جمع البيانات
تم استرجاع مصفوفة التعبير الجيني والبيانات السريرية المقابلة لها لمجموعات البيانات GSE142025 وGSE96804 المتعلقة بمرض اعتلال الكلية السكري (DN) من قاعدة بيانات Gene Expression Omnibus (GEO) عبر الرابط (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)15. تضمنت مجموعة التدريب (GSE142025) عينات من أنسجة الكلى لـ 27 مريضاً مصاباً بـ DN وتسعة من مجموعة الضبط، والتي تم تسلسلها باستخدام منصة GPL20301. أما مجموعة التحقق (GSE96804) فاشتملت على بيانات تسلسل لـ 41 مريضاً بـ DN و20 من مجموعة الضبط، تمت معالجتها باستخدام منصة GPL17586. تركز كلتا المجموعتين على أنسجة الكلى؛ حيث تفحص مجموعة GSE96804 تحديداً الكبيبة الكلوية، وهي وحدة الترشيح الأساسية في الكلية (الشكل 1). وتتكون مجموعة GSE142025 (مجموعة التدريب) من عينات أنسجة الكلى الكاملة وتوفر نظرة عامة شاملة على المشهد الترانسكريبتومي لمرض DN. ومن ناحية أخرى، تركز مجموعة GSE96804 (مجموعة التحقق) تحديداً على أنسجة الكبيبات، والتي تعد الموقع الرئيسي لإصابة الترشيح الكبيبي. ونظراً لعدم دمج هاتين المجموعتين مباشرةً بسبب الاختلافات في المنصة والأنسجة، لم يتم تطبيق تصحيح تأثير الدفعة (batch effect correction)، وبدلاً من ذلك، تم إجراء التحقق المتقاطع بين مجموعات البيانات بشكل مستقل. وقد تم اختيار الجينات التي أظهرت تغيرات اتجاهية متسقة وكانت المساحة تحت المنحنى (AUC) لها أكبر من 0.7 في كلتا المجموعتين كمرشحات قوية، مما يدعم إمكانية التعميم عبر أقسام الكلى المختلفة.
تم استخراج ما مجموعه 1,136 من الجينات المرتبطة بالميتوكوندريا (MRGs) من قاعدة بيانات MitoCarta3.0 (https://www.broadinstitute.org/mitocarta). وتم التنبؤ بالمكونات النشطة لـ LLF باستخدام قاعدة بيانات فارماكولوجيا نظم الطب الصيني التقليدي (TCMSP) (http://sm.nwsuaf.edu.cn/lsp/tcmsp.php)، وذلك بناءً على عتبة توافر حيوي فموي (OB) تبلغ ≥30% وعتبة تشابه دوائي (DL) تبلغ ≥0.18. بعد ذلك، تم التنبؤ بالجينات المستهدفة المحتملة للمكونات النشطة باستخدام قاعدة بيانات Swiss Target Prediction (http://www.swisstargetprediction.ch/).
تحليل التعبير التفاضلي
أُجري تحليل التعبير التفاضلي لمجموعة البيانات GSE142025 (مرض الاعتلال العصبي السكري مقابل المجموعة الضابطة) باستخدام حزمة limma (الإصدار 3.54.1)، مع تحديد معايير الدلالة عند P.adj < 0.05 و |log2FoldChange| > 0.516. وتم تمثيل مخططات البركان والخرائط الحرارية بصرياً باستخدام حزمتي ggplot2 (الإصدار 3.3.6) و ComplexHeatmap (الإصدار 2.14.0) على التوالي17,18. ثم تم إجراء تقاطع بين الجينات ذات التعبير التفاضلي (DEGs)، والجينات المرتبطة بالتمثيل الغذائي (MRGs)، والجينات المستهدفة المحتملة للمكونات النشطة، وعُرِّفت الجينات المتداخلة بأنها الجينات المرشحة. وبُنيت الشبكة التي تربط بين المكونات النشطة والجينات المرشحة باستخدام برنامج Cytoscape (الإصدار 3.9.0)19.
