$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
أجريت الدراسة وفقا لإرشادات علم الأدوية الأساسية والسريرية والسموم للدراسات التجريبية والسريرية25. تمت الموافقة على جميع بروتوكولات التجارب الحيوانية من قبل لجنة أخلاقيات الحيوان في المستشفى الثاني التابع لكلية الطب بجامعة تشجيانغ (الموافقة رقم 20230102)، وأجريت جميع التجارب وفقا لإرشادات لجنة أخلاقيات الحيوان. أجريت الدراسة وفقا لإرشادات ARRIVE.
فحص المكونات والأهداف الرئيسية عبر علم الأدوية الشبكي
المكونات الفعالة في Fritillaria cirrhosa D. Don، Lonicera japonica Thunb.، Glehnia littoralis F. Schmidt ex Miq.، و Adenophora stricta Miq. تم استرجاعها من قاعدة بيانات أنظمة الأدوية التقليدية للطب الصيني (TCMSP؛ تم الوصول إليها في 12 مارس 2024). تم فحص المركبات المرشحة وفقا لمعايير ADME التالية: التوافر الحيوي الفموي (OB) ≥ 30٪، والشبه الدوائي (DL) ≥ 0.18، ونفاذية Caco-2 ≥ −0.425. تم الاحتفاظ بالمركبات التي تستوفي المعايير الثلاثة كلها كمكونات فعالة مرشحة للتحليلات اللاحقة.
تم الحصول على الهيكل القياسي لنظام إدخال خط إدخال الجزيئات المبسط (SMILES) ل β-سيتوستيرول من PubChem (تم الوصول إليه في 18 مارس 2024) وتم استيراده إلى SwissTargetPrediction (تم الوصول إليه في 21 مارس 2024) للتنبؤ بالأهداف. تم اختيار الإنسان العاقل كنوع مستهدف. تم التنبؤ بالأهداف المحتملة بناء على التشابه الهيكلي ثنائي الأبعاد وثلاثي الأبعاد بين β-سيتوستيرول والروابط المعروفة في قاعدة البيانات. تم الاحتفاظ بالأهداف المتوقعة باحتمالية أكبر من 0، وتمت إزالة الإدخالات المكررة.
تم استرجاع الجينات المرتبطة بمرض الانسداد الرئوي المزمن من قاعدة بيانات الأهداف العلاجية (TTD؛ تم الوصول إليها في 25 مارس 2024) وقاعدة بيانات السموم المقارنة (CTD؛ تم الوصول إليها في 28 مارس 2024) باستخدام الكلمة المفتاحية "مرض الانسداد الرئوي المزمن". بعد إزالة الجينات المكررة، تم تقاطع الجينات المرتبطة بمرض الانسداد الرئوي المزمن مع الأهداف المتوقعة ل β-سيتوستيرول لتحديد الأهداف المرشحة التي قد تكون متورطة في التأثيرات العلاجية ل β-سيتوستيرول ضد الانسداد الرئوي المزمن.
الالتحام الجزيئي بين β-سيتوستيرول وGR
تم استرجاع البنية ثلاثية الأبعاد ل β-سيتوستيرول بصيغة SDF من قاعدة بيانات PubChem (تم الوصول إليها في 2 يونيو 2026)، بينما تم الحصول على البنية البلورية لمستقبل الجلوكوكورتيكويد (GR) من بنك بيانات البروتينات التابع للمختبر التعاوني للبحوث المعلوماتية الحيوية الهيكلية (RCSB PDB؛ تم الوصول إليه في 3 يونيو 2026). بعد التحضير القياسي لهياكل الليغاند والمستقبلات، تم إجراء الالتحام الجزيئي باستخدام منصة CB-Dock2 الإلكترونية (تم الوصول إليها في 3 يونيو 2026). تم رفع ملفات الليغاند والمستقبلات المحضرة إلى المنصة، وأجريت حسابات الالتحام باستخدام المعلمات الافتراضية.
تحليل الإثراء الوظيفي لأنطولوجيا الجينات (GO) وموسوعة كيوتو للجينات والجينومات (KEGG)
تم تعريض جميع الجينات المستهدفة المتوقعة ل β-سيتوستيرول لتحليل إثراء وظيفي GO وتحليل إثراء مسار KEGG. تم فرز وتخزين نتائج الإثراء، بما في ذلك العمليات البيولوجية المثرية بشكل كبير، والمكونات الخلوية، والوظائف الجزيئية، ومسارات الإشارة، في الملف التكميلي 1 لتحليلها اللاحق في المعلوماتية الحيوية.
