يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تقنية عبر الجلد موجهة بالتصوير للقياس المباشر لضغط الجنب في نموذج خنزيري

116 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/71506

⸱

أغسطس 28, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesia, Critical Care and Pain Medicine, Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 2School of Medicine and Surgery, University of Milano-Bicocca, 3Electronics Engineering Division, Aeronautics Institute of Technology, 4Department of Medicine, Division of Respirology, University Health Network, 5Unidade de Terapia Intensiva Respiratoria, Divisao de Pneumologia, Instituto do Coracao (InCor), Hospital das Clinicas HCFMUSP, Faculdade de Medicina, Universidade de Sao Paulo, 6Department of Pathophysiology and Transplantation, University of Milan, 7Keenan Research Center, Li Ka Shing Knowledge Institute, St Michael's Hospital, Unity Health Toronto

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول تقنية عبر الجلد طفيفة التوغل لإدخال قساطر جنبيّة أمامية وخلفية في الخنازير، مما يسمح بالقياس المباشر لضغط الجنب الإقليمي دون الحاجة إلى إجراء عملية بضع الصدر.

الملخص

يتيح قياس الضغط الجنبي تقييماً فسيولوجياً متقدماً، بما في ذلك تقسيم ميكانيكا الجهاز التنفسي إلى مكونات الرئة وجدار الصدر، وحساب الضغط عبر الرئوي، وقياس تدرجات الضغط الجنبي الإقليمية. وتعد هذه المعلومات ضرورية لتحسين التهوية الميكانيكية، وتقييم تأثير التغيرات في فسيولوجيا جدار الصدر، والنهوض بالأبحاث الانتقالية في إصابات الرئة. ومع ذلك، فإن التقنيات الحالية للقياس المباشر للضغط الجنبي تتطلب غالباً زرع محولات طاقة للضغط الجنبي جراحياً عن طريق فتح الصدر، وهي عملية تستغرق وقتاً طويلاً وتتسم بمخاطر عالية وقد تؤدي إلى ضعف ميكانيكا جدار الصدر. ولتجاوز هذه القيود، طورنا تقنية طفيفة التوغل، عبر الجلد وموجهة بالتصوير لوضع القسطرة الجنبية. أُجري الإجراء على خنازير مخدرة تخضع للتهوية الميكانيكية. وتحت توجيه الموجات فوق الصوتية، تم دفع إبرة Tuohy إلى الحيز الجنبي، وتم إحداث استرواح صدري اصطناعي صغير (50–100 mL من الأكسجين) لفصل الطبقات الجنبية. وباستخدام سلك توجيه، تم وضع غمد إدخال مقاس 9 Fr، مما سمح بدفع قسطرة ذات طرف بالوني إلى الجنب الأمامي. ثم تم تدوير الحيوان إلى وضعية شبه منبطحة، وأُدخلت قسطرة ثانية ظهرياً بعد زيادة الاسترواح الصدري نفسه بكمية إضافية قدرها 50–100 mL من الأكسجين. تم تأكيد الوضعية عن طريق التصوير المقطعي المحوسب (CT) والتسجيلات الفسيولوجية. وبعد إفراغ الاسترواح الصدري وإعادة تمدد الرئة، تحقق التصوير من الموضع. تم تحقيق وضع ناجح للقسطرة الأمامية والخلفية في 16 من أصل 20 حيواناً (80%)، مما يدعم الجدوى الإجرائية لهذا النهج. تعود الإجراءات غير الناجحة إلى حدوث استرواح صدري غير مقصود أثناء الوصول إلى الجنب الأمامي أو وضع خاطئ للقسطرة الأمامية خارج المنطقة البطنية المستهدفة. توفر هذه الطريقة نهجاً أقل توغلاً وقابلاً للتكرار للمراقبة المباشرة للضغط الجنبي الإقليمي في نماذج الحيوانات الكبيرة. ومن خلال تجنب الوصول الجراحي، تعد هذه التقنية الموجهة بالتصوير وعبر الجلد مناسبة تماماً للبروتوكولات التجريبية التي تبحث في ميكانيكا التنفس، وفسيولوجيا الرئة وجدار الصدر، والتهوية الميكانيكية في الأبحاث الانتقالية.

