مقالة منهجية

منهجية معدلة لخلع الأسنان لتحسين كفاءة الإجراء واتساقه في نموذج التئام سنخ السن الفكي السفلي لدى الفئران

23 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/72974

⸱

سبتمبر 8, 2026

 ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Oral Diseases & National Center for Stomatology & National Clinical Research Center for Oral Diseases, West China Hospital of Stomatology, Sichuan University, 2Department of Endodontics, West China Hospital of Stomatology, Sichuan University

في هذه المقالة

ملخص

يتم وصف نهج معدل لاستخراج الضرس السفلي الأول في الفئران ومقارنته بالنهج التقليدي لتقييم كفاءة الإجراء وقابليته للتكرار. يساهم النهج المعدل في تحسين اتساق الإجراء وتقليل التحديات التقنية في إنشاء نموذج لالتئام سنك الضرس السفلي لدى الفئران.

الملخص

يعد نموذج التئام سنخ السن (TSHM) نموذجاً حيوانياً واسع الاستخدام لاستقصاء الآليات الجزيئية الكامنة وراء تجدد العظام. ورغم أن نموذج TSHM في الفك السفلي للفئران ذو قيمة عالية لدراسة العمليات المرضية الخاصة بالفك السفلي، إلا أن إنشاء هذا النموذج لا يزال يمثل تحدياً تقنياً بسبب الخصائص التشريحية والميكانيكية الحيوية لمنطقة الضرس السفلي. يصف هذا البروتوكول نهجاً معدلاً لخلع الضرس الأول في الفك السفلي لدى الفئران، ويقارن أداءه بالتقنية التقليدية لتحسين كفاءة الإجراء وقابلية تكراره. وتحت ظروف تجريبية مضبوطة، قلل النهج المعدل بشكل كبير من متوسط وقت الخلع من 29 إلى 10 min. بالإضافة إلى ذلك، أظهرت المجموعة التي خضعت للنهج المعدل مضاعفات أقل مرتبطة بالخلع، بما في ذلك كسور الجذور والعظم السنخي، مما يشير إلى تحسن في اتساق الإجراء. كما أظهر تحليل التصوير المقطعي المحوسب الدقيق (μCT) تحسناً في الحفاظ على بنية سنخ الخلع خلال مرحلة الالتئام المبكرة. وتشير هذه النتائج إلى أن نهج الخلع المعدل يحسن كفاءة الإجراء وقابلية تكراره مع تقليل التحديات التقنية المرتبطة بخلع أسنان الفك السفلي للفئران. قد يسهل هذا البروتوكول إنشاء نماذج التئام سنخ أسنان الفك السفلي للفئران بشكل أكثر اتساقاً، خاصة للباحثين الذين لديهم خبرة محدودة في الجراحة المجهرية.

المقدمة

يعد نموذج التئام سنخ السن (TSHM) نموذجاً كلاسيكياً لدراسة تجدد العظام1. ينشئ هذا النموذج إصابة صعبة ولكنها دون الحرجة داخل العظم السنخي، مما يسمح بالتئام طبيعي ملائم دون تدخل إضافي1. تُستخدم الفئران على نطاق واسع ككائنات نموذجية نظراً لخلفيتها الجينية، وتشابه استقلاب العظام لديها مع البشر، وانخفاض تكاليف تربيتها نسبياً، وسهولة صيانتها2. وعلى مدى العقود القليلة الماضية، جعلت التطورات السريعة في تكنولوجيا تحرير الجينات من الفئران عنصراً لا غنى عنه في استقصاء الآليات الجزيئية التي يقوم عليها تجدد العظام3. وبناءً على ذلك، استُخدم خلع الأضراس في الفئران المعدلة وراثياً على نطاق واسع لإنشاء نموذج TSHM من أجل دراسة الآليات التنظيمية لتجدد العظام4,5,6.

اعتمدت معظم الدراسات السابقة في إنشاء نموذج خلع الأسنان في الفئران (TSHM) باستخدام الفك العلوي4,5,6، وذلك لأن الفك السفلي أكثر صلابة ميكانيكيًا وأقل مرونة من الفك العلوي7، مما يزيد من الصعوبة التقنية لعملية خلع السن. بالإضافة إلى ذلك، فإن المجال الجراحي لخلع الأضراس العلوية متاح بشكل أكبر نسبيًا، كما أن تثبيت الفك العلوي أسهل من تثبيت الفك السفلي، مما يجعل الإجراء أقل تطلبًا من الناحية التقنية. وعلى الرغم من هذه التحديات، فإن المورفولوجيا المنحنية والمتضخمة للجذر الذروي للضرس الأول في الفك السفلي للفأر تزيد من الثبات الميكانيكي داخل العظم السنخي المحيط8,9، مما يزيد من تعقيد عملية الخلع (الشكل 1). ومع ذلك، تظل نماذج خلع أسنان الفك السفلي ضرورية للغاية لاستقصاء العمليات المرضية الخاصة بالفك السفلي، بما في ذلك التهاب العظم والنقي، ونخر العظم في الفك المرتبط بالأدوية، والاندماج العظمي للغرسات، وتجديد العظام باستخدام المواد الحيوية10,1,12. ولذلك، فإن وجود طريقة قابلة للتكرار وموثوقة لخلع الأضراس السفلية في الفئران يعد أمرًا مهمًا للدراسات التي تتطلب نماذج التئام مقابس الأسنان الخاصة بالفك السفلي.

مخطط تشريح السن: مقاطع تظهر الميناء، والعاج، والملاط؛ وتشير الحروف A وB وC إلى المراحل.
الشكل 1مقارنة تخطيطية لمورفولوجيا الأسنان في البشر والفئران. 
(أ) رسم تخطيطي لسن إنسان بالغ. (ب) رسم تخطيطي للضرس الأول السفلي لفأر في مرحلة المراهقة. (ج) رسم تخطيطي للضرس الأول السفلي لفأر بالغ. تسلط المخططات الضوء على الاختلافات في مورفولوجيا الجذور وتوزيع الملاط التي تساهم في زيادة التثبيت الميكانيكي للأضراس الأولى السفلية للفئران البالغة داخل العظم السنخي. يُشار إلى الميناء والعاج والملاط بالألوان المقابلة الموضحة في مفتاح الرسم. تستند السمات التشريحية إلى الأوصاف المنشورة.8,9,15. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

تعتمد تقنية سابقة لاستخلاص الأسنان طورها فريقنا البحثي على استخدام محاقن تم تعديلها لتكون بمثابة رافعات سنية13. ورغم أن هذه الطريقة تسمح باستخلاص الضرس الأول السفلي الأيمن بنجاح في الفئران، إلا أنها تتطلب مستوى عالٍ من الدقة التقنية، كما أن منحنى تعلمها حاد يتطلب تدريباً مكثفاً. وقد يتسبب المشغلون غير ذوي الخبرة دون قصد في إصابات للهياكل التشريحية المجاورة. بالإضافة إلى ذلك، يتطلب استخلاص الضرس الأول السفلي الأيسر تدريباً إضافياً على "الصورة المرآتية" لتحقيق الكفاءة الإجرائية. وقد تؤدي هذه التحديات إلى الإضرار بسلامة سنخ الاستخلاص، وتقليل اتساق نتائج الالتئام بين الحيوانات، والحد من إمكانية وصول الباحثين الذين لديهم خبرة محدودة في الجراحة المجهرية إلى هذا النموذج.

