مقالة منهجية

الوخز بالإبر الكهربائية بمساعدة الإيزوفلوران في نموذج فئران لمرض أوليغواستينوزوسپرميا

DOI:

10.3791/71878

⸱

يونيو 16, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Ningxia Medical University School of Traditional Chinese Medicine, 2Medical College of Acu-Moxi and Rehabilitation, Guangzhou University of Chinese Medicine, 3Key Laboratory of Dryness Syndrome in Chinese Medicine, Ministry of Education, Ningxia Regional Key Laboratory of Integrated Traditional Chinese and Western Medicine for Prevention and Treatment of Regional High Incidence Disease, Ningxia Medical University

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوضح هذا البروتوكول تأسيس نموذج قليلة الدماغ الزوسمبيرميا المستحثة بالأدينين في الفئران وتوصيل العلاج الكهربائي بالإبر في CV3 وCV4 وST36 وSP6 تحت تخدير إيزوفلوران. تم التحقق من النتائج باستخدام تحليل الحيوانات المنوية بمساعدة الحاسوب للعدد والحركة، إلى جانب تحليل نسيج الخصية مع صبغات الهيماتوكسيلين والإيوزين.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

القلة العظمى الزوزوسپرميا هي واحدة من أكثر أشكال خلل التكاثر الذكوري شيوعا. في دراسات القوارض، يشكل إجراء العلاج الكهربائي بالإبر (EA) بشكل متسق عبر جلسات متكررة تحديا تقنيا، خاصة عند الجمع بين نقاط الوخز في منتصف البطن ونقطة الوخز الخلفية، حيث يكون الاتصال الثابت مع الأقطاب أمرا بالغ الأهمية. تم اختيار تشونغجي (CV3)، جوانيوان (CV4)، زوسانلي (ST36)، وسانينجياو (SP6) لأن هذه النقاط تستخدم كثيرا في بروتوكولات الوخز بالإبر لعلاج العقم وتشوهات السائل المنوي، كما أن تكوين خط منتصف البطن مع الطرف الخلفي يناسب اقتران الأقطاب الكهربائية الموحد. يصف هذا التقرير بروتوكولا عمليا لإنشاء نموذج فئران مستحث بالأدينين لحالة أوليغواستينوزوسپرميا ولإعطاء EA بمساعدة الإيزوفلوران مع تحفيز مزدوج ل CV3–CV4 وST36–SP6. تلقى ذكور فئران سبراج-داولي الأدينين عن طريق الحصان اليومي لمدة 28 يوما لتحفيز ضعف تناسلي. لاحقا، تم إعطاء EA يوميا لمدة 28 يوما تحت التخدير الاستنشاقي، باستخدام 3٪ إيزوفلوران للتحفيز و1.5٪ لصيانة القناع، لتمكين وضع الإبر بشكل مستقر وتركيب الأقطاب الكهربائية (CV3–CV4 وST36–SP6) مع معايير تحفيز محددة (2 هرتز، 1.5 مللي أمبير، 30 دقيقة). تم تقييم تأثيرات العلاج من خلال تحليل السائل المنوي بمساعدة الحاسوب لعدد الحيوانات المنوية وحركتها، مع دعم بتحليل الأنسجة للهيماتوكسيلين والإيوزين (HE). تشير النتائج التمثيلية إلى أن التعرض للأدينين قلل من عدد الحيوانات المنوية وحركتها وعرقل بنية الأنابيب المنية، بينما ارتبط EA بالتعافي الجزئي في كل من معايير السائل المنوي وشكل الخصية. يوفر هذا البروتوكول مرجعا جاهزا للدراسات التي تتطلب توصيل EA متسق والتحقق من السائل المنوي/النسيجي في نموذج فئران لحالة قليلة القيءات الجسدية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تساهم العوامل الذكورية بشكل كبير في العقم، حيث تمثل حوالي نصف جميع الأزواج العقيمين، مع وجود شذوذات في عدد الحيوانات المنوية وحركتها من بين أكثر النتائج السريرية شيوعا 1,2. أوليغوازثينوزوسپرميا، التي تتميز بانخفاض تركيز الحيوانات المنوية وضعف الحركة، هي واحدة من أكثر أشكال خلل التكاثر الذكوري شيوعا 3,4. على الرغم من توفر تقنيات الإنجاب المساعدة والعلاجات الطبية التجريبية، إلا أن الاستراتيجيات الفعالة لتحسين جودة السائل المنوي لا تزال محدودة، مما يبرز الحاجة لمزيد من التحقيقات قبل السريرية 5,6,7. تحفز هذه الاحتياجات السريرية والترجمية تطوير سير عمل تجريبي قابل للتكرار لدراسة ضعف الإنجاب الذكوري في ظروف مضبوطة.