تحليل الإثراء الوظيفي وبناء شبكة التفاعلات البروتينية-البروتينية (PPI)
أُجريت تحليلات إثراء الوجود الجيني (GO) وموسوعة كيوتو للجينات والجينومات (KEGG) للجينات المرشحة باستخدام حزمة clusterProfiler (الإصدار 4.6.2) لاستكشاف وظائفها البيولوجية ومسارات التأشير المرتبطة بها (P.adjust < 0.05). بعد ذلك، أُدخلت الجينات المرشحة في قاعدة بيانات STRING (https://cn.string-db.org/) لاسترجاع علاقات التفاعلات البروتينية-البروتينية (مستوى الثقة ≥ 0.4)، ثم تلا ذلك بناء شبكة PPI باستخدام برنامج Cytoscape (الإصدار 3.9.0)20.
تعلم الآلة
تم تنفيذ أربعة من خوارزميات تعلم الآلة، وهي الغابة العشوائية (RF)، والجيران الأقرب k (KNN)، والمربعات الصغرى الجزئية (PLS)، وآلة ناقلات الدعم ذات نواة الأساس الشعاعي (SVM)، باستخدام حزمة caret (الإصدار v6.0-93) بناءً على مجموعة بيانات GSE142025. استُخدمت الجينات المرشحة التي تم تحديدها في التحليل السابق كمتغيرات تنبؤية، واستُخدمت حالة المرض (DN أو المجموعة الضابطة) كمتغير نتيجة. بالنسبة لنموذج KNN، تم تنفيذ التحقق المتقاطع المكون من 10 طيات باستخدام دالة trainControl، مع ضبط tuneLength = 10. وتم ملاءمة نموذج RF باستخدام 20 شجرة (ntree = 20)؛ بينما تمت ملاءمة نموذجي PLS و SVM باستخدام الإعدادات المطبقة في سير عمل caret الأصلي.
تم تقييم توزيعات البواقي للنماذج باستخدام حزمة DALEX (v2.4.3). بعد ذلك، تم إجراء تقييم للمتغيرات استناداً إلى التبديل باستخدام دالة variable_importance في حزمة DALEX، مع تحديد جذر متوسط مربع الخطأ (RMSE) كدالة للخسارة. تمثل قيمة dropout_loss الناتجة قيمة RMSE التي تم الحصول عليها بعد تبديل المتغير المقابل21,22. وفي سير العمل التحليلي الأصلي، تم الاحتفاظ بالمتغيرات التي كانت قيمة dropout loss لها < 0.281 في جميع النماذج، وعُرِّفت الجينات المشتركة بين النماذج الأربعة جميعها على أنها جينات الميزات التوافقية (consensus feature genes) لغرض التحقق اللاحق.
استُخدمت نماذج تعلم الآلة الأربعة بشكل أساسي لتحديد أولويات الميزات بدلاً من بناء مصنف سريري نهائي. وبناءً على ذلك، تم تقييم التمييز التشخيصي لاحقاً على مستوى الجين الفردي باستخدام تحليل ROC في كل من مجموعتي بيانات الاكتشاف والتحقق.
تحديد المؤشرات الحيوية المرشحة
في مجموعتي البيانات GSE142025 وGSE96804، تم تقييم اختلافات التعبير في الجينات المميزة بين عينات اعتلال الكلية السكري (DN) والعينات الضابطة باستخدام اختبار ويلكوكسون. وقد تم اختيار الجينات التي أظهرت تعبيراً تفاضلياً معنوياً (P < 0.05) واتجاهات تعبير متوافقة عبر مجموعتي البيانات فقط لإجراء تحليل منحنى خصائص التشغيل للمستقبل (ROC). واستُخدمت حزمة pROC (الإصدار 1.18.0) لإنشاء منحنيات ROC وحساب المساحة تحت المنحنى (AUC)، حيث صُنفت الجينات التي أظهرت AUC > 0.7 في كلتا مجموعتي البيانات كمؤشرات حيوية مرشحة23.