يصف هذا البروتوكول نهجاً معدلاً لخلع الضرس الأول السفلي في الفئران لتحسين إمكانية الوصول الإجرائي وقابلية التكرار. تم التحقق من صحة البروتوكول في ذكور فئران C57BL/6 بعمر 8 أسابيع لإنشاء نموذج TSHM للضرس الأول السفلي. تمت مقارنة النهج المعدل بشكل منهجي مع التقنية التقليدية لتقييم كفاءة الإجراء، ونجاح الخلع، والمضاعفات المرتبطة بالعملية. بالإضافة إلى ذلك، تم تحليل أنماط الفشل التقني الشائعة التي تمت مواجهتها أثناء اكتساب المهارة لتوفير إرشادات عملية للباحثين الذين يعملون على إنشاء نموذج TSHM للفك السفلي في الفئران.

البروتوكول

تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل لجنة الأخلاقيات في مدرسة غرب الصين لطب الأسنان بجامعة سيتشوان (WCHSIRB-D-2025-18)، وأُجريت وفقاً للإرشادات المؤسسية الخاصة برعاية الحيوان.

ملاحظة: استخدم فئران ذكور من سلالة C57BL/6 بعمر 8 أسابيع وتزن 2–29 g. يتم الحفاظ على الحيوانات بنظام غذائي قياسي من العلف مع توفير الماء ad libitum تحت ظروف إيواء قياسية (21°C–24°C، ورطوبة 40%–60%، ودورة ضوء-ظلام مدتها 12-h). استخدم المواد والأدوات المدرجة في جدول المواد. استخدم 24 فأراً للتقييم المقارن وعرض الحالات الفاشلة. استخدم فئران إضافية لتدريب المشغل قبل التجربة المقارنة.

1. التحضير لما قبل الجراحة

  1. تجهيز الأدوات
    1. تجهيز إبر محاقن بقياس 25 G لاستخدامها كرافعات (اختياري). يتم ثني الطرف المائل لكل إبرة بزاوية تتراوح تقريبًا بين 20°–40°13.
    2. تجهيز ملاقط عيون مسننة لاستخدامها كملاقط أسنان. يتم فحص الطرف المسنن تحت التكبير للتأكد من محاذاة الأسنان بشكل صحيح وخلوها من أي تشوه.
    3. تجميع مباعد للفم باستخدام رباط مطاطي واحد وأربع إبر محاقن بقياس 25 G. وتجهيز لوح رغوي أو لوح كرتوني كمنصة للعمل، وشريط لاصق لتثبيت أطراف الفأر، ومصباح رأسي لإضاءة المجال الجراحي.
    4. تجهيز وسادة تدفئة للتعافي بعد الجراحة وتسخينها مسبقًا إلى حوالي 38°C قبل العملية. وتجهيز كرات قطنية لإيقاف النزيف وكمية مناسبة من المحلول الملحي لتنظيف تجويف الفم.
    5. تجهيز غطاء للإصبع لتغطية الإبهام وحماية المشغل أثناء عملية الخلع.
    6. وضع قماش غير منسوج ومعقم فوق سطح العمل ووسادة التدفئة للحفاظ على مجال معقم.
  2. تجهيز التخدير
    1. تطهير بطن الفأر باستخدام كرة قطنية مغموسة في محلول مطهر من البوفيدون-يود. يتم إعطاء بنتوباربيتال الصوديوم بتركيز 1% (50 mg/kg) عن طريق الحقن داخل الصفاق14. يتم تقييم عمق التخدير باستخدام اختبار قرص إصبع القدم وإعطاء تخدير إضافي حسب الحاجة.
      ملاحظة: إذا عاد رد فعل قرص إصبع القدم أو اقتربت العملية من المدة المتوقعة للتخدير، يجب إيقاف الإجراء وإعطاء تخدير إضافي وفقًا للبروتوكول البيطري المؤسسي المعتمد.
    2. وضع مرهم عيون بيطري في كلتا العينين فور التخدير لمنع جفاف القرنية.
  3. تجهيز التطهير والتعقيم
    1. تطهير منصة الجراحة، ووسادة التدفئة، والشريط اللاصق، وغطاء الإصبع، ومنطقة العمل المحيطة باستخدام إيثانول بتركيز 75%. يتم استخدام مسحات قطنية معقمة جديدة، وقماش غير منسوج، وأربطة مطاطية، وإبر لكل فأر. يتم تعقيم الملاقط المسننة والمحلول الملحي باستخدام بروتوكول التعقيم البخاري المؤسسي القياسي قبل الاستخدام.
      تحذير: الإيثانول بتركيز 75% مادة قابلة للاشتعال. يجب استخدامه في منطقة جيدة التهوية بعيدًا عن الحرارة والشرر واللهب المكشوف ومصادر الاشتعال الأخرى. يجب ارتداء معدات الوقاية الشخصية المناسبة. تُترك الأدوات والأسطح المعالجة بالإيثانول لتجف تمامًا قبل بدء الإجراء.
    2. إجراء نظافة اليدين قبل بدء العملية. ارتداء ملابس جراحية نظيفة، وغطاء رأس جراحي معقم، وقناع جراحي، وقفازات معقمة.