نمذجة الحيوانات وتجميعها
تم تحديد حجم العينة بستة حيوانات لكل مجموعة بناء على دراسة سابقة أجرت تحليلا مسبقا للطاقة باستخدام برنامج G*Power (α = 0.05، القدرة = 0.80) وأظهرت أن n = 6 كان كافيا لاكتشاف الفروق البيولوجية ذات الصلة تحت ظروف تجريبية مماثلة26. تم توزيع الفئران الذكور C57BL/6 التي تتراوح أعمارها بين 6-8 أسابيع (20 ± 2 ج) عشوائيا إلى خمس مجموعات: مجموعة الضابطة، مجموعة نموذج الانسداد الرئوي المزمن (COPD)، مجموعة COPD + ديكساميثازون (DEX)، مجموعة COPD + β-سيتوستيرول، ومجموعة COPD + DEX + β-سيتوستيرول. تم وضع الفئران في ظروف مختبرية قياسية (25 درجة مئوية، دورة ضوء/ظلام 12 ساعة) مع وصول مجاني إلى الطعام والماء القياسيين، وسمح لها بالتأقلم لمدة أسبوع قبل التجربة.
لتأسيس نموذج مرض الانسداد الرئوي المزمن، وضعت الفئران في غرفة تعرض دخان سجائر كامل الجسم (63 سم × 55 سم × 45 سم) وتعرضت لدخان السجائر السائد لمدة 12 أسبوعا. كل سيجارة احتوت على 10 ملغ من القطران، و0.9 ملغ نيكوتين، و10 ملغ من أول أكسيد الكربون. تم إجراء التعرض للدخان مرتين يوميا (5 أيام في الأسبوع) في الساعة 9:30 صباحا و3:00 مساء، حيث تم تسليم الدخان الناتج عن 18 سيجارة إلى الحجرة لمدة 90 دقيقة في كل جلسةو27.
لتقييم التأثيرات العلاجية للتدخلات، بدأ إعطاء الدواء بعد 8 أسابيع من التعرض لدخان السجائر واستمر لمدة 4 أسابيع المتبقية. ابتداء من الأسبوع التاسع، تلقت الفئران في مجموعات العلاج المعنية إعطاء يومي من DEX (1 ملغ/كغ)28 أو β-سيتوستيرول (50 ملغ/كغ)29.30 قبل ساعة من التعرض لدخان السجائر. أفادت دراسات سابقة عن توفر حيوي فموي بنسبة تقارب 4٪ ل β-سيتوستيرول في القوارض31. بالإضافة إلى ذلك، استخدمت عدة دراسات للفئران جرعات تتراوح بين 20 إلى 50 ملغ/كجم32. لذلك، تم اختيار جرعة 50 ملغ/كجم لضمان التعرض الجهازي الكافي مع البقاء ضمن النطاق المستخدم عادة في الدراسات قبل السريرية.
تعرضت الفئران في مجموعة الضابطة لهواء غرفة مفلتر، بينما تلقت الفئران في مجموعة النموذج والمعالجة حجم مكافئ من المحلول الملحي الطبيعي كوسيلة للعلاج. في نهاية فترة التجارب، تم تخدير الفئران بعمق باستخدام الإيزوفلوران حتى فقدان رد فعل الدواسة، ثم تم التخلص منها عن طريق النزيف عبر جمع دم الشريان الأبهر البطني. تم فتح تجويف الصدر فورا، وتم استئصال أنسجة الرئة الثنائية السليمة بعناية، وشطفها بمحلول ملحي مخمل بالفوسفات البارد (PBS)، ووضعها على الثلج. لجمع سائل الغسيل الحويجي القصبي (BALF)، تم قنابة القصبة الهوائية وغسلها بمحلول PBS المعقم البارد، الذي تم غرسه بلطف وسحبه مرارا لجمع سائل الغسيل. تم الاحتفاظ بأنسجة الرئة وعينات BALF على الثلج ثم تمت معالجتها لاحقا للتحليلات اللاحقة.
