يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة بحثية

تنظيم الأميغدالين لمسار إشارات FOXO3a لتثبيط الإجهاد التأكسدي وتحسين الثعلبة البقعية في الفئران

70 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/73759

⸱

سبتمبر 29, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

تهدف هذه الدراسة إلى استكشاف الآليات الجزيئية المحتملة الكامنة وراء التأثيرات المضادة للأكسدة والمضادة للالتهابات لمادة الأميغدالين (amygdalin) في نموذج الثعلبة البقعية لدى فئران C3H/HeJ وفي نموذج إصابة الخلايا الميلانية البشرية الأولية في البشرة والمستحثة بواسطة H2O2.

الملخص

تهدف هذه الورقة البحثية إلى استكشاف آلية التأثير العلاجي لمادة الأميغدالين (AMG) على الثعلبة البقعية (AA). استُخدم صبغ الهيماتوكسيلين والإيوزين لاستقصاء السُمية الكبدية والكلوية لمركب AMG. وبعد إنشاء نموذج AA في فئران من سلالة C3H/HeJ وH2O2-خلايا ميلانينية بشرية أولية تالفة (HPEMs)، وعقب التدخل باستخدام AMG، تم رصد محتوى أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) ومستويات بروتين وجين forkhead box O3A (FOXO3a). ومجموعات تحليل كيميائية حيوية أو ‌المقايسة المناعية المرتبطة بالإنزيم‌ استُخدمت للكشف عن محتويات سوبر أكسيد ديسميوتاز (SOD)، والكاتالاز (CAT)، وغلوتاثيون بيروكسيداز 4 (GPX-4)، والمالون ديالدهيد (MDA)، وإنترلوكين-15 (IL-15)، وإنترفيرون غاما (IFN-γ)، وإنترلوكين-6‌ أُجري تحليل لطخة ويسترن (Western blot) لتقييم مستويات MHC I، وIL-15، وFOXO3a، وSOD، وCAT، وGPX-4، وIFN-6.γ، وIL-6، وIL-15. أُجري تحليل الترسيب المناعي للكروماتين متبوعاً بتفاعل البوليميراز المتسلسل (ChIP-PCR) لتقييم إثراء AMG عند محفزات SOD وCAT وGPX-4 في FOXO3a. وفي الوقت ذاته، تم استقصاء أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS)، والموت الخلوي المبرمج، ومستويات البروتين والجينات لكل من FOXO3a وSOD وCAT وGPX-4 في الخلايا الظهارية الرئوية البشرية (HPEMs) ذات التعبير المنخفض عن FOXO3a. لا يمتلك AMG سمية محتملة في الكبد أو الكلى، ويمكنه تقليل تعبير بروتينات MHC I وIL-15 في الجلد، بالإضافة إلى تقليل مستوى IL-15 في المصل. كما يمكن لـ AMG تعزيز تعبير بروتين وجين FOXO3a في الجلد، وكذلك رفع مستويات SOD وCAT وGPX-4، مع تقليل مستويات ROS وMDA. ويمكن لـ AMG تثبيط MHC I وIFN-γوIL-6، وIL-15، وMDA، والموت الخلوي المبرمج، وإنتاج أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) في الخلايا الظهارية المبطنة للأنابيب الكلوية البشرية (HPEMs)، وزيادة محتويات SOD وCAT وGPX-4. ومن المهم أن AMG يمكنه زيادة تنظيم تعبير جينات وبروتينات FOXO3a وSOD وCAT وGPX-4، وإثراء FOXO3a عند محفزات SOD وCAT وGPX-4. تشير هذه البيانات إلى أن AMG يمكن أن يعزز تعبير FOXO3a ويثبط الإجهاد التأكسدي والاستجابات الالتهابية، مما يؤدي بالتالي إلى تحسين AA في فئران C3H/HeJ.

المقدمة

باعتبارها اضطراباً مناعياً ذاتياً يتميز بتساقط شعر مفاجئ وغير ندبي، تبلغ نسبة انتشار الثعلبة البقعية (AA) عالمياً حوالي 2–3%، ويوجد أكثر من 30 مليون مريض في الصين1. وتظهر البيانات الوبائية أن المرض يمكن أن يصيب الأفراد من جميع الفئات العمرية، ولكنه يظهر انتشاراً أعلى بين البالغين الشباب، حيث يعاني حوالي 60% من المرضى من الإصابة الأولى قبل سن 20 عاماً، مع نسبة متساوية تقريباً بين الذكور والإناث1,2. وعلى الصعيد العالمي، يبلغ معدل الإصابة السنوي بـ AA حوالي 0.2–0.3%، حيث تمثل الثعلبة البقعية أحادية الموقع 40%، والثعلبة البقعية متعددة المواقع 35%، والصلع الكلي 5%، والثعلبة الشاملة 2%3,4,5. ومن حيث المضاعفات، يعاني حوالي 30% من المرضى من انخسافات في الأظافر، وتضاريس طولية، وأضرار أخرى، كما يتجاوز معدل المراضة المشتركة مع أمراض مناعية ذاتية مثل اضطرابات الغدة الدرقية والبهاق المستويات الملحوظة لدى عامة الناس6,7. ومن منظور الضرر، لا تؤثر AA على المظهر فحسب، بل إنها عرضة أيضاً للتسبب في مشاكل نفسية مثل الاكتئاب والقلق، حيث يعاني حوالي 70% من المرضى الجدد من أحداث ضغط نفسي شديدة خلال 3 أشهر قبل ظهور المرض8,9. وفي حال تركها دون علاج لفترة طويلة، قد يتطور حال المرضى إلى الصلع الكلي أو الثعلبة الشاملة، مما يؤثر بشدة على وظائفهم الاجتماعية وجدة حياتهم10.