2. العملية الجراحية

  1. تثبيت وتنظيف الفأر
    1. ضع الفأر في وضعية الاستلقاء الظهري على لوحة التثبيت وثبت الأطراف باستخدام شريط لاصق. أدخل إبرتين بمقاس 25 G في اللوح الرغوي عند مستوى المستوى الحجاجي الأذني، وأدخل إبرتين إضافيتين بمقاس 25 G أسفل الفك السفلي.
    2. ضع الرباط المطاطي فوق الإبر وعبر القواطع لإبقاء الفم مفتوحاً. اسحب اللسان بلطف وثبته في الجانب المقابل لموقع القلع لمنع إعاقة المجال الجراحي. استخدم الضرس الأول السفلي الأيمن كمثال تمثيلي طوال هذا البروتوكول.
    3. أزل بقايا الطعام والمواد الغريبة الأخرى من تجويف الفم باستخدام كرة قطنية صغيرة مبللة بمحلول ملحي.
      ملاحظة: اعصر الكرة القطنية جيداً لإزالة المحلول الملحي الزائد ومنع دخول السائل إلى تجويف الفم، مما قد يسبب الاختناق.
  2. إزالة المقاومة القاصية والإنسية (اختياري)
    1. استخدم الملقط باليد اليسرى لسحب الزاوية اليمنى للفم وكشف الضرس الأول السفلي الأيمن والأنسجة الرخوة الشدقية واللسانية المحيطة به بشكل كامل.
    2. أمسك الملقط باليد اليمنى. ثم أمسك إبرة بمقاس 25 G باليد اليسرى وأدخل الإبرة بعناية في الرباط حول السني الشدقي الملاصق للجذر القاصي لإنشاء مساحة في الرباط حول السني.
    3. حرك الإبرة ببطء نحو المنطقة الذروية مع تدويرها إنسياً ولسانياً باتجاه الضرس لتحرير الجذر من السنخ السنخي.
    4. أدخل إبرة بمقاس 25 G في تفرع الجذر من الجانب الشدقي وارفعها إطباقياً باليد اليسرى. أدخل إبرة ثانية بمقاس 25 G في الرباط حول السني اللساني الملاصق للجذر الإنسي باليد اليمنى لإنشاء مساحة في الرباط حول السني، ثم دور الإبرة قاصياً وشدقياً.
    5. اسحب كلتا الإبرتين من المجال الجراحي بعد الانتهاء من التليين المسبق للرباط حول السني.
      ملاحظة: قم بالتليين المسبق للرباط حول السني فقط عندما يظهر السن حركية دنيا ومقاومة ملحوظة بعد التحريك الأولي باستخدام الملقط.
  3. التحريك والقلع
    1. ثبت رأس الفأر باستخدام إصبعي السبابة والوسطى لليد اليسرى. ضع الإبهام، المغطى بغطاء إصبع، مقابل القواطع السفلية للدعم أثناء إمساك الملقط باليد اليمنى.
    2. أمسك أطراف الملقط بشكل عمودي على المستوى الإطباقي وموازٍ للمحور الطولي للسن. ضع الأطراف المسننة داخل تفرع الجذر للحصول على سحب مستقر.
      ملاحظة: لا تمسك جذر السن مباشرة بالملقط لأن ذلك قد يؤدي إلى كسر الجذر.
    3. أمسك التاج بالملقط وقم بتطبيق حركات تحريك شدقية-لسانية لطيفة. حدد زاوية التحريك الشدقي بـ 30° وزاوية التحريك اللساني بـ 50°. قم بحركة تحريك واحدة كل 1–1.5 s.
    4. حافظ على السحب على طول المحور الطولي للضرس من الذروة نحو التاج مع تطبيق دعم مضاد ثابت مقابل القواطع السفلية ببطانة الإبهام الأيسر لتثبيت الفك السفلي.
      ملاحظة: حافظ على دعم مضاد مستمر ومستقر مع تجنب الضغط المفرط أو إزاحة القواطع والأنسجة الرخوة المجاورة.
    5. استمر في حركات التحريك حتى يصبح السن متحركاً تدريجياً ويرتفع السطح الإطباقي بشكل مرئي فوق الأضراس المجاورة. حافظ على أطراف الملقط موازية للمحور الطولي للسن طوال الإجراء، ثم اقلع السن بمجرد تحقيق الحركية الكافية.
      ملاحظة: قبل تطبيق قوة القلع النهائية، قيم حركية السن عن طريق تحريك التاج بلطف في الاتجاه الشدقي-اللساني. ابدأ في القلع فقط عندما يمكن إزاحة التاج بمقاومة دنيا ويصل سعة الحركة الشدقية-اللسانية إلى نصف عرض التاج تقريباً. أعد تقييم عمق التخدير مباشرة قبل القلع الكامل. أعطِ تخديراً إضافياً إذا لزم الأمر (الشكل 2).

مقارنة بين تقنيات خلع الأسنان، ومخطط بياني والنتائج؛ الطرق التقليدية والمعدلة باستخدام جذور مخلوعة.
الشكل 2مقارنة بين الطريقتين التقليدية والمعدلة لخلع الضرس الأول السفلي في الفئران. 
(أ) رسم تخطيطي لطريقة الخلع التقليدية، حيث يتم إدخال إبرة مقاس 25 G مثنية في الرباط حول السني واستخدامها كرافعة لخلخلة السن. (ب) رسم تخطيطي لطريقة الخلع المعدلة، حيث يتم إمساك التاج بملقط عيون مسنن وتطبيق قوة سحب موازية للمحور الطولي للسن. (ج) صورة تمثيلية للطرف المثني لإبرة 25 G المستخدمة كرافع. (د) صورة تمثيلية للملقط العيوني المسنن المستخدم كملقط للخلع الدقيق. (هـ) صورة تمثيلية أثناء العملية تظهر سنخ الخلع مباشرة بعد خلع الضرس الأول السفلي؛ تشير الخطوط المتقطعة إلى أسناخ الخلع. (و) منظر دهليزي للضرس الأول السفلي الذي تم خلعه بنجاح. (ز) منظر لساني للضرس الأول السفلي المخلوع نفسه. أشرطة المقياس = 2 مم (ج، د) و 400 µm (هـ–ز). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

3. فحص الأسنان المخلوعة ومقابس الخلع

  1. افحص السن المستخرجة للتأكد من إزالتها بالكامل وسلامتها التركيبية. تأكد من الحفاظ على مورفولوجيا الجذر، بحيث يكون الجذر الإنسي أطول، والجذر الوحشي أقصر، مع وجود توسع ذروي15. تحقق من عدم بقاء أي شظايا من العظم السنخي ملتصقة بالسن المستخرجة.
  2. افحص سنخ الخلع للتأكد من أنه نظيف وخالٍ من بقايا شظايا الجذور (الشكل 2).
    ملاحظة: إذا اشتبهت في وجود جذر محتجز أو مكسور أثناء الخلع، فتجنب التلاعب المتكرر لأن المحاولات المفرطة قد تؤدي إلى تفاقم عيوب السنخ. افحص موقع الخلع تحت التكبير لتأكيد وجود بقايا شظايا الجذور. سجل الحالات التي تحتوي على جذور محتجزة أو مكسورة كعمليات خلع فاشلة واستبعدها من تقييم النموذج اللاحق. تعامل مع هذه الحيوانات وفقاً لبروتوكول الحيوان المعتمد.

