التحليل الرقمي لقنوات الفلورسين أثناء العملية في عيون الإنسان أثناء جراحة القناة الداخلية

ملخص

تقدم هذه الدراسة سير عمل مفتوح المصدر موحد لقياس قنوات الفلوريسين أثناء عملية تصحيح قناة البطن والداخل، ويمكن استخدامه لتقييم أنماط خروج الأخلاط المائي وربما التنبؤ بالنتيجة بعد العملية فيما يتعلق بضغط العين.

الملخص

جراحة القناة البطنية الداخلية (AbiC) هي جراحة زرق طفيفة التوغل تهدف إلى تعزيز خروج الأخلاط المائي الفسيولوجي عن طريق توسيع محيط قناة شليم. بينما تم استخدام قنوات الفلوريسين أثناء العملية أثناء جراحة ab-externo canaloplasti لرؤية مسارات الخروج، لم يتم تقييم تطبيقه الكمي أثناء AbiC بعد. تقدم هذه الدراسة سير عمل موحد للتحليل الكمي لقنوات الفلوريسين أثناء العملية أثناء AbiC، بهدف تقييم أنماط تدفق الأخلاط المائي وقيمتها التنبؤية المحتملة لنتائج الجراحة. لهذا الغرض، تم إجراء AbiC باستخدام مرونة لزجة مصبوغة بالفلورين، وتم التقاط صور قنوات الطور المبكرة والمتأخرة أثناء العملية. تم تطوير سير عمل لتحليل الصور خطوة بخطوة باستخدام برنامج تحليل الصور مفتوح المصدر لقياس كمية صبغ فلوريسين تحت الملتحمة. تم تطبيق ثلاث طرق تكميلية: قياس شدة التلوين المحيطي باستخدام حلقات متحدة المركز حول القرنية، تحليل التلوين الجزئي القائم على الربع المحدد، والتقييم النوعي لأنماط التلوين البؤرية المقابلة لمواقع محتملة لتغير الشبكة الحيقية. أشارت الحالات النموذجية إلى أن صبغة فلوريسين واسعة ومتجانسة عبر الأرباع كانت مرتبطة بانخفاض مستمر في ضغط العين واستقلالية الأدوية، في حين لوحظت تلوين محدود وغير متجانس في العيون ذات النتائج الأقل ملاءمة. لذا يتيح هذا السير إجراء تقييم قابل للتكرار والكمية لتدفق الأخلاط المائي أثناء AbiC، دون الحاجة إلى خبرة في تحليل الصور، ويمكن استخدامه للتنبؤ بنجاح جراحة الجلوكوما طفيفة التوغل.

المقدمة

الزرق هو مرض متعدد العوامل يعاني من اعتلال عصبي بصري تقدمي وأحد أكثر أسباب العمى شيوعا على مستوى العالم ^1,2. تم تحديد عوامل مختلفة تساهم في نشوء مرض الزرق - بما في ذلك الضعف الهيكلي للصفيحة الصوفية، وضعف تروية العين، والوراثة، والعمليات المناعية الذاتية - لكن عامل الخطر الوحيد القابل للتعديل يبقى الضغط داخل العين المرتفع (IOP)3,4,5,6,7,8 . النوع الفرعي الأكثر شيوعا، وهو الجلوكوما الأولية ذات الزاوية المفتوحة (POAG)، يتميز بزيادة مقاومة التدفق الخارج، مما يؤدي إلى تقليل تدفق الأخلاط المائي وبالتالي إلى زيادة طويلة الأمد في معدل اللوكوما⁹. يؤدي ذلك إلى فقدان ألياف الأعصاب الشبكية وعيوب في مجال الرؤية مع تقدم المرض.

