يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

منهجية معدلة لخلع الأسنان لتحسين كفاءة الإجراء واتساقه في نموذج التئام سنخ السن الفكي السفلي لدى الفئران

107 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/72974

⸱

سبتمبر 8, 2026

 ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Oral Diseases & National Center for Stomatology & National Clinical Research Center for Oral Diseases, West China Hospital of Stomatology, Sichuan University, 2Department of Endodontics, West China Hospital of Stomatology, Sichuan University

في هذه المقالة

ملخص

يتم وصف نهج معدل لاستخراج الضرس السفلي الأول في الفئران ومقارنته بالنهج التقليدي لتقييم كفاءة الإجراء وقابليته للتكرار. يساهم النهج المعدل في تحسين اتساق الإجراء وتقليل التحديات التقنية في إنشاء نموذج لالتئام سنك الضرس السفلي لدى الفئران.

الملخص

يعد نموذج التئام سنخ السن (TSHM) نموذجاً حيوانياً واسع الاستخدام لاستقصاء الآليات الجزيئية الكامنة وراء تجدد العظام. ورغم أن نموذج TSHM في الفك السفلي للفئران ذو قيمة عالية لدراسة العمليات المرضية الخاصة بالفك السفلي، إلا أن إنشاء هذا النموذج لا يزال يمثل تحدياً تقنياً بسبب الخصائص التشريحية والميكانيكية الحيوية لمنطقة الضرس السفلي. يصف هذا البروتوكول نهجاً معدلاً لخلع الضرس الأول في الفك السفلي لدى الفئران، ويقارن أداءه بالتقنية التقليدية لتحسين كفاءة الإجراء وقابلية تكراره. وتحت ظروف تجريبية مضبوطة، قلل النهج المعدل بشكل كبير من متوسط وقت الخلع من 29 إلى 10 min. بالإضافة إلى ذلك، أظهرت المجموعة التي خضعت للنهج المعدل مضاعفات أقل مرتبطة بالخلع، بما في ذلك كسور الجذور والعظم السنخي، مما يشير إلى تحسن في اتساق الإجراء. كما أظهر تحليل التصوير المقطعي المحوسب الدقيق (μCT) تحسناً في الحفاظ على بنية سنخ الخلع خلال مرحلة الالتئام المبكرة. وتشير هذه النتائج إلى أن نهج الخلع المعدل يحسن كفاءة الإجراء وقابلية تكراره مع تقليل التحديات التقنية المرتبطة بخلع أسنان الفك السفلي للفئران. قد يسهل هذا البروتوكول إنشاء نماذج التئام سنخ أسنان الفك السفلي للفئران بشكل أكثر اتساقاً، خاصة للباحثين الذين لديهم خبرة محدودة في الجراحة المجهرية.

المقدمة

يعد نموذج التئام سنخ السن (TSHM) نموذجاً كلاسيكياً لدراسة تجدد العظام1. ينشئ هذا النموذج إصابة صعبة ولكنها دون الحرجة داخل العظم السنخي، مما يسمح بالتئام طبيعي ملائم دون تدخل إضافي1. تُستخدم الفئران على نطاق واسع ككائنات نموذجية نظراً لخلفيتها الجينية، وتشابه استقلاب العظام لديها مع البشر، وانخفاض تكاليف تربيتها نسبياً، وسهولة صيانتها2. وعلى مدى العقود القليلة الماضية، جعلت التطورات السريعة في تكنولوجيا تحرير الجينات من الفئران عنصراً لا غنى عنه في استقصاء الآليات الجزيئية التي يقوم عليها تجدد العظام3. وبناءً على ذلك، استُخدم خلع الأضراس في الفئران المعدلة وراثياً على نطاق واسع لإنشاء نموذج TSHM من أجل دراسة الآليات التنظيمية لتجدد العظام4,5,6.

اعتمدت معظم الدراسات السابقة في إنشاء نموذج خلع الأسنان في الفئران (TSHM) باستخدام الفك العلوي4,5,6، وذلك لأن الفك السفلي أكثر صلابة ميكانيكيًا وأقل مرونة من الفك العلوي7، مما يزيد من الصعوبة التقنية لعملية خلع السن. بالإضافة إلى ذلك، فإن المجال الجراحي لخلع الأضراس العلوية متاح بشكل أكبر نسبيًا، كما أن تثبيت الفك العلوي أسهل من تثبيت الفك السفلي، مما يجعل الإجراء أقل تطلبًا من الناحية التقنية. وعلى الرغم من هذه التحديات، فإن المورفولوجيا المنحنية والمتضخمة للجذر الذروي للضرس الأول في الفك السفلي للفأر تزيد من الثبات الميكانيكي داخل العظم السنخي المحيط8,9، مما يزيد من تعقيد عملية الخلع (الشكل 1). ومع ذلك، تظل نماذج خلع أسنان الفك السفلي ضرورية للغاية لاستقصاء العمليات المرضية الخاصة بالفك السفلي، بما في ذلك التهاب العظم والنقي، ونخر العظم في الفك المرتبط بالأدوية، والاندماج العظمي للغرسات، وتجديد العظام باستخدام المواد الحيوية10,1,12. ولذلك، فإن وجود طريقة قابلة للتكرار وموثوقة لخلع الأضراس السفلية في الفئران يعد أمرًا مهمًا للدراسات التي تتطلب نماذج التئام مقابس الأسنان الخاصة بالفك السفلي.

