مقالة بحثية

تدهور حركة الحيوانات المنوية وسلامة الحمض النووي المعتمد على الوقت أثناء التعرض المطول للسائل المنوي

DOI:

10.3791/71515

⸱

أغسطس 7, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1University Hospitals Fertility Center

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

زاد تجزئة الحمض النووي للحيوانات المنوية وانخفضت الحركة بشكل ملحوظ مع التعرض المطول للسائل المنوي بعد القذف. في 14 عينة طبيعية، زاد تجزئة الحمض النووي بنسبة 5.5٪، 11.5٪، و16.1٪ عند ساعة واحدة، ساعتين، و4 ساعات على التوالي، بينما انخفضت الحركة. تدعم هذه النتائج تقليل التأخيرات في جمع ومعالجة السائل المنوي خارج الموقع.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

من المعروف أن تجزئة الحمض النووي للحيوانات المنوية ضارة بجودة الحيوانات المنوية، مما قد يؤثر سلبا على دورات تكنولوجيا الإنجاب المساعد (ART). يمكن أن يوفر فحص تجزئة الحمض النووي للحيوانات المنوية (SDF) في سائل المنوي مع مرور الوقت فهما لتأثيرات التعرض المطول للسائل المنوي على سلامة الحمض النووي للحيوانات المنوية. في هذه الدراسة الأولية، أجري اختبار SDF في نقاط زمنية مختلفة لمحاكاة حالات جمع السائل المنوي خارج الموقع باستخدام اختبار تشتت كروماتين الحيوانات المنوية على 14 عينة سائل منوي طبيعية. أظهر التحليل الإحصائي لنسب تجزئة الحمض النووي خلال مدة الاختبار أن الركود المطول للسائل المنوي من القذف إلى تحليل السائل المنوي زاد بشكل كبير من تجزئة الحمض النووي. انخفض متوسط حركة الحيوانات المنوية بنسبة 7.4٪ في الساعة الأولى، و14.5٪ في الساعتين، و18.7٪ في 4 ساعات، وزاد متوسط حركة الحيوانات المنوية بنسبة 5.5٪ في الساعة الأولى، و11.5٪ بعد ساعتين، و16.1٪ بعد 4 ساعات من جمع السائل المنوي. قد يؤثر هذا الانخفاض في جودة الحيوانات المنوية مع مرور الوقت على بروتوكولات عيادات الخصوبة عند التفكير في تحضير الحيوانات المنوية لدورات ART، خاصة عندما يتم جمع السائل المنوي خارج الموقع من مختبر الأندرومي. قد تفكر المختبرات في تحديد حد زمني مقبول لاستقبال السائل المنوي من جمع خارج الموقع.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تحدد منظمة الصحة العالمية (WHO) واحدا من كل ستة أشخاص أو 17.5٪ من سكان العالم يعاني من العقم في مرحلة ما من حياتهم. حوالي 20٪ من حالات العقم يتم تشخيصها فقط بالعقم الذكري، مع 30–40٪ إضافية من الحالات التي كان فيها العامل الذكري كتشخيص ثانوي2. حتى في الرجال الأصحاء، يمكن أن تختلف معايير السائل المنوي بشكل كبير من شخص لآخر، بما في ذلك تقلبات في التركيز، والحركة، والشكل، والحيوية3. لذا، من المهم فهم العوامل المحددة التي تؤثر على خصوبة الذكور لتوفير العلاج المناسب في بيئة سريرية.

من مجالات البحث المتطورة تأثير سلامة الحمض النووي للحيوانات المنوية على دورات تقنية الإنجاب المساعدة (ART) 4,5,6,7,8,9,10,11,12,13. دليل مختبر منظمة الصحة العالمية لفحص ومعالجة السائل المنوي البشري، الطبعة الخامسة، يذكر أن تجزئة الحمض النووي للحيوانات المنوية (SDF) (سواء عبر انقطاعات أحادية أو مزدوجة السلسلة) قد تؤثر على تطور الأجنة، الانغراس، ونتائج الحمل. أجرى موريل وآخرون تحليلا ل SDF ووجدوا أن زيادة SDF أدت إلى تدهور معدلات التخصيب وجودة الأجنة ومعدلات الانغراس في دورات ART10. ومع ذلك، هناك حاجة إلى فهم أفضل لأسباب تجزئة الحمض النووي.