4. الرعاية بعد الجراحة

  1. استخدم قطناً جافاً لتحقيق الإرقاء. نظف التجويف الفموي باستخدام كرة قطنية صغيرة مبللة بمحلول ملحي، ثم أعد اللسان إلى موضعه.
    ملاحظة: بلل الكرة القطنية بأقل حجم ممكن من المحلول الملحي المعقم المطلوب لترطيب سطحها دون إنتاج سائل حر.
  2. أعطِ عقار carprofen (بجرعة 5 mg/kg، تحت الجلد) بعد الجراحة لتسكين الآلام ما بعد العملية.
  3. ضع الحيوان على وسادة تدفئة وراقبه باستمرار حتى يستعيد وعيه.
  4. بعد الإفاقة من التخدير، قدم علفاً قياسياً ليناً أو نظاماً غذائياً هلامياً على أرضية القفص لمدة 3 أيام، مع توفير الماء ad libitum. استأنف النظام الغذائي المعتمد على العلف القياسي بعد التأكد من عودة سلوك التغذية الطبيعي.
  5. راقب كمية الغذاء المتناولة، ووزن الجسم، والنشاط، وسلوك التنظيف، وتورم الوجه، والنزيف الفموي، وعلامات الألم أو الضيق في فترات زمنية محددة مسبقاً.

5. تدريب المشغلين

  1. يتم تعيين مشغلَين عشوائياً، على ألا يكون لأي منهما خبرة سابقة في نماذج تجديد الأنسجة الصلبة لدى الفئران، وتوزيعهما إما على مجموعة الخلع التقليدي أو مجموعة الخلع المعدل. يتم تدريب المشغلَين بشكل منفصل تحت إشراف نفس المدرب، الذي يتمتع بالكفاءة في كل من نهجي الخلع التقليدي والمعدل.
  2. خلال الأسبوع الأول، يُوجَّه كل مشغل للتدرب على إجراء الخلع المخصص له باستخدام جث فئران للتعرف على سير العمل الجراحي.
  3. خلال الأسبوع الثاني، يتم الإشراف على التدريب باستخدام فئران حية لتقييم وصقل التطبيق العملي لكل تقنية. يتم مراقبة كل إجراء لضمان التخدير الكافي ولمنع حدوث مضاعفات جراحية غير مقصودة، بما في ذلك الإصابة العرضية للأنسجة الرخوة المحيطة الناتجة عن التعامل غير السليم مع الأدوات أو تلف البنى السنخية. يتم تأكيد كفاءة المشغل عندما يتمكن من إجراء ثلاثة عمليات خلع ناجحة متتالية بشكل مستقل. وبعد إتمام التدريب الخاضع للإشراف، يتم الانتقال إلى تجارب الخلع المقارنة.

6. تحضير العينة

  1. يتم القتل الرحيم للفئران عن طريق الخلع العنقي. تُفصل الفكوك السفلية من الرأس ويُزال النسيج الرخو الملتصق بها.
  2. تُثبت الفكوك السفلية في محلول paraformaldehyde بتركيز 4% لمدة 48 h. تُحفظ العينات في PBS قبل إجراء الفحص بـ µCT.

7. التصوير المقطعي المحوسب الدقيق (µCT) والتحليلات

  1. قم بمسح الفكوك السفلى باستخدام ماسح µCT. اضبط معلمات المسح على 80 kV، و50 µA، ودقة فوكسل 10 µm، والمسح طبقة بطبقة.
  2. قم بمعايرة نظام µCT باستخدام نموذج وهمي من الهيدروكسي أباتيت. امسح النموذج الوهمي وقم بتصدير الصور المعاد بناؤها باستخدام DataViewer.
    1. حلل صور النموذج الوهمي باستخدام CTAn. أنشئ منحنى معايرة من خلال ربط قيم توهين CT المقاسة لغرسات النموذج الوهمي بكثافاتها المعدنية المعروفة لتحويل قيم التوهين إلى BMD.
    2. طبق معلمات مسح وإعادة بناء متطابقة على جميع العينات.
    3. أعد بناء جميع مجموعات البيانات باستخدام سير عمل إعادة البناء الموحد في CTAn المرتبط بنظام µCT. طبق إعدادات إعادة بناء وتعريف ROI ومعايير تحليل كمي متطابقة على جميع العينات. قم بإجراء إعادة بناء ثلاثية الأبعاد بشكل منفصل باستخدام Mimics Research للتصور التمثيلي، مع اتباع نفس تعريف ROI المستخدم في التحليل الكمي لـ CTAn.
  3. حدد المنطقة ذات الأهمية (ROI) عن طريق اختيار منطقة الجذر القاصية للضرس الأول السفلي المستخلص. اجمع 10 شريحة مستعرضة متتالية تمتد ذروياً من الوصلة المينائية الملاطية للضرس الثاني المجاور.
    1. حدد حدود ROI يدوياً في كل شريحة على طول حدود العظم السنخي المتكون حديثاً والمحيط بسنخ الخلع. قم بإجراء معالجة الصور والتحليل الكمي اللاحق باستخدام CTAn معلمات تحليل متطابقة لجميع العينات.
  4. قم بإجراء إعادة بناء ثلاثية الأبعاد باستخدام Mimics Research. احسب معدل حدوث كسر الجذر وعيوب جدار السنخ كنسبة من عينات الفك السفلي التي تظهر كل حالة بالنسبة للعدد الإجمالي لعينات الفك السفلي.
  5. أجرِ جميع التحليلات الإحصائية وأنشئ الرسوم البيانية باستخدام GraphPad Prism v10.1.2. قيم طبيعية المتغيرات المستمرة باستخدام اختبار Shapiro–Wilk.
    1. حدد الفأر الفردي وسنخ الخلع المقابل له كوحدة تجريبية لجميع التحليلات.
    2. قارن وقت الخلع، وBMD، وBV/TV بين المجموعات باستخدام اختبار Student’s t غير المقترن وذي الذيلين. قارن معدل حدوث كسر الجذر وعيوب جدار السنخ باستخدام اختبار Fisher’s exact.
    3. أشر إلى الدلالة الإحصائية كما يلي: *, p < 0.05؛ و**, p < 0.01؛ و***, p < 0.01. استخدم "ns" للإشارة إلى عدم وجود فرق ذو دلالة إحصائية بين المجموعتين.

النتائج

تم توضيح السمات التشريحية ذات الصلة بخلع الضرس الأول السفلي في الشكل 1، كما تم عرض نهجي الخلع التقليدي والمعدل تخطيطيًا في الشكل 2A،B. وتظهر الصور التمثيلية للإبرة المجهزة والملقط العيني المسنن، ومقابس الخلع الحديثة، والضرس الأول السفلي المخلوع في الشكل 2C–G. وتلخص الشكل 3 سير العمل الإجرائي الكامل. ولمقارنة كفاءة واتساق الإجراءين، تم تعيين مشغلين اثنين بخبرة متكافئة في التعامل مع الفئران عشوائيًا لإجراء خلع الضرس الأول السفلي باستخدام إما الطريقة التقليدية أو المعدلة. كانت جميع الفئران من ذكور C57BL/6 بعمر 8 أسابيع. تم تسجيل وقت الخلع والمضاعفات المرتبطة بالإجراء فور الخلع، بينما تم تقييم مقابس الخلع بواسطة µCT بعد أسبوعين من الالتئام. تم تسجيل وقت الخلع أثناء الإجراء وبالتالي لم يكن من الممكن تقييمه بشكل تعمية؛ وقد تم ترميز الأسنان المخلوعة ومجموعات بيانات µCT قبل التقييم بحيث يكون المقيم معميًا عن طريقة الخلع المستخدمة.