يستخدم الطب الغربي حالياً بشكل أساسي مزيجاً من الأدوية الموضعية، والأدوية الفموية، والعلاج الطبيعي، وزراعة الشعر لعلاج الثعلبة AA11,12. يشمل العلاج الموضعي بشكل أساسي محلول minoxidil والكورتيكوستيرويدات (مثل كريم fluticasone propionate)، والتي تعمل على تحفيز بصيلات الشعر وتثبيط الاستجابات المناعية الموضعية لتعزيز نمو الشعر، إلا أن الاستخدام طويل الأمد قد يؤدي إلى تفاعلات عكسية مثل ضمور الجلد13,14. أما بالنسبة للمرضى الذين يعانون من مرض مترقٍ، فيمكن لمثبطات المناعة الفموية (مثل prednisone وcyclosporine) أن تنظم الاستجابة المناعية الجهازية بفعالية، ولكن الأمر يتطلب مراقبة منتظمة لوظائف الكبد والكلى12,15. وفي العلاج الطبيعي، يعمل الإشعاع فوق البنفسجي متوسط الموجة ضيق النطاق والعلاج بالليزر منخفض الطاقة على تحسين الدورة الدموية الدقيقة للمساعدة في نمو الشعر، ولكن يتطلب ذلك جلسات علاجية متعددة، وتختلف النتيجة من شخص لآخر16,17. وبالنسبة للحالات المستعصية، يمكن لجراحة زراعة الشعر نقل بصيلات شعر صحية إلى المنطقة المصابة بالصلع، ولكن هناك خطر من فشل عملية الزراعة، كما أنها تتطلب صيانة دوائية18. تكمن مزايا علاج الطب الغربي في سرعة مفعوله ودرجة تقنيسه العالية، خاصة في حالات الثعلبة AA الموضعية المبكرة19. ومع ذلك، تشمل عيوبه القابلية للانتكاس عند استخدام الأدوية الهرمونية، والآثار الجانبية الكبيرة لمثبطات المناعة، ومحدودية فعاليتها بالنسبة لمرضى الصلع الكلي/الثعلبة الشاملة20,21. بالإضافة إلى ذلك، فإن دورة العلاج طويلة (عادة من 3–6 أشهر)، والتكلفة مرتفعة (مثل التكلفة السنوية لمثبطات JAK والعوامل البيولوجية، التي تتجاوز 100,000 يوان)، مما يحد أيضاً من تطبيقها على نطاق واسع19,22. وللأسباب العديدة المذكورة أعلاه، يرى المؤلفون حاجة ملحة لاستكشاف أدوية موجهة جديدة.

يساهم الإجهاد التأكسدي بشكل كبير في الآلية المرضية لمرض الثعلبة (AA). فخلال عملية تخليق الصبغة في الخلايا الميلانية، يتم إنتاج كمية كبيرة من بيروكسيد الهيدروجين (H2O2)23,24. وفي الظروف الطبيعية، يمكن التخلص من هذه المادة بواسطة الإنزيمات المضادة للأكسدة (مثل سوبر أكسيد ديسميوتيز (SOD) والكاتالاز (CAT))25. ومع ذلك، غالبًا ما تكون نشاطات الإنزيمات المضادة للأكسدة لدى المصابين بالثعلبة أقل، مما يؤدي إلى تراكم النواتج التأكسدية وتسبب تلف في الحمض النووي DNA وموت الخلايا المبرمج (apoptosis)26,27. ومن شأن حالة الإجهاد التأكسدي هذه أن تنشط الاستجابة الالتهابية بشكل أكبر، مما يؤدي إلى إطلاق وسائط محفزة للالتهاب (مثل TNF-α و IFN-γ)، وهو ما يشكل حلقة مفرغة من الإجهاد التأكسدي والالتهاب28. وتهاجم الاستجابة الالتهابية بصيلات الشعر عن طريق الخلايا اللمفاوية T، مما يدفع بصيلات الشعر إلى الدخول في مرحلة الراحة ثم التساقط29. وقد وجدت التجارب السريرية أن المرضى المصابين بالثعلبة غالبًا ما يعانون من أمراض مناعية ذاتية أخرى (مثل أمراض الغدة الدرقية)30، مما يشير إلى أن الخلل المناعي الجهازي يعمل كعامل محفز حاسم. بالإضافة إلى ذلك، يعزز الإجهاد التأكسدي والالتهاب معًا موت خلايا بصيلات الشعر المبرمج، ويؤدي اضطراب إشارات الموت المبرمج إلى إتلاف قدرة بصيلة الشعر على التجدد بشكل أكبر، مما يمنع نمو الشعر مجددًا31. وبناءً على ذلك، يجب أن يأخذ علاج الثعلبة في الاعتبار مضادات الأكسدة ومضادات الالتهاب وتنظيم مسارات الموت المبرمج لكسر هذه الحلقة المفرغة.

يعد الأميغدالين (AMG) مركباً غليكوزيدياً سيانوغينياً يوجد بشكل طبيعي، ويحتويه بشكل أساسي بذور النباتات التي تنتمي إلى الفصيلة الوريدية Rosaceae (مثل نواى المشمش واللوز والخوخ والسفرجل)32,33,34. وقد أظهرت الدراسات السابقة أن AMG يمكن أن يحسن حالة الصدفية من خلال تعزيز وظيفة حاجز الجلد35. وفي الوقت ذاته، فإن التأثيرات المضادة للاستماتة والإجهاد التأكسدي لـ AMG تجعل من الممكن استخدامه في علاج البهق (AA)36,37. كما أكدت الأدلة السابقة أن AMG يمكن أن يثبط الاستجابة الالتهابية لتخفيف أعراض البهق في فئران C3H/HeJ38. ومع ذلك، فإن الآلية الجزيئية التي يثبط من خلالها AMG الالتهاب ويخفف الإجهاد التأكسدي للحد من البهق لم يتم توثيقها بشكل كافٍ. وقد أوضحت هذه الدراسة بشكل أساسي أحداث الإجهاد التأكسدي التي تتوسطها إشارات صندوق فورك الرأسي O3A (FOXO3a) عن طريق التدخل بـ AMG في علاج نموذج البهق في فئران C3H/HeJ ونموذج إصابة الخلايا الميلانينية البشرية الأولية في البشرة (HPEMs) المستحثة بواسطة H2O2.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