المقدمة

يُستخدم الضغط الجنبي على نطاق واسع في الدراسات التجريبية كمؤشر رئيسي لميكانيكا جدار الصدر، مما يساعد في وصف السلوك المجزأ للجهاز التنفسي وتفاعله مع الرئة أثناء التهوية الميكانيكية1. ويعد هذا المتغير أساسياً لحساب الضغط عبر الرئوي، الذي يمثل المحدد الرئيسي لإجهاد الرئة2. وفي حالات إصابة الرئة، يمكن للضغط الجنبي أيضاً أن يساعد في وصف ميكانيكا نهاية الزفير وتقديم رؤية حول تدرج الضغط المتراكب، وهي ظاهرة مرتبطة بالحمل المؤثر على مناطق الرئة التابعة3,4. ويؤدي هذا التوزيع الإقليمي للضغط إلى خلق اختلافات بطنية-ظهرية في الضغط الجنبي وعبر الرئوي، والتي تتحدد بشكل أساسي أثناء التهوية الميكانيكية الموجهة عن طريق حمل الجاذبية وشدة إصابة الرئة، بينما قد تتضخم هذه الاختلافات بشكل أكبر أثناء التنفس التلقائي أو المساعد بفعل نشاط عضلات الشهيق الإقليمي5.

لا يتم إجراء المراقبة المباشرة لضغط الجنب في الممارسة السريرية لأن هذا الإجراء تداخلي للغاية بحيث لا يمكن اعتباره آمناً. لهذا السبب، يُستخدم ضغط المريء (Pes) عادةً كأفضل بديل لضغط الجنب6. ومع ذلك، يتأثر Pes بعدة عوامل يمكن أن تؤثر على دقته، بما في ذلك موضع القسطرة، وانتقال الضغط الذي يتم تقييمه بواسطة نسبة Baydur، ووضع التهوية7. يستقر البالون المريئي داخل بنية مرنة، وتتشكل إشارته بفعل كل من جدار المريء وأعضاء المنصف المجاورة. وحتى الإزاحات الطفيفة في عمق القسطرة أو محاذاتها قد تغير الضغط المقاس أو حجم تقلباته المديّة8. علاوة على ذلك، يعكس Pes بشكل أساسي ضغط الجنب في المناطق المتوسطة إلى الظهرية، مما يجعله أقل تمثيلاً للمناطق البطنية والبيئة العامة للجنب في حالات إصابات الرئة غير المتجانسة9.

لهذه الأسباب، يظل قياس الضغط الجنبي المباشر هو المنهج المعياري الذهبي في الفسيولوجيا التجريبية والترجمية10. وقد استُخدمت عدة أجهزة لقياس الضغط الجنبي المباشر؛ حيث تُستخدم الحساسات الجنبية الشبيهة بالرقائق بشكل متكرر في النماذج التجريبية11,12، وفي بعض الدراسات، أُدخلت قثاطير البالون المريئي أيضًا في الحيز الجنبي لتسجيل الضغط الجنبي مباشرة13,14. وعلى الرغم من توفر أدوات مختلفة لقياس الضغط الجنبي المباشر، إلا أن إدخالها كان يتطلب تقليديًا إما فتح الصدر جراحيًا أو الوصول عبر منظار الصدر. وتعتبر هذه المنهجيات تداخلية، وتتطلب خبرة جراحية متقدمة، وتطيل فترة التحضير للإجراء، وتؤدي إلى تعطيل ميكانيكا جدار الصدر الطبيعية، مما يغير بشكل كبير الظروف الفسيولوجية قيد الدراسة.