تم دراسة تدخلات الوخز بالإبر للكشف عن تشوهات في السائل المنوي والعقم الذكوري في كل من السياقات السريرية والتجريبية8. على الرغم من أن الدراسات السريرية تشير إلى فوائد محتملة لبعض معايير السائل المنوي، إلا أن تصاميمها، وبروتوكولات التدخل، ومقاييس النتائجتختلف بشكل كبير. يعد الوخز بالإبر الكهربائية (EA) مناسبا بشكل خاص للأبحاث المخبرية لأنه يوفر معايير تحفيز محكمة وتنظيما أكثر انتظاما من الوخز بالإبر اليدوي، مما يسهل تقييم التغيرات المتعلقة بالعلاج في النتائج الإنجابية القابلة للقياس 10,11,12. تجعل هذه الميزة الإجرائية EA مناسبة جدا لسير العمل المنظم قبل السريري في أبحاث التكاثر الذكورية.

نماذج الحيوانات مركزية في هذا التقييم، لكن اختيار النماذج لا يزال قضية منهجية رئيسية في أبحاث أوليغو واستينوزوسپرميا. أشارت مراجعة منهجية حديثة إلى أن طرق النمذجة المستحثة بالبوسولفان مثيرة للجدل وتظهر تباينا كبيرا في مؤشرات التقييم، مما يبرز الحاجة إلى إجراءات أوضح وقراءات أكثر اتساقا13. توفر النماذج القائمة على الأدينين نهجا تجريبيا عمليا لأن جافاج الأدينين يمكن أن يسبب ضعفا تناسليا في الفئران، بما في ذلك تقليل نقاط النهاية المرتبطة بالحيوانات المنوية والضرر النسيجي في نسيج الخصية14,15. في عملنا السابق، تم علاج نموذج فئران قليلة الوقة-الهواء النفسية الناتجة عن الأدينين باستخدام EA في مجموعة نقاط الدماغ والكلى Shu-Mu (Epangsanxian، BL23، GB25، وKI3)، إلى جانب حالات عدم النقاط الإبرية وسيطرة إيجابية على الأدوية، مع مقاييس نتائج موسعة شملت معاملات الأعضاء ومستويات هرمونات المصل التي تم قياسها بواسطة ELISA16. استنادا إلى هذا الأساس التجريبي والاعتراف بتنوع اختيار نقاط الوخز وتصميم التحكم، ومعايير التحفيز، ومقاييس النتائج عبر دراسات EA الحالية، تم تصميم البروتوكول الحالي لتحسين وتوسيع سير العمل المنهجي لتقديم EA مستقر.