مخطط عملية خلع سن الفأر؛ التخدير، التعقيم، الخلع، الرعاية بعد الجراحة.
الشكل 3مخطط سير عمل إجراءات خلع الضرس الأول السفلي لدى الفئران بالطريقتين التقليدية والمعدلة. 
تبدأ سير العمل بتجهيز الأدوات، والتخدير، والتطهير والتعقيم، وتثبيت الفأر. بعد ذلك، يتفرع البروتوكول إلى نهجي الخلع التقليدي والمعدل؛ حيث يتضمن النهج التقليدي الإزالة المتتالية للمقاومة القاصية والإنسية قبل خلع السن، بينما يتضمن النهج المعدل إرخاءً اختيارياً مسبقاً للرباط حول السن، تتبعه حركات تمايل ثم خلع السن باستخدام ملقط عيني مسنن. وينتهي كلا النهجين بفحص السن المخلوعة وسنخ الخلع، يليه تقديم الرعاية ما بعد الجراحة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

تظهر صور µCT التمثيلية التي تم الحصول عليها مباشرة بعد الخلع وبعد أسبوعين من الالتئام في الشكل 4A–D. وقد أدى النهج المعدل إلى تقليل متوسط وقت الخلع بشكل ملحوظ مقارنة بالنهج التقليدي (10 min مقابل 29 min، p = 0.006؛ الشكل 4E). حدث كسر في الجذور لدى 2/6 من الفئران (3.3%) في المجموعة المعدلة و4/6 من الفئران (6.7%) في المجموعة التقليدية، دون وجود فرق ذو دلالة إحصائية بين المجموعتين (p = 0.545؛ الشكل 4F). لوحظت عيوب في جدار السنخ لدى 0/6 من الفئران في المجموعة المعدلة و4/6 من الفئران (66.7%) في المجموعة التقليدية؛ ولم يكن هذا الفرق ذا دلالة إحصائية (p = 0.0606؛ الشكل 4G). وبعد أسبوعين من الالتئام، أظهر تحليل µCT قيم BMD وBV/TV أعلى بشكل ملحوظ في المجموعة المعدلة مقارنة بالمجموعة التقليدية (p = 0.018 و p = 0.0253، على التوالي؛ الشكل 4H,I). وتثبت هذه النتائج قصر أوقات الخلع باستخدام النهج المعدل، وتشير إلى تحسن في اتساق عملية الخلع في ظل الظروف التجريبية المختبرة.

تصوير وتحليل الأسنان مع مقاطع نسيجية ومخططات بيانية تقارن بين الطرق التقليدية (Conv) والمعدلة (Mod)، وتوضح نتائج وقت الاستخراج، ومعدل حدوث الكسور، وكثافة العظام.
الشكل 4مقارنة بين النهجين التقليدي والمعدل لخلع الضرس الأول السفلي في الفئران وما يتبع ذلك من التئام سنخ السن. 
(أ-د) صور ممثلة للتصوير المقطعي المحوسب الدقيق (µCT(أ) صور لمقابس الخلع مباشرة بعد الخلع (A,B) وبعد أسبوعين من الخلع (C,D) باستخدام النهج التقليدي (A,C) أو النهج المعدل (B,D). تُظهر اللوحات 1-3 المناظر السهمية والإكليلية والمستعرضة على التوالي، وتُظهر اللوحة 4 إعادة البناء ثلاثية الأبعاد المقابلة. تحدد الخطوط المتقطعة الحمراء الخطوط الخارجية الأصلية للجذور. وتشير الخطوط المتقطعة البيضاء والأسهم الحمراء إلى عيوب جدار المقبس. وتشير الخطوط البرتقالية المتصلة في A1 وB1 وC1 وD1 إلى المواضع المقابلة للمناظر المقطعية العرضية. وتشير الخطوط المتقطعة الزرقاء في C1 وC2 وD1 وD2 إلى مدى العظم المتكون حديثاً داخل مقبس الخلع. تم تظليل العظم المتكون حديثاً باللون الأحمر في عمليات إعادة البناء ثلاثية الأبعاد (C4,D4). (E–I) مقارنة كمية لأداء الخلع والالتئام المبكر للمقبس، بما في ذلك وقت الخلع (E)، ونسبة حدوث كسر الجذور (F)، ونسبة حدوث عيوب جدار المقبس (G)، وكثافة المعادن العظمية (BMD; H)، وكِسر حجم العظم إلى حجم النسيج (BV/TV; I). بالنسبة لنتائج الإجراء (E–G)، ن = 6 فئران لكل مجموعة؛ لـ µCT تحليل التئام السنخ (H,I)، ن = 3 فئران لكل مجموعة. واعتُبر الفأر المنفرد وسنخ الخلع المقابل له وحدة تجريبية. أما النتائج المستمرة في E وH وI فقد عُرضت في صورة المتوسط ± الانحراف المعياري (SD)، وقُورنت باستخدام اختبار Student للعينات غير المزدوجة ثنائي الذيل. تـ عُرضت النتائج الفئوية في (F) و(G) كأعداد خام ونسب مئوية، وتمت مقارنتها باستخدام اختبار فيشر الدقيق. حدث كسر في الجذور لدى 4/6 من الفئران (6.7%) في المجموعة التقليدية، و2/6 من الفئران (3.3%) في المجموعة المعدلة. وحدثت عيوب في جدار السنخ لدى 4/6 من الفئران (66.7%) في المجموعة التقليدية، و0/6 من الفئران في المجموعة المعدلة. الدلالة الإحصائية: *، p < 0.05; ***, p < 0.001. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

عُرِّف الاستخراج الناجح بأنه الإزالة الكاملة للضرس الأول السفلي دون ترك أي بقايا من شظايا الجذر، مع الحفاظ على بنية السنخ السنخي لتقييم الالتئام لاحقاً، كما هو موضح في الشكل 4A–D. واعتُبر الاستخراج غير ناجح عندما أدت الإزالة غير الكاملة للسن أو التلف الناتج عن الإجراء إلى إعاقة التقييم اللاحق لالتئام السنخ. تظهر النتائج غير الناجحة النموذجية في الشكل 5A–F؛ حيث يظهر كسر التاج في الشكل 5A، وكسر الجذر القاصي في الشكل 5B، وعيب في الجذر الإنسي في الشكل 5C. كما تظهر شظايا الجذر المتبقية وكسر طرف الجذر في الشكل 5D,E، على التوالي. ويظهر التلف البنيوي بالقرب من منطقة قناة العصب السنخي السفلي في الشكل 5F. ارتبطت هذه النتائج غير الناجحة بعدم التحكم الصحيح في زاوية أو عمق إدخال الإبرة، أو اتخاذ مسارات استخراج غير مناسبة، أو تطبيق قوة مفرطة، أو المعالجة الزائدة. إن إدراج كل من النتائج الناجحة وغير المثالية يوضح نطاق النتائج التي قد تحدث أثناء تنفيذ البروتوكول، ويوفر معايير لتفسير نجاح وفشل عملية الاستخراج.