مخطط تشريح السن: مقاطع تظهر الميناء، والعاج، والملاط؛ وتشير الحروف A وB وC إلى المراحل.
الشكل 1مقارنة تخطيطية لمورفولوجيا الأسنان في البشر والفئران. 
(أ) رسم تخطيطي لسن إنسان بالغ. (ب) رسم تخطيطي للضرس الأول السفلي لفأر في مرحلة المراهقة. (ج) رسم تخطيطي للضرس الأول السفلي لفأر بالغ. تسلط المخططات الضوء على الاختلافات في مورفولوجيا الجذور وتوزيع الملاط التي تساهم في زيادة التثبيت الميكانيكي للأضراس الأولى السفلية للفئران البالغة داخل العظم السنخي. يُشار إلى الميناء والعاج والملاط بالألوان المقابلة الموضحة في مفتاح الرسم. تستند السمات التشريحية إلى الأوصاف المنشورة.8,9,15. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

تعتمد تقنية سابقة لاستخلاص الأسنان طورها فريقنا البحثي على استخدام محاقن تم تعديلها لتكون بمثابة رافعات سنية13. ورغم أن هذه الطريقة تسمح باستخلاص الضرس الأول السفلي الأيمن بنجاح في الفئران، إلا أنها تتطلب مستوى عالٍ من الدقة التقنية، كما أن منحنى تعلمها حاد يتطلب تدريباً مكثفاً. وقد يتسبب المشغلون غير ذوي الخبرة دون قصد في إصابات للهياكل التشريحية المجاورة. بالإضافة إلى ذلك، يتطلب استخلاص الضرس الأول السفلي الأيسر تدريباً إضافياً على "الصورة المرآتية" لتحقيق الكفاءة الإجرائية. وقد تؤدي هذه التحديات إلى الإضرار بسلامة سنخ الاستخلاص، وتقليل اتساق نتائج الالتئام بين الحيوانات، والحد من إمكانية وصول الباحثين الذين لديهم خبرة محدودة في الجراحة المجهرية إلى هذا النموذج.

يصف هذا البروتوكول نهجاً معدلاً لخلع الضرس الأول السفلي في الفئران لتحسين إمكانية الوصول الإجرائي وقابلية التكرار. تم التحقق من صحة البروتوكول في ذكور فئران C57BL/6 بعمر 8 أسابيع لإنشاء نموذج TSHM للضرس الأول السفلي. تمت مقارنة النهج المعدل بشكل منهجي مع التقنية التقليدية لتقييم كفاءة الإجراء، ونجاح الخلع، والمضاعفات المرتبطة بالعملية. بالإضافة إلى ذلك، تم تحليل أنماط الفشل التقني الشائعة التي تمت مواجهتها أثناء اكتساب المهارة لتوفير إرشادات عملية للباحثين الذين يعملون على إنشاء نموذج TSHM للفك السفلي في الفئران.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل لجنة الأخلاقيات في مدرسة غرب الصين لطب الأسنان بجامعة سيتشوان (WCHSIRB-D-2025-18)، وأُجريت وفقاً للإرشادات المؤسسية الخاصة برعاية الحيوان.

ملاحظة: استخدم فئران ذكور من سلالة C57BL/6 بعمر 8 أسابيع وتزن 2–29 g. يتم الحفاظ على الحيوانات بنظام غذائي قياسي من العلف مع توفير الماء ad libitum تحت ظروف إيواء قياسية (21°C–24°C، ورطوبة 40%–60%، ودورة ضوء-ظلام مدتها 12-h). استخدم المواد والأدوات المدرجة في جدول المواد. استخدم 24 فأراً للتقييم المقارن وعرض الحالات الفاشلة. استخدم فئران إضافية لتدريب المشغل قبل التجربة المقارنة.