وبناء عليه، يركز البروتوكول الحالي على التوصيل، مع معالجة متغيرين عمليين حاسمين لجلسات EA المتكررة لدى القوارض. أولا، لمنع إزاحة الإبر والتلامس المتقطع للأقطاب الناتجة عن حركة الحيوانات وسحب الأسلاك الرصاصية، نصف إجراء يحافظ عليه الإيزوفلوران يثبت التموضع أثناء التحفيز ويضمن تلامسا موثوقا للأقطاب الكهربائية عبر الجلسات؛ وهذا مهم بشكل خاص عند الجمع بين نقاط منتصف البطن ونقاط الطرف الخلفي. ثانيا، استنادا إلى مراجعات سابقة وتحليلات نقاط الوصفات 9،17، التي حددت CV4 وSP6 وST36 وCV3 كنقاط تناسلية شائعة في بروتوكولات العقم واضطرابات السائل المنوي، اخترنا CV3 وCV4 وST36 وSP6 وطبقنا التحفيز المزدوج على CV3-CV4 وST36-SP6. هذا التكوين، الذي يجمع بين نقطتي منتصف البطن والطرف الخلفي، يوحد اتصالات الأقطاب، ويقلل من التغيرات الناتجة عن عدم استقرار التوصيل بالرصاص، ويدعم توصيل EA القابل للتكرار عبر جلسات العلاج المتكررة. للحفاظ على نطاق موجه نحو البروتوكول وتجنب تكرار وحدات الغدد الصماء أو الميكانيكية أو المراقبة الإيجابية التي تم الإبلاغ عنها سابقا، يقتصر التحقق على النتائج على مجموعة قراءات أولية للسائل المنوي والخصيتي. تتضمن هذه المجموعة تحليل الحيوانات المنوية بمساعدة الحاسوب وتلوين HE في الخصيتين، وهي كافية لتأكيد نجاح تحفيز النمط الظاهري والتغيرات المرتبطة بالعلاج ضمن هذا السير العملي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

جميع إجراءات الحيوانات كانت تتوافق مع الإرشادات المؤسسية لرعاية واستخدام حيوانات المختبر وتمت الموافقة عليها من قبل لجنة الأخلاقيات في جامعة نينغشيا الطبية (رقم الموافقة. IACUC-NYLAC-2021-130). تم الحصول على ذكور فئران سبراج-داولي، بعمر 8 أسابيع ووزنهم بين 180 و220 جرام، من مركز الحيوانات التجريبية في جامعة نينغشيا الطبية (رقم الرخصة) SYXK (نينغ) 2020-0001). تم إيواء الحيوانات في ظروف مختبرية قياسية عند درجات حرارة تتراوح بين 22–24 درجة مئوية ورطوبة نسبية بين 52٪–56٪ مع دورة ضوء 12 ساعة و12 ساعة مظلمة، وكان لديها وصول حر إلى الطعام والماء.

1. تحضير الحيوانات، توزيع المجموعات، وإنشاء نموذج ناتج عن الأدينين

  1. اعتاد الفئران لمدة 7 أيام قبل التجربة وراقب حالتها العامة يوميا.
  2. بعد التكيف، قم بتخصيص أرقام تعريف فريدة لتسعة فئران ووزعها عشوائيا بنسبة 1:1:1 إلى ثلاث مجموعات باستخدام تسلسل عشوائي مولد بالحاسوب: مجموعة ضابطة (n = 3)، مجموعة نموذج (n = 3)، ومجموعة EA (n = 3). استخدم كل فأر كوحدة تجريبية، ويشمل جميع الحيوانات والعينات في التحليل النهائي ما لم يتم استيفاء معايير استبعاد محددة مسبقا.
  3. حافظ على الباحثين الذين يجرون تحليل السائل المنوي بمساعدة الحاسوب والتقييم النسيجي دون أن يكونوا في التوزيع الجماعي.
    ملاحظة: لا يمكن للباحثين الذين يقدمون العلاج العاطفي أن يكونوا أعمى لأن التدخل يتضمن إجراءات مرئية خاصة بمجموعة.
  4. حضر معلقا بسعة 20 ملغ/مل من الأدينين في محلول ملحي عادي يحتوي على 0.5٪ (بدون ص) صمغ عربي كعامل تعليق، وامزج جيدا قبل وأثناء التعقيد لمنع الترسيب الصغير.
  5. أعط محلول ملحي طبيعي للمجموعة الضابطة وتعليق الأدينين لمجموعة النموذج ومجموعة EA عبر جافاج بمقدار 10 مل/كجم، ما يعادل 1 مل/100 جرام وزن الجسم، مرة يوميا لمدة 28 يوما متتاليا. استخدم جرعة أدينين 200 ملغ/كجم/يوم.
  6. سجل وزن الجسم والحالة العامة طوال فترة عرض الأزياء.
    ملاحظة: يعطى الأدينين كتعليق ويميل إلى الترسيب أثناء التعامل. حافظ على التحريك المستمر أثناء التمهيد لتقليل الهطول، الذي قد يسبب عدم انتظام الجرعة وانسداد إبرة الغافج. إذا حدث انسداد، أعد تعليق المحلول جيدا واستبدل إبرة الجافاج قبل الاستمرار.