تشير الدراسات السابقة إلى أن الإجهاد التأكسدي يمكن أن يؤدي إلى انخفاض حركة الحيوانات المنوية، وضعف إنتاج ووظيفة الإنزيمات، والأهم من ذلك، تلف الحمض النووي8. قد يشمل هذا الضرر في الحمض النووي، ولكن لا يقتصر على، حذف الجينات، والترجمات الخاطئة، وSDF. تستخدم اختبارات SDF حاليا لتقييم سلامة الحمض النووي للحيوانات المنوية. على الرغم من أن الدراسات أظهرت ارتباطا بين الحفظ بالتجميد، والتعامل مع الوسط، والإجهاد التأكسدي مع SDF، إلا أن القليل معروف عن SDF خلال الفترة من القذف إلى التحليل 4,5. هذه فترة حرجة في عمر الحيوانات المنوية، نظرا لزيادة انتشار مجموعات الحيوانات المنوية المنزلية لتحضير الحيوانات المنوية في دورات ART15. أصبحت عمليات الجمع المنزلي أكثر شعبية خلال جائحة كوفيد-19، حيث تحد من الاتصال المباشر مع المريض وتزيد من الراحة والراحة. ومع ذلك، لا توجد إرشادات محددة تشير إلى الوقت الأمثل من القذف إلى التحليل لمجموعات المنزل. لذا، كان الهدف الأساسي من دراستنا هو فهم ما إذا كانت تغيرات SDF مع مرور الوقت في السائل المنوي الراكد وما إذا كانت هذه التغيرات قد تكون ذات صلة بمعالجة عينات ART.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

أجريت الدراسة وفقا لإعلان هلسنكي وتمت الموافقة عليها من قبل مجلس المراجعة المؤسسية لمستشفيات الجامعات (STUDY20201371). تم الحصول على موافقة مستنيرة من جميع المشاركين في الدراسة. تم اختيار أربعة عشر عينة من السائل المنوي من مرضى في مركز أخبار أكاديمي واحد في شمال شرق أوهايو. تم جمع جميع العينات التي تم تحليلها في هذا التجربة في الموقع في منشأتنا. تم إجراء اختبار تشتت الكروماتين للحيوانات المنوية على عينات السائل المنوي بواسطة أخصائي أندروماتين مدرب بالكامل، وفقا لتعليمات الشركة المصنعة، لتقليل التفاوت بين الأشخاص. مع هذه المجموعة، تم غمر الحيوانات المنوية السليمة وغير المثبتة والطازجة في ميكروجيل أغاروز خامل على شريحة معالجة مسبقا ثم بردت على درجة حرارة 4 درجات مئوية لمدة 5 دقائق لتصلب الجل. تم استخدام معالجة حمضية أولية لتفكيك الحمض النووي في خلايا الحيوانات المنوية باستخدام حمض نووي مجزأ، وتم تطبيق محلول محلول تحلل لإزالة البروتينات النووية. بعد الغسل بالماء المقطر، كانت الشرائح تجف في محاليل إيثانول متدرجة وتجفيف بالهواء. عند رؤية الحيوانات المنوية تحت المجهر الضوئي بعد التلوين باستخدام المحاليل التي توفرها المجموعة، أظهرت الحيوانات المنوية بدون تجزئة وجود نوى ذات هالة تشتت كبيرة (أكبر من ثلث قطر النواة)، بينما أظهرت الحيوانات المنوية المصابة بالتجزئة هالة صغيرة (أقل من ثلث قطر النواة) أو غياب الهالة. تم حساب نسبة الحيوانات المنوية التي تحتوي على تجزئة الحمض النووي كعدد الحيوانات المنوية المجزأة والمتحللة ومعبرة عنها كنسبة مئوية. تم عد ما مجموعه 300 حيوان منوي على شريحة وتم تصنيفها إما على أنها تحتوي على هالة كبيرة أو متوسطة التشتت أو على أنها غياب هالة تشتت. تم تكرار هذا العد مرتين لتقييم التباين التقني، وتم متوسط العدين العددين. تبلغ حساسية التشخيص وخصوصية المجموعة 93٪، وتم تضمين كل من الضوابط الإيجابية والسلبية في كل تجربة. تم تقييم عينات السائل المنوي عند 0، 1، 2، و4 ساعات (تم تعريف 0 ساعة بأنها 15 دقيقة بعد فترة التسييل عند 37 درجة مئوية) وتم الحفاظ عليها عند درجة حرارة الغرفة (22–25 درجة مئوية).