1. التحضير لما قبل الجراحة

  1. تجهيز الأدوات
    1. تجهيز إبر محاقن بقياس 25 G لاستخدامها كرافعات (اختياري). يتم ثني الطرف المائل لكل إبرة بزاوية تتراوح تقريبًا بين 20°–40°13.
    2. تجهيز ملاقط عيون مسننة لاستخدامها كملاقط أسنان. يتم فحص الطرف المسنن تحت التكبير للتأكد من محاذاة الأسنان بشكل صحيح وخلوها من أي تشوه.
    3. تجميع مباعد للفم باستخدام رباط مطاطي واحد وأربع إبر محاقن بقياس 25 G. وتجهيز لوح رغوي أو لوح كرتوني كمنصة للعمل، وشريط لاصق لتثبيت أطراف الفأر، ومصباح رأسي لإضاءة المجال الجراحي.
    4. تجهيز وسادة تدفئة للتعافي بعد الجراحة وتسخينها مسبقًا إلى حوالي 38°C قبل العملية. وتجهيز كرات قطنية لإيقاف النزيف وكمية مناسبة من المحلول الملحي لتنظيف تجويف الفم.
    5. تجهيز غطاء للإصبع لتغطية الإبهام وحماية المشغل أثناء عملية الخلع.
    6. وضع قماش غير منسوج ومعقم فوق سطح العمل ووسادة التدفئة للحفاظ على مجال معقم.
  2. تجهيز التخدير
    1. تطهير بطن الفأر باستخدام كرة قطنية مغموسة في محلول مطهر من البوفيدون-يود. يتم إعطاء بنتوباربيتال الصوديوم بتركيز 1% (50 mg/kg) عن طريق الحقن داخل الصفاق14. يتم تقييم عمق التخدير باستخدام اختبار قرص إصبع القدم وإعطاء تخدير إضافي حسب الحاجة.
      ملاحظة: إذا عاد رد فعل قرص إصبع القدم أو اقتربت العملية من المدة المتوقعة للتخدير، يجب إيقاف الإجراء وإعطاء تخدير إضافي وفقًا للبروتوكول البيطري المؤسسي المعتمد.
    2. وضع مرهم عيون بيطري في كلتا العينين فور التخدير لمنع جفاف القرنية.
  3. تجهيز التطهير والتعقيم
    1. تطهير منصة الجراحة، ووسادة التدفئة، والشريط اللاصق، وغطاء الإصبع، ومنطقة العمل المحيطة باستخدام إيثانول بتركيز 75%. يتم استخدام مسحات قطنية معقمة جديدة، وقماش غير منسوج، وأربطة مطاطية، وإبر لكل فأر. يتم تعقيم الملاقط المسننة والمحلول الملحي باستخدام بروتوكول التعقيم البخاري المؤسسي القياسي قبل الاستخدام.
      تحذير: الإيثانول بتركيز 75% مادة قابلة للاشتعال. يجب استخدامه في منطقة جيدة التهوية بعيدًا عن الحرارة والشرر واللهب المكشوف ومصادر الاشتعال الأخرى. يجب ارتداء معدات الوقاية الشخصية المناسبة. تُترك الأدوات والأسطح المعالجة بالإيثانول لتجف تمامًا قبل بدء الإجراء.
    2. إجراء نظافة اليدين قبل بدء العملية. ارتداء ملابس جراحية نظيفة، وغطاء رأس جراحي معقم، وقناع جراحي، وقفازات معقمة.