الموافقة الأخلاقية والموافقة على المشاركة
تمت الموافقة على البروتوكولات التجريبية التي تشمل الحيوانات من قبل اللجنة الأخلاقية لشركة ساينتست بيوتكنولوجي المحدودة (رقم الموافقة الأخلاقية: SYST-2024-014)، وفقًا لإرشادات ARRIVE 2.0، والدليل الصادر عن المعاهد الوطنية للصحة بشأن رعاية واستخدام الحيوانات المعملية. كما منحت اللجنة الأخلاقية لمستشفى مقاطعة سيتشوان العام الموافقة على الاستخدام الأخلاقي للعينات السريرية البشرية في التجارب in vitro (رقم الموافقة الأخلاقية: 2024103). وقد تم الحصول على الموافقة المستنيرة من جميع متبرعي الأنسجة. ترد جميع التفاصيل التجارية للواحدات والتجهيزات المستخدمة في هذه الدراسة في جدول المواد.

بناء نموذج الذئبة الحمراء في فئران C3H/HeJ وإعطاء AMG
استنادًا إلى الأدبيات السابقة، تم تحفيز نموذج الذئبة الحمراء في فئران C3H/HeJ وعلاجه بـ AMG38,39. باختصار، خضعت ثلاثون فئرانة من سلالة C3H/HeJ (بأعمار 6–8 أسابيع) لفترة تأقلم لمدة أسبوع واحد قبل توزيعها عشوائيًا على خمس مجموعات مختلفة: مجموعة السيطرة، ومجموعة الذئبة الحمراء (AA)، ومجموعة الجرعة المنخفضة من AMG (AMG-L)، ومجموعة الجرعة المتوسطة من AMG (AMG-M)، ومجموعة الجرعة العالية من AMG (AMG-H). باستثناء مجموعة السيطرة، تم إنشاء نموذج الذئبة الحمراء في المجموعات الأربع الأخرى عن طريق تطبيق 0.05 غ من كريم الإميكيويمود على الجلد الظهري للفئران. تم هذا التطبيق ثلاث مرات أسبوعيًا، ليصل المجموع إلى تسع جرعات. وكانت مساحة الجلد التي طُبِق عليها الكريم 1.5 سم × 1.5 سم. وتلقت الفئران في مجموعتي السيطرة والذئبة الحمراء 0.02 مل/غ من المحلول الملحي الفسيولوجي عن طريق التغذية أنفيًا يوميًا. في المقابل، تلقت الفئران في مجموعات AMG حقنًا داخل المعدة بجرعات 60 و90 و120 مغ/كغ يوميًا على التوالي. وتستمر فترة العلاج 21 يومًا. وللرصد العام وتقييم نموذج الذئبة الحمراء، يُشترط وجود بقعة صلع دائرية واضحة بقطر ≥ 1 سم، دون وجود ندوب أو التهاب شديد، مع وجود ألياف شعر مكسورة. ويتم استبعاد الفئران التي تُظهر نتفًا منتشرًا في كامل الجسم، أو تقرحات جلدية شديدة، أو نموًا سريعًا تلقائيًا للشعر.

HPEMs
اتباعًا للطريقة السابقة40، تم اختيار أنسجة جلد سليمة من مرضى خضعوا لعملية ختان في المستشفى، وغُمرت في كحول 75% لمدة 5 دقائق. ثم غُسلت أنسجة الجلد عدة مرات بوساطة محلول PBS المحتوي على أمبيسلين (100 وحدة/مل) وكبريتات ستربتوميسين (100 ملغم/مل)، وحُضنت في محلول ديسباز II عند 4°م طوال الليل لهضمها. تم تقطيع الطبقات الأدمة المنفصلة والمعزولة إلى قطع صغيرة وترشيحها عبر غشاء معقم للحصول على معلق خلوي. وبعد الطرد المركزي، جُمعت الخلايا في الطبقة السفلية المترسبة ثم أُعيد تعليقها في وسط ميلانوسايت 254 الخالي من المصل، وأُعيد زرعها بكثافة تبلغ تقريبًا 5 × 105 في قوارير زراعة، وحُضنت في حاضنة CO2. وبعد ثلاث عبوريات، استُخدمت الخلايا الصباغية النقية في التجارب اللاحقة.

إنشاء H2O2نموذج إصابة الإجهاد التأكسدي الناتج عن الميلانين في الخلايا الصباغية البشرية وتدخل AMG
يُقسَم الخلايا الصبغية البشرية التي تبلغ درجة اندماجها من 60% إلى 80% إلى مجموعة ضابطة ومجموعات مُعالجة بتركيزات مختلفة من H2س2 (200، 400، 600، 800، و 1000 µM). بعد حضن لمدة 24 ساعة، كانت قابلية الخلايا للحياة ‌تم تقييمه‌ باستخدام طريقة CCK-8. بعد ذلك، تم تحديد التركيز الأمثل لـ H2O2 استُخدم لإنشاء نموذج الإجهاد التأكسدي للخلايا الصبغية، وأُضيفت تراكيز مختلفة من مادة AMG (0.1، 0.25، 0.5، 1، 2.5، 5، و10 ملغ/مل) للثقافة لمدة 24 ساعة. ثم تم اختيار قابلية البقاء الخلوي لتقييم وفرز تركيز مادة AMG.