تم إجراء تحليل حركة إضافي على كل عينة عند 0 و1 و2 و4 ساعات. تم إجراء تقييم الحركة بواسطة أندرولوجي ذو خبرة عبر بروتوكول عد باستخدام غرفة عد قابلة للاستخدام. تم عد ثلاثمائة حيوان منوي متحرك لكل شبكة، وتم تكرار العد مرتين. تم حساب متوسط تركيز الحيوانات المنوية المتحركة بناء على العدين المكررين.

أجريت تحليلات إحصائية باستخدام تحليل النوفاع المتكرر للقياس المتكرر للمقارنة بين كل مجموعة زمنية. عندما تم اكتشاف تأثير إجمالي ذو دلالة، تم تطبيق اختبار الفرق الصادق ذو الدلالة العالية (HSD) لتوكي للمقارنات الزوجية بعد الواقع. تم اعتبار قيمة p < 0.05 ذات دلالة إحصائية. يتم تلخيص المعلومات التفصيلية حول المواد في جدول المواد.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لتقييم تأثير التعرض المطول للسائل المنوي على حركة الحيوانات المنوية وتجزئة الحمض النووي، تم تحليل ما مجموعه 14 عينة من المرضى العاديين في أربع نقاط زمنية من الجمع. تم اعتبار العينات التي تم تحليلها "طبيعية" في معايير تحليل السائل المنوي وفقا لمنظمة الصحة العالميةالطبعة الخامسة 14. تم جمع جميع العينات في الموقع في مركز الخصوبة لدينا لتحسين دقة معايير التحليل في كل نقطة زمنية. كان متوسط عمر المرضى 35.4 سنة (24–45 سنة). أظهرت نتائج معلمات السائل المنوي الأولية للمجموعة حجم متوسط للسائل المنوي 3.7 مل، وتركيز متوسط 42.2 مليون/مل، ومتوسط حركة 46.9٪، ومتوسط شكل طبيعي 4٪، وسلبية لخلايا الدم البيضاء لجميع العينات عبر الاختبار النوعي (الجدول 1).

لوحظ انخفاض تدريجي في حركة الحيوانات المنوية مع مرور الوقت. مقارنة بالمعدل الأساسي (0 ساعة)، انخفض متوسط حركة الحيوانات المنوية بنسبة 7.4٪ (النطاق 3–16٪) عند ساعة واحدة، و14.5٪ (النطاق 4–31٪) عند ساعتين، و18.7٪ (النطاق 8–37٪) عند 4 ساعات. انخفضت حركة الحيوانات المنوية تدريجيا مع مرور الوقت، من 58.6٪ في البداية إلى 42.5٪ بعد 4 ساعات من التعرض (الشكل 1). بشكل عام، كان انخفاض الحركة عبر النقاط الزمنية ذا دلالة إحصائية (p = 0.0001585). في الوقت نفسه، زاد SDF بشكل ملحوظ مع استمرار الحضانة في بلازما السائل المنوي. ارتفع متوسط SDF من 15.6٪ عند الأساس إلى 21.1٪ عند ساعة واحدة، و27.1٪ عند ساعتين، و31.7٪ عند 4 ساعات. مقارنة بالخط الأساسي، ارتفعت SDF بنسبة 5.5 نقطة مئوية (النطاق 4–8 نقاط مئوية) عند ساعة واحدة، و11.5 نقطة مئوية (النطاق 8–16 نقطة مئوية) عند ساعتين، و16.1 نقطة مئوية (النطاق 13–22 نقطة مئوية) عند 4 ساعات. تم اكتشاف زيادات ذات دلالة إحصائية في SDF في جميع النقاط الزمنية اللاحقة مقارنة بالخط الأساسي، بما في ذلك ساعة واحدة (p = 0.021129)، ساعتين (p < 0.00001)، و4 ساعات (p = 0.000018) (الجدول 2).