نقدم في مقال الطريقة هذا تقنية جديدة عبر الجلد لوضع قساطر البالون المريئية في الحيز الجنبي للخنازير من أجل المراقبة المباشرة للضغط الجنبي الإقليمي. يتميز هذا النهج بكونه طفيف التوغل ولا يتطلب إجراء عملية بضع الصدر أو تدريبًا جراحيًا متقدمًا. يتم الوصول إلى الجنب الأمامي باستخدام تقنية الوخز القياسية الموجهة بالموجات فوق الصوتية، بينما يُستخدم التصوير المقطعي المحوسب (CT) لتأكيد وضع السلك الموجه والقسطرة داخل الجنب وللمساعدة في تخطيط الوصول إلى الجنب الخلفي. تتيح هذه الطريقة وضع القساطر في مناطق مختلفة من التجويف الجنبي للتقييم الإقليمي لميكانيكا التنفس المجزأة. تهدف هذه التقنية إلى تقليل تعقيد الإجراء ومخاطره مع الحفاظ على تسجيلات عالية الدقة للضغط الجنبي لأغراض الأبحاث الفسيولوجية والترجمية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

بعد الحصول على موافقة لجنة الرعاية والاستخدام المؤسسي للحيوان (2020I000073) في مستشفى ماساتشوستس العام، بوسطن، ماساتشوستس، أجريت التجارب من مارس إلى نوفمبر 2025 على 20 خنزيرًا من سلالة يوركشاير سليمة تزن 30–40 kg.

تنبيه: يتسبب هذا البروتوكول عمدًا في حدوث استرواح صدري ويستخدم أكسجين بنسبة 100%. يجب إجراء العملية تحت مراقبة فسيولوجية مستمرة من قبل كوادر مدربة على تخدير الحيوانات الكبيرة والوصول إلى الغشاء البلوري، مع إزالة جميع مصادر الاشتعال أثناء نفخ الأكسجين.

1. تحضير الحيوانات

  1. قم بتخدير الحيوان عن طريق حقن tiletamine–zolazepam (4.4 mg/kg) وxylazine (2.2 mg/kg) وatropine (0.04 mg/kg) في العضل.
  2. قم بإنشاء مدخل وريدي وإعطاء fentanyl (2 µg/kg) وpropofol (2 mg/kg) وريدياً للسماح بإجراء التنبيب الرغامي بأمان.
  3. قم بتنبيب الحيوان والتحقق من الوضع الصحيح للمجرى الهوائي من خلال التأكد من تمدد الصدر في كلا الجانبين، وسماع أصوات التنفس في كلا الجانبين، ووجود موجة CO₂ منتظمة في نهاية الزفير.
  4. ابدأ التهوية ذات الحجم المتحكم به (VCV) بكسر من الأكسجين المستنشق (FiO₂) يبلغ 0.4، وحجم مدي قدره 10 mL/kg، وضغط نهاية الزفير الإيجابي (PEEP) يبلغ 5 cmH₂O، ومعدل تنفس يتراوح بين 15–20 breaths/min. اضبط معدل التنفس للحفاظ على CO₂ في نهاية الزفير بين 35 و45 mmHg.
  5. حافظ على التخدير والتسكين المستمر طوال الإجراء باستخدام propofol (10 mg∙kg-1∙h-1) وfentanyl (5 µg∙kg-1∙h-1) وريدياً. قبل إعطاء الحصار العصبي العضلي، تأكد من عمق التخدير الكافي من خلال تقييم استرخاء الفك، وغياب المنعكس الجفني، وغياب استجابة السحب عند الضغط بين الأصابع أو على الحافر، وغياب الاستجابة الديناميكية الدموية للتحفيز. بعد الحصار العصبي العضلي، راقب كفاية التخدير باستخدام المتغيرات الفسيولوجية، بما في ذلك معدل ضربات القلب، والضغط الشرياني، وغياب الاستجابات الذاتية لتحفيز الإجراء. ضع مرهماً للعين بعد تحريض التخدير لمنع جفاف القرنية.
  6. راقب معدل ضربات القلب، وضغط الدم، وتشبع الأكسجين، وCO₂ في نهاية الزفير، وضغوط المجرى الهوائي باستمرار. حافظ على معدل ضربات القلب بين 70–140 beats/min، ومتوسط الضغط الشرياني فوق 60 mmHg، وتشبع الأكسجين فوق 92%، وCO₂ في نهاية الزفير بين 35 و45 mmHg، وذروة ضغط المجرى الهوائي أقل من 35 cmH₂O قدر الإمكان.
  7. أعطِ عاملاً حاصراً للعصب والعضل (pancuronium 0.1 mg∙kg-1∙h-1) وتأكد من غياب نشاط التنفس التلقائي قبل البدء في الوصول إلى الجنب.