2. التخدير الإيزوفلوراني لتوصيل الوخز بالإبر الكهربائية (الشكل 1)

  1. جهز نظام تخدير إيزوفلوران يحتوي على غرفة تحفيز، وقناع أنف، ووسادة تدفئة.
  2. تحفز التخدير باستخدام 3٪ إيزوفلوران في غرفة الحث حتى ينخفض النشاط التلقائي بشكل ملحوظ.
  3. انقل الجرذ إلى وسادة التدفئة في وضعية الاستلقاء، وحافظ على التخدير بنسبة 1.5٪ من الأيزوفلوران عبر قناع أنف طوال فترة EA.
  4. تأكيد التخدير الكافي من خلال تقليل الحركة التلقائية وفقدان ردة فعل الرمش مع الحفاظ على انتظام التنفس.

3. التحفيز، التوصيل، الدقة ومراقبة الجودة

  1. استخدم وسادة تدفئة للحفاظ على درجة حرارة الجسم طوال الجلسة وتقليل التغيرات الفسيولوجية الناتجة عن انخفاض حرارة الجسم.
  2. تطبيق إعدادات تخدير متسقة على جميع الحيوانات والجلسات، باستخدام 3٪ إيزوفلوران للتحفيز و1.5٪ إيزوفلوران للصيانة. حافظ على عمق التخدير عند الحد الأدنى المطلوب لمنع المعاناة مع الحفاظ على انتظام التنفس.
  3. أدخل إبر الوخز بالإبر المعقمة (0.25 مم × 13 مم) عموديا عند نقاط الوخز المختارة. أدخل الإبر إلى أعماق تقارب 2 مم عند CV3 وCV4، 7 مم عند ST36، و5 مم عند SP6.
  4. بعد إدخال الإبرة وتوصيل الأقطاب، تأكد بصريا أن كل إبرة تبقى في موقعها الثابت، دون أي ارتخاء ملحوظ بسبب التنفس أو حركة الأطراف. إذا حدث إزاحة، أعد إدخال الإبرة عموديا إلى العمق الأصلي وتحقق من استقرار تلامس الأقطاب قبل استئناف التحفيز.
  5. قم بتثبيت أسلاك القطب بالقرب من الطرف القريب من مقبض الإبرة، ثم قم بتوجيهها وتثبيتها لتقليل الجر، حيث أن وزن الرصاص والسحب هما من الأسباب الشائعة للانفصال.
  6. تأكد من التحفيز الفعال من خلال ملاحظة ارتعاش عضلي موضعي خفيف عند نقطة الوخز دون حركة جسدية كبيرة. إذا لم يكن هناك ارتعاش، أعد التحقق وأكد من تلامس القطب ومكان الإبرة.
  7. قم بإجراء فحص موحد واحد في منتصف الجلسة عند 15 دقيقة. إذا لزم الأمر، أعد ضبط الإبر وأكد الارتعاش الموضعي الخفيف قبل البدء في تقليل التغير في توصيل التحفيز عبر الحيوانات.
    ملاحظة: عند توصيل جهاز EA، قم بتثبيت الأسلاك على الطرف القريب من مقبض الإبرة لتقليل الجر الناتج عن وزن الكابل. إذا لزم الأمر، ثبت الرصاص و/أو الإبرة بشريط لاصق لمنع الانفصال أثناء الجلسة.