توفر البيانات
تم توفير بيانات الحركة على مستوى المريض وبيانات SDF المستخدمة في التحليل في الجدول التكميلي S1.

figure-results-1
الشكل 1. تغير في حركة الحيوانات المنوية مع مرور الوقت بعد القذف. تم تقييم حركة الحيوانات المنوية في البداية وبعد تعرض لمدة ساعة وساعتين وأربع ساعات من التعرض للسائل المنوي. انخفضت الحركة تدريجيا مع زيادة وقت التعرض. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

المعلمةالمتوسطالانحراف المعياري
عمر المريض35.4 (النطاق، 24–45 سنة)6.22
حجم السائل المنوي3.7 مل2.18
التركيز42.2 مليون لكل مل33.45
الحركة46.9%18.77
خلايا الدم البيضاءسلبي (الجميع)—
الشكل4.0%0.77

الجدول 1: خصائص السائل المنوي الأساسي لعينات الدراسة. تم تسجيل معلمات السائل المنوي بعد التسييل وقبل التقييم المعتمد على الوقت لتجزئة وحركة حمض الحيوانات المنوية في الحمض النووي.

الزمن0 ساعةساعة واحدةساعتان4 ساعات
متوسط انخفاض حركة الحيوانات المنوية من 0 ساعة*—-7.4%-14.5%-18.7%
متوسط SDF15.6%21.1%27.1%31.7%
الانحراف المعياري5.28%5.27%5.31%4.80%
قيمة P مقابل 0 ساعة—p = 0.021129p < 0.00001p = 0.000018
*مقارنات ANOVA بمقاييس متكررة مع Tukey HSD بعد الواقع.

الجدول 2: التغيرات المعتمدة على الزمن في تجزئة وحركة حمض الحيوانات المنوية. تم تقييم تجزئة وحركة الحمض النووي للحيوانات المنوية في البداية وبعد ساعة وساعتين وأربع ساعات من التعرض للسائل المنوي. تعرض القيم كما أبلغ عنها المؤلفون، مع إجراء مقارنات إحصائية مع خط الأساس.

الجدول التكميلي S1. فرق حركة الحيوانات المنوية على مستوى المريض وقيم مؤشر تجزئة الحمض النووي للحيوانات المنوية. تعبر القيم كنسب؛ اضرب في 100 لتحويلها إلى نسب مئوية. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الملف.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

في العينات المشمولة في هذه التجربة، زاد SDF مع مرور الوقت، بينما انخفضت الحركة خلال نفس الفترة. وهذا يشير إلى أن سلامة الحمض النووي للحيوانات المنوية قد تنخفض عندما يبقى السائل المنوي راكدا لفترات أطول بين القذف والتحليل أو المعالجة. زيادة مدة بقاء العينات راكدة قبل التحليل قد تزيد من التعرض للظروف المرتبطة بالإجهاد التأكسدي. كما نوقش سابقا، يمكن أن يكون الإجهاد التأكسدي ضارا بجودة الحمض النووي للحيوانات المنوية، مما يؤدي إلى مستويات عالية من تجزئة الحمض النووي 6,8,13. قد تساعد نتائج هذه الدراسة في التعامل مع السائل المنوي في دورات ART.

أولا، قد يكون من المفيد للعيادات إضافة هذا الاختبار إلى معايير تحليل السائل المنوي التقليدية لضمان جودة الحمض النووي للحيوانات المنوية قبل استخدام الحيوانات المنوية في دورات ART. قد يرتبط تحسين جودة الحيوانات المنوية بتحسن النتائج، مثل زيادة أعداد الأجنة المجمدة، وزيادة معدلات التصبغ الصبغي، وارتفاع معدلات الحمل الإيجابي والولادة الحية، كما ورد في الدراسات السابقة16.