2. العملية الجراحية

  1. تثبيت وتنظيف الفأر
    1. ضع الفأر في وضعية الاستلقاء الظهري على لوحة التثبيت وثبت الأطراف باستخدام شريط لاصق. أدخل إبرتين بمقاس 25 G في اللوح الرغوي عند مستوى المستوى الحجاجي الأذني، وأدخل إبرتين إضافيتين بمقاس 25 G أسفل الفك السفلي.
    2. ضع الرباط المطاطي فوق الإبر وعبر القواطع لإبقاء الفم مفتوحاً. اسحب اللسان بلطف وثبته في الجانب المقابل لموقع القلع لمنع إعاقة المجال الجراحي. استخدم الضرس الأول السفلي الأيمن كمثال تمثيلي طوال هذا البروتوكول.
    3. أزل بقايا الطعام والمواد الغريبة الأخرى من تجويف الفم باستخدام كرة قطنية صغيرة مبللة بمحلول ملحي.
      ملاحظة: اعصر الكرة القطنية جيداً لإزالة المحلول الملحي الزائد ومنع دخول السائل إلى تجويف الفم، مما قد يسبب الاختناق.
  2. إزالة المقاومة القاصية والإنسية (اختياري)
    1. استخدم الملقط باليد اليسرى لسحب الزاوية اليمنى للفم وكشف الضرس الأول السفلي الأيمن والأنسجة الرخوة الشدقية واللسانية المحيطة به بشكل كامل.
    2. أمسك الملقط باليد اليمنى. ثم أمسك إبرة بمقاس 25 G باليد اليسرى وأدخل الإبرة بعناية في الرباط حول السني الشدقي الملاصق للجذر القاصي لإنشاء مساحة في الرباط حول السني.
    3. حرك الإبرة ببطء نحو المنطقة الذروية مع تدويرها إنسياً ولسانياً باتجاه الضرس لتحرير الجذر من السنخ السنخي.
    4. أدخل إبرة بمقاس 25 G في تفرع الجذر من الجانب الشدقي وارفعها إطباقياً باليد اليسرى. أدخل إبرة ثانية بمقاس 25 G في الرباط حول السني اللساني الملاصق للجذر الإنسي باليد اليمنى لإنشاء مساحة في الرباط حول السني، ثم دور الإبرة قاصياً وشدقياً.
    5. اسحب كلتا الإبرتين من المجال الجراحي بعد الانتهاء من التليين المسبق للرباط حول السني.
      ملاحظة: قم بالتليين المسبق للرباط حول السني فقط عندما يظهر السن حركية دنيا ومقاومة ملحوظة بعد التحريك الأولي باستخدام الملقط.
  3. التحريك والقلع
    1. ثبت رأس الفأر باستخدام إصبعي السبابة والوسطى لليد اليسرى. ضع الإبهام، المغطى بغطاء إصبع، مقابل القواطع السفلية للدعم أثناء إمساك الملقط باليد اليمنى.
    2. أمسك أطراف الملقط بشكل عمودي على المستوى الإطباقي وموازٍ للمحور الطولي للسن. ضع الأطراف المسننة داخل تفرع الجذر للحصول على سحب مستقر.
      ملاحظة: لا تمسك جذر السن مباشرة بالملقط لأن ذلك قد يؤدي إلى كسر الجذر.
    3. أمسك التاج بالملقط وقم بتطبيق حركات تحريك شدقية-لسانية لطيفة. حدد زاوية التحريك الشدقي بـ 30° وزاوية التحريك اللساني بـ 50°. قم بحركة تحريك واحدة كل 1–1.5 s.
    4. حافظ على السحب على طول المحور الطولي للضرس من الذروة نحو التاج مع تطبيق دعم مضاد ثابت مقابل القواطع السفلية ببطانة الإبهام الأيسر لتثبيت الفك السفلي.
      ملاحظة: حافظ على دعم مضاد مستمر ومستقر مع تجنب الضغط المفرط أو إزاحة القواطع والأنسجة الرخوة المجاورة.
    5. استمر في حركات التحريك حتى يصبح السن متحركاً تدريجياً ويرتفع السطح الإطباقي بشكل مرئي فوق الأضراس المجاورة. حافظ على أطراف الملقط موازية للمحور الطولي للسن طوال الإجراء، ثم اقلع السن بمجرد تحقيق الحركية الكافية.
      ملاحظة: قبل تطبيق قوة القلع النهائية، قيم حركية السن عن طريق تحريك التاج بلطف في الاتجاه الشدقي-اللساني. ابدأ في القلع فقط عندما يمكن إزاحة التاج بمقاومة دنيا ويصل سعة الحركة الشدقية-اللسانية إلى نصف عرض التاج تقريباً. أعد تقييم عمق التخدير مباشرة قبل القلع الكامل. أعطِ تخديراً إضافياً إذا لزم الأمر (الشكل 2).

مقارنة بين تقنيات خلع الأسنان، ومخطط بياني والنتائج؛ الطرق التقليدية والمعدلة باستخدام جذور مخلوعة.
الشكل 2مقارنة بين الطريقتين التقليدية والمعدلة لخلع الضرس الأول السفلي في الفئران. 
(أ) رسم تخطيطي لطريقة الخلع التقليدية، حيث يتم إدخال إبرة مقاس 25 G مثنية في الرباط حول السني واستخدامها كرافعة لخلخلة السن. (ب) رسم تخطيطي لطريقة الخلع المعدلة، حيث يتم إمساك التاج بملقط عيون مسنن وتطبيق قوة سحب موازية للمحور الطولي للسن. (ج) صورة تمثيلية للطرف المثني لإبرة 25 G المستخدمة كرافع. (د) صورة تمثيلية للملقط العيوني المسنن المستخدم كملقط للخلع الدقيق. (هـ) صورة تمثيلية أثناء العملية تظهر سنخ الخلع مباشرة بعد خلع الضرس الأول السفلي؛ تشير الخطوط المتقطعة إلى أسناخ الخلع. (و) منظر دهليزي للضرس الأول السفلي الذي تم خلعه بنجاح. (ز) منظر لساني للضرس الأول السفلي المخلوع نفسه. أشرطة المقياس = 2 مم (ج، د) و 400 µm (هـ–ز). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

3. فحص الأسنان المخلوعة ومقابس الخلع

  1. افحص السن المستخرجة للتأكد من إزالتها بالكامل وسلامتها التركيبية. تأكد من الحفاظ على مورفولوجيا الجذر، بحيث يكون الجذر الإنسي أطول، والجذر الوحشي أقصر، مع وجود توسع ذروي15. تحقق من عدم بقاء أي شظايا من العظم السنخي ملتصقة بالسن المستخرجة.
  2. افحص سنخ الخلع للتأكد من أنه نظيف وخالٍ من بقايا شظايا الجذور (الشكل 2).
    ملاحظة: إذا اشتبهت في وجود جذر محتجز أو مكسور أثناء الخلع، فتجنب التلاعب المتكرر لأن المحاولات المفرطة قد تؤدي إلى تفاقم عيوب السنخ. افحص موقع الخلع تحت التكبير لتأكيد وجود بقايا شظايا الجذور. سجل الحالات التي تحتوي على جذور محتجزة أو مكسورة كعمليات خلع فاشلة واستبعدها من تقييم النموذج اللاحق. تعامل مع هذه الحيوانات وفقاً لبروتوكول الحيوان المعتمد.