تتوفر عدة استراتيجيات علاجية، يتم اختيارها حسب شدة ومدة الزرق وقياس المؤشر الداخلي. إذا لم يكن العلاج الموضعي لخفض المضخة الداخلية باستخدام قطرات العين فعالا أو لا يتحمله المريض، يمكن إجراء إجراءات الليزر أو التدخلات الجراحية^10،11. بالإضافة إلى جراحات الترشيح التقليدية مثل استئصال الترابيكوليك، هناك الآن مجموعة متنوعة من جراحات الجلوكوما قليلة التوغل (^MIGS) الأقل خطورة. تشمل هذه القنوات البيضاء الداخلية (AbiC)، والتي، على عكس جراحة ab-externo، لا تتطلب شق في الصلبة أو إنشاء شريحة¹³. يقدم نهج ab-interno إجراء أقل توغلية بكثير حيث لا يترك أي خياطة كمادة غريبة. كما ثبت أن التأثير يتوافق مع نهج ab-externo، مع معالجة أبسط بكثير ومضاعفات أقل^14,15. ميزة إضافية ل AbiC هي أن نسيج الملتحمة محفوظ للتدخلات المستقبلية إذا لزم الأمر.

في هذا الإجراء، بعد تقييم الحجرة الأمامية عبر شق في القرنية، يتم إدخال قسطرة دقيقة في قناة شليم بمساعدة منظار الغونيوسكوب، حيث يقطع الشبكة الحديدية ويمر عبرها في دائرة 360°. توسع المرونة اللزجة قناة شليم وعظم عظم قنوات المجمع وقد تسبب تمزقات دقيقة بؤرية في شبكة الترابيكولار¹⁶. يعتقد أن هذه التأثيرات تسهل تدفق الأفعى المائية عن طريق تقليل المقاومة داخل مسار الخروج التقليدي، بما يتماشى مع تشريح وفسيولوجيا العين وتحسين الوصول إلى قنوات المجمع، رغم أن الآليات الدقيقة لم تفهم بالكامل بعد¹⁷. علاوة على ذلك، يمكن دمج AbiC مع جراحة المياه البيضاء، التي توفر تقليل إضافي لانخفاض المكثف المكثف. في هذا السياق، قد يوفر التصور أثناء العملية لمسارات الخروج معلومات غير مباشرة عن الحالة الوظيفية لشبكة الترابيكولار ونظام التدفق البعيد.

تم بالفعل دمج عملية ab-externo canaloplasti مع تصوير قنوات القناة أثناء العملية مع الفلوريسين لرؤية مسارات الخروج^{18، 19، 20}. أظهرت العيون التي تحتوي على مناطق أكثر صبغة من الصلبة وبالتالي تحسن تدفق الخلط المائي انخفاض في معدل المداخل المكثف بعد عام من الإجراء. لذا يمكن استخدام القنوات أثناء العملية للتنبؤ بتأثير الجراحة¹⁹. حسب علمنا، لم يتم التحقيق بعد فيما إذا كان هذا ينطبق أيضا على AbiC. لذا فإن هدف هذه الدراسة هو تقييم سير عمل لتحليل القنوات أثناء العمليات أثناء الجراحة الجراحية (AbiC). طورنا هذا السير لقياس شدة ومدى تلوين الفلوريسين تحت الملتحمة في مرحلة مبكرة ومتأخرة. هذه هي التقييمات الأولى لتأثير اللزجة المرنة المتفلورة في AbiC.

بعد ذلك، يمكن التحقيق فيما إذا كان هناك ارتباط بين قياس المناطق الملطخة ومدى تدفق الأخلاط المائي الفردي، بالإضافة إلى تقليل دواء IOP أو خفض المضخة الداخلية المستخدمة بعد العملية. يفترض أن تلوين أقوى وبالتالي تدفق أعلى للخلاط المائي سيعني أيضا انخفاضا أكبر في استخدام اللواء المكثف والأدوية. سيتم استخدام التقسيم إلى أرباع لاختبار ما إذا كان التدفق قد تغير بشكل كبير اعتمادا على الموقع التشريحي.