زراعة خلايا BEAS-2B
تم الحفاظ على خلايا ظهارية الشعب الهوائية البشرية من BEAS-2B في دواء Dulbecco المعدل Eagle Medium/F12 (DMEM/F12) الذي يحتوي على 10٪ مصل أبقار جنيني (FBS) و1٪ بنسلين/ستربتوميسين تحت 5٪ CO₂ عند 37 درجة مئوية.
تحضير CSE والتعرض لخلايا BEAS-2B
تم غسل خلايا BEAS-2B باستخدام محلول ملحي مخزن بالفوسفات وزرعها في صفيحات بئر 24 بئر ثلاثية بكثافة 5 × 10إلى 4 خلايا في كل بئر. بعد 12 ساعة من الزراعة، وصلت الخلايا إلى حوالي 60٪ من التقاء الخلايا ثم تعرضت لمادة CSE. تم إعداد CSE حديثا كما هو موصوف سابقا، مع تعديلات طفيفة33. لفترة وجيزة، كانت سيجارة تجارية غير مفلترة تحترق باستمرار، ويتم فقاعات الدخان السائد في 10 مل من وسط خال من المصل باستخدام مضخة تفريغ بمعدل تدفق ثابت 1.05 لتر/دقيقة (حوالي −11 كيلوباسكال ضغط سالب) لمدة تقارب 5 دقائق حتى تحترق السيجارة بالكامل. تم تعريض المحلول المحصل أولا للترشيح المسبق لإزالة الشوائب الجسيمات الكبيرة، ثم تم تعقيمه بواسطة مرشح دقيق مسامي معقم بحجم 0.22 ميكرومتر لإزالة الجسيمات المتبقية؛ تم تعريف الحل الناتج للمخزون بأنه 100٪ CSE. تم استخدام جميع CSE المحضرة حديثا لمعالجة الخلايا مباشرة بعد الترشيح دون تخزين. تم تحفيز الخلايا باستخدام وسط يحتوي على 2.5٪ من CSE. بعد 24 ساعة من معالجة CSE، تم جمع المواد الزائفة للثقافة وتخزينها عند -40 درجة مئوية للتحليل اللاحق34.
تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي في الوقت الحقيقي (RT-qPCR)
تم استخراج إجمالي الحمض النووي الريبي من خلايا BEAS-2B باستخدام مجموعة استخراج RNA كليا وتم نسخه عكسيا إلى cDNA باستخدام مجموعة نسخ عكسي وفقا لتعليمات الشركات المصنعة. تم إجراء RT-qPCR لاحقا باستخدام نظام كشف PCR في الوقت الحقيقي ومزيج رئيسي qPCR قائم على SYBR Green. أجريت جميع تجارب RT-qPCR باستخدام ثلاث نسخ بيولوجية وثلاث نسخ تقنية لكل عينة لضمان موثوقية البيانات.
تم تنفيذ كل تفاعل qPCR بحجم إجمالي قدره 20 ميكرولتر، يحتوي على 10 ميكرولتر من خليط SYBR Green qPCR الرئيسي، و0.4 ميكرولتر من البرايمر الأمامي، و0.4 ميكرولتر من البرايمر العكسي، و2 ميكرولتر من قالب cDNA مخفف، و7.2 ميكرولتر من الماء الخالي من RNase. كانت شروط التضخيم كما يلي: إزالة الطبيعة الأولية عند 95 درجة مئوية لمدة 3 دقائق، تليها 40 دورة إزالة الطبيعة عند 95 درجة مئوية لمدة 10 ثوان، والتلدين/التمديد عند 60 درجة مئوية لمدة 30 ثانية. تم حساب مستويات التعبير الجيني النسبية باستخدام طريقة 2−ΔΔCt، حيث كان GAPDH هو الجين المرجعي الداخلي. تم ذكر تسلسلات البادئات المستخدمة في هذه الدراسة في الجدول التكميلي 1.