2. تحضير المعدات

  1. قم بتجهيز المعدات المعقمة المطلوبة للوصول إلى الجنب بتوجيه من الموجات فوق الصوتية ووضع القسطرة، كما هو مدرج في جدول المواد.
  2. قم بقص الشعر وتنظيف وتغطية الأسطح الصدرية الأمامية والخلفية تحت ظروف معقمة.

3. الوصول الجنبي عبر الجلد من الجهة الأمامية

  1. ضع الحيوان في وضع الاستلقاء الظهري مع تدوير طفيف نحو الجانب opposite لموقع إدخال القسطرة الجنبية الأمامية المخطط له.
  2. حدد خط القص وقبة الحجاب الحاجز باستخدام الموجات فوق الصوتية.
  3. حدد قبة الحجاب الحاجز باستخدام الموجات فوق الصوتية، ثم تحرك حوالي 5 cm جانبياً و 5 cm رأسياً من الخط الناصف عند مستوى الحجاب الحاجز لاختيار موقع الوخز الأمامي.
  4. عاين الحيز الجنبي الأمامي باستخدام مسبار الموجات فوق الصوتية.
  5. أدخل إبرة Tuohy المدعومة بالموجات فوق الصوتية عند الحافة العلوية للضلع السفلي في المساحة الوربية المختارة، مع توجيه الانحناء إلى الأعلى.
  6. ادفع الإبرة باتجاه البلورا الجدارية تحت توجيه الموجات فوق الصوتية في الوقت الفعلي باستخدام نهج داخل المستوى (in-plane approach).
  7. طبق ضغطاً موجباً خفيفاً على المحقنة أثناء التقدم لمسافة 1–2 mm إضافية خلال مناورة حبس النفس في نهاية الزفير، حتى يشير الفقدان المفاجئ للمقاومة إلى الدخول في الحيز الجنبي.
  8. احقن حوالي 50–100 mL من الأكسجين بنسبة 100% لإحداث استرواح صدري اصطناعي أمامي صغير. اضبط الحجم النهائي للأكسجين بناءً على نتائج التصوير المقطعي المحوسب لتوسع الاسترواح الصدري والانفصال الجنبي.
  9. أدخل السلك الدليل الزنبركي عبر الإبرة ثم قم بإزالة الإبرة.
  10. أجرِ فحصاً بالتصوير المقطعي المحوسب CT للتأكد من الوضع الصحيح للسلك الدليل داخل الحيز الجنبي، والذي يكون متوسعاً ومحدداً بوضوح بفعل الاسترواح الصدري الاصطناعي.
  11. بعد التأكيد بالتصوير المقطعي المحوسب CT، أجرِ شقاً جلدياً صغيراً عند موقع دخول السلك.
  12. ادفع مقدمة (introducer) بحجم 9 Fr فوق السلك الدليل باستخدام تقنية Seldinger.
  13. أزل السلك الدليل وأدخل قسطرة البالون المريئية في التجويف الجنبي الأمامي من خلال المقدمة.
  14. انفخ البالون بحجم الملء الأمثل، الذي يتم تحديده من منحنى الضغط والحجم (PV) للبالون in vivo15، لضمان تمدد البالون بشكل صحيح ونقل الضغط بشكل موثوق.
  15. قم بتوصيل قسطرة البالون بمحول ضغط تفاضلي خارجي باستخدام نظام نقل ضغط مملوء بالهواء.
  16. قم بتصفير محول الضغط إلى الضغط الجوي قبل توصيل القسطرة لضمان قياسات دقيقة للضغط.
  17. قم بتوصيل محول الضغط بنظام الحصول على البيانات واجمع إشارات الضغط باستخدام برنامج الحصول على البيانات.
  18. اجمع كافة إشارات الضغط بتردد أخذ عينات قدره 1,000 Hz دون ترشيح رقمي إضافي. ابدأ التسجيل بمجرد ملاحظة تتبع مستقر للضغط.