تحليل إثراء مجموعة الجينات (GSEA)
تم استكشاف الوظائف البيولوجية ومسارات التأشير المرتبطة بالمؤشرات الحيوية المرشحة بشكل أكبر باستخدام تحليل إثراء مجموعة الجينات (GSEA) على مجموعة بيانات GSE142025. أولاً، أُجري تحليل ارتباط سبيرمان للمؤشرات الحيوية المرشحة مع جميع الجينات الأخرى باستخدام حزمة psych (الإصدار 2.2.9).24حُسبت معاملات الارتباط ورُتبت (من الأعلى إلى الأدنى). كانت مجموعة الجينات المرجعية هي c2.cp.kegg.v2023.1.Hs.symbols.gmt من قاعدة بيانات البصمات الجزيئية (MSigDB, https://www.gsea-msigdb.org/gsea/msigdb/). ثم أُجري تحليل إثراء مجموعة الجينات (GSEA) لتقييم إثراء الجينات المرتبة في مجموعة الجينات الخلفية باستخدام حزمة clusterProfiler (v4.6.2). كما طُبق تصحيح الاختبارات المتعددة. عن طريق طريقة معدل الاكتشاف الكاذب (FDR)، ومُعدلة P-القيم (يُرمز لها بـ P(adjust) واعتُبرت ذات دلالة إحصائية إذا كانت < 0.05.
تحليل تعديل M6A
للتحقيق في تعديلات مثيلة RNA للمؤشرات الحيوية المرشحة، تم استخدام قاعدة بيانات SRAMP (http://www.cuilab.cn/sramp/) للتنبؤ بمواقع تعديل m6A على المؤشرات الحيوية المرشحة، مع التركيز على المواقع ذات الموثوقية العالية ضمن هياكلها الثانوية. ثم استُخدمت قاعدة بيانات ENCORI (https://starbase.sysu.edu.cn/) لتحديد البروتينات المعدلة بـ m6A التي تتفاعل مع المؤشرات الحيوية المرشحة، باستخدام المعيار |HepG2 (shRNA)| > 1 لفحص البروتينات الرئيسية. بعد ذلك، استُخدمت قاعدة بيانات RPISeq (http://pridb.gdcb.iastate.edu/RPISeq/) للتنبؤ باحتمالية التفاعلات بين البروتينات الرئيسية والمؤشرات الحيوية المرشحة. تم رفع تسلسلات RNA لكليهما بتنسيق نصي بسيط لإنشاء درجات تنبؤ لمصنفات RF و SVM. واعتُبر التفاعل هاماً عندما تجاوزت الدرجة 0.525. أُجري تحليل SRAMP باستخدام عتبة "High" للتنبؤ بمواقع m6A، مع استخدام وضع "Transcript" والمعايير الافتراضية. واستخدم تحليل ENCORI وظيفة تفاعل "miRNA-mRNA" مع المعيار "HepG2 (shRNA)" > 1. أما تحليل RPISeq فقد استخدم مصنف RF بالمعايير الافتراضية؛ حيث أشارت الدرجات > 0.5 إلى وجود تفاعل إيجابي. هذه تنبؤات حاسوبية، وليست أدلة تجريبية على تعديل m6A أو تفاعلات RNA-protein في أنسجة الكلى. وقد اشتق معيار HepG2 shRNA من مجموعات البيانات المحسوبة مسبقاً في ENCORI وقد لا يعكس التنظيم الخاص بالكلى.
تحليل الارتشاح المناعي
طُبقت خوارزمية CIBERSORT لتقدير نسب 22 نوعاً من الخلايا المناعية في كل من عينات المجموعة الضابطة وعينات اعتلال الكلية السكري (DN) من مجموعة البيانات GSE142025، مع تمثيل النتائج بصرياً عبر خريطة حرارية تم إنشاؤها باستخدام حزمة ggplot2 (الإصدار 3.3.6).26تَمَّ تشغيل برنامج CIBERSORT باستخدام مصفوفة البصمة LM22، مع إجراء 1,000 تبديلة وتعطيل التسوية الكمية (كما هو موصى به لبيانات المصفوفات الدقيقة). أما العينات التي كانت قيمة p في برنامج CIBERSORT لها... < تم الاحتفاظ بـ 0.05 لإجراء مزيد من التحليل. يقدر برنامج CIBERSORT كسور الخلايا المناعية من تعبير أنسجة الكلى الكلية، وهو ما لا يمكنه تحليل الارتشاح الخاص بمقصورات معينة (على سبيل المثال، الكبيبي مقابل الأنبوبي الخلالي) ولا التمييز بين الكريات البيض المرتشحة والخلايا المناعية المقيمة. وبناءً على ذلك، فإن الارتباطات المسجلة هي على مستوى النسيج ويجب التحقق من صحتها باستخدام الطرق المكانية. كما أُجري تحليل ارتباط سبيرمان بين الخلايا المناعية ذات الوفرة المتباينة والمؤشرات الحيوية المرشحة باستخدام حزمة psych.