فحص الفحص النسيجي بالصبغة الهيماتوكسيلين والأيوسين
تم تثبيت أنسجة كبد وكلى الفأر في Paraformaldehyde بنسبة 4% لمدة 24 ساعة، ثم تم تضمينها بالبارافين، يتبع ذلك عملية تجفيف بالخطوات التالية: إيثانول 70% لمدة 4 ساعات، إيثانول 80% لمدة ساعتين، إيثانول 90% لمدة ساعتين، إيثانول 95% لمدة ساعتين، الإيثانول اللا مائي مرتين، كل مرة لمدة ساعة؛ الزايلين مرتين، كل مرة لمدة 30 دقيقة38,39,41. ثم، 4-µm خضعت المقاطع الشمعية لاختبار H&تم تجفيف الأنسجة المصبوغة بصبغة #38;E، وتنقيتها، وتركيبها باستخدام صمغ محايد. واستُخدم ماسح ضوئي من طراز 3D HISTECH لتحويل المقاطع النسيجية إلى صور رقمية، وتم الحصول على الصور عند تكبير 20× و40× تم التقاط التكبيرات.

التحليل المناعي المرتبط بالإنزيم (إليسا) والكشف الكيميائي الحيوي
تم تجهيز أنسجة الجلد في محلول مخزني بنسبة 1:9 (وزن/حجم)، ثم طُورت بالطرد المركزي عند 1006–1789 × g لمدة 10 دقائق. بعد تحديد كمية البروتين في المصل واستخلاص أنسجة الجلد والمطافي الخلوية باستخدام طريقة BCA، تم تقييم مستويات MDA وIL-6 وIL-15 وIFN-γ باستخدام مجموعات إليسا المقابلة. وتم الكشف عن أنشطة الإنزيمات SOD وCAT وGPX-4 وفقًا لتعليمات مجموعات الكشف الكيميائي الحيوي الخاصة بكل منها.

مطيافية تدفق للكشف عن أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS)
استُخدم وسط زرعي خالٍ من المصل لتخفيف DCFH-DA بتركيز 10µM بنسبة 1:1000. ثم تم تحضير أنسجة جلد الفأر أو الخلايا الصبغية البشرية إلى علائق خلوية بتركيز 1–20×106 خلية/مل باستخدام DCFH-DA بتركيز 10µM. تم حضن الخلايا عند 37°م لمدة 20 دقيقة. خلال هذه الفترة، تم هز الخلطات ومزجها كل 3–5 دقائق. بعد ثلاث غسلات باستخدام الوسط الخالي من المصل، تم قياس مستويات أنواع الأكسجين التفاعلية داخل الخلايا باستخدام مطيافية التدفق، مع ضبط أطوال موجات الإثارة والانبعاث عند 488 نانومتر و525 نانومتر على التوالي42,43.

قياس المناعة بال fluorescein
تُركت الأجسام المضادة الأولية FOXO3a (1:1000) للتفاعل مع 4-µm أقسام أنسجة الجلد أو HPEMs مثبتة طوال الليل عند 4°Cثم عُوملت العينات بوجود الأجسام المضادة الثانوية الموسومة بواصفات الفلورسنت أليكسا فلور، وصُبغت تلوينًا معاكسًا بحل دابي. وأخيرًا، شُوهدت المقاطع وصُورت باستخدام المجهر الفلورسنت. ولتصوير الفلورسنت مع أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS)، تم استخدام 4-µm تم إعادة تدفئة قطعة الأنسجة الجلدية المجمدة أو شرائح HPEMs عند درجة حرارة الغرفة وتجفيفها. تم رسم دائرة حول النسيج باستخدام قلم نسيجي كيميائي. عُوملت الشرائح بعامل قمع الفلورة الذاتية لمدة 5 دقائق، ثم شُطبت تحت ماء جاري لمدة 10 دقائق. تم إضافة محلول صبغة أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) وتم التحضين في الظلام عند 37°C لمدة 30 دقيقة. خضعت الشرائح لثلاث غسلات مدتها 5 دقائق كل منها في محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) باستخدام جهاز هزاز لإزالة اللون. ثم طُبِق محلول صبغة DAPI وتم التحضين ‌لمدة 10 دقائق في الظلام ودرجة حرارة الغرفة. تم إغلاق الشرائح باستخدام وسط مانع للإضاءة الفلورية. ثم تم فحص العينات وجمع الصور باستخدام المجهر الفلوري. تبلغ مقاييس الإثارة/الانبعاث 330–380/420 نانومتر لـ DAPI و510–560/590 نانومتر لـ Cy3.

البلوت الغربي
بالنسبة لنسج جلد الفأر أو الخلايا الصبغية البشرية، 50 مغ من نسيج الجلد أو 2 × 105 الخلايا و1 مل من محلول تحليل RIPA، المُعزز بمحفزات البروتياز، أُضيفا إلى أنبوب ميكروسيتريفيوج سعة 1.5 مل. بعد وضع العينة في حمام ثلجي لمدة 30 دقيقة، أُجريت طَرد مركزي لمدة 5 دقائق عند 12,000 × جاذبية لجمع الكسر العلوي. بعد تحديد تركيز البروتين بطريقة BCA، خُلط محلول البروتين مع 5× تم مزج عازل التحميل SDS بنسبة حجمية مقدارها 4:1، ثم غُلي المزيج في حمام معدني عند 95 °C لمدة 5 دقائق. بعد إجراء الترحيل الكهربائي للعينة باستخدام هلام البولي أكريلاميد في وجود دوديسيل كبريتات الصوديوم (SDS-PAGE) بنسبة 10٪ عند جهد 80 فولت أو 120 فولت، تم نقل البروتينات كهربائيًا إلى غشاء نيتروسلولوز بحجم 0.22-µm غشاء PVDF بتيار ثابت مقداره 200 مللي أمبير لمدة 1 ساعة44,45تم حجب الأغشية بعد ذلك عند درجة حرارة الغرفة وعلى هزاز طردي لمدة ساعة واحدة باستخدام حليب منزوع الدسم بنسبة 5٪ (محضر بخليط مخفف TBST). ثم عُرضت الأغشية على أضداد أولية محددة لـ ‌التعقيد الرئيسي للتتوافق النسيجي من الفئة الأولى‌ (MHC I) (1:1000)، IFN-γ (1:1000)، IL-6 (1:1000)، IL-15 (1:1000)، β-أكتين (1:1000)، سوبراوكسيد ديسموتاز (SOD) (1:1000)، كاتاليز (CAT) (1:1000)، جلوتاثيون بيروكسيديز 4 (GPX-4) (1:1000)، وFOXO3a (1:1000) عند 4 °C طوال الليل. ثم عُوملت الأغشية بالجسم المضاد الثانوي (1:10000) لمدة ساعة عند درجة حرارة الغرفة. واستُخدم كاشف كيمياء التألّم الضوئي (ECL) لتطوير الصور وتسجيلها باستخدام جهاز ChemiScope 6100.