4. الوصول الجلدي عبر الجنبة من الجهة الخلفية

  1. أعد وضع الحيوان في وضعية شبه منبطحة لتعزيز الهجرة الظهرية للهواء داخل الجنب.
  2. احقن 50–100 mL إضافية من الأكسجين بنسبة 100% عبر القسطرة الأمامية لتوسيع استرواح الصدر الظهري وتسهيل الوصول الخلفي.
  3. أجرِ فحصاً بالتصوير المقطعي المحوسب (CT scan) لتأكيد الهجرة الظهرية للاسترواح الصدري الاصطناعي وتحديد المنطقة المثلى للوخز الخلفي.
  4. حدد موقع الوخز الخلفي على الجلد في منتصف المسافة بين النتوءات الشوكية والخط الإبطي الخلفي.
  5. أدخل إبرة Tuohy بشكل عمودي عند الحافة العلوية للضلع السفلي في المساحة الوربية المختارة، مع توصيل حقنة فارغة للشفط المستمر.
  6. ادفع الإبرة أثناء مناورة حبس النفس في نهاية الزفير عبر المستويات العضلية مع الشفط المستمر حتى يتم الحصول على هواء، مما يؤكد الدخول إلى الاسترواح الصدري الظهري.
  7. أدخل السلك الدليل الزنبركي ثم أخرج الإبرة.
  8. أجرِ فحصاً بالتصوير المقطعي المحوسب (CT scan) لتأكيد الوضع الصحيح للسلك الدليل داخل الحيز الجنبي، والذي يكون متوسعاً ومحدد المعالم بوضوح بواسطة الاسترواح الصدري الاصطناعي.
  9. بعد التأكيد بالتصوير المقطعي المحوسب، أجرِ شقاً جلدياً صغيراً عند موقع دخول السلك.
  10. ادفع الموصل (introducer) مقاس 9 Fr فوق السلك الدليل باستخدام تقنية Seldinger.
  11. أخرج السلك الدليل وأدخل البالون المريئي الثاني في التجويف الجنبي الظهري عبر الموصل.
  12. انفخ البالون بحجم الملء الأمثل، الذي يتم تحديده من منحنى الضغط والحجم (PV) للبالون in vivo، لضمان تمدد البالون بشكل صحيح ونقل الضغط بشكل موثوق.
  13. قم بتوصيل القسطرة بمحول ضغط تفاضلي وتحقق من الشكل الموجي الجنبي الصحيح على الشاشة.