على المدى الطويل، سيستخدم سير العمل المعروض لتوضيح ما إذا كان يمكن التنبؤ بنجاح AbiC بناء على التلوين بالفلورسين، ويمكن استخدامه أيضا في علاجات جراحية ضرورية أخرى.

البروتوكول

بيان أخلاقي:

أجريت هذه الدراسة وفقا لإعلان هلسنكي. اعتبر غير تدخلي لأنه كان مراجعة بأثر رجعي لبيانات المرضى التي جمعت كجزء من الممارسة الطبية المعتادة. لم تتبع أي طرق علاجية مستقبلية، وتم إعطاء جميع العلاجات بشكل روتيني كجزء من الرعاية القياسية. راجعت لجنة أخلاقيات بون بروتوكول الدراسة وتنازلت عن الموافقة المستنيرة نظرا للتصميم غير التدخلي (رقم 2026-220). تم إلغاء تحديد بيانات المرضى قبل التحليل.

1. تحليل القنوات الجراحية وتحليل القنوات أثناء العملية

ملاحظة: قم بإجراء جراحة AbiC في كل عين باستخدام نظام القناة المعتمد على القسطرة الدقيقة. الإجراء التالي يصف استخدام هذا الجهاز. قم بإجراء AbiC إما كإجراء مستقل أو في نهاية جراحة المياه البيضاء الهادئة عن طريق الاستحلاب الفاكوإيمولسيفي.