ثانيا، توفر هذه النتائج فهما لتأثير جمع السائل المنوي في المنزل على نتائج ART. خلال جائحة كوفيد-19، بدأت العديد من العيادات باستخدام جمع السائل المنوي في المنزل كخيار أكثر أمانا للمرضى15,17. ومع بدء العيادات في إجراء هذا التحول، أتيحت للمرضى الفرصة ليس فقط لتقليل التعرض لكوفيد، بل أيضا لإجراء الجمع في خصوصية منازلهم. ومع ذلك، تشير نتائجنا إلى أن هذه التحولات في الممارسات قد تتضمن مفاضلات تتعلق بجودة الحيوانات المنوية وربما نتائج ART.

أظهرت الدراسات السابقة على مجموعات جمع السائل المنوي المنزلية تقلبات كبيرة في نتائج تحليل السائل المنوي لدى الرجال الذين لديهم تشخيصات مختلفة للعوامل الذكورية، والرجال الذين ينتجون عادة عينات "طبيعية" من السائل المنوي18. قد يكون هذا التقلب ناتجا عن ركود الحيوانات المنوية أثناء عملية النقل من المنزل إلى العيادة، خاصة عند شحن عينات السائل المنوي خلال الليل في بعض الحالات. تدعم دراسات أخرى نتائجنا بأن SDF يزداد بسرعة خلال أول 3–4 ساعات من الحضانة في 5٪ CO2 عند 37 درجة مئوية بعد تحضير الحيوانات المنوية سواء في الحيوانات المنوية المجمدة/المذابةأو في الحيوانات المنويةالطازجة 20، مما يشير إلى أنه يجب استخدام الحيوانات المنوية بأسرع وقت ممكن بعد تحضير الحيوانات المنوية لعلاج ART.

أجرى كيردتاوي وآخرون تحليلا تلويا لتأثير موقع جمع الحيوانات المنوية على معايير السائل المنوي ونتائج الخصوبة. ورغم أنهم لم يظهروا أي فروق ذات دلالة إحصائية بين العينات المنزلية والعينات التي جمعتها العيادة، إلا أنهم لاحظوا تباينا كبيرا بين الدراسات التي تم تحليلها، معظمها دراسات رصدية16. ومن المهم أن هذه الدراسات لم يكن لديها جدول زمني محكم لإعادة العينات المجمعة في المنزل إلى العيادات وتحليلها. ومع ذلك، مكنت البيانات التي حللت في هذه الدراسة من إجراء تحليل محكم لتجزئة الحمض النووي عبر عدة نقاط زمنية، مما أدى إلى دقة وثبات أكبر في نتائج التجريب.

بينما قد يكون الجمع المنزلي خيارا لبعض المرضى، فإن فهم معدل SDF قد يساعد في تطوير إرشادات لتحديد المرضى الذين قد يكون الجمع المنزلي لديهم ضارا بنتائج ART. وجدت مراجعة منهجية وتحليل تلوي أجراها كريستوفوراكي وآخرون أن قدرة الاختزال التأكسدي في السائل المنوي تؤثر سلبا على العقم الذكوري21. تشمل المعايير التي تم تحليلها تركيز الحيوانات المنوية، وعددها، وحركتها، والشكل، وكلها تأثرت سلبا بارتفاع جهد الاختزال التأكسدي، مما يدل على أن جودة الحيوانات المنوية قد تتأثر بالإجهاد التأكسدي.

من نقاط قوة هذه الدراسة جداتها، حيث أن القليل من الدراسات قيمت تغيرات SDF المرتبطة بالوقت أثناء التعرض المطول لسائل السائل المنوي. كما أجريت هذه الدراسة في بيئة محكمة مع مجموعة متجانسة نسبيا من الرجال دون وجود أمراض منوية كامنة. ومع ذلك، اقتصرت هذه الدراسة على عينة صغيرة من 14 مريضا. يجب إجراء المزيد من التجارب لتعظيم الثقة في نقاط البيانات المجمعة والملاحظات الحاسمة.