بناء الشبكات والالتحام الجزيئي
تم التنبؤ بجزيئات MicroRNAs (miRNAs) التي تتفاعل مع المؤشرات الحيوية المرشحة باستخدام قاعدة بيانات miRNet (https://www.mirnet.ca). بعد ذلك، تم التنبؤ بجزيئات RNAs غير المشفرة الطويلة (lncRNAs) التي تستهدف miRNAs المحددة من خلال قاعدتي بيانات TarBase (http://www.diana.pcbi.upenn.edu/tarbase) وstarbase (http://starbase.sysu.edu.cn/). وقد اختيرت جزيئات lncRNAs المشتركة بين قاعدتي البيانات لبناء الشبكة. ثم تم بناء شبكة تنظيمية من نوع lncRNA-miRNA-mRNA باستخدام برنامج Cytoscape. كما اختيرت المكونات النشطة المحتملة التي تستهدف المؤشرات الحيوية المرشحة لبناء شبكة مكون نشط-مؤشر حيوي. بالإضافة إلى ذلك، تم دمج المكونات النشطة والمؤشرات الحيوية المرشحة والمسارات المحددة في تحليل GSEA داخل برنامج Cytoscape لإنشاء شبكة مكون نشط-مؤشر حيوي-مسار.
أُجري تحليل الالتحام الجزيئي لتقييم ألفة الارتباط بين المكونات النشطة المحتملة والمؤشرات الحيوية المرشحة. تم الحصول على الهياكل ثلاثية الأبعاد لبروتينات المؤشرات الحيوية من بنك بيانات البروتينات التابع للمختبر التعاوني للأبحاث في المعلوماتية الحيوية الهيكلية (RCSB PDB, https://www.rscb.org/pdb) بصيغة ملفات PDB. كما استُرجعت الهياكل ثنائية الأبعاد للمكونات النشطة المحتملة بصيغة SDF من قاعدة بيانات PubChem (http://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov). وقد نُفذ الالتحام الجزيئي باستخدام منصة CB-Dock (http://clab.labshare.cn/cb-dock/php/blinddock.php). وقد أشارت طاقة ارتباط أقل من -5 kcal/mol إلى وجود ألفة ارتباط قوية27.
تحضير وتوثيق Ligustri Lucidi Fructus
يشير مصطلح Ligustri Lucidi Fructus (LLF) هنا إلى الثمار الناضجة المجففة لنبات Ligustrum lucidum W. T. Aiton من فصيلة (Oleaceae). وقد تم توثيق المادة النباتية وفقاً لدستور الأدوية الصيني، وأودعت عينة توثيقية تحمل الأرقام 20240506، 20240911، 20241103 في جامعة شانشي للطب الصيني التقليدي.
لتحضير المغلي، نُقع 200 g من شرائح LLF المؤهلة في 1,000 mL من الماء المقطر لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. غُلي الخليط بقوة ثم تُرِك يغلي بهدوء لمدة 60 دقيقة. جُمع الرشاحة، وأُعيد غلي المواد العشبية المتبقية مع 1,000 mL أخرى من الماء المقطر لمدة 60 دقيقة. جُمِعت الرشاحتان معاً، ثم رُشِحتا ووُضعتا في جهاز طرد مركزي، ورُكزتا تحت ضغط منخفض للحصول على تركيز نهائي للمخزون قدره 1 g من العقار الخام/mL (بحجم إجمالي 100 mL). حُفظ المغلي المُحضّر عند 4 °C للاستخدام قصير المدى أو عند −20 °C للحفظ طويل المدى. تُم تحديد جودة LLF ومغليه والتحقق منها بدقة وفقاً لمعايير دستور الأدوية الصيني لضمان موثوقية التجربة وقابلية تكرارها.