5. التحديد النهائي للموضع والمراقبة

  1. التحقق من بقاء معاملات جهاز التنفس الاصطناعي (الحجم المدي، وتدفق الشهيق، وضغط المجرى الهوائي) والقيم الديناميكية الدموية مستقرة أثناء وبعد وضع القسطرة.
  2. تصريف استرواح الصدر عبر الأدوات الموصلة الخلفية والأمامية عن طريق شفط الهواء داخل الجنب بلطف باستخدام سرنجة سعة 50 mL حتى تختفي مقاومة التصريف. يجب تجنب إحداث ضغط سلبي مفرط داخل الحيز الجنبي.
  3. تثبيت كلتا قسطرتي بالون المريء على الجلد باستخدام شريط لاصق، ثم إزالة كلا الأداتين الموصلتين مقاس 9 Fr بعناية لمنع إزاحة القسطرة.
  4. إجراء فحص بالأشعة المقطعية (CT scan) لتقييم استرواح الصدر المتبقي. في حال وجود استرواح صدر متبقٍ، يوضع الحيوان في وضعية الانكباب ويتم خفض FiO₂ إلى 0.25، إذا كان ذلك مقبولاً من الناحية الفسيولوجية، لتعزيز إعادة امتصاص الأكسجين.
  5. تأكيد عدم وجود تسرب في المجرى الهوائي أو الجنب من خلال مقارنة أحجام المدى الشهيقي والزفيري وإجراء حبس للشهيق. التحقق من استقرار ضغط الهضبة (plateau pressure) وعودة التدفق إلى الصفر.
  6. إعادة تقييم أشكال موجات ضغط الجنب الأمامي والخلفي بعد إزالة الأدوات الموصلة. التأكد من بقاء شكل الموجة المتوقع مستقراً؛ وفي حال تغيره، لا يبدأ التسجيل حتى يتم إعادة تقييم موضع القسطرة واستقرار شكل الموجة.
  7. بدء التسجيل المتزامن لضغط الجنب الأمامي والخلفي فقط بعد التأكد من إخلاء استرواح الصدر أو إعادة امتصاصه، واستقرار التهوية والديناميكا الدموية، وعدم وجود تسرب مستمر، واستقرار أشكال موجات ضغط الجنب.
  8. ضبط التهوية مع الحفاظ على TV عند 10 mL/kg وخفض PEEP من 5 إلى 3 cmH₂O. تم الحصول على قيم ضغط الجنب في نهاية الزفير أثناء مناورة حبس ثابتة في نهاية الزفير كما هو موضح في الشكل 1.
  9. في نهاية كل بروتوكول تجريبي، وبينما كانت الحيوانات تحت التخدير العام، تم إجراء القتل الرحيم عن طريق الحقن الوريدي لـ KCl (محلول بتركيز 7%، 2 mL/kg).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تمت محاولة وضع القسطرة الجنبية باستخدام التقنية عبر الجلد في 20 خنزيراً (الجدول 1). وفي 17 حيواناً، تم إدخال ما مجموعه 34 قسطرة جنبية (17 أمامية و17 خلفية). ومن بين هذه القساطر، وصلت 33 قسطرة (97%) إلى المنطقة الجنبية المستهدفة، بينما دخلت قسطرة أمامية واحدة إلى التجويف الجنبي ولكنها فشلت في الوصول إلى الموقع البطني المستهدف. وبناءً على ذلك، تم تحقيق التوضع الإقليمي الصحيح لكل من القساطر الأمامية والخلفية في 16 من أصل 17 حيواناً خضعت لعملية إدخال القسطرة (94%)، وهو ما يعادل 16 من أصل 20 حيواناً إجمالاً (...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يوفر هذا البروتوكول عبر الجلد طريقة عملية وقابلة للتكرار للحصول على قياسات الضغط الجنبي الإقليمي دون الحاجة إلى إجراء عملية بضع الصدر أو الوصول عبر التنظير الصدري. وهناك عدة جوانب في هذا الإجراء تكتسب أهمية خاصة لضمان وضع القسطرة بنجاح وتسجيل قياسات ضغط عالية الدقة.

يعد الثقب الأمامي الذي يتم إجراؤه تحت توجيه الموجات فوق الصوتية الصدرية المباشرة عنصرًا أساسيًا في هذه التقنية. تُستخدم الموجات فوق الصوتية لتصور الجنب والمسافة الوربية المختارة بوضوح، مما يوفر تأكيدًا في الوقت الفعلي لمسار الإبرة....