التفاعل المتسلسل للبوليميراز العكسي الكمي (qRT-PCR)
أولاً، تم الحصول على عينة الحمض النووي الريبي (RNA) من نسيج جلد الفأر أو من الخلايا الصبغية البشرية وفقًا لتعليمات الشركة المصنعة لطقم استخلاص الحمض النووي الريبي الكلي. وفقًا لتعليمات التشغيل الخاصة بطقم النسخ العكسي، تم ضبط معايير جهاز تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) على 25°C لمدة 10 دقائق، 42°C لمدة 15 دقيقة، و 85°C لمدة 5 دقائق للحصول على عينات الحمض النووي المتمم (cDNA). بالمثل، كانت المعايير المستخدمة لإعداد جهاز تفاعل البلمرة المتسلسل (PCR) كما يلي للحصول على عدد كافٍ من نسخ الحمض النووي: التحلل الحراري الأولي: 95°C لمدة 5 دقائق، دورة واحدة؛ تميؤ: 95°C لمدة 10 ثوانٍ، 40 دورة؛ التلدين والامتداد: 60°C لمدة 30 ثانية، 40 دورة. ‌يتم حساب التعبير الطبيعي للجين محل الاهتمام باستخدام الصيغة التالية: 2‑ΔΔCq (ΔΔCq = Cqهدف-القيمة Cqβأكتين)46,47. تُعرض المعلومات الخاصة بتسلسلات أولي الجينات لتفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي العكسي (qRT-PCR) في الجدول 1.

تحليل ChIP-PCR
أُجري تحليل ChIP-PCR وفقًا للبروتوكول السابق48أولاً، تم ربط الخلايا تصالبيًا باستخدام 1% فورمالدهيد لمدة 10 دقائق، ثم أُضيف محلول الجلايسين لإنهاء تفاعل الربط التصالبي. بعد غسل الخلايا ب محل مخفف ملحي فوسفاتي مبرد مسبقًا يحتوي على PMSF، تم تحليل الخلايا باستخدام محلول تحليل يحتوي على SDS وPMSF. بعد ذلك، تم تقطيع الحمض النووي الكروماتيني إلى قطع تتراوح أطوالها بشكل رئيسي بين 200 و1000 زوج قاعدي باستخدام جهاز تكسير خلوي بالموجات فوق الصوتية، وتم التحقق من حجم القطع باستخدام الترحيل الكهربائي على هلام الأجاروز. ثم أُعيد تعليق عينات الكروماتين المقطعة في محلول تخفيف الـChIP الذي يحتوي على PMSF، و 20µL تم أخذ جزء من العينة كمجموعة ضبط المدخلات. وخضعت العينات المتبقية لعلاج مسبق بـ Protein A+G Agarose/حمض ديوكسي ريبونوكليك للحيوانات المنوية للسلمون. ثم، 0.5µg تم تطبيق كمية من الجسم المضاد الأولي، تليها حضن ليلة كاملة عند 4°C مع هز بطيء. عُوملت مجموعة الضبط السلبية بكمية مساوية من الغلوبيولين المناعي الأرنب IgG. في اليوم التالي، أُضيفت كريات الأجاروز البروتين A+G لالتقاط مركبات المستضد-الضد، ثم غُسلت المركبات تباعًا بمحفز غسل المركب المناعي منخفض الملح، ومحفز غسل المركب المناعي عالي الملح، ومحفز غسل المركب المناعي LiCl، ومحفز TE. استخرجت المركبات المستcipitated مناعيًا باستخدام محفز الاستخلاص، وخضع كل من منتجات الاستخلاص والعينات في مجموعة ضبط المدخلات لعلاج حراري مكون من 65°C لمدة 4 ساعات لتفكيك الروابط العرضية. بعد ذلك، تم عزل الحمض النووي من خلال الاستخلاص بالفينول-كلوروفورم تلاه ترسيب الإيثانول. ثم تم إذابة الحمض النووي النقي في محلول TE واستخدامه في تحليل qRT-PCR اللاحق. وتشير معلومات تسلسل الجين لتفاعل ChIP-PCR إلى الجدول 2.

تم اختيار المواقع الجينومية المرشحة لتفاعل البوليميراز المتسلسل بعد التضخيم المناعي للحمض النووي (ChIP-PCR) من خلال التنبؤ الحاسوبي باستخدام قاعدة بيانات JASPAR (https://jaspar.elixir.no/). على وجه التحديد، استعاد الباحثون تسلسلات المُحفِّزات التي تمتد على مسافة 2000 زوج قاعدي قبل نقطة بدء النسخ (TSS) للجين CAT, SOD، و GPX4 الجينات. تم فحص هذه التسلسلات بحثًا عن عناصر ربط FOXO3a باستخدام مصفوفة الأوزان الموضعية المقابلة. ولتحقيق توازن بين الحساسية والخصوصية، حدد المؤلفون عتبة درجة نسبية للملف الشخصي بمقدار >80%. من بين جميع البقع التنبؤ بها التي تحقق هذا المعيار، انتقى المؤلفون أعلى بقعتين تنبؤًا من حيث الدرجة لكل جين باعتبارهما منطقتين مرشحتين للتحقق من صحتهما باستخدام تفاعل البلمرة المتسلسل المنقح بالترسيب المناعي (ChIP-PCR). على سبيل المثال، في الـ CAT الجين، كانت المواقع المختارة تقع عند -733 زوج قاعدي و-1259 زوج قاعدي بالنسبة لموقع بدء النسخ (TSS). ويُعد الجسم المضاد المضاد لـFOXO3a المستخدم في هذه الدراسة جسمًا مضادًا تجاريًا متوفرًا ومخصصًا لتقنية تحليل الاستخلاص المناعي للصبغي (ChIP-grade). ولضمان التخصصية، استخدم المؤلفون تحكمين سلبيين مستقلين في كل تجربة من تجارب تضخيم الحمض النووي بالبوليمراز المتسلسل بعد الاستخلاص المناعي للصبغي (ChIP-PCR):一个是 الجسم المضاد المناعي من النوع IgG، والآخر هو موقع جينومي سلبي. أُجري التحكم بواسطة النوع IgG كاستخلاص مناعي متوازٍ باستخدام الجسم المضاد غير المناعي IgG من نفس النوع. أما بالنسبة للموقع الجينومي السلبي، فقد صمّم المؤلفون زوجًا محددًا من البدائل (primers) يستهدف منطقة غير مرتبطة تمامًا ولا تحتوي على أي نمط توافقي مُتنبأ به لـFOXO3a. وقد مكّن هذا الموقع التحكّمي المؤلفين من استبعاد أي تثبيط ناتج عن تكسير عشوائي للصبغين أو تضخيم غير تخصصي عبر تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR). وتم حساب درجة التثبيط باستخدام استراتيجية تطبيع مكونة من ثلاث خطوات.