تحليل الكسور السنية، التصوير المقطعي المحوسب، مخطط يوضح إصابات الجذر والتاج، تقييم الأضرار الهيكلية.
الشكل 5أمثلة نموذجية لعمليات خلع فاشلة للضرس الأول السفلي في الفئران. 
(أ-و) نماذج تمثيلية µCT صور وإعادة بناء ثلاثية الأبعاد توضح المضاعفات الشائعة المرتبطة بالخلع. (أ) كسر التاج. (ب) كسر الجذر القاصي. (ج) عيب في الجذر الإنسي. (د) جزء متبقٍ من الجذر. (هـ) كسر طرف الجذر. (و) تلف في البنيات التشريحية المحيطة. تحدد الخطوط المتقطعة الحمراء الخطوط الخارجية الأصلية للجذر. وتحدد الخطوط المتقطعة البيضاء العيوب العظمية أو البنيات التشريحية المجاورة. تشير الأسهم الحمراء إلى مواقع الإصابة أو أجزاء الجذر المتبقية. تم تظليل الجذور المكسورة والأسنان المجاورة باللون الأحمر في عمليات إعادة البناء ثلاثية الأبعاد الموضحة في اللوحات أ، ب، د، وهـ. وتتضمن اللوحتان ج و مناظير مقطعية تمثيلية لعمليات إعادة البناء ثلاثية الأبعاد. جُمعت جميع العينات بعد أسبوعين من خلع السن. أشرطة المقياس = 200 µmالاختصار: µCT، التصوير المقطعي المحوسب الدقيق. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

المناقشة

يتطلب التأسيس الناجح لنموذج TSHM إزالة السن بالكامل مع الحفاظ على بنية السنخ المحيطة، حيث إن الإصابات المرتبطة بالخلع قد تؤثر سلبًا على تجدد العظام اللاحق16. وبناءً على ذلك، تمثل قابلية تكرار إجراء الخلع محددًا حاسمًا لموثوقية النموذج17. في هذه الدراسة، تمت مقارنة منهجية معدلة لخلع الضرس الأول السفلي تعتمد على الملاقط مع تقنية تقليدية تعتمد على الرافعة، وذلك تحت ظروف تدريب موحدة. أظهرت الطريقة المعدلة تحسنًا في كفاءة الإجراء وقابلية التكرار، وهو ما انعكس في تقليل وقت الخلع بشكل ملحوظ وانخفاض المضاعفات المرتبطة بالخلع. وتحديدًا، بعد فترة تدريب مدتها أسبوعين، انخفض متوسط وقت الخلع من 29 min باستخدام المنهج التقليدي إلى 10 min باستخدام المنهج المعدل. علاوة على ذلك، لم تُلاحظ أي عيوب في جدار السنخ السني في المجموعة التي استخدمت الطريقة المعدلة، بينما تكررت هذه المضاعفة في المجموعة التقليدية. ورغم أن معدل حدوث كسر الجذور لم يختلف بشكل كبير بين المجموعتين، إلا أن الانخفاض في تكرار هذه الحالة مع الطريقة المعدلة يشير إلى تحسن في اتساق الإجراء تحت الظروف التجريبية الحالية. بالإضافة إلى ذلك، ارتبط الحفاظ الأفضل على بنية سنخ الخلع بتعزيز التئام العظام المبكر بعد أسبوعين. وبشكل جماعي، تشير هذه النتائج إلى أن التقنية المعدلة قد تقلل من التباين المرتبط بالقدرة التشغيلية للممارس أثناء تأسيس النموذج.

يعد الفحص المباشر للسن المستخرج والسنخ كافياً للتحديد الروتيني لكسور الجذور الواضحة وعيوب السنخ الرئيسية. في هذه الدراسة المقارنة، استُخدم التصوير المقطعي المحوسب الدقيق (µCT) كأداة تحقق موضوعية لتحديد شظايا الجذور المتبقية وعيوب جدار السنخ الدقيقة ولقياس نتائج التئام السنخ المبكرة. ويمكن إرجاع الأداء المحسن للنهج المعدل إلى الاختلافات في الاستراتيجية الميكانيكية المستخدمة لخلع السن. تعتمد تقنيات الخلع التقليدية لنموذج TSHM في الفك السفلي للفئران عموماً على إجراءات الخلع (luxation)13,18، حيث يتم إدخال القوة الميكانيكية عبر أدوات تُوضع حول الضرس وتُطبق تدريجياً لتحريك السن. ومع ذلك، ونظراً لأن الضواحك الأولى في الفك السفلي للفئران تتميز بمورفولوجيا جذر ذروي متضخم وإمكانية وصول جراحية محدودة9، فإن مثل هذه الإجراءات قد تولد إجهاداً ميكانيكياً موضعياً في موقع الإدخال والهياكل السنخية المحيطة. في المقابل، ينقل النهج المعدل نقطة تطبيق القوة الأساسية من منطقة الجذر إلى التاج الأكثر استقراراً. ومن خلال تطبيق سحب محكوم موازٍ للمحور الطولي للسن مع تثبيت الفك السفلي في آن واحد، قد تسهل هذه الاستراتيجية التوسع التدريجي لسنخ الخلع وتقليل تركيز الإجهاد غير المنضبط. ومن المهم ملاحظة أن هذا التعديل يبسط أيضاً خطوة التحكم الرئيسية في القوة أثناء الخلع، مما قد يقلل من العائق التقني أمام الباحثين الذين لديهم خبرة محدودة في الجراحة المجهرية.

على الرغم من هذه المزايا، تظل هناك عدة اعتبارات تقنية مهمة للتنفيذ الناجح لهذا البروتوكول لأن النتيجة تظل معتمدة على تقنية المشغل. أولاً، حافظ على اتجاه القوة المطبقة موازياً للمحور الطولي للسن لتحسين إطباق التاج وتقليل تركيز الإجهاد غير الضروري وكسر الجذور المرتبط بتطبيق القوة خارج المحور. ثانياً، تجنب عمق الإدخال المفرط للملاقط المسننة أو المناولة المفرطة، حيث قد يؤدي أي منهما إلى المساس بسلامة سنخ الخلع. ثالثاً، خلال خطوة التليين المسبق للرباط حول السني الاختيارية، أدخل الإبرة موازية للمحور الطولي لجذر السن لتقليل الإصابة في العظم السنخي المحيط، بما يتفق مع تقرير المؤلفين السابق13. لذلك، ورغم أن النهج المعدل يحسن من إمكانية الوصول الإجرائية، فإن التدريب الكافي والتعامل الموحد يظلان ضروريين لتحقيق نتائج متسقة.