4. العلاج بالإبر الكهربائية (الشكل 2)

  1. ابدأ ب EA في اليوم التالي لفترة جافيج الأدينين التي تستمر 28 يوما، وقم بإعطائه مرة واحدة يوميا لمدة 28 يوما متتالية.
  2. تحت تخدير إيزوفلوران، كشف أسفل البطن والأطراف الخلفية، وحدد موقع تشونغجي (CV3)، جوانيوان (CV4)، زوسانلي (ST36)، وسانينجياو (SP6) باستخدام علامات تشريحية سطحية.
  3. أدخل إبر الوخز بالإبر المعقمة (0.25 مم × 13 مم) عموديا حتى أعماق 2 مم عند CV3 وCV4، 7 مم عند ST36، و5 مم عند SP6.
  4. قم بتوصيل زوج من الأقطاب الكهربائية إلى CV3 و CV4، ثم وصل الزوج الآخر إلى ST36 و SP6.
  5. قدم التحفيز الكهربائي عند 2 هرتز و1.5 مللي أمبير لمدة 30 دقيقة. استخدم هذه المعايير لمطابقة تلك المستخدمة سابقا في أوليغو واستينوزوسپرميا16 الناتجة عن الأدينين.
  6. طبق فحوصات مراقبة الجودة الموضحة في القسم 3، بما في ذلك فحص منتصف الجلسة بعد 15 دقيقة.
    ملاحظة: حدد نقاط الوخز للفئران بالإشارة إلى كتاب يونغ تانغ "علم الوخز بالإبر والتنقل التجريبي18"، الملحق الثاني ("نقاط الوخز بالإبر تستخدم عادة في الحيوانات التجريبية"), مع معالم تشريحية مقارنة. نظرا لأن نقاط الجرذان تمثل مناطق تشريحية منفصلة بدلا من نقاط هندسية ثابتة، استخدم موضع الجسم المتسق، ونقاط مرجعية تشريحية ثابتة، وقياسات سطحية تعتمد على المليمتر عبر الحيوانات والجلسات. حدد موقع تشونغجي (CV3) على الخط الأوسط البطني تقريبا 33 مم من الذيل إلى مركز السرة. حدد موقع غوانيوان (CV4) على الخط الأوسط البطني تقريبا 25 مم من الذيل إلى مركز السرة، بالقرب من الشرايين السطحية تحت الجلد في جدار البطن. حدد موقع زوسانلي (ST36) في الجانب الخلفي الجانبي للركبة، على بعد حوالي 3 مم من الرأس الشظوي. حدد موقع سانيينجياو (SP6) على الجانب الإنسي من الطرف الخلفي، على بعد حوالي 10 مم قريب من طرف المطرق الإنسي. طبق نفس مراجع التوطين، ووضعية الجسم، وزاوية الإدخال، وعمق الإدخال بشكل متسق عبر جميع الحيوانات وجلسات العلاج.

5. جمع عينات

  1. صوم الفئران لمدة 24 ساعة بعد جلسة EA الأخيرة.
  2. تحفز تخديرا عميقا عن طريق حقن 2٪ بنتوباربيتال صوديوم داخل الصفاق بجرعة 2 مل/كغ قبل جمع الأنسجة. تأكيد التخدير العميق من خلال غياب رد فعل انسحاب الدواسة والحركة التلقائية.
  3. قتل الفأر عن طريق قطع الرأس تحت التخدير العميق، وفقا لبروتوكولات معتمدة من المؤسسات.
  4. كشف الأعضاء التناسلية فورا بشكل لا يسيبتي. عزل أحد الخصية الذيلية لتحليل الحيوانات المنوية واستئصال إحدى الخصية للفحص النسيجي.
  5. ثبت الخصية في بارافورمالديهيد بنسبة 4٪ لمدة لا تقل عن 24 ساعة قبل المعالجة النسيجة.