1. ضع منظار الغطاء بحيث يكون أكبر قدر ممكن من نسيج الصلبة مرئيا للتحليل لاحقا.
2. استخدم مخدرا موضعيا، مثل بروكسي ميتاكائين هيدروكلوريد. عقم العين التي ستجري عليها باليود. أعط مخدرا بارابلبار.
3. توحيد إعدادات المجهر لجميع المرضى.
   ملاحظة: بالنسبة ل AbiC، اضبط المجهر على 20٪ ضوء LED، 100٪ منعكس قاع القاعدة، و0٪ ضوء محيط. بالنسبة للقنوات، اضبط المجهر على 100٪ ضوء LED، 0٪ منعكس قاع القاعدة، و100–0٪ ضوء محيط.
4. طبق الإعدادات على المجهر الجراحي العيني (Zeiss Lumera). قد تختلف الإعدادات في نماذج المجاهر الأخرى.
   ملاحظة: استخدم النهج الزمني، بغض النظر عما إذا كان الإجراء مستقلا أو مركبا.
5. إنشاء واحدة أو اثنتين من القرن الباراتي بقطر 1.0 مم على بعد ساعتين من موضع المقعد الزمني، على بعد حوالي 1 مم داخل القرنية الشفافة.
6. املأ الحجرة الأمامية بالمطاط اللزجي.
7. قم بإمالة رأس المريض بعيدا عن جانب الجراح بزاوية تقارب 30°. قم بإمالة المجهر إلى زاوية تقارب 30°. ركز على نسيج القزحية الطرفية وأظهر زاوية الحجرة الأمامية.
8. اخلط المطاط الفيسكوإيلاسكي مع صبغة الفلورسين.
   1. استنشق 0.05 مل فلوريسين ببطء شديد إلى المرونة اللزجة باستخدام قناة معقمة بحيث يتكون تجويف واحد داخل المرونة اللزجة.
   2. اترك الفلوريساين ينتشر لمدة 5–10 دقائق.
   3. اضغط ببطء على مكبس الحقنة اللزجة المرنة لتجسيد الكهف المملوء بالفلوريسين بالكامل.
9. املأ جهاز القسطرة الدقيقة بالمطاط الفيسكوإيلاستي المصبوغ بالفلوريساين.
10. اختبر الجهاز عن طريق دفع القسطرة الدقيقة إلى ما وراء طرف جهاز الحاقن.
11. ضع الهيدروكسي-ميثيل سيلولوز على القرنية. أدخل قسطرة AbiC الدقيقة في الحجرة الأمامية عبر البزل البارامي. ضع جونيوبريزم، مثل عدسة سوان-جاكوب الجونيوبريزم، على القرنية.
12. استخدم طرف الجهاز لقطع الشبكة الترابيكولارية. استخدم المشغل الأزرق في الجهاز لدفع القسطرة الدقيقة إلى قناة شليم.
13. تقدم القسطرة الدقيقة 360° عبر قناة شليم مع توصيل اثني عشر دفعة بسعة 2.5 ميكرولتر من اللزجة المصبوغة عن طريق تدوير الحقنة اللزجة.
14. قدم بولوس واحد بسعة 2.5 ميكرولتر لكل ساعة ساعة.
15. اسحب القسطرة الدقيقة ببطء إلى الخلف بزاوية 360° مع إعطاء اثني عشر دفعة لزجة مرنة بسعة 2.5 ميكرولتر.
16. أزل القسطرة الدقيقة من الحجرة الأمامية. قم بإزالة الجونيوبرزم من سطح العين.
17. أعد محاذاة رأس المريض والمجهر في وضع مستقيم لضمان رؤية موحدة ومستقيمة للعين. قم بغسل القرنية لإزالة الصبغة وهيدروكسي ميثيل-سيلولوز.
    ملاحظة: إذا لزم الأمر، استخدم مسحة لإزالة أي بقع سطحية لتجنب تفسير خاطئ للتغير السطحي.
18. انتقل إلى فلتر الضوء الأزرق. سجل المرحلة المبكرة من القنوات باستخدام الفيديو أو سلسلة الصور.
19. قم بالتكبير لرؤية أكبر قدر ممكن من نسيج الصلبة والتأكد من أن الصورة في بؤرة التركيز.
20. بعد الانتهاء، أطفئ فلتر الضوء الأزرق.
    تحذير: استخدم مجسات غسيل يدوي/شفط لإزالة اللزجة المرنة من الحجرة الأمامية. لمنع ارتجاع الدم بإبقاء الحجرة الأمامية تحت الري بمحلول ملحي متوازن حتى يتم ترطيب البزل الباريزي.
21. حقن السيفوروكسيم داخل الكاميرات.
22. عد إلى فلتر الضوء الأزرق. سجل المرحلة المتأخرة من القنوات باستخدام الفيديو أو سلسلة صور بعد حوالي دقيقتين من التقاط الصورة للمرحلة المبكرة.
23. قم بالتكبير لرؤية أكبر قدر ممكن من نسيج الصلبة والتأكد من أن الصورة في بؤرة التركيز.
24. أطفئ فلتر الضوء الأزرق وحقن ديكساميثازون تحت الملتحمة.

2. تصدير الصور وتخزين البيانات

1. حمل الصور من برنامج المجهر الخاص بك، منتدى زايس.
2. افتح مجلد المريض المتعلق برقم المريض في برنامج المجهر واستخدم زر "تصدير" لتخزين الصور في مجلد محدد.
3. قسم الصور المصدرة إلى مجلدات المرحلة المبكرة والمتأخرة.
4. سم كل صورة باستخدام صيغة "Patient No._Eye_Image_No." واحفظ الصور بصيغة JPEG.

3. قياس كمية تدفق تحت الملتحمة عبر FIJI

ملاحظة: طبق هذا السير على المراحل الأولى والمتأخرة من القنوات التنظيمية.