4. الرعاية بعد الجراحة

  1. استخدم قطناً جافاً لتحقيق الإرقاء. نظف التجويف الفموي باستخدام كرة قطنية صغيرة مبللة بمحلول ملحي، ثم أعد اللسان إلى موضعه.
    ملاحظة: بلل الكرة القطنية بأقل حجم ممكن من المحلول الملحي المعقم المطلوب لترطيب سطحها دون إنتاج سائل حر.
  2. أعطِ عقار carprofen (بجرعة 5 mg/kg، تحت الجلد) بعد الجراحة لتسكين الآلام ما بعد العملية.
  3. ضع الحيوان على وسادة تدفئة وراقبه باستمرار حتى يستعيد وعيه.
  4. بعد الإفاقة من التخدير، قدم علفاً قياسياً ليناً أو نظاماً غذائياً هلامياً على أرضية القفص لمدة 3 أيام، مع توفير الماء ad libitum. استأنف النظام الغذائي المعتمد على العلف القياسي بعد التأكد من عودة سلوك التغذية الطبيعي.
  5. راقب كمية الغذاء المتناولة، ووزن الجسم، والنشاط، وسلوك التنظيف، وتورم الوجه، والنزيف الفموي، وعلامات الألم أو الضيق في فترات زمنية محددة مسبقاً.

5. تدريب المشغلين

  1. يتم تعيين مشغلَين عشوائياً، على ألا يكون لأي منهما خبرة سابقة في نماذج تجديد الأنسجة الصلبة لدى الفئران، وتوزيعهما إما على مجموعة الخلع التقليدي أو مجموعة الخلع المعدل. يتم تدريب المشغلَين بشكل منفصل تحت إشراف نفس المدرب، الذي يتمتع بالكفاءة في كل من نهجي الخلع التقليدي والمعدل.
  2. خلال الأسبوع الأول، يُوجَّه كل مشغل للتدرب على إجراء الخلع المخصص له باستخدام جث فئران للتعرف على سير العمل الجراحي.
  3. خلال الأسبوع الثاني، يتم الإشراف على التدريب باستخدام فئران حية لتقييم وصقل التطبيق العملي لكل تقنية. يتم مراقبة كل إجراء لضمان التخدير الكافي ولمنع حدوث مضاعفات جراحية غير مقصودة، بما في ذلك الإصابة العرضية للأنسجة الرخوة المحيطة الناتجة عن التعامل غير السليم مع الأدوات أو تلف البنى السنخية. يتم تأكيد كفاءة المشغل عندما يتمكن من إجراء ثلاثة عمليات خلع ناجحة متتالية بشكل مستقل. وبعد إتمام التدريب الخاضع للإشراف، يتم الانتقال إلى تجارب الخلع المقارنة.

6. تحضير العينة

  1. يتم القتل الرحيم للفئران عن طريق الخلع العنقي. تُفصل الفكوك السفلية من الرأس ويُزال النسيج الرخو الملتصق بها.
  2. تُثبت الفكوك السفلية في محلول paraformaldehyde بتركيز 4% لمدة 48 h. تُحفظ العينات في PBS قبل إجراء الفحص بـ µCT.