أُجري كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة للتحديد النوعي. وباختصار، تم طرد حجم مناسب من المغلي المُحضّر مركزياً، واستُخلص الراشح باستخدام الميثانول. وبعد الترشيح، وُضعت نقاط من محلول العينة ومحلول القياس المرجعي لمركب specnuezhenide على نفس لوح هلام السيليكا G. وبعد عملية الإظهار والتجفيف والفحص تحت الأشعة فوق البنفسجية، أظهرت بقعة محلول العينة لوناً وموقعاً متطابقين مع المركب المرجعي، مما أكد وجود المكون النشط بيولوجياً والمميز لـ LLF.
لأغراض مراقبة الجودة الكمية، تم إجراء الكشف باستخدام الكروماتوغرافيا السائلة عالية الأداء. أُجري التحليل باستخدام عمود C18 مع استخدام الميثانول والماء كطور متحرك. تم ضبط الطول الموجي للكشف عند 224 nm. كما تم تحديد محتوى specnuezhenide في المغلي بناءً على المنحنى القياسي. وأظهرت النتائج تركيباً كيميائياً مستقراً وموحداً للمغلي المُحضّر، مما يضمن اتساق جودة الدواء طوال فترة تجربة التدخل على الحيوانات.
التجارب على الحيوانات
تمت تربية اثني عشر فأراً ذكراً من سلالة db/db بدرجة SPF (بعمر 8-9 أسابيع) وستة فئران من سلالة db/m متطابقة في العمر في مرفق حيوانات SPF بجامعة شانشي للطب الصيني التقليدي. وقبل بدء التجارب، خضعت الحيوانات لفترة تأقلم لمدة 7 أيام تحت دورة إضاءة/ظلام مدتها 12 ساعة/12 ساعة، مع إتاحة الوصول إلى الغذاء والماء ad libitum. وقد تمت الموافقة على الدراسة من قبل لجنة الأخلاقيات بجامعة شانشي للطب الصيني التقليدي (رقم الموافقة 2022DW167). أما الحيوانات التي أظهرت فقداناً في وزن الجسم بنسبة >20%، أو حالة احتضار، أو عدم القدرة على الوصول إلى الغذاء أو الماء، فقد تم القتل الرحيم لها بطريقة إنسانية قبل نقطة النهاية المخطط لها للدراسة. وفي نهاية الدراسة، تم القتل الرحيم لجميع الفئران المتبقية عن طريق الحقن داخل الصفاق بـ pentobarbital sodium يليه خلع الرقبة وفقاً للبروتوكولات المؤسسية.
بعد فترة التأقلم، تم التأكد من إنشاء نموذج اعتلال الكلية السكري (DN) في فئران db/db من خلال قياس مستوى جلوكوز الدم في الوريد الذي وصل إلى ≥ 16 mmol/L ووجود بيلة ألبومينية دقيقة، وهو ما أشارت إليه نتيجة إيجابية لشريط اختبار الميكروألبومين في البول. وعقب نجاح إنشاء نموذج DN، تم تقسيم فئران db/db عشوائياً إلى مجموعتين (عدد = 6 لكل مجموعة): مجموعة نموذج DN (مجموعة DN) ومجموعة العلاج بـ LLF (مجموعة العلاج). بالإضافة إلى ذلك، تم استخدام فئران db/m (عدد = 6) كمجموعة ضابطة (مجموعة الضبط). تم اختيار الجرعة بناءً على دراسات ديناميكية دوائية سابقة لـ LLF في الجرذان المصابة بالسكري، وحُوِّلت إلى الجرعة المكافئة للبشر باستخدام تسوية مساحة سطح الجسم28. أُعطيت مجموعتا الضبط وDN ماءً مقطراً، بينما تلقت مجموعة العلاج 3.5 g/kg من LLF لمدة 8 أسابيع. وبعد 8 أسابيع من الإعطاء، تم القتل الرحيم لجميع الفئران لجمع المصل والبول وأنسجة الكلى لإجراء الاختبارات اللاحقة.