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يصرح المؤلفون بعدم وجود أي تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من خلال منحة NIH رقم R01HL177025 وR01HL171199.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
شريط لاصق3M Tegaderm1624Wتثبيت القسطرة قبل المُدخل
ماكينة حلاقة الحيوانات3M Clipper9661Lإزالة شعر الصدر
أتروبين (حقن)Sparhawk Laboratories inc.NDC:58005-354التخدير المسبق عن طريق الحقن العضلي
جهاز التصوير المقطعي المحوسب نيورولوجيكا (NeuroLogica) Omnitom Elite PCD؛ 1-NL5100-060تقييم موضع السلك الموجه/القسطرة واستسقاء الرئة (استرواح الصدر)؛
برنامج الحصول على البيانات ADInstrumentsLabChart Pro 8.1.31برنامج الاستحواذ بتردد 1,000 هرتز بدون ترشيح رقمي
نظام الحصول على البيانات ADInstrumentsML865للحصول على الضغط الجنبي
محول ضغط تفاضليHarvard Apparatus / Hugo Sachs73-3882محول ضغط لتسجيل الضغط الجنبي
منشفة غرفة عمليات ذات استخدام واحدCardinal HealthCAT 28700-004تجهيز المجال المعقم (الخطوة 2.1)
تخطيط كهربائية القلب & جهاز مراقبة قياس تأكسج الدم النبضيMindray BeneView T5مراقبة المؤشرات الحيوية
أنبوب رغامي، 7.0 مم Teleflex Medicalمرجع 5-10314التنبيب الرغامي
قسطرة البالون المريئيةCooper Surgicalالمرجع 47-9005تُستخدم كقسطرة لقياس الضغط داخل الجنب (الخطوة 2.1)
فنتانيل (قابل للحقن)حكمةNDC 0641-6030-01التسكين الوريدي
ضمادات شاش (معقمة)ميدلاين (Medline)المرجع NON21430LFتجهيز الموقع (الخطوة 2.1)
سلك توجيه 0.025" × 33 سمتيلفلكس ميديكال (Teleflex Medical)مرجع AW-04025لتقنية سيلدينجر (الخطوة 2.1)
مضخة التسريب Smiths MedicalMedfusion 4000الإعطاء المستمر للمخدر
غمد إدخال، 9 FrCordisالمرجع 402-609Xلإدخال القسطرة داخل الجنب (الخطوة 2.1)
جهاز التنفس الاصطناعي الميكانيكيMaquet – GetingeServo-I، التهوية الموجهة بالحجم
مرهم عينيلودي للرعاية البيطريةNDC 17033-211-38حماية القرنية بعد تحريض التخدير
أكسجين 100% (درجة طبية)Airgasنظرًا لعدم توفر نص مصدري للترجمة، يرجى تزويدي بالمحتوى الذي ترغب في ترجمته من الإنجليزية إلى العربية، وسأقوم بمعالجته وفقاً للمعايير العلمية والأكاديمية المحددة.من أجل استرواح الصدر المتحكم به
بانكورونيوم (للحقن)Selleck. المواد الكيميائيةS2497الحصار العصبي العضلي
بوفيدون–محلول اليودBICCACAT 3955-16تطهير الجلد
بروبوفول (حقن)نورث ستار (NorthStar)NDC 16714-977-01الاستحثاث والمداومة
الدائرة التنفسية (دائرة جهاز التنفس الاصطناعي)مدلاين (Medline)مرجع NON026370دارة قياسية
مشرط رقم 11Bard-Parkerالمرجع 372611لإجراء شق الجلد (الخطوة 2.1)
غطاء جراحي معقمميدلاين (Medline)المرجع MDT2168286تجهيز المجال المعقم
قفازات معقمة (لاتكس)هلام حيويالمرجع 31280قفازات واقية معقمة
ثوب تعقيمهالياردالمرجع 95121رداء جراحي معقم
محاقن 10 ملمدلاين (Medline)المرجع SYR110010للسحب/الحقن (الخطوة 2.1)
محاقن سعة 50 ملبي دي (BD)المرجع 309680لسحب الهواء الجنبي (الخطوة 2.1)
تيلتامين–زولازيبام (حقن)Virbacنادى 71805-06تيلازول؛ التهدئة عن طريق الحقن العضلي
إبرة توهي (Tuohy)، مولدة لصدى الصوت، قياس 18G × ١٠٠ ممPajunkالمرجع 521185-31Cلإجراء البزل الجنبي (الخطوة 2.1)
مسبار الموجات فوق الصوتية (Butterfly iQ+)Butterfly Network950-20002-00يُستخدم مع تطبيق Butterfly iQ لجهاز iPad (الخطوة 2.1)
برنامج/تطبيق الموجات فوق الصوتية Butterfly Network Butterfly iQ 2.46؛ iPad 11 بنظام iPadOS 26تطبيق Butterfly iQ لجهاز iPad
زايلزين (حقن)كرونوس فارما (Cronus Pharma)شركة ذات مسؤولية محدودة