يجب أن تبحث المزيد من الأبحاث أيضا في المتغيرات التي قد تؤثر على معدلات SDF، وبشكل خاص لفهم العوامل التي تساهم في الحفاظ على جودة الحيوانات المنوية. بعض العوامل التي يجب أخذها في الاعتبار تشمل، على سبيل المثال لا الحصر، التعامل مع الأوساط المستخدمة أثناء تحضير الحيوانات المنوية، ودرجة حرارة ظروف النقل من المنزل إلى العيادة، وطرق الحفظ بالتجميد، والحالات الكامنة للمرضى الذكور. الحصول على رؤية شاملة للعوامل التي تسهم في SDF سيسمح في النهاية للعيادات بتحسين إرشاداتها وتوجيه قراراتها بشكل أفضل عند وضع بروتوكولات لعلاج المرضى الذين يتلقون ART.

أظهر التدهور الملحوظ في جودة الحيوانات المنوية نمطا واضحا يعتمد على الزمن، يتميز بانخفاض الحركة وزيادة تجزئة الحمض النووي أثناء التعرض المطول لسائل السائل المنوي. ومن الجدير بالذكر أن التدهور الأكثر وضوحا حدث بعد 2–4 ساعات من التخزين، عندما تجاوز SDF 30٪، وانخفضت الحركة بنحو خمس من الوضع الأساسي. تشير هذه النتائج إلى أن التأخيرات بين القذف ومعالجة السائل المنوي قد تؤثر سلبا على سلامة وظائف الحيوانات المنوية وتدعم أهمية تقليل أوقات النقل والتعامل مع العينات المجمعة خارج الموقع لإجراءات تقنية الإنجاب المساعدة. قد تفكر مختبرات الأندروجينولوجيا في تحديد والتواصل مع المرضى لاستقبال السائل المنوي من جمع خارج الموقع، خاصة في إطار التحضير للتلقيح داخل الرحم أو التلقيح الصناعي. يجب أخذ الوقت من القذف إلى تحليل و/أو تحضير السائل المنوي في الاعتبار فيما يتعلق ب SDF، خاصة عندما يتم جمع العينات خارج الموقع من مختبر الأندرولوجيا لعلاج ART.

نظرا لمحدودية حجم العينة الصغيرة لهذه الدراسة، ينبغي أن تقيم الدراسات المستقبلية تأثير التعرض المطول للسائل المنوي على SDF عبر مجموعة أوسع من فئات جودة السائل المنوي، بما في ذلك عينات من رجال لديهم معايير غير طبيعية للسائل المنوي. بالإضافة إلى ذلك، هناك حاجة إلى تجارب عشوائية محكمة مستقبلية لتحديد ما إذا كانت الزيادات المعتمدة على الوقت في SDF تترجم إلى فروق ذات دلالة سريرية في نتائج ART، بما في ذلك التخصيب، وتطور الجنين، والانغراس، والحمل، والإجهاض، ومعدلات الولادة الحية.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المؤلفون لا يفرضون أي تضارب مصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
حاسبة ANOVAمملكة الإحصاءالتحليل الإحصائي
https://www.statskingdom.com/anova_manova.html
Halosperm G2HalotechHT-HSG2مجموعة تشخيصية in vitro لقياس تجزئة الحمض النووي في الحيوانات المنوية
https://halotechdna.com/en/producto/halosperm-g2/
MicrocellVitrolife15423غرفة عد يمكن التخلص منها لتحليل السائل المنوي
https://www.vitrolife.com/products/sperm-processing/microcell--accessories/
التحكم في الجودة لأشرطة اختبار WBC/pHالأنظمة الإلكترونية الطبيةA-CA-01752-00التحكم الإيجابي والسلبي لأشرطة اختبار QwikCheck WBC
https://mes-global.com/products/semen-analysis-validation-kits/qwikcheck-test-kits/qwikcheck-wbc-ph-test-strips-quality-control/
أشرطة اختبار QwikCheck WBC/pHالأنظمة الإلكترونية الطبية0700تحديد الخلايا البيضاء (WBCs) في السائل المنوي
https://mes-global.com/products/semen-analysis-validation-kits/qwikcheck-test-kits/

