بيان أخلاقي:
تم إطلاع جميع المشاركين بشكل كامل على الغرض من تجربتنا وقاموا بالتوقيع على نموذج الموافقة المستنيرة. تمت الموافقة على هذا البحث من قبل لجنة الأخلاقيات في مستشفى لونغيان الأول التابع لجامعة فوجيان الطبية (رقم الموافقة LYREC2023-k007-01). نُفذت جميع الإجراءات وفقاً للإرشادات واللوائح ذات الصلة وإعلان هلسنكي.
تجنيد المشاركين، ومعايير الأهلية، وجمع العينات
تم تجنيد ما مجموعه 211 شخصاً تم تشخيص إصابتهم بالتهاب الأنف التحسسي (AR) و180 مشاركاً سليماً (غير مصابين بـ AR) من قسم العيادات الخارجية لأمراض الأنف والأذن والحنجرة في مستشفى لونجيان الأول التابع لجامعة فوجيان الطبية في الفترة ما بين يناير 2023 ومايو 2025. تم اعتماد معايير تشخيص التهاب الأنف التحسسي من إرشادات الجمعية الصينية للحساسية لتشخيص وعلاج التهاب الأنف التحسسي17. وكان يُشترط في المرضى ظهور ما لا يقل عن عرضين سريريين من أعراض التهاب الأنف التحسسي، بما في ذلك حكة الأنف، أو العطس، أو احتقان الأنف، أو سيلان الأنف. بالإضافة إلى ذلك، كان من الضروري أن يُظهر فحص مخاطية الأنف شحوباً ووذمة، وأن تكون نتيجة اختبار وخز الجلد (SPT) أو نتيجة اختبار IgE في المصل إيجابية. وقد أجري اختبار SPT بواسطة موظفين مختصين في غرفة اختبار مسببات الحساسية بالعيادات الخارجية لضمان دقة واتساق النتائج. خضع جميع مرضى التهاب الأنف التحسسي لتقييمات استبيان جودة الحياة لالتهاب الأنف والملتحمة (RQLQ) ومقياس إجمالي أعراض الأنف (TNSS) بمساعدة الطاقم الطبي، وتم تسجيل الدرجات للتحليل اللاحق.
تم استقطاب متطوعين أصحاء يخضعون لفحوصات بدنية روتينية في المستشفى ليكونوا بمثابة مجموعة غير المصابين بالتهاب الأنف (non-AR). وكان المشاركون المؤهلون ممن ليس لديهم تاريخ شخصي أو عائلي للإصابة بالتهاب الأنف، ولا تاريخ للإصابة بالربو أو غيره من الأمراض التحسسية، ولا يعانون من التهاب الجيوب الأنفية المزمن أو غيره من الأمراض الالتهابية في التجويف الأنفي، ولم يصابوا بعدوى في الجهاز التنفسي خلال الشهر السابق. بالإضافة إلى ذلك، تم استبعاد الأشخاص الذين لديهم تاريخ من أمراض القلب أو الكبد أو الرئة أو الكلى الخطيرة، أو أي أورام خبيثة من الدراسة.
تم جمع عينات الدم الوريدي الطرفي من مجموعتي المتطوعين. واستُخدم جزء من الدم الوريدي المانع للتخثر لاستخلاص DNA واستخلاص RNA البلازمي. وفُصل جزء آخر من الدم الوريدي للحصول على المصل، والذي استُخدم للكشف عن العوامل المرتبطة بالمصل (الغلوبولين المناعي E (IgE)، والإنترلوكين-4 (IL-4)، وIL-6، وIL-10).
استخلاص الحمض النووي (DNA):
تم استخلاص الحمض النووي DNA من عينات دم وريدي محيطي بحجم 200 µL باستخدام طقم استخلاص الحمض النووي الجينومي من الدم الكامل (راجع جدول المواد). جُمعت عينات الدم في أنابيب مضادة للتخثر تحتوي على ليثيوم هيبارين، ثم وُزعت إلى حصص مجمدة عند -20 °C للتخزين. ويجب أن تتبع إجراءات التشغيل المحددة تعليمات الطقم بدقة. وفي النهاية، استُخدم 100 µL من محلول الاستخلاص (elution buffer) لاستخلاص الـ DNA. تم تحديد نقاء عينة الـ DNA المستخلصة بواسطة محلل الحمض النووي/البروتين (المطياف الضوئي Spectrophotometer) (حيث كانت نسبة OD₂₆₀/OD₂₈₀ بين 1.8 و 2.0). وخُزنت عينات الـ DNA بعد الفحص عند -20 °C لاستخدامها لاحقاً في تجارب التنميط الجيني اللاحقة.