6. تحليل الحيوانات المنوية

  1. قم بإزالة الدهون المحيطة من البربخ الذيلي، ووضع النسيج فورا في 2 مل من محلول ملحي طبيعي دافئ مسبقا إلى 37 درجة مئوية.
  2. حضن النسيج في حمام ماء بدرجة حرارة 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق، ثم افرمه بمقص العيون، ثم فلتر التعليق عبر شاشة بحجم 200 شبكة، وامزج الفلترة بلطف.
  3. قم بتحميل كمية 10 ميكرولتر من تعليق الحيوانات المنوية في غرفة عد مسخنة مسبقا، وتحليل عدد الحيوانات المنوية وحركتها باستخدام نظام تحليل السائل المنوي بمساعدة الحاسوب (CASA).
  4. استخدم نفس نوع الحجرة، وظروف التسخين، وإعدادات الاستحواذ لجميع العينات ضمن التجربة المحددة.

7. الفحص النسيجي لأنسجة الخصية

  1. ثبت نسيج الخصية بمادة بارافورمالديهايد بنسبة 4٪ لمدة لا تقل عن 24 ساعة. قم بقص المنطقة المستهدفة وضعها في أشرطة كاسيت.
  2. جفف العينات عبر سلسلة إيثانول متدرجة، ثم تنظيفها في الزيلين، ثم تسربها بالبارافين، ثم غرسها، وقطعها على عمق 4 ميكرومتر.
  3. قم بتعويم الأقسام على حمام ماء بدرجة حرارة 40 درجة مئوية، ثم ثبتها على منزلقات، وجففها في فرن بدرجة حرارة 60 درجة مئوية.
  4. لصبغ الهيماتوكسيلين والإيوزين، قم بإزالة الشمع من الأجزاء في الزيلين، وإعادة ترطيبها عبر الإيثانول المتدرج، ثم صبغها بالهيماتوكسيلين لمدة 5–10 دقائق والإيوزين لمدة 1–5 دقائق، ثم جففها، ونظفها، وركبها.
  5. افحص تنظيم الأنابيب المنوية وترتيب الخلايا المسببة للحيوانات المنوية تحت إعدادات تكبير متسقة عبر جميع الفئات.