مؤشرات الدم والبول
تم تحليل مستويات جلوكوز المصل باستخدام محلل كيمياء حيوية الدم الأوتوماتيكي بالكامل. وقيس تركيز الميكروالبومين في البول وفقاً لتعليمات الطقم (الملف التكميلي 1).
الفحص الباثولوجي لأنسجة كلى الفئران
تمت معالجة أنسجة الكلى للفحص النسيجي المرضي. وبعد التثبيت في 4% paraformaldehyde، غُسلت الأنسجة، ثم جُففت، وطُمرت في البارافين، وقُطعت إلى شرائح. بعد ذلك، أُجري صبغ الهيماتوكسيلين والإيوسين (HE)، وفُحصت المقاطع المصبوغة تحت المجهر الضوئي لتقييم التغيرات الباثولوجية.
تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي بالنسخ العكسي (RT-qPCR)
استُخدم تقنية RT-qPCR لتحديد تعبير المؤشرات الحيوية المرشحة في أنسجة الكلى للفئران. تم استخلاص الحمض النووي الريبوزي (RNA) الكلي وفقاً لتعليمات الشركة المصنعة، وبعد ذلك تم تقييم تركيز وجودة RNA (الجدول 1). تم تخليق cDNA من RNA المستخلص باستخدام طقم تخليق cDNA. أجري التضخيم باستخدام أزواج البادئات المدرجة في الجدول 1، مع استخدام GAPDH كجين مرجعي. حُسبت مستويات التعبير النسبي باستخدام طريقة 2−ΔΔCt13,26.
التحليل الإحصائي
أجريت جميع التحاليل الإحصائية باستخدام برنامج R (الإصدار 4.2.2) إلى جانب البرامج المطلوبة للإجراءات التجريبية المقابلة. وما لم يُذكر خلاف ذلك، كانت جميع الاختبارات الإحصائية ثنائية الجانب، واعتُبرت الفروق ذات دلالة إحصائية عند P < 0.05. كما أُجري تحليل التعبير التفاضلي للترانسكريبتوم باستخدام حزمة limma. وعُرِّفت الجينات التي كانت قيمة P المعدلة لها < 0.05 وكان التغير اللوغاريتمي المطلق (log2fold change) أكبر من 0.5 على أنها جينات ذات تعبير تفاضلي.
لمقارنة تعبير الجينات المرشحة بين عينات مستقلة من مرض اعتلال الشبكية السكري (DN) والعينات الضابطة، استُخدمت اختبارات ويلكوكسون لمجموع الرتب غير المعلمية حيثما أشير إلى ذلك في سير العمل التحليلي الأصلي. كما تم تقييم الارتباطات بين المؤشرات الحيوية المرشحة وكسور الخلايا المناعية باستخدام ارتباط سبيرمان للرتب.
تُعرض البيانات التجريبية في صورة المتوسط الحسابي ± الانحراف المعياري (SD). أُجريت المقارنات بين المجموعات الحيوانية الثلاث المستقلة باستخدام تحليل التباين أحادي الاتجاه (one-way analysis of variance) عند استيفاء افتراضات التحليل المعلمي. وبالنسبة للمقارنات البعدية (post hoc comparisons)، استُخدم اختبار أقل فرق معنوي (least significant difference test) عندما كانت التباينات متجانسة، بينما استُخدم اختبار Dunnett's T3 عندما كانت التباينات غير متساوية. حُللت قياسات الديناميكا الدوائية عند الخط الأساسي وفي الأسبوع الثامن وعُرِضت بشكل منفصل؛ ولم يتم استخلاص أي استدلال بشأن التفاعل بين المجموعة والزمن. تتوفر نصوص R البرمجية والبيانات المصدرية المستخدمة في تحليلات المعلوماتية الحيوية والتعلم الآلي في الملف التكميلي 1.