7. التصوير المقطعي المحوسب الدقيق (µCT) والتحليلات

  1. قم بمسح الفكوك السفلى باستخدام ماسح µCT. اضبط معلمات المسح على 80 kV، و50 µA، ودقة فوكسل 10 µm، والمسح طبقة بطبقة.
  2. قم بمعايرة نظام µCT باستخدام نموذج وهمي من الهيدروكسي أباتيت. امسح النموذج الوهمي وقم بتصدير الصور المعاد بناؤها باستخدام DataViewer.
    1. حلل صور النموذج الوهمي باستخدام CTAn. أنشئ منحنى معايرة من خلال ربط قيم توهين CT المقاسة لغرسات النموذج الوهمي بكثافاتها المعدنية المعروفة لتحويل قيم التوهين إلى BMD.
    2. طبق معلمات مسح وإعادة بناء متطابقة على جميع العينات.
    3. أعد بناء جميع مجموعات البيانات باستخدام سير عمل إعادة البناء الموحد في CTAn المرتبط بنظام µCT. طبق إعدادات إعادة بناء وتعريف ROI ومعايير تحليل كمي متطابقة على جميع العينات. قم بإجراء إعادة بناء ثلاثية الأبعاد بشكل منفصل باستخدام Mimics Research للتصور التمثيلي، مع اتباع نفس تعريف ROI المستخدم في التحليل الكمي لـ CTAn.
  3. حدد المنطقة ذات الأهمية (ROI) عن طريق اختيار منطقة الجذر القاصية للضرس الأول السفلي المستخلص. اجمع 10 شريحة مستعرضة متتالية تمتد ذروياً من الوصلة المينائية الملاطية للضرس الثاني المجاور.
    1. حدد حدود ROI يدوياً في كل شريحة على طول حدود العظم السنخي المتكون حديثاً والمحيط بسنخ الخلع. قم بإجراء معالجة الصور والتحليل الكمي اللاحق باستخدام CTAn معلمات تحليل متطابقة لجميع العينات.
  4. قم بإجراء إعادة بناء ثلاثية الأبعاد باستخدام Mimics Research. احسب معدل حدوث كسر الجذر وعيوب جدار السنخ كنسبة من عينات الفك السفلي التي تظهر كل حالة بالنسبة للعدد الإجمالي لعينات الفك السفلي.
  5. أجرِ جميع التحليلات الإحصائية وأنشئ الرسوم البيانية باستخدام GraphPad Prism v10.1.2. قيم طبيعية المتغيرات المستمرة باستخدام اختبار Shapiro–Wilk.
    1. حدد الفأر الفردي وسنخ الخلع المقابل له كوحدة تجريبية لجميع التحليلات.
    2. قارن وقت الخلع، وBMD، وBV/TV بين المجموعات باستخدام اختبار Student’s t غير المقترن وذي الذيلين. قارن معدل حدوث كسر الجذر وعيوب جدار السنخ باستخدام اختبار Fisher’s exact.
    3. أشر إلى الدلالة الإحصائية كما يلي: *, p < 0.05؛ و**, p < 0.01؛ و***, p < 0.01. استخدم "ns" للإشارة إلى عدم وجود فرق ذو دلالة إحصائية بين المجموعتين.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم توضيح السمات التشريحية ذات الصلة بخلع الضرس الأول السفلي في الشكل 1، كما تم عرض نهجي الخلع التقليدي والمعدل تخطيطيًا في الشكل 2A،B. وتظهر الصور التمثيلية للإبرة المجهزة والملقط العيني المسنن، ومقابس الخلع الحديثة، والضرس الأول السفلي المخلوع في الشكل 2C–G. وتلخص الشكل 3 سير العمل الإجرائي الكامل. ولمقارنة كفاءة واتساق الإجراءين، تم تعيين مشغلين اثنين بخبرة متكافئة في...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يتطلب التأسيس الناجح لنموذج TSHM إزالة السن بالكامل مع الحفاظ على بنية السنخ المحيطة، حيث إن الإصابات المرتبطة بالخلع قد تؤثر سلبًا على تجدد العظام اللاحق16. وبناءً على ذلك، تمثل قابلية تكرار إجراء الخلع محددًا حاسمًا لموثوقية النموذج17. في هذه الدراسة، تمت مقارنة منهجية معدلة لخلع الضرس الأول السفلي تعتمد على الملاقط مع تقنية تقليدية تعتمد على الرافعة، وذلك تحت ظروف تدريب موحدة. أظهرت الطريقة المعدلة تحسنًا في كفاءة الإجراء وقابلية التكرار، وهو ما انعكس في تقليل وقت الخلع ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يقر المؤلفون بعدم وجود تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (منحة رقم 82571084) وبرنامج العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة Sichuan (منحة رقم 2024JDKXJ0001).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
إبر حقن بمقياس 25 GBeyotimeFS802-30 قطعةإبر محاقن تستخدم لمرة واحدة، وتُستخدم لمباعد الفم وللتخلخل المسبق الاختياري للرباط حول السني
محلول بارافورمالدهيد بتركيز 4%SolarbioP1110محلول بارافورمالدهيد بتركيز 4% المستخدم لتثبيت العينات
إيثانول بتركيز 75%متجر أوس للأجهزة الطبيةيرجى تزويدي بالنص المصدر باللغة الإنجليزية لبدء عملية الترجمة.إيثانول بدرجة طبية بتركيز 75% يستخدم لتطهير الأسطح
فئران C57BL/6Charles River213فئران ذكر من سلالة C57BL/6 بعمر 8 أسابيع وتزن 22–٢٩ جم
كاربروفينSolarbioC5350مُسكن للألم بعد الجراحة يُعطى تحت الجلد بجرعة 5 ملجم/كجم
كرات قطنيةأجهزة أونينج الطبية (Ouning Medical Devices)نظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالنص المراد ترجمته من الإنجليزية إلى العربية وفقاً للمعايير المهنية المذكورة.كرات قطنية معقمة تُستخدم للتنظيف الفموي وإرقاء الدم
CTAn v1.18.4.0+SkyScanلا ينطبقالبرمجيات المستخدمة لـ μCT تحليل الصور