الخطوة 1: أدخل قيمة ΔCt المعيّنة، ΔCt [IP المعيّن] = Ct[IP]-(Ct[Input]-log₂(DF))    (1)

ΔCt [IgG مُعَيَّر] = Ct[IgG] - (Ct[Input] - log₂(DF)).     (2)

عامل التخفيف (DF) = عامل تخفيف العينة المدخلة؛ في التجربة، كان عامل التخفيف (DF) = 10، لأنهم استخدموا عينة مدخلة بنسبة 10%.

الخطوة 2: ΔΔCt بين IP وIgG:

ΔΔCt [IP/IgG] = ΔCt [IP المُعَيَّر] - ΔCt [IgG المُعَيَّر]      (3)

الخطوة 3: تضخيم الطي = 2(-ΔΔCt [IP/IgG]).       (4)

التحليل الإحصائي
تعبر البيانات عن المتوسط ± الانحراف المعياري بناءً على حد أدنى من ثلاث تجارب مستقلة. أُجري التحليل الإحصائي باستخدام برنامج GraphPad Prism (الإصدار 6.0). تم تقييم مقارنة البيانات بين مجموعات متعددة تتبع التوزيع الطبيعي وتجانس التباين باستخدام تحليل التباين الأحادي الاتجاه (ANOVA)، يليه اختبار توكي اللاحق. واعتبرت الدلالة الإحصائية عند p < 0.05.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

لا يسبب AMG سمية كبدية كلوية في فئران C3H/HeJ الطبيعية
لتحديد السمية المحتملة لـ AMG على الكبد والكلى بوضوح من منظور تجريبي، قام الباحثون بإعطاء ثلاث جرعات (60 و90 و120 mg/kg) سبق دراستها في فئران C3H/HeJ طبيعية عن طريق التغذية القسرية 38. وكما هو موضح في الشكل 1، فإنه بعد الإعطاء داخل المعدة لـ AMG بثلاث جرعات لمدة 21 يوماً، كانت بنية الفصيصات الكبدية واضحة، مع ترتيب الخلايا الكبدية بشكل منتظم. وكانت الأنسجة القشرية والنخاعية للكلى طبيعية، ولم يُلاحظ وجود أي تلف أو آف...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

لا يمتلك AMG في حد ذاته سمية مباشرة، ولكنه يتحلل بواسطة الإنزيمات الميكروبية المعوية أو حمض المعدة، مما يؤدي إلى توليد وتحرير سيانيد الهيدروجين شديد السمية49. بعد ذلك، يتم امتصاص سيانيد الهيدروجين بسرعة عبر الجهاز الهضمي إلى مجرى الدم وينتشر في أنسجة الجسم، مما يسبب نقص الأكسجة في أنسجة الجهاز العصبي، والجهاز القلب الوعائي، والجهاز التنفسي50. ومن حيث الآلية، يتحد سيانيد الهيدروجين مع أيونات الحديد في سيتوكروم أوكسيداز، مما يؤدي إلى غلق سلسلة التنفس الخلوي، وهو ما يسبب نقص أ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يصرح المؤلفون بعدم وجود أي تضارب في المصالح.

