v/v)، معد وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
7. أليكوت هذا التعليق عند 200 ميكرولتر لكل بئر في صفيحة بسعة 96 بئر (3 نسخ تقنية لكل عينة). حضن الصفيحة عند 37°م في حاضنة رطبة مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون_{لمدة 3} ساعات.
8. انقل 50 ميكرولتر من المادة الفائقة من كل بئر إلى صفيحة جديدة ب 96 بئر.
9. قس الامتصاص (الكثافة البصرية، الكثافة الزائدة) عند 450 نانومتر باستخدام قارئ الميكرولوتين. سجل متوسط قيم الضرر الزائد للمقارنة الإحصائية.
   تحذير: (1) جمع محلول التلوين الأزرق من تولويدين وشطف النفايات كنفايات كيميائية خطرة والتخلص منها وفقا لإرشادات السلامة الكيميائية المؤسسية؛ (2) معالجة أنسجة PDL، والمشارط المستخدمة، ونفايات زراعة الخلايا كنفايات بيولوجية خطرة (مستوى السلامة البيولوجية 1) وتعقيم أو حرقها وفقا لبروتوكولات السلامة البيولوجية المؤسسية؛ (3) التخلص من معدات الحماية الشخصية (القفازات، رؤوس الماصات، مناشف الورق) في الحاويات المخصصة للخطر البيولوجي.

7. التحليل الإحصائي والتحقق المنهجي

1. جمع البيانات: جمع البيانات الكمية، بما في ذلك إجمالي مساحة سطح الجذر (مم²)، المساحة الملونة الكلية (مم²) من التحليل ثلاثي الأبعاد، نسبة تغطية PDL (٪)، وقيم OD من الاختبار البيولوجي.
2. اختبار الطبيعية: تقييم توزيع البيانات للمعايير الطبيعية باستخدام اختبار شابيرو-ويلك.
3. مقارنة المجموعات:
   1. قارن بين تغطية PDL وقيم OD بين مجموعتي MI وControl.
   2. استخدم اختبار t للطالب غير المقترن للبيانات الموزعة بشكل طبيعي أو اختبار مان-ويتني U للبيانات غير الموزعة بشكل طبيعي.
   3. احسب حجم التأثير (د) لتحديد مقدار الفرق.
4. تحليل المتانة المنهجي:
   1. قم بإجراء تحليل انحدار خطي باستخدام "مساحة سطح الجذر" كمتغير مستقل و"تغطية PDL" كمتغير تابع.
   2. احسب معامل ارتباط بيرسون (r) لتقييم ما إذا كانت طريقة القياس متحيزة بحجم السن. تشير العلاقة غير المعنوبة (P > 0.05) إلى المتانة.
5. تحليل الموثوقية:
   1. إنشاء مخططات الكمان مع مخططات الصناديق لعرض كثافة الاحتمالات وخصائص توزيع البيانات.
   2. قارن شكل وتركيز توزيع البيانات بين المجموعات.
6. اختبار موثوقية داخل المراقب وبين المراقبين:
   1. اختر عشوائيا 16 عينة من إجمالي مجموعة البيانات (8 لكل مجموعة) لتقييم الموثوقية.
   2. لتكرار المراقبة داخل المراقب، كرر عملية التقسيم والقياس الكاملة على نفس 16 عينة بفواصل أسبوع ليصبح المجموع تجربتين.
   3. للحصول على اتفاق بين المراقبين، توفير تدريب موحد لمراقبين مستقلين إضافيين على بروتوكول التقسيم.
   4. اجعل المراقبين الثلاثة ينفذون بشكل مستقل تعريف العائد على الاستثمار، وتحديد عتبة اللون، وحساب المساحة على نفس العينة ال16.
   5. احسب معامل الارتباط داخل الفئة ICC(A,1) مع فترات ثقة 95٪ لقياس التوافق المطلق لكل من المقارنات بين المراقبين وبين المراقبين. تقيم ICC التقرير >0.90 كممتازة، 0.75–0.90 كجيدة، 0.50–0.75 كمتوسطة، و<0.50 كضعيفة.
   6. قم بإجراء تحليل بلاند-ألتمان لجميع المقارنات الزوجية. احسب متوسط الفرق (التحيز) وحدود توافق 95٪ (الفرق المتوسط +/- 1.96 SD). تشير نتيجة اختبار t المزدوجة غير المعنوية (P > 0.05) إلى انحياز منهجي ضئيل للغاية.
7. البرمجيات: قم بإجراء جميع التحليلات الإحصائية باستخدام البرمجيات المناسبة. اعتبر P < 0.05 ذات دلالة إحصائية.