يجب مراعاة عدة قيود عند تفسير هذه النتائج. أولاً، كان حجم العينة لتقييم µCT محدوداً نسبياً؛ لذا، ينبغي تفسير الاختلافات الملحوظة في التئام العظم المبكر كدليل داعم لتحسين إنشاء النموذج بدلاً من كونه دليلاً قاطعاً على تعزيز الالتئام. ثانياً، شملت هذه الدراسة اثنين فقط من المشغلين، وبناءً على ذلك، كان تقييم التباين بين المشغلين محدوداً وقد يكون قد تسبب في تحيز مرتبط بالمشغل. ثالثاً، تم التحقق من صحة البروتوكول فقط في الأضراس الأولى السفلية اليمنى لفئران ذكور تبلغ من العمر 8 أسابيع. ولم يتم إجراء مقارنات كمية لنجاح القلع والمضاعفات المرتبطة بالإجراء والتئام السنخ عبر مجموعات عمرية مختلفة. وعليه، فإن إمكانية تعميم المزايا الملحوظة على حيوانات من أعمار أو أجناس مختلفة تتطلب مزيداً من البحث.

باختصار، تقدم هذه الدراسة نهجاً محسناً لخلع الضرس الأول السفلي في الفئران، وتتحقق من كفاءته من خلال المقارنة المباشرة مع التقنية التقليدية. تسهل الطريقة المعدلة إنشاء نماذج التئام السنخ السني للضرس السفلي في الفئران بشكل أكثر قابلية للتكرار، مع خفض الحاجز التقني الأولي للمبتدئين. وتوفر هذه النتائج إرشادات عملية للباحثين الذين يعملون على إنشاء نماذج التئام السنخ السني السفلي.

الإفصاحات

يقر المؤلفون بعدم وجود تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (منحة رقم 82571084) وبرنامج العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة Sichuan (منحة رقم 2024JDKXJ0001).

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
إبر حقن بمقياس 25 GBeyotimeFS802-30 قطعةإبر محاقن تستخدم لمرة واحدة، وتُستخدم لمباعد الفم وللتخلخل المسبق الاختياري للرباط حول السني
محلول بارافورمالدهيد بتركيز 4%SolarbioP1110محلول بارافورمالدهيد بتركيز 4% المستخدم لتثبيت العينات
إيثانول بتركيز 75%متجر أوس للأجهزة الطبيةيرجى تزويدي بالنص المصدر باللغة الإنجليزية لبدء عملية الترجمة.إيثانول بدرجة طبية بتركيز 75% يستخدم لتطهير الأسطح
فئران C57BL/6Charles River213فئران ذكر من سلالة C57BL/6 بعمر 8 أسابيع وتزن 22–٢٩ جم
كاربروفينSolarbioC5350مُسكن للألم بعد الجراحة يُعطى تحت الجلد بجرعة 5 ملجم/كجم
كرات قطنيةأجهزة أونينج الطبية (Ouning Medical Devices)نظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالنص المراد ترجمته من الإنجليزية إلى العربية وفقاً للمعايير المهنية المذكورة.كرات قطنية معقمة تُستخدم للتنظيف الفموي وإرقاء الدم
CTAn v1.18.4.0+SkyScanلا ينطبقالبرمجيات المستخدمة لـ μCT تحليل الصور
DataViewer v1.5.6.2سكاي سكان (SkyScan)نظرًا لعدم توفر نص مصدر، يرجى تزويدي بالنص الذي ترغب في ترجمته إلى اللغة العربية.البرمجيات المستخدمة لعرض وتصدير النماذج المعاد بناؤها μCT صور
أغطية الأصابعمكتب LeSuMEKU-1/2/3Bأغطية الأصابع المستخدمة لحماية الإبهام أثناء عملية الاستخلاص
لوح رغويشركة دونغ غوان ليجيانغ لونغ الصناعية المحدودة (Dongguan Lijianglong Industrial Co., Ltd.)نظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالمحتوى العلمي أو التعليمي المطلوب ترجمته من اللغة الإنجليزية إلى اللغة العربية، وسأقوم بتنفيذه وفقًا للمعايير المهنية والأكاديمية المحددة.لوح رغوي يُستخدم كمنصة للتشغيل والتثبيت
نظام غذائي هلاميReadyDietechJ10001يتم تقديم النظام الغذائي لفترة ما بعد الجراحة على أرضية القفص لمدة 3 أيام، عند الاستخدام.
GraphPad Prism v10.1.2GraphPadRRID: SCR_002798البرمجيات المستخدمة في التحليل الإحصائي وإنشاء الرسوم البيانية
مصباح رأسيمصنع بازو بنجن لمعدات الوقايةنظرًا لعدم توفر نص مصدر، يرجى تزويدي بالمحتوى المراد ترجمته من اللغة الإنجليزية إلى اللغة العربية لضمان تقديم ترجمة علمية دقيقة تتوافق مع معايير JoVE.مصباح رأسي يُستخدم لإضاءة المجال الجراحي
وسادة تسخينشركة شيجياجوانغ جيانوان للأجهزة الكهربائية المحدودةغير متاحوسادة تسخين مُسخنة مسبقاً إلى حوالي 38 °C للتعافي بعد الجراحة
نموذج محاكاة من الهيدروكسيباتيتإدارة جودة المخاطر (QRM)QRM-70127نموذج معايرة يُستخدم لتحويل قيم التوهين في التصوير المقطعي المحوسب إلى كثافة المعادن في العظام
جهاز تكبيرشركة Olympus CorporationSZX10الجهاز المستخدم لفحص أطراف الملقط المسنن وسن الخلع تحت التكبير
قناعمتجر سينلون (Senlun) المتخصص في الأجهزة الطبيةغير متاحقناع جراحي
جهاز التصوير المقطعي المحوسب الدقيقBruker SkyScanSkyScan 1276μCT جهاز مسح ضوئي استُخدم عند 80 كيلوفولت، 500 μA، و 10 μm دقة الفوكسل
Mimics Research v21.0تجسيدRRID: SCR_015802البرمجيات المستخدمة في إعادة البناء ثلاثي الأبعاد
بنتوباربيتال الصوديومSigma-AldrichP3761ملح بنتوباربیتال الصوديوم المستخدم كمحلول تخدير بتركيز 1%
محلول ملحي منظم بالفوسفاتSolarbioP1010مسحوق محلول ملحي منظم بالفوسفات بتركيز 0.01 مولار، والرقم الهيدروجيني 7.2–7.4
محلول بوفيدون-يود المطهرالمتجر الرئيسي لصيدلية بيلكون (Belkon Pharmacy)لا يوجد نص متاح للترجمة. يرجى تزويدي بالنص المصدر من اللغة الإنجليزية لبدء عملية الترجمة العلمية إلى اللغة العربية.محلول بوفيدون-أيودين المستخدم لتطهير البطن
أربطة مطاطيةمصنع فوشان بولي للمنتجات المطاطيةلا يوجد نص مترجم.أربطة مطاطية تُستخدم لتجميع مباعد الفم
محلول ملحيThermo FisherBR0053Gأقراص ملحية تستخدم لتحضير محلول التنظيف الفموي
نظام غذائي قياسي من أعلاف المختبراتشركة جيانغسو شيتونغ للصيدلة وهندسة التكنولوجيا الحيوية المحدودة.XTC01WC-001علف قياسي يُستخدم للإيواء الروتيني ويتم تليينه للتغذية بعد الجراحة
جهاز التعقيم بالبخارمرفق مؤسسيلم يتم توفير نص للمباشرة في ترجمته. يرجى تزويدي بالنص الإنجليزي المطلوب ترجمته إلى العربية وفقاً للمعايير المذكورة.المعدات المستخدمة لتعقيم الملاقط المسننة والمحلول الملحي
مسحات قطنية معقمةمتجر كانغبايلاي للأجهزة الطبيةنظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالنص الإنجليزي المراد ترجمته من محتوى JoVE العلمي والتعليمي، وسأقوم بترجمته بدقة إلى اللغة العربية الأكاديمية المتخصصة وفقًا للمعايير والضوابط المذكورة.مسحات قطنية معقمة ذات استخدام واحد
قفازات معقمةمتجر سينلون (Senlun) المتخصص في الأجهزة الطبيةنظرًا لعدم توفر نص مصدر للترجمة، يرجى تزويدي بالنص الذي ترغب في ترجمته من الإنجليزية إلى العربية وفقًا للمعايير المحددة.قفازات لاتكس معقمة
نسيج غير منسوج معقممتجر هانغتشو لمستلزمات مكافحة العدوى في شاندونغ شينهوايرجى تقديم النص المصدر باللغة الإنجليزية لكي أتمكن من ترجمته إلى اللغة العربية وفقاً للمعايير العلمية والأكاديمية المحددة.نسيج غير منسوج معقم يُستخدم لتغطية سطح العمل ووسادة التسخين
غطاء رأس جراحي معقممتجر سنلون (Senlun) المتخصص في الأجهزة الطبيةغير متاحغطاء رأس جراحي معقم
ملابس التعقيم الجراحيةمتجر سينلون للأجهزة الطبية المتخصصةنظرًا لعدم توفر نص مصدر، يرجى تزويدنا بالمحتوى المراد ترجمته لنتمكن من البدء في العمل وفقًا للمعايير العلمية والأكاديمية المحددة.ملابس جراحية معقمة يتم ارتداؤها أثناء الإجراء
شريط لاصقThermo Fisher15947شريط لاصق يُستخدم لتثبيت أطراف الفأر
ملاقط عيون مسننةBeyotimeFS229ملاقط عينية مسننة تُستخدم كملاقط أسنان
مرهم عيون بيطريديشرا للمنتجات البيطرية (Dechra Veterinary Products)143-16مرهم عيني يوضع بعد التخدير لمنع جفاف القرنية