1. قم بتحميل صورة القنوات في FIJI²¹ (برنامج تحليل الصور مفتوح المصدر). اقتصاص الصورة بحيث تكون العين التي تم إجراء العملية فقط مرئية. ارسم مستطيلا باستخدام "أداة المستطيل" واختر "صورة > قص" من القائمة.
2. ارسم قطر القرنية من الأبيض إلى الأبيض على الصورة باستخدام أداة "الخط المستقيم". قس أفقيا من الأنف إلى الجانب الجانبي. اضبط قطر القرنية الأبيض إلى الأبيض كمقياس باستخدام قطر القرنية المعروف من القياسات الحيوية قبل العملية تحت "تحليل مقياس > التعيين > المسافة المعروفة (الوحدات)".
3. استخدم "أداة المضلع" لتحديد الحدود بين القرنية والصلبة باستخدام ما لا يقل عن 24 نقطة. إذا لزم الأمر، راجع الفيديو الجراحي أو الصورة من المرحلة الأخرى لتحديد حدود القرنية بشكل أفضل. استخدم معالم مثل الأوعية الملتحمة وقاعدة التمزق الدقيق في المرحلة المبكرة.
4. اضغط على "T" على لوحة المفاتيح أو اختر "الصورة > التراكب > إلى مدير العائد على العائد" لفتح مدير العائد وحفظ علامة القرنية كعائد على الاستثمار. احفظ الصورة للتحليلات لاحقا إذا لزم الأمر.
5. اضغط على "Del" على لوحة المفاتيح أو اختر "ROI Manager > More > Fill" لقص القرنية.
   ملاحظة: تأكد من أن منطقة القص تبدو سوداء. إذا لزم الأمر، قم بضبط اللون باستخدام أداة "Color Picker".
6. حول الصورة الثابتة إلى صورة ثنائية بالأبيض والأسود باستخدام أداة "عتبة اللون" تحت "تعديل الصورة >". بعد فتح الأداة، اختر "الافتراضي" كطريقة للعتبة، و"أسود وأبيض" كلون العتبة، و"HSB" كمساحة لون. قم بإزالة العلامات من خانات "المرور" لكل إعداد ومن مربع "الخلفية الداكنة".
7. تأكد من أن المناطق البيضاء تتوافق مع التلوين الأصفر الناتج عن المطاط اللزجي الفلوري. إذا لزم الأمر، قم بضبط ذلك باستخدام أداة "Color Picker".
8. توحيد الصورة الثنائية باستخدام أحد الخيارات الثلاثة التالية لتمكين قابلية مقارنة أفضل بين الصور.
   1. للحصول على إعدادات موحدة بالكامل لمجموعة المرضى بأكملها، اضبط الشريط العلوي على "Hue" = 140، "التشبع" = 205، و"السطوع" = 205. اضبط الشريط السفلي على "اللون"، "التشبع"، و"السطوع" = 255.
   2. لإعدادات موحدة جزئيا، اختر "Hue" في الشريط العلوي بشكل فردي، واضبط "التشبع" و"السطوع" = 255. اضبط الشريط السفلي "Hue"، "Saturation"، و"Brightness" = 255.
   3. للحصول على إعدادات مخصصة بالكامل، اختر كل إعداد في الشريط العلوي لكل صورة بشكل منفصل. اضبط الشريط السفلي "Hue"، "Saturation"، و"Brightness" = 255.
9. قارن الصورة الثنائية مع الصورة الأصلية باستخدام دالة "المكدس" أو المقارنة المباشرة.
10. اختر إعدادا بسيطا للإعدادات الموحدة جزئيا والمخصصة بالكامل التي تمثل المناطق الملونة الفاتحة مع تجنب التمثيل المفرط للمناطق الملطخة بقوة. إذا لزم الأمر، احذف انعكاسات الضوء أو الصبغة السطحية. حدد القطعة الأثرية ب "أداة المضلع"، واضغط "Del" أو اختر "ROI Manager > المزيد > ملء".
11. اختر اللون الأسود كلون تعبئة تحت "الصورة > اللون > اختيار الألوان" حتى لا يتم احتساب مناطق القص بشكل خاطئ كصبغة.
12. غير نوع الصورة إلى "32 بت" عبر "Image > Type". قم بتطبيع الإعدادات عبر "المعالجة > تعزيز التباين"، وحدد "٪ من البكسلات المشبعة = 0.35".