الكشف عن النمط الجيني
توفّرت مجموعة TaqMan SNP genotyping للكشف عن توزيع الأنماط الجينية لـ miR-146a rs2910164. وقد أُدرجت معلومات المجموعة في قائمة المواد المستهلكة. بلغ الحجم الإجمالي لتفاعل PCR مقدار 10 µL، حيث احتوى على 5 µL من Master Mix، و0.5 µL من خليط بادئ مسبار تحديد النوع، و10 ng من DNA القالب، وماء خالٍ من RNase. أُجري تضخيم DNA باستخدام جهاز Roche LightCycler 480 II real-time fluorescence quantitative PCR. وكانت ظروف التفاعل كما يلي: مرحلة ما قبل المسخ عند 95 °C لمدة 10 min؛ و40 دورة (95 °C لمدة 15 ثانية، و60 °C لمدة 1 min)، وتمت قراءة فلورة FAM/VIC عند 60 °C. وبعد اكتمال التضخيم، حُللت إشارات الفلورة المزدوجة FAM/VIC التي تم جمعها باستخدام برنامج LightCycler 480، وعولجت بيانات النمط الجيني إحصائياً. تمثل إشارة FAM واحدة نمطاً جينياً متماثل الزيجوت، وتمثل إشارة VIC واحدة نمطاً جينياً متماثل الزيجوت آخر، بينما يشير وجود كلتا الإشارتين إلى نمط جيني متغاير الزيجوت. ستتم إعادة اختبار العينات ذات الإشارات غير الطبيعية أو النتائج غير المتسقة عند التكرار. وقد أُجريت كل تجربة باستخدام كل من ضابط خالٍ من القالب وضابط إيجابي لضمان مراقبة الجودة. كما خضعت جميع العينات لثلاث مكررات تقنية.
تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي في الوقت الحقيقي بنسخ عكسي (RT-qPCR)
تم إجراء استخلاص إجمالي لـ miRNA من 100 µL من البلازما باستخدام طقم استخلاص miRNA مخصص. تم إدراج معلومات الطقم في قائمة المستهلكات. تم تحديد تركيز RNA باستخدام مقياس الطيف الضوئي. تراوحت نسبة OD₂₆₀/OD₂₈₀ لعينات miRNA المستخلصة والمؤهلة بين 1.8 و 2.0. استُخدم 200 ng من RNA في عملية النسخ العكسي لتخليق cDNA، واتبع إجراء التفاعل التعليمات القياسية للطقم. أُجري النسخ العكسي في حجم إجمالي قدره 20 µL، بما في ذلك الحضانة عند 42 °C لمدة 60 min والتعطيل عند 85 °C لمدة 5 min. تم تحضير تفاعل qPCR وفقاً للبروتوكول المعتمد، بحجم إجمالي 20 µL. تم تكوين خليط التفاعل كما يلي: 10 µL من خليط qPCR الجاهز (pre-mix)، و 0.4 µL من البادئ الأمامي، و 0.4 µL من البادئ العكسي، و 1 µL من قالب cDNA، و 8.2 µL من الماء الخالي من RNase. استُخدمت بادئات محددة لـ miR-146a ولجين المرجع الداخلي U6. اكتمل التضخيم باستخدام جهاز Roche LightCycler 480 II لقياس تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي الفلوري في الوقت الحقيقي. كانت ظروف الدورات الحرارية لـ qPCR كما يلي: 95 °C للمسخ المسبق لمدة 30 s، تلتها 40 دورة من المسخ عند 95 °C لمدة 5 s، والارتباط والاستطالة عند 60 °C لمدة 30 s. خضعت جميع العينات لثلاث مكررات تقنية. تم تحليل البيانات التجريبية باستخدام برنامج LightCycler 480 Software. وباستخدام U6 كمرجع داخلي لتصحيح التباين بين العينات، يتم أولاً حساب ΔCt (قيمة Ct لـ miR-146a - قيمة Ct لـ U6)، ثم حساب ΔΔCt (قيمة ΔCt للمجموعة التجريبية - قيمة ΔCt للمجموعة الضابطة)، وفي النهاية تم الحصول على مستوى التعبير النسبي لـ miR-146a من خلال 2⁻ΔΔCt.
مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA)
تم قياس مستويات IgE وIL-4 وIL-6 وIL-10 في المصل باستخدام أطقم ELISA. استُند في الإجراءات التجريبية إلى دليل التعليمات. وكانت الخطوات المحددة كما يلي: أولاً، تم تخفيف محلول الغسيل المركز، وتخفيف المعايير تدريجياً لتحضير محاليل العمل الخاصة بمنحنى القياس المعياري. ثانياً، أُضيف 50 µL من محلول التخفيف والمحلول المعياري والعينة المراد اختبارها إلى الآبار، ثم حُضنت عند 37 °C لمدة 60 min. وبعد الحضانة، غُسلت الآبار ثلاث مرات بمحلول الغسيل المنظم. لاحقاً، أُضيف 50 µL من محلول عمل الأجسام المضادة المقترنة بالإنزيم، وحُضنت الأطباق عند 37 °C لمدة 30 min. وبعد اكتمال الحضانة، تم التخلص من السائل وغُسلت الآبار مرة أخرى، ثم أُضيف محلول توليد اللون للحضنة لمدة 15-min عند 37 °C في الظلام. بعد إضافة محلول الإيقاف، قيست الامتصاصية عند 450 nm باستخدام قارئ الأطباق الدقيقة. حُسبت تركيزات العينات وفقاً لمنحنى القياس المعياري. واختُبرت كل عينة ثلاث مرات، واعتُبرت البيانات التي يقل معامل تباينها عن 10% صالحة. كما تم إعداد آبار فارغة وآبار ضابطة أثناء التجربة لغرض مراقبة الجودة. وقد توافق نطاق الكشف وحساسية الطقم مع اللوائح المحددة في دليل الشركة المصنعة.
إحصائيات البيانات
تم تحليل البيانات التجريبية باستخدام برنامجي SPSS و GraphPad Prism 9. وعُرضت البيانات في صورة المتوسط ± الانحراف المعياري (mean ± SD). استُخدم اختبار Shapiro-Wilk لتقييم التوزيع الطبيعي للمتغيرات المستمرة، وطُبق اختبار Levene لتقييم تجانس التباين. كما تم تحليل مقارنة المتغيرات المستمرة بين المجموعتين باستخدام اختبار t للعينات المستقلة. وأُجري تحليل التباين أحادي الاتجاه (One-way ANOVA) متبوعاً باختبار Tukey للمقارنات البعدية لإجراء مقارنات بين مجموعات متعددة، بينما طُبق تحليل التباين ثنائي الاتجاه (Two-way ANOVA) لتقييم التأثيرات الرئيسية لعاملين مستقلين وتأثير التفاعل بينهما. تم تحديد القيم المتطرفة واستبعادها بناءً على قاعدة 3-انحرافات معيارية. ولم يتم اكتشاف أي بيانات مفقودة في هذه الدراسة. واستُخدم منحنى خصائص تشغيل المستقبل (ROC) لتحليل الكفاءة التشخيصية لـ miR-146a في حالات AR. كما حُسبت معاملات ROC ذات الصلة وفواصل الثقة 95% باستخدام خوارزميات إحصائية مدمجة. واستُخدم تحليل ارتباط Pearson لقياس الارتباط الخطي بين تعبير miR-146a ومستويات العوامل المرتبطة بالمصل. وأُجريت تحليلات الانحدار اللوجستي أحادية المتغير ومتعددة المتغيرات لفحص عوامل الخطر لـ AR. وقد أُدرجت المتغيرات التي كانت قيمة p < 0.05 في التحليل أحادي المتغير ضمن نموذج الانحدار اللوجستي متعدد المتغيرات. واعتُبرت القيمة p < 0.05 ذات دلالة إحصائية.