المراجع

  1. Chavez MB, et al. Bone sialoprotein is critical for alveolar bone healing in mice. J Dent Res. 2023;102(2):187-196.
  2. Guan B, Liu L, Liu Y. Application and characterisation of four genetically engineered animal models (mouse/zebrafish/rhesus monkey/drosophila) in acute myeloid leukemia. Gene. 2025;963:149607.
  3. Varshney GK, Burgess SM. Crispr-based functional genomics tools in vertebrate models. Exp Mol Med. 2025;57(7):1355-1372.
  4. Phanrungsuwan A, Donnelly B, Millán JL, Foster BL. Targeted alkaline phosphatase therapy enhances alveolar bone healing in X-linked hypophosphatemia in mice. J Periodontal Res. 2026;61(3):309-322. doi:10.1111/jre.70044.
  5. Mohamed FF, et al. Dentoalveolar defects and impaired alveolar bone healing in a neural crest-directed conditional knockout mouse model of hypophosphatasia. Bone. 2025;198:117538.
  6. Oka H, et al. Subset of the periodontal ligament expressing leptin receptor contributes to part of hard tissue-forming cells. Sci Rep. 2023;13(1):3442.
  7. Chen S, Rittel D, Shemtov Yona K. The normal stiffness of the edentulous alveolar process. Bone Rep. 2021;14:101066.
  8. Lungová V, et al. Tooth-bone morphogenesis during postnatal stages of mouse first molar development. J Anat. 2011;218(6):699-716.
  9. Iwama H, et al. Acellular extrinsic fiber cementum is invariably present in the superficial layer of apical cementum in mouse molar. J Histochem Cytochem. 2024;72(2):109-120.
  10. Hadad H, et al. Rodents as an animal model for studying tooth extraction-related medication-related osteonecrosis of the jaw: Assessment of outcomes. Arch Oral Biol. 2024;159:105875.
  11. Mouraret S, et al. A pre-clinical murine model of oral implant osseointegration. Bone. 2014;58:177-184.
  12. Yu F, Liu L, Xia L, Fang B. Establishment of a C57BL/6 mandibular critical-size bone defect model. J Craniofac Surg. 2021;32(7):2562-2565.
  13. Yu C, Yu F, Li F, Ye L. The establishment of a murine mandibular molar extraction socket healing model. J Vis Exp. 2023;(191). doi:10.3791/64855.
  14. University of Michigan Unit for Laboratory Animal Medicine. Guidelines on anesthesia and analgesia in mice. Updated January 23, 2026. Available at: https://az.research.umich.edu/animalcare/guidelines/guidelines-anesthesia-and-analgesia-mice/. Accessed August 5, 2026.
  15. Qiu Y, et al. Investigation of the furcation morphology of permanent mandibular first molars by using micro-computed tomography. BMC Oral Health. 2024;24(1):1150.
  16. Vieira AE, et al. Intramembranous bone healing process subsequent to tooth extraction in mice: Micro-computed tomography, histomorphometric and molecular characterization. PLoS One. 2015;10(5):e0128021.
  17. Jiang J, Mou J, Wang S, Liu J. Protocol for establishing a mouse model of bilateral maxillary first molar extraction to study alveolar bone healing. STAR Protoc. 2026;7(1):104366.
  18. Liang B, Zhang W, Xue Y. Observation and analysis of tooth extraction wound healing process of maxillary first molars in C57BL/6 mice. Chin J Pract Stomatol. 2019;12(232):e6.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.