13. قم بقياس كمية تدفق الفطائر المائي باستخدام النهج 1 أو 2 أو 3 كما هو مذكور أدناه.
    1. نهج القياس 1: نسبة صبغ الفلورسين للمساحة الكلية بشكل دائري خارج القرنية.
       ملاحظة: استخدم هذا النهج لتسجيل نسبة صبغ الفلورسين في المساحة الكلية بشكل دائري خارج القرنية.
       1. اعتمادا على قسم الصورة وعرض فتحة الجفن، قم بإبراز ثلاث حلقات حول فاصل القرنية المرسومة سابقا، بحيث يبلغ عرض كل حلقة 1 مم.
       2. اختر علامة القرنية في مدير العائد واختر "تعديل > اختيار > صنع الشريط: 1".
       3. استرجع نسبة المنطقة الملطخة في الحلقة الأولى. اختر "تحليل > تعيين القياسات > القيمة الرمادية المتوسطة > OK"، ثم اضغط "Ctrl + M" على لوحة المفاتيح أو اختر "تحليل > القياس".
       4. سجل القيم من الجدول الذي يفتح.
       5. اضغط "T" على لوحة المفاتيح أو اختر "الصورة > التراكب > إلى مدير العائد على العائد" لحفظ الحلقة الأولى في مدير العائد على الاستثمار.
       6. كرر الخطوات 3.13.1.2 - 3.13.1.5 للحلقتين الثانية والثالثة باستخدام 2 أو 3 وحدات لتمديد الحلقات، بدءا من علامة القرنية أو من وحدة واحدة من الحلقة المرسومة سابقا.
       7. تحقق من الصورة الأصلية للتأكد من أن الحلقات تحتوي فقط على الملتحمة.
       8. احفظ الصورة الثنائية تحت "ملف > حفظ ك > تيف"، واطلق عليها اسم "Patient ID_phase_Ring".
       9. احفظ النتائج المقابلة عبر "ملف > حفظ بأس"، وسم عليها وفقا لذلك.
       10. احفظ مدير العائد على الاستثمار المقابل بالنقر على "إلغاء التحديد"، ثم "المزيد > الحفظ"، وسم الاسم وفقا لذلك.
    2. نهج القياس 2: التحليل القائم على الربع المئوية للصبغ النسبي
       ملاحظة: استخدم هذا النهج لتحليل نسبة التلوين بشكل فردي لكل ربع.
       1. أكمل الخطوات 3.1–3.13.1.10 قبل بدء تحليل الربع.
       2. ارسم مستطيلا باستخدام "أداة المستطيل" بحيث يمثل نصف الصورة بالضبط.
       3. اضغط على "Del" على لوحة المفاتيح أو اختر "ROI Manager > More > Fill" بحيث يبقى نصف الصورة فقط.
       4. ارسم مستطيلا ثانيا يمثل نصف الصورة المتبقية.
       5. اضغط "Del" على لوحة المفاتيح أو اختر "ROI Manager > More > Fill" مرة أخرى حتى يبقى ربع الصورة الأصلية المزيفة ببايناري.
       6. حتى لو لم تكن القرنية المختارة دائرية تماما، حاول تحديد ربع يقيس بأقصى قدر ممكن من 0.25 باستخدام نصفين دقيقين أولا.
       7. "إلغاء اختيار" الحلقات الثلاث من الاقتراب الأول عبر مدير العائد على الاستثمار.
       8. انقر على "المزيد > القياس المتعدد > صف واحد لكل شريحة" لتحديد نسبة الصبغة.
       9. سجل النتائج من الجدول الذي يفتح.
       10. كرر الخطوات 3.13.2.2 - 3.13.2.9 للأرباع الثلاثة المتبقية.
       11. احفظ جميع الصور الثنائية للرباعيات تحت "ملف > حفظ ك > تيف"، وقم بتسميتها بصيغة "المريض ID_phase_Quadrant".
       12. احفظ النتائج المقابلة عبر "ملف > حفظ بأس"، وقم بتسميتها وفقا لذلك.
       13. احفظ مدير العائد على الاستثمار المقابل بالنقر على "إلغاء التحديد"، ثم "المزيد > الحفظ"، واطلق عليه الاسم وفقا لذلك.