مساهمات المؤلفين:
شون هي: الاستقصاء، والمنهجية، والكتابة - المسودة الأصلية. جينغ سونغ ليو، وجياوي وانغ، وزي داي: تنظيم البيانات. يوغانغ غونغ، ووي لو، وشياو وي شا: البرمجيات، والتصور البصري، والتحقق من الصحة. شون هي: التصور المفاهيمي، والكتابة - المراجعة. &؛ التحرير، والحصول على التمويل، والإشراف.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل لجنة الرعاية الصحية للكوادر بمقاطعة سيتشوان (2024-221).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
5×مزيج رئيسي شامل (مع مجموعة AccuRT لإزالة الحمض النووي الريبوزي منقوص الأكسجين الجينومي)شركة .Applied Biological Materials Inc، جيانغسو، الصينG492
β-جسم مضاد للأكتينشركة Affinity Biosciences المحدودة، ووهان، الصينAF7018
أميغدالينشركة Chengdu Herbpurify المحدودة، تشنغدو، الصينK-001-181216
جسم مضاد للكاتالازProteintech، ووهان، الصين66765-1-Ig
طقم فحص الكاتاليزإلاب ساينس (Elabscience)، ووهان، الصينE-BC-K031-M
فئران C3H/HeJشركة Chengdu Yaokang Biotechnology المحدودة، تشنغدو، الصينN000190
طقم مقايسة الترسيب المناعي للكروماتين (ChIP)Beyotime Biotechnology، شنغهاي، الصينP2078
وسط استزراع 254Gibco, Thermo Fisher Scientific, أمريكاM-254-500
كاشف صبغ DAPIServicebio، ووهان، الصينG1012
ديسبيز IIشركة شنغهاي يواني بيوتكنولوجي المحدودة (Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.)، شنغهاي، الصينS25046
EvaGreen Express 2×المزيج الرئيسي لتفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي في الوقت الحقيقي - بدون صبغةشركة Applied Biological Materials Inc.، جيانغسو، الصينMasterMix-ES
صبغة Fast Black HBشركة Sangon Biotech المحدودة، شنغهاي، الصينA602008-0025
مصل جنين البقركل الأخضر13011-8611
المجهر الفلوريSOPTOPCX40
جسم مضاد لـ FOXO3aProteintech، ووهان، الصين10849-1-AP
الميكروتوم التجميديثيرمو (Thermo)المقطع المجمد E
جسم مضاد لإنزيم جلوتاثيون بيروكسيداز 4Proteintech، ووهان، الصين67763-1-Ig
طقم فحص غلوتاتيون بيروكسيداز 4Elabscience، ووهان، الصينE-BC-K883-M
Image-pro plus 6.0Media Cybernetics, Inc.، روكفيل، ماريلاند، الولايات المتحدة الأمريكية——
كريم إيميكويمودشركة سيتشوان مينغشين للصناعات الدوائية المحدودة، تشنغدو، الصينH20030129
جسم مضاد للإنترفيرون غاماProteintech، ووهان، الصين15365-1-AP
طقم فحص إنترفيرون غاماElabscience، ووهان، الصينE-EL-H0108 و E-EL-M0048
جسم مضاد لإنترلوكين 6Proteintech، ووهان، الصين21865-1-AP
طقم تحليل إنترلوكين 6Elabscience، ووهان، الصينE-EL-H6156 و E-EL-M0044
جسم مضاد لإنترلوكين 15شركة Affinity Biosciences Ltd.، ووهان، الصينDF2521
طقم تحليل إنترلوكين 15Elabscience، ووهان، الصينE-EL-H0222 وE-EL-M0728 
طقم تحليل المالوندِيألدهيدإلاب ساينس (Elabscience)، ووهان، الصينE-EL-0060
جسم مضاد لمعقد التوافق النسيجي الكبير (MHC antibody)Affinity Biosciences Ltd.، ووهان، الصينDF8558
المجهر الضوئيZEISSPrimo Star
قاطعة البارافينThermo ScientificHM325
برمجيات الفحص الباثولوجي3DHISTECH (المجر)عارض الشرائح 2.5.0
محلول البنسلين-سينثرويدBiosharp، بكين، الصينBL505A
الأجسام المضادة من النوع IgG للأرانب شركة Beyotime Biotechnology، شنغهاي، الصينA7016
طقم فحص أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS assay kit)بيوتايم بيوتكنولوجي (Beyotime Biotechnology)، شنغهاي، الصينS0033M
جسم مضاد لإنزيم سوبر أكسيد ديسميوتاز 1Proteintech، ووهان، الصين10269-1-AP
جهاز طمر الأنسجة شركة ووهان جونجيه للإلكترونيات المحدودة، ووهان الصينJB-P5
جهاز استخلاص السوائل من الأنسجة بالضغط الهيدروليكيThermo scientificSTP420 ES
طقم استخلاص الحمض النووي الريبوزي الكلي (Total RNA isolation kit)Foregene، تشنغدو، الصينRE-03014
طقم قياس إجمالي سوبر أكسيد ديسميوتيز*Elabscience، ووهان، الصينE-BC-K020-M
فازلين أبيضشركة شنغهاي ألادين للتكنولوجيا البيوكيميائية المحدودة، شنغهاي، الصينP434227