8. تقييم تأسيس النموذج والتغيرات المرتبطة بالعلاج

  1. تأكيد تأسيس النموذج من خلال تقليل عدد الحيوانات المنوية وحركتها، بالإضافة إلى بنية الأنابيب المنوية غير المنظمة مقارنة بالمجموعة الضابطة.
  2. تأكيد التغيرات المرتبطة بالعلاج نتيجة زيادة عدد الحيوانات المنوية وحركتها، إلى جانب الاستعادة الجزئية لشكل الأنابيب المنية، في مجموعة EA مقارنة بمجموعة النموذج.
  3. حدد مسبقا عينات متأثرة تقنيا، مثل تلك التي تحتوي على معالجة حيوانات منوية متأخرة، أو فشل تحميل الحجرة، أو مقاطع منخفضة الجودة غير مرتبطة بالنمذجة، كمعايير استبعاد. وثق أي استثناءات أثناء التحليل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تحليل الحيوانات المنوية (الشكل 3)
تم تحليل تعليق الحيوانات المنوية البربخية باستخدام نظام تحليل السائل المنوي بمساعدة الحاسوب لقياس عدد الحيوانات المنوية وحركتها. في هذه المجموعة الممثلة من البيانات، أدى تناول الأدينين إلى تقليل كبير من كلتا المعاملتين مقارنة بمجموعة الضابطة، مما أكد نجاح إنشاء النموذج. أدى تدخل EA لاحقا إلى زيادة عدد الحيوانات المنوية وحركتها مقارنة بمجموعة النموذج (الشكل 3). أشارت ANOVA أحادية الاتجاه إلى تأثيرات جماعية ذات دلالة كبيرة على عدد الحيوانات...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نظرا للأسباب المتعددة العوامل لقلة الصبغة الحيوانية المفرطة وفعالية العلاجات الدوائية المتاحة محدودة، حظي الوخز بالإبر واضطراب الدماغ باهتمام كتدخلات غير دوائية قابلة للتكرار19. تشير الأدبيات السريرية وما قبل السريرية الحالية إلى عدة آليات معقولة قد تؤثر من خلالها الوخز بالإبر أو الاضطراب على وظيفة التكاثر الذكوري، بما في ذلك تنظيم تنظيم الغدد الصماء العصبية، وتحسين الدورة الدموية الدقيقة للأعضاء التناسلية، وتخفيف الإجهاد التأكسدي والاستجابات الالتهابية التي تؤثر ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن المؤلفون عدم وجود مصالح مالية أو غير مالية متنافسة.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وقد دعم هذا العمل صندوق العلوم الإقليمي للمؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين لعام 2024 (82460972) وصندوق العلوم الإقليمية للمؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين لعام 2022 (82260967)؛ برنامج البحث والتطوير الرئيسي لعام 2022 لمنطقة نينغشيا هوي ذاتية الحكم (2022BEG02040)؛ مشروع بناء تخصص من الدرجة الأولى في كلية الطب الصيني التقليدي، جامعة نينغشيا الطبية (ZY0019110305)؛ برنامج البحث والتطوير الرئيسي لمقاطعة يانشي لعام 2023 (2023YCYDCT003)؛ وبرنامج العلوم والتكنولوجيا الخاص بالنفع على الشعب في منطقة نينغشيا هوي ذاتية الحكم (2024CMG03054).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
AdenineBeijing Solarbio Science & Technology Co.Ltd.A8330
CASA computer-assisted semen analysis systemNanning Songjing Tianlun Biotechnology Co.,Ltd.VICOS-SPERM
CentrifugeSartoriusA-14C
Differentiation fluidShanghai Biyuntian Biotechnology Co.,LtdC0163M
Disposable sterile acupuncture needlesHanyi brand0.25 mm ´ 13 mm
Drying machineLeicaHI1220
Electrical stimulatorChangzhou Yingdi Electronic Medical Device Co., LtdKWD-808I
Electronic balanceHangzhou Youheng Weighing Equipment Co.,LtdHLD-6002
Eosin Y Stain SolutionLanke BiotechBS248
Hematoxylin staining solutionZhuhai Beso Biotechnology Co. LTDBA-4041
IsofluraneRWD Life Science Co., Ltd.R510-22-10
MicrotomeLeicaRM2255
Neutral balsamBeijing Zhongshan Jinqiao Biotechnology Co.,LtdZli-9555
Paraffin embedding machineLeicaHistoCore Arcadia H
SD ratsAnimal Center of Ningxia Medical University8-week-old,Male,180-220 g
Slide scannerLeicaAperio LV1
Small Animal Anesthesia MachineRWD Life Science Co., Ltd.R500
Vortex oscillatorHaimen Qilin Bell Instrument Manufacturing Co.,LtdQL-902
Warming padDongguan Hongda Electronics Co., Ltd.45W-80X28CM