    3. نهج القياس 3: تحليل أنماط التلوين البؤري المقابلة لتغيرات الشبكة الترابيكولار المحلية
       ملاحظة: استخدم هذا النهج لتقييم أنماط التلوين البؤري التي قد تتوافق مع تغييرات موضعية في شبكة الترابيكولار. أثناء التقدم في قناة شليم، قد يسبب القسطرة تمزقات دقيقة في الجدار الداخلي لشبكة الترابيكولار وتؤثر على انزلاق الجدار الداخلي لشبكة الترابيكولار نحو أوستيا قناة المجمع. لذلك، حلل صور المرحلة المبكرة باستخدام هذا النهج.
       1. أكمل الخطوات من 3.1 إلى 3.4.
       2. انقر على "تعديل > جعل العكس".
       3. اضغط "Del" على لوحة المفاتيح أو اختر "ROI Manager > More > Fill" لحذف نسيج الصلبة لتحليل التمزقات الدقيقة الترابيكولار الموجودة داخل حلقة القرنية فقط.
       4. تأكد من أن المنطقة خارج حلقة القرنية سوداء. إذا لزم الأمر، قم بضبط العرض بالأبيض والأسود باستخدام أداة "Color Picker".
       5. ارسم حلقة أصغر قليلا من داخل عائد الاستثمار القرنية عن طريق اختيار عائد القرنية أولا في مدير العائد على الاستثمار.
       6. انقر على "تعديل > الاختيار > تكبير > -0.2" بحيث تظهر حلقة أضيق بمقدار 0.2 مم داخل حلقة القرنية.
       7. اضغط "T" على لوحة المفاتيح أو اختر "الصورة > التراكب > إلى مدير العائد على العائلة".
       8. انقر على "تعديل > الاختيار > جعل الشريط > 0.2" ليظهر حلقة أعرض بمقدار 0.2 مم.
       9. ضع هذه الحلقة على حلقة القرنية لتوفير الحد الخارجي بحيث يمكن تحليل المساحة بين الحلقات فقط.
       10. اضغط "T" على لوحة المفاتيح لحفظ الخاتم كعائد على السعر.
       11. افتح "الصورة > تعديل عتبة اللون" > للتحقق من إعدادات العتبة.
       12. استخدم إعدادات موحدة جزئيا. اختر "اللون" في الشريط العلوي بشكل فردي، ثم اضبط "التشبع" و"السطوع" = 255 في الشريط العلوي، ثم اضبط الشريط السفلي "اللون"، "التشبع"، و"السطوع" = 255.
       13. اختر إعدادات الألوان التي تسمح للون بملء المناطق في الحلقة الداخلية التي تظهر كسر الترابيكولار.
       14. تأكد من أن المناطق الملونة تظهر باللون الأبيض في الصورة الثنائية.
       15. إذا لزم الأمر، احذف القطع الأثرية والمواقع التي صنعت فيها الباراسينتيس. حدد المناطق باستخدام "أداة المضلع"، ثم اضغط على "Del".
       16. اختر الأسود كلون تعبئة تحت "الصورة > اللون > اختيار الألوان" حتى لا تحتسب مناطق القص بشكل خاطئ كصبغة.
       17. انقر على "المزيد > القياس المتعدد > صف واحد لكل شريحة".
       18. سجل النتائج من الجدول الذي يفتح.
       19. احفظ الصور الثنائية تحت "ملف > حفظ ك > تيف"، وسم عليها بصيغة "Patient ID_phase_microruptures".
       20. احفظ النتائج المقابلة عبر "ملف > حفظ بأس"، وسم عليها وفقا لذلك.
       21. احفظ مدير العائد على الاستثمار المقابل بالنقر على "إلغاء التحديد"، ثم "المزيد > الحفظ"، واسمه وفقا لذلك.
14. لتجميع البيانات، افتح جدول بيانات Excel.
15. انسخ جميع جداول النتائج التي جمعت سابقا في جدول بيانات واحد.
16. لنتائج تحليل الربع، اضرب كل قيمة في أربعة بحيث تمثل القيم التلوين في صورة كاملة ويمكن مقارنتها مع الطرق الأخرى.