DataViewer v1.5.6.2سكاي سكان (SkyScan)نظرًا لعدم توفر نص مصدر، يرجى تزويدي بالنص الذي ترغب في ترجمته إلى اللغة العربية.البرمجيات المستخدمة لعرض وتصدير النماذج المعاد بناؤها μCT صور
أغطية الأصابعمكتب LeSuMEKU-1/2/3Bأغطية الأصابع المستخدمة لحماية الإبهام أثناء عملية الاستخلاص
لوح رغويشركة دونغ غوان ليجيانغ لونغ الصناعية المحدودة (Dongguan Lijianglong Industrial Co., Ltd.)نظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالمحتوى العلمي أو التعليمي المطلوب ترجمته من اللغة الإنجليزية إلى اللغة العربية، وسأقوم بتنفيذه وفقًا للمعايير المهنية والأكاديمية المحددة.لوح رغوي يُستخدم كمنصة للتشغيل والتثبيت
نظام غذائي هلاميReadyDietechJ10001يتم تقديم النظام الغذائي لفترة ما بعد الجراحة على أرضية القفص لمدة 3 أيام، عند الاستخدام.
GraphPad Prism v10.1.2GraphPadRRID: SCR_002798البرمجيات المستخدمة في التحليل الإحصائي وإنشاء الرسوم البيانية
مصباح رأسيمصنع بازو بنجن لمعدات الوقايةنظرًا لعدم توفر نص مصدر، يرجى تزويدي بالمحتوى المراد ترجمته من اللغة الإنجليزية إلى اللغة العربية لضمان تقديم ترجمة علمية دقيقة تتوافق مع معايير JoVE.مصباح رأسي يُستخدم لإضاءة المجال الجراحي
وسادة تسخينشركة شيجياجوانغ جيانوان للأجهزة الكهربائية المحدودةغير متاحوسادة تسخين مُسخنة مسبقاً إلى حوالي 38 °C للتعافي بعد الجراحة
نموذج محاكاة من الهيدروكسيباتيتإدارة جودة المخاطر (QRM)QRM-70127نموذج معايرة يُستخدم لتحويل قيم التوهين في التصوير المقطعي المحوسب إلى كثافة المعادن في العظام
جهاز تكبيرشركة Olympus CorporationSZX10الجهاز المستخدم لفحص أطراف الملقط المسنن وسن الخلع تحت التكبير
قناعمتجر سينلون (Senlun) المتخصص في الأجهزة الطبيةغير متاحقناع جراحي
جهاز التصوير المقطعي المحوسب الدقيقBruker SkyScanSkyScan 1276μCT جهاز مسح ضوئي استُخدم عند 80 كيلوفولت، 500 μA، و 10 μm دقة الفوكسل
Mimics Research v21.0تجسيدRRID: SCR_015802البرمجيات المستخدمة في إعادة البناء ثلاثي الأبعاد
بنتوباربيتال الصوديومSigma-AldrichP3761ملح بنتوباربیتال الصوديوم المستخدم كمحلول تخدير بتركيز 1%
محلول ملحي منظم بالفوسفاتSolarbioP1010مسحوق محلول ملحي منظم بالفوسفات بتركيز 0.01 مولار، والرقم الهيدروجيني 7.2–7.4
محلول بوفيدون-يود المطهرالمتجر الرئيسي لصيدلية بيلكون (Belkon Pharmacy)لا يوجد نص متاح للترجمة. يرجى تزويدي بالنص المصدر من اللغة الإنجليزية لبدء عملية الترجمة العلمية إلى اللغة العربية.محلول بوفيدون-أيودين المستخدم لتطهير البطن
أربطة مطاطيةمصنع فوشان بولي للمنتجات المطاطيةلا يوجد نص مترجم.أربطة مطاطية تُستخدم لتجميع مباعد الفم
محلول ملحيThermo FisherBR0053Gأقراص ملحية تستخدم لتحضير محلول التنظيف الفموي
نظام غذائي قياسي من أعلاف المختبراتشركة جيانغسو شيتونغ للصيدلة وهندسة التكنولوجيا الحيوية المحدودة.XTC01WC-001علف قياسي يُستخدم للإيواء الروتيني ويتم تليينه للتغذية بعد الجراحة
جهاز التعقيم بالبخارمرفق مؤسسيلم يتم توفير نص للمباشرة في ترجمته. يرجى تزويدي بالنص الإنجليزي المطلوب ترجمته إلى العربية وفقاً للمعايير المذكورة.المعدات المستخدمة لتعقيم الملاقط المسننة والمحلول الملحي
مسحات قطنية معقمةمتجر كانغبايلاي للأجهزة الطبيةنظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالنص الإنجليزي المراد ترجمته من محتوى JoVE العلمي والتعليمي، وسأقوم بترجمته بدقة إلى اللغة العربية الأكاديمية المتخصصة وفقًا للمعايير والضوابط المذكورة.مسحات قطنية معقمة ذات استخدام واحد
قفازات معقمةمتجر سينلون (Senlun) المتخصص في الأجهزة الطبيةنظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالنص الذي ترغب في ترجمته من الإنجليزية إلى العربية وفقًا للمعايير المحددة.قفازات لاتكس معقمة
نسيج غير منسوج معقممتجر هانغتشو لمستلزمات مكافحة العدوى في شاندونغ شينهوايرجى تقديم النص المصدر باللغة الإنجليزية لكي أتمكن من ترجمته إلى اللغة العربية وفقاً للمعايير العلمية والأكاديمية المحددة.نسيج غير منسوج معقم يُستخدم لتغطية سطح العمل ووسادة التسخين
غطاء رأس جراحي معقممتجر سنلون (Senlun) المتخصص في الأجهزة الطبيةغير متاحغطاء رأس جراحي معقم
ملابس التعقيم الجراحيةمتجر سينلون للأجهزة الطبية المتخصصةنظرًا لعدم توفر نص مصدر، يرجى تزويدنا بالمحتوى المراد ترجمته لنتمكن من البدء في العمل وفقًا للمعايير العلمية والأكاديمية المحددة.ملابس جراحية معقمة يتم ارتداؤها أثناء الإجراء
شريط لاصقThermo Fisher15947شريط لاصق يُستخدم لتثبيت أطراف الفأر
ملاقط عيون مسننةBeyotimeFS229ملاقط عينية مسننة تُستخدم كملاقط أسنان
مرهم عيون بيطريديشرا للمنتجات البيطرية (Dechra Veterinary Products)143-16مرهم عيني يوضع بعد التخدير لمنع جفاف القرنية