المراجع

  1. Dornhorst AC, Leathart GL. A method of assessing the mechanical properties of lungs and air-passages. Lancet. 1952;260(6725):109-11.
  2. Rezoagli E, Laffey JG, Bellani G. Monitoring lung injury severity and ventilation intensity during mechanical ventilation. Semin Respir Crit Care Med. 2022;43(3):346-68.
  3. Gattinoni L, et al. Regional effects and mechanism of positive end-expiratory pressure in early adult respiratory distress syndrome. JAMA. 1993;269(16):2122-7.
  4. Spina S, et al. The pleural gradient does not reflect the superimposed pressure in patients with class III obesity. Crit Care. 2024;28(1):306.
  5. Yoshida T, et al. Spontaneous effort causes occult pendelluft during mechanical ventilation. Am J Respir Crit Care Med. 2013;188(12):1420-7.
  6. Akoumianaki E, et al. The application of esophageal pressure measurement in patients with respiratory failure. Am J Respir Crit Care Med. 2014;189(5):520-31.
  7. Restivo A, et al. Impact of Baydur ratio correction on the reliability of esophageal pressure measurement. J Appl Physiol (1985). 2026. doi: 10.1152/japplphysiol.00364.2026.
  8. Hedenstierna G. Esophageal pressure: benefit and limitations. Minerva Anestesiol. 2012;78(8):959-66.
  9. Milic-Emili J, Mead J, Turner JM, Glauser EM. Improved technique for estimating pleural pressure from esophageal balloons. J Appl Physiol. 1964;19(2):207-11.
  10. Cherniack RM, Farhi LE, Armstrong BW, Proctor DF. A comparison of esophageal and intrapleural pressure in man. J Appl Physiol. 1955;8(2):203-11.
  11. Terzi N, et al. Comparison of pleural and esophageal pressure in supine and prone positions in a porcine model of acute respiratory distress syndrome. J Appl Physiol (1985). 2020;128(6):1617-25.
  12. Yoshida T, et al. Esophageal manometry and regional transpulmonary pressure in lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 2018;197(8):1018-26.
  13. Bastia L, et al. Role of positive end-expiratory pressure and regional transpulmonary pressure in asymmetrical lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 2021;203(8):969-76.
  14. Katira BH, et al. Positive end-expiratory pressure, pleural pressure, and regional compliance during pronation: an experimental study. Am J Respir Crit Care Med. 2021;203(10):1266-74.
  15. Mojoli F, et al. In vivo calibration of esophageal pressure in the mechanically ventilated patient makes measurements reliable. Crit Care. 2016;20:98.
  16. Lichtenstein D. Lung ultrasound in the critically ill. Curr Opin Crit Care. 2014;20(3):315-22.
  17. Northfield TC. Oxygen therapy for spontaneous pneumothorax. BMJ. 1971;4(5779):86-8.
  18. Bellani G, editor. Mechanical Ventilation from Pathophysiology to Clinical Evidence. Springer International Publishing; Cham; 2022.
  19. Roberts ME, et al. British Thoracic Society guideline for pleural disease. Thorax. 2023;78(11):1143-56.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

قسطرة موجهة بالتصويرالتهوية الميكانيكيةميكانيكا الجهاز التنفسيفسيولوجيا جدار الصدرقسطرة ذات طرف بالونيتوجيه بالموجات فوق الصوتيةالضغط الجنبي الإقليمي

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.