يوفر الشكل 1 نظرة عامة على سير العمل.

الشكل 1: نظرة عامة تخطيطية على سير العمل المستخدم لقياس تدفق الأخلاط المائي بعد جراحة القناة الداخلية (AbiC). تشمل العملية التقاط صور قنوات الفلورسين أثناء العملية، ومعالجة الصور باستخدام برامج تحليل الصور مفتوحة المصدر، وثنائية وتوحيد صور، والتحليل الكمي لأنماط تلوين الفلورسين. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

النتائج

تم تضمين المرضى فوق سن 18 الذين تم تشخيصهم بالجلوكوما وخضعوا لعلاج AbiC إما بشكل مستقل أو مع جراحة الساد بمفردها. بالإضافة إلى ذلك، كان يجب أن تكون صور القنوات متاحة على الأقل في المرحلة المبكرة أو المتأخرة. لم يكن التحليل الانتقائي بالليزر السابق معيارا للاستبعاد، على عكس إجراءات الزرق الأخرى. بالإضافة إلى ذلك، لم يتم تضمين أي مرضى يعانون من تلف متقدم في الجلوكوما في الدراسة.

حتى الآن، تمكنا من تضمين ما مجموعه 86 عينا من 62 مريضا في التحليل خلال الفترة من مار...

المناقشة

يوفر هذا السير دليلا خطوة بخطوة لاستخدام برامج تحليل الصور مفتوحة المصدر لقياس كمية تدفق الأفكاهة المائية بعد AbiC. توفر ميزات برامج تحليل الصور مفتوحة المصدر قوالب سهلة الاستخدام لا تتطلب أي معرفة برمجية ويمكن للأطباء تطبيقها دون دعم فني. سيساعد هذا النهج في تقييم تدفق الأخلاط المائي بعد التحليل الجراحي لتقييم قيمته التنبؤية المحتملة لنتائج الجراحة. بدلا من تمثيل قياس وظيفي مباشر، تم تصميم سير العمل لتوصيف أنماط توزيع الفلورسين أثناء العملية بشكل منهجي وتمكين مقارنات قابلة للتكرار بين ا...

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة

الاسم	الشركة	رقم فهرسي	التعليقات
Balanced Salt Solution	Bausch & Lomb	Ref.: BL705004
Bi-manual irrigation/aspiration probes	Zeiss	Ref.: 303060-0165-000
Cefuroxim	Laboratoires Thééa	PZN: 09755705	Pre-mixed by the pharmacy
Dexamethasone	Dr. Winzer	PZN: 02192162
FIJI (ImageJ)	n/a	n/a	Open-source image analysis software
Fluorescein dye	Alcon	PZN: 01467007
Healon Pro Viscoelastic	Johnson & Johnson	Ref.: 10-3100-12
Hydroxymethylcellulose	Johnson & Johnson	Ref.: 10310012
Iodine solution	Mundipharma	PZN: 03930490
iPrism S gonioprism lens	Glaukos	Ref.: OTB/LH-2
iTrack Advance Canaloplasty System	Nova Eye Medical	Ref.: Track-ADS	Microcatheter-based canaloplasty system
Lumera 700 Surgical Microscope + Calysto	Zeiss	Ref.: 6726521526	Ophthalmic surgical microscope
Proxymetacaine hydrochloride	PUREN Pharma GmbH & Co. KG	PZN: 11055866
Sterile cannula	Braun	Ref.: 4657683