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. World Health Organization. Infertility prevalence estimates, 1990-2021. 1st ed. World Health Organization; Geneva; 2023. xiv, 79 p.
  2. Leslie SW, Soon-Sutton TL, Khan MA. Male infertility. In: StatPearls [Internet]. StatPearls Publishing; Treasure Island (FL); 2025 [cited 2025 Feb 7]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK562258/
  3. Alvarez C et al. Biological variation of seminal parameters in healthy subjects. Hum Reprod. 2003;18(10):2082-8.
  4. Schulte RT, Ohl DA, Sigman M, Smith GD. Sperm DNA damage in male infertility: etiologies, assays, and outcomes. J Assist Reprod Genet. 2010;27(1):3-12.
  5. Le MT et al. Does conventional freezing affect sperm DNA fragmentation? Clin Exp Reprod Med. 2019;46(2):67-75.
  6. Zini A, Bielecki R, Phang D, Zenzes MT. Correlations between two markers of sperm DNA integrity, DNA denaturation and DNA fragmentation, in fertile and infertile men. Fertil Steril. 2001;75(4):674-7.
  7. Zini A et al. Potential adverse effect of sperm DNA damage on embryo quality after ICSI. Hum Reprod. 2005;20(12):3476-80.
  8. Aitken RJ, Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome. Reproduction. 2001;122(4):497-506.
  9. Benchaib M et al. Sperm DNA fragmentation decreases the pregnancy rate in an assisted reproductive technique. Hum Reprod. 2003;18(5):1023-8.
  10. Muriel L et al. Value of the sperm deoxyribonucleic acid fragmentation level, as measured by the sperm chromatin dispersion test, in the outcome of in vitro fertilization and intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril. 2006;85(2):371-83.
  11. Tandara M et al. Sperm DNA integrity testing: big halo is a good predictor of embryo quality and pregnancy after conventional IVF. Andrology. 2014;2(5):678-86.
  12. Agarwal A et al. Clinical utility of sperm DNA fragmentation testing: practice recommendations based on clinical scenarios. Transl Androl Urol. 2016;5(6):935-50.
  13. Panner Selvam MK, Agarwal A. A systematic review on sperm DNA fragmentation in male factor infertility: laboratory assessment. Arab J Urol. 2018;16(1):65-76.
  14. World Health Organization. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed. World Health Organization; Geneva; 2010. 271 p.
  15. Sacha CR et al. The effect of semen collection location and time to processing on sperm parameters and early IVF/ICSI outcomes. J Assist Reprod Genet. 2021;38(6):1449-57.
  16. Kerdtawee P, Salang L, Sothornwit J. Effect of semen collection location on semen parameters and fertility outcomes and implications for practice in the COVID-19 era: a systematic review and meta-analysis of randomized and observational studies. Am J Obstet Gynecol. 2023;228(2):150-60.
  17. Stimpfel M, Jancar N, Vrtacnik-Bokal E. Collecting semen samples at home for IVF/ICSI does not negatively affect the outcome of the fresh cycle. Reprod Biomed Online. 2021;42(2):391-9.
  18. Aznavour Y et al. Semen parameter variability among users of at-home sperm testing kits. BMC Urol. 2022;22(1):184.
  19. Gosálvez J et al. Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation dynamics in fertile donors. Fertil Steril. 2009;92(1):170-3.
  20. Nabi A, Khalili MA, Halvaei I, Roodbari F. Prolonged incubation of processed human spermatozoa will increase DNA fragmentation. Andrologia. 2014;46(4):374-9.
  21. Christoforaki V et al. The role of seminal oxidation-reduction potential in male infertility: systematic review and meta-analysis. Reprod Biomed Online. 2026;52(2):104858.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

234 234 234 DNA DNA

مقالات ذات صلة