المراجع

  1. Chavez MB, et al. Bone sialoprotein is critical for alveolar bone healing in mice. J Dent Res. 2023;102(2):187-196.
  2. Guan B, Liu L, Liu Y. Application and characterisation of four genetically engineered animal models (mouse/zebrafish/rhesus monkey/drosophila) in acute myeloid leukemia. Gene. 2025;963:149607.
  3. Varshney GK, Burgess SM. Crispr-based functional genomics tools in vertebrate models. Exp Mol Med. 2025;57(7):1355-1372.
  4. Phanrungsuwan A, Donnelly B, Millán JL, Foster BL. Targeted alkaline phosphatase therapy enhances alveolar bone healing in X-linked hypophosphatemia in mice. J Periodontal Res. 2026;61(3):309-322. doi:10.1111/jre.70044.
  5. Mohamed FF, et al. Dentoalveolar defects and impaired alveolar bone healing in a neural crest-directed conditional knockout mouse model of hypophosphatasia. Bone. 2025;198:117538.
  6. Oka H, et al. Subset of the periodontal ligament expressing leptin receptor contributes to part of hard tissue-forming cells. Sci Rep. 2023;13(1):3442.
  7. Chen S, Rittel D, Shemtov Yona K. The normal stiffness of the edentulous alveolar process. Bone Rep. 2021;14:101066.
  8. Lungová V, et al. Tooth-bone morphogenesis during postnatal stages of mouse first molar development. J Anat. 2011;218(6):699-716.
  9. Iwama H, et al. Acellular extrinsic fiber cementum is invariably present in the superficial layer of apical cementum in mouse molar. J Histochem Cytochem. 2024;72(2):109-120.
  10. Hadad H, et al. Rodents as an animal model for studying tooth extraction-related medication-related osteonecrosis of the jaw: Assessment of outcomes. Arch Oral Biol. 2024;159:105875.
  11. Mouraret S, et al. A pre-clinical murine model of oral implant osseointegration. Bone. 2014;58:177-184.
  12. Yu F, Liu L, Xia L, Fang B. Establishment of a C57BL/6 mandibular critical-size bone defect model. J Craniofac Surg. 2021;32(7):2562-2565.
  13. Yu C, Yu F, Li F, Ye L. The establishment of a murine mandibular molar extraction socket healing model. J Vis Exp. 2023;(191). doi:10.3791/64855.
  14. University of Michigan Unit for Laboratory Animal Medicine. Guidelines on anesthesia and analgesia in mice. Updated January 23, 2026. Available at: https://az.research.umich.edu/animalcare/guidelines/guidelines-anesthesia-and-analgesia-mice/. Accessed August 5, 2026.
  15. Qiu Y, et al. Investigation of the furcation morphology of permanent mandibular first molars by using micro-computed tomography. BMC Oral Health. 2024;24(1):1150.
  16. Vieira AE, et al. Intramembranous bone healing process subsequent to tooth extraction in mice: Micro-computed tomography, histomorphometric and molecular characterization. PLoS One. 2015;10(5):e0128021.
  17. Jiang J, Mou J, Wang S, Liu J. Protocol for establishing a mouse model of bilateral maxillary first molar extraction to study alveolar bone healing. STAR Protoc. 2026;7(1):104366.
  18. Liang B, Zhang W, Xue Y. Observation and analysis of tooth extraction wound healing process of maxillary first molars in C57BL/6 mice. Chin J Pract Stomatol. 2019;12(232):e6.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

خلع الأسنان الفكية السفليةنموذج فأريتجدد العظاماتساق الخلعالتصوير المقطعي المحوسب الدقيقكسر العظم السنخيمضاعفات الخلعبنية السنخ

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.