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Björndahl, L., et al. The sixth edition of the WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen: ensuring quality and standardization in basic examination of human ejaculates. Fertil Steril. 117 (2), 246-251 (2022).
  2. Agarwal, A., et al. Male infertility. Lancet. 397 (10271), 319-333 (2021).
  3. Abu-Halima, M., et al. Sperm motility annotated genes: are they associated with impaired fecundity? Cells. 12 (9), 21(2023).
  4. Li, S. L., et al. Mechanisms of traditional Chinese medicine in regulating Nrf2-related signaling pathways for the treatment of oligoasthenozoospermia: a review. J Ethnopharmacol. 360, 21(2026).
  5. Pathak, U. I., Gabrielsen, J. S., Lipshultz, L. Cutting-edge evaluation of male infertility. Urol Clin North Am. 47 (2), 129(2020).
  6. Kimmins, S., et al. Frequency, morbidity and equity - the case for increased research on male fertility. Nat Rev Urol. 21 (2), 102-124 (2024).
  7. Assidi, M. Infertility in men: advances towards a comprehensive and integrative strategy for precision theranostics. Cells. 11 (10), 29(2022).
  8. Feng, J. X., et al. The efficacy and mechanism of acupuncture in the treatment of male infertility: a literature review. Front Endocrinol. 13, 14(2022).
  9. You, F., Ruan, L. G., Zeng, L., Zhang, Y. Efficacy and safety of acupuncture for the treatment of oligoasthenozoospermia: a systematic review. Andrologia. 52 (1), 9(2020).
  10. Wei, J. Q., et al. Bibliometric and visualized analysis of electroacupuncture in the past 10 years. Complement Ther Med. 69, 10(2022).
  11. Yu, Y., et al. Effects and mechanism of action of transcutaneous electrical acupuncture point stimulation in patients with abnormal semen parameters. Acupunct Med. 37 (1), 25-32 (2019).
  12. Jia, W., Wang, C. A., Yin, Y. Acupuncture for oligospermia and asthenozoospermia: a systematic review and meta-analysis. Medicine. 100 (48), 8(2021).
  13. Pu, R. Y., et al. Modeling methods for busulfan-induced oligospermia and asthenozoospermia in mice: a systematic review and meta-analysis. J Assist Reprod Genet. 40 (1), 19-32 (2023).
  14. Yu, Z. Z., Chen, J., Shou, P. Q., Feng, L. Effects of micronutrients on the reproduction of infertility rat model induced by adenine. Int J Clin Exp Med. 7 (9), 2754-2762 (2014).
  15. Zhu, C. Z., et al. Short-term oral gavage administration of adenine induces a model of fibrotic kidney disease in rats. J Pharmacol Toxicol Methods. 94, 34-43 (2018).
  16. Li, K. Y., et al. Mechanism of Shu-Mu brain-kidney acupoint in treating oligoasthenospermia in rats via the hypothalamic-pituitary-testicular axis. J Vis Exp. (219), e67912(2025).
  17. Liu, J., et al. Exploration of acupoint compatibility patterns in acupuncture treatment for infertility based on data mining. Int J Womens Health. 18, 15(2026).
  18. Tang, Y. Experimental Acupuncture and Moxibustion Science. , Shanghai Science and Technology Press. Shanghai. (2021).
  19. Wang, Z., et al. Efficacy and safety of nonpharmacological strategies for the treatment of oligoasthenozoospermia: a systematic review and Bayesian network meta-analysis. Eur J Med Res. 28 (1), 16(2023).
  20. He, Y., et al. Acupuncture treatment of male infertility: a systematic review. Zhonghua Nan Ke Xue. 21 (7), 637-645 (2015).
  21. Napadow, V., et al. Effects of electroacupuncture versus manual acupuncture on the human brain as measured by fMRI. Hum Brain Mapp. 24 (3), 193-205 (2005).
  22. Grimm, H., et al. Advancing the 3Rs: innovation, implementation, ethics and society. Front Vet Sci. 10, 13(2023).
  23. Rinwa, P., Eriksson, M., Cotgreave, I., Backberg, M. 3R-refinement principles: elevating rodent well-being and research quality. Lab Anim Res. 40 (1), 11(2024).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Oligoasthenozoospermia ModelElectroacupuncture ProtocolIsoflurane AnesthesiaRat Reproductive DysfunctionAdenine Induced ModelSperm MotilitySperm CountAcupuncture AcupointsSemen AnalysisTesticular Histology

مقالات ذات صلة