النتائج

أظهر سير العمل التجريبي الذي تم تأسيسه في هذه الدراسة بنجاح بروتوكول غير مدمر للتقييم الكمي لبقايا PDL على الأسنان المخلوعة. كما هو موضح في تصميم التجربة (الشكل 1)، دمج البروتوكول إجراءات الاستخراج السريري مع الاستحواذ الرقمي والتحقق البيولوجي. مكن تطبيق المسح الرقمي داخل الفم، تلاه الهندسة العكسية ثلاثية الأبعاد، من إعادة بناء دقيقة لسطح الجذر (الشكل 2). ميزت النماذج الرقمية بفعالية بين نسيج PDL المصبوغ وسطح الجذر المكشوف بناء ...

المناقشة

يعتمد نجاح إعادة الزراعة المتعمدة بشكل حاسم على الحفاظ على خلايا PDL الحية على سطح الجذر. بينما تم الترويج سريريا لتقليل طرق استخراج المعضل العضلي العضلي لتقليل الصدمات ^8,9,10، ظل قياس فائدتها البيولوجية على نسيج PDL المتبقي تحديا بسبب نقص أدوات التقييم الموضوعية. أسست هذه الدراسة بروتوكول تحليل رقمي ثلاثي الأبعاد غير مدمر لإثبات مفهوم لقياس نسيج PDL المتبقي. تدعم هذه النتائج الفرضية القائلة بأن...

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة

الاسم	الشركة	رقم فهرسي	التعليقات
96-well plate	Servicbio	CCP-96H	لوحة متعددة الآبار لزراعة الخلايا وقياس الامتزاز
Biosafety cabinet	Thermo Fisher Scientific	1300 Series4 A2	خزانة السلامة البيولوجية من الفئة الثانية للإجراءات المعقمة
Cell Counting Kit-8 (CCK-8) solution	MedChemExpress	HY-K0301	كواشف فحص حيوية الخلايا
Centrifuge	Ustc Zonkia Zcientific Instruments	SC-3610	طرد مركزي للمختبرات لفصل الخلايا
Culture medium	Gibco	DMEM 11965	الوسط الأساسي لنقل الخلايا وحضانتها
Dental forceps	Jinzhong Surgical instruments	K0F130/K0F100	أداة استخراج أسنان قياسية
Fetal bovine serum	Anhui Kangyuan Biotechnology Co., Ltd	KY-01003S	مكمل مصل جنيني بقريّ لزراعة الوسط
Graduated periodontal probe	Jinzhong Surgical instruments	K6F040	مساعدة في كشط الرباط من الثلث الأوسط للجذر
Hemostatic forceps	Jinzhong Surgical instruments	J31130	أداة جراحية تُستخدم لتثبيت السن أثناء المسح
Humidified incubator	Thermo Fisher Scientific	Forma	حاضنة زراعة الخلايا تحافظ على درجة حرارة 37°C مع 5% CO2
Image editing software	Adobe Systems Inc.	Adobe Photoshop CC 2018	برنامج لاختيار الألوان
Image editing software	Wayne Rasband, National Institutes of Health	ImageJ2 v2.14.0	برنامج لتحديد عتبة الألوان
Intraoral digital scanner	Aidite (Qinhuangdao) Technology Co., Ltd.	Aidite Cameo	ماسح ضوئي ضوئي لاكتساب النموذج الرقمي ثلاثي الأبعاد
Local anesthesia	Produits Dentaires Pierre Rolland	Primacaine Articaine	عامل مخدر أسنان (مثل Articaine أو Lidocaine)
Microplate reader	Biotek	Elx808	مقياس طيفي لقياس OD عند 450 نانومتر
Penicillin/Streptomycin	Gibco	15070063	مكمل مضاد حيوي للوسط
Periotome	Carl Martin	LS529PT	أداة استخراج منخفضة التوغل
Reverse engineering software	Geomagic Inc.	Geomagic Studio 2013	برنامج نمذجة ثلاثي الأبعاد لحساب مساحة السطح
Sterile centrifuge tube	Servicbio	EP-1500-J	أنبوب بلاستيكي لتجميع العينات ومعالجتها
Sterile phosphate-buffered saline (PBS)	Gibco	10010	مخزن غسيل للعينات البيولوجية
Sterile scalpel blade	Jiayuan Medical Devices	Sterile Scalpel Blade	شفرة مشرط لشرخ أنسجة الرباط
Sterile sline	Servicbio	G4702-500ML	محلول ملحي لشطف الأسنان المستخرجة
Toluidine blue	General laboratory supplier	Toluidine blue (0.1% solution)	صبغة بيولوجية لتصور الرباط اللثوي
Trypsin	Gibco	25200056	كواشف إنزيمية لهضم الأنسجة