تحليل أنواع الأكسجين التفاعلي داخل الخلايا (ROS)
تم تقييم إنتاج ROS داخل الخلايا في خلايا BEAS-2B باستخدام المسبار الفلوري 2′,7′-ثنائي كلوروديهيدروفلوريسيين ديأسيتات (DCFH-DA) وتم تحليله بواسطة قياس تدفق الخلايا الخلوي. أثناء اكتساب التدفق الخلوي، تم تطبيق استراتيجية بوابات التشتت الأمامي القياسية (FSC) والتبعثر الجانبي (SSC) لاستبعاد الحطام الخلوي واختيار الخلايا المفردة السليمة. تم جمع ما مجموعه 10,000 حدث خلوي صالح لكل عينة. تم ضبط أطوال موجات الإثارة والانبعاث عند 488 نانومتر و525 نانومتر على التوالي. تم تحليل بيانات تدفق الخلايا لاحقا لقياس شدة فلورة ROS داخل الخلية.
تحديد مستوى مالونديالديهايد (MDA)
تم قياس محتوى MDA داخل الخلايا باستخدام مجموعة اختبار بيروكسيد الدهون وفقا لتعليمات الشركة المصنعة. لفترة وجيزة، تم جمع خلايا BEAS-2B المعالجة وتحللها، ثم تم طردها على درجة حرارة منخفضة لجمع الفائق. ثم تم إجراء تفاعل حمض الثيوباربيتوريك (TBA) اللوني، وتم قياس الامتصاص عند 532 نانومتر باستخدام قارئ ميكرولوبايت. تم حساب مستويات MDA النسبية وفقا للمنحنى القياسي.
تقييم شيخوخة الخلايا
تم تقييم شيخوخة الخلايا باستخدام اختبار كشف الشيخوخة بناء على نشاط إنزيم β-جالاكتوسيداز (SA-β-gal) المرتبط بالشيخوخة. تم قياس خلايا SA-β-gal-الموجبة بواسطة قياس تدفق الخلية. بالتوازي، تم تحديد مستويات تعبير mRNA لعلامات الشيخوخة p53 وp21 بواسطة RT-qPCR.
اختبار تكاثر الخلايا
تم تقييم تكاثر الخلايا باستخدام مجموعة اختبار حيوية الخلايا اللوني. تم قياس الامتصاص عند 450 نانومتر باستخدام قارئ ميكروبلايت.
اختبار الضربة النسبية العامة
تم إجراء نقل الخلايا باستخدام كاشف نقل يعتمد على الدهون. تم نقل الأوليجونكليوتيدات التالية: RNA صغير متداخل (si-GR) المستهدف مستقبلات الجلوكوكورتيكويد، وRNA صغير متداخل سالب التحكم (si-NC). تم تصميم تسلسلات siRNA المرشحة التي تستهدف GR باستخدام منصة المعلوماتية الحيوية الإلكترونية siDirect 2.0. بعد النقل، تم زراعة الخلايا لمدة 48 ساعة، واستخدمت جميع siRNA بتركيز نهائي يبلغ 50 نانوم. تم التحقق من كفاءة الإلغاء من خلال قياس تعبير mRNA في GR باستخدام RT-qPCR.
تم تضمين مجموعات التحكم في المركبات في كل من تجارب علاج β سيتوستيرول وتجارب النقل الداخلي. بالنسبة لتدخل β-سيتوستيرول، كانت الخلايا التي عولجت بمذيب المركبة وحدها بمثابة مجموعة التحكم في المركبة (المشار إليها ب CSE+0). أكد التحليل الإحصائي أنه لم تلاحظ فروق ذات دلالة إحصائية بين مجموعة التحكم في المركبات ومجموعة التحكم الفارغ.
التحليل الإحصائي
تم التعبير عن جميع النتائج الكمية كمتوسط ± انحراف معياري من ثلاث تجارب مختبرية مستقلة بيولوجيا. تم إجراء التحليلات الإحصائية باستخدام برامج التحليل الإحصائي. استخدم اختبار شابيرو-ويلك لفحص توزيع البيانات الطبيعي قبل الاختبارات الإحصائية؛ تم اعتماد تصحيح بونفيروني بعد التصحيح لضبط قيم P للمقارنات المتعددة بعد تحليل التباين (ANOVA). تم تقييم المقارنات بين مجموعتين من خلال اختبار t للطالب غير المرتبط، بينما تم استخدام اختبار ANOVA أحادي الاتجاه أو ثنائي الاتجاه للمقارنات متعددة المجموعات. تم اعتبار قيمة p ≤ 0.05 ذات دلالة إحصائية.