المراجع

  1. Li XQ, et al. Burden of alopecia areata in China, 1990-2021: Global Burden of Disease Study 2021. Chin Med J (Engl). 2025;138:318-324.
  2. Rodríguez-Tamez G, Maskan-Bermudez N, Tosti A. Alopecia areata incognita: Current evidence. Dermatol Ther (Heidelb). 2025;15:635-645.
  3. Zhou J, et al. Global burden of alopecia areata and associated diseases: A trend analysis from 1990 to 2021. J Cosmet Dermatol. 2025;24:e70076.
  4. Jeon JJ, Lee S, Kim MS, Kim YS, Hong SH, Yon DK, et al. The burden of alopecia areata among United States, 2000-2021: A systematic analysis for the global burden of disease study 2021. J Am Acad Dermatol. 2025;S0190-9622(25)02673-8.
  5. Todorova L, Kluger N. Alopecia: A Google trends analysis of the past 5 years (2018-2023). Skin Appendage Disord. 2025;11:282-286.
  6. Pratt CH, King LEJr, Messenger AG, Christiano AM, Sundberg JP. Alopecia areata. Nat Rev Dis Primers. 2017;3:17011.
  7. Mistry J, Sibbald C. Clinical presentations and comorbidities of pediatric alopecia areata. Pediatr Dermatol. 2025;42 Suppl 1:5-11.
  8. Kuty-Pachecka M. Psychological and psychopathological factors in alopecia areata. Psychiatr Pol. 2015;49:955-964.
  9. Marahatta S, Agrawal S, Adhikari BR. Psychological impact of alopecia areata. Dermatol Res Pract. 2020;2020:8879343.
  10. Dainichi T, Iwata M, Kaku Y. Alopecia areata: What's new in the epidemiology, comorbidities, and pathogenesis J Dermatol Sci. 2023;112:120-127.
  11. Lintzeri DA, Constantinou A, Hillmann K, Ghoreschi K, Vogt A, Blume-Peytavi U. Alopecia areata - Current understanding and management. J Dtsch Dermatol Ges. 2022;20:59-90.
  12. Singh R, Kumar P, Kumar D, Aggarwal N, Chopra H, Kumar V. Alopecia areata: Review of epidemiology, pathophysiology, current treatments and nanoparticulate delivery system. Ther Deliv. 2024;15:193-210.
  13. Rizzetto G, De Simoni E, Gioacchini H, Molinelli E, Offidani A, Simonetti O. Fractionated CO2 laser in combination with topical tacrolimus for chronic alopecia areata: A case series study. Life (Basel). 2024;14:1128.
  14. Gasques L, de Brito FF, Zobiole R, Bortolini L, Assumpção VCC, Carvalho CL. Corticosteroid atrophy plaque on the scalp treated with 5-fluourouracil and bleomycin infusion in the MMP technique. Skin Appendage Disord. 2024;10:425-428.
  15. Lee D, et al. Serum levels of IL-18 and sIL-2R in patients with alopecia areata receiving combined therapy with oral cyclosporine and steroids. Exp Dermatol. 2010;19:145-147.
  16. Mlacker S, et al. A review on laser and light-based therapies for alopecia areata. J Cosmet Laser Ther. 2017;19:93-99.
  17. Jafari MA, Bazgir G, Hosseini-Baharanchi FS, Jafarzadeh A, Goodarzi A. Efficacy and safety of laser therapy and phototherapy in cicatricial and noncicatricial alopecia: A systematic review study. Health Sci Rep. 2024;7:e70180.
  18. Civaş E, Aksoy B, Aksoy HM, Eski M, Yucel K. Hair transplantation for therapy-resistant alopecia areata of the eyebrows: is it the right choice J Dermatol. 2010;37:823-826.
  19. King BA, Craiglow BG. Janus kinase inhibitors for alopecia areata. J Am Acad Dermatol. 2023;89:S29-S32.
  20. Chim I, Ghiya R, Sinclair RD, Eisman S. Novel investigational drugs for alopecia areata and future perspectives. Expert Opin Investig Drugs. 2024;33:441-449.
  21. Valdez-Zertuche JA, Ramírez-Marín HA, Tosti A. Efficacy, safety and tolerability of drugs for alopecia: A comprehensive review. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 2025;21:347-371.
  22. Liu M, et al. Janus kinase inhibitors for alopecia areata: A systematic review and meta-analysis. JAMA Netw Open. 2023;6:e2320351.
  23. Sohn KC, et al. Effect of thioredoxin reductase 1 on glucocorticoid receptor activity in human outer root sheath cells. Biochem Biophys Res Commun. 2007;356:810-815.
  24. Sun C, Ding HH, Zhang L, Wang JL, Su MY. Co-regulatory mechanisms and potential markers of oxidative stress-related genes in vitiligo and alopecia areata. Skin Res Technol. 2024;30:e70001.
  25. Perlmutter J, et al. The role of reactive oxygen species in the pathogenesis of alopecia areata: A systematic review and meta-analysis. Skin Pharmacol Physiol. 2025;38:59-67.
  26. Xie B, Sun JY, Song XZ. Hair follicle melanocytes initiate autoimmunity in alopecia areata: A trigger point. Clin Rev Allergy Immunol. 2022;63:417-430.
  27. Shin JM, et al. The crosstalk between PTEN-induced kinase 1-mediated mitophagy and the inflammasome in the pathogenesis of alopecia areata. Exp Dermatol. 2024;33:e14844.
  28. Mustafa AI, Khashaba RA, Fawzy E, Baghdady SMA, Rezk SM. Cross talk between oxidative stress and inflammation in alopecia areata. J Cosmet Dermatol. 2021;20:2305-2310.
  29. Cohen JN, et al. Regulatory T cells in skin mediate immune privilege of the hair follicle stem cell niche. Sci Immunol. 2024;9:eadh0152.
  30. Kinoshita-Ise M, Martinez-Cabriales SA, Alhusayen R. Chronological association between alopecia areata and autoimmune thyroid diseases: A systematic review and meta-analysis. J Dermatol. 2019;46:702-709.
  31. Chen DY, Yang XY, Wang HX, Fan WL, He YQ. Molecular mechanism of polygonum multiflorum in the treatment of androgenic alopecia: based on bioinformatics and molecular docking method. Diagnosis and Therapy Journal of Dermato-Venereology 2022;29:101–108.
  32. Iwasa K, et al. Long term administration of loquat leaves and their major component, ursolic acid, attenuated endogenous amyloid-β burden and memory impairment. Sci Rep. 2023;13:16770.
  33. Makovi CM, Parker CH, Zhang K. Determination of amygdalin in apricot kernels and almonds Using LC-MS/MS. J AOAC Int. 2023;106:457-463.
  34. Li XJ, et al. Identifying the active components and mechanisms of Persicae Semen in treating androgenetic alopecia: Insights from network pharmacology and experimental evaluations. J Ethnopharmacol. 2025;347:119755.
  35. Wang Q, et al. Amygdalin alleviates psoriasis-like lesions by improving skin barrier function. Arch Dermatol Res. 2025;317:115.
  36. Li SY, et al. Effects of amygdalin on ferroptosis and oxidative stress in diabetic retinopathy progression via the NRF2/ARE signaling pathway. Exp Eye Res. 2023;234:109569.
  37. Kimura K, Liu YH, Hsieh CL. Amygdalin's neuroprotective effects on acute ischemic stroke in rats. J Ethnopharmacol. 2025;345:119621.
  38. He X, et al. Amygdalin ameliorates alopecia areata on C3H/HeJ mice by inhibiting inflammation through JAK2/STAT3 pathway. J Ethnopharmacol. 2024;331:118317.
  39. He X, et al. The antiinflammatory effects of Xuefu Zhuyu decoction on C3H/HeJ mice with alopecia areata. Phytomedicine. 2021;81:153423.
  40. Ma LP, et al. Melatonin inhibits senescence-associated melanin pigmentation through the p53-TYR pathway in human primary melanocytes and the skin of C57BL/6 J mice after UVB irradiation. J Mol Med (Berl). 2023;101:581-593.
  41. Hou Y, et al. Longzhibu disease and its therapeutic effects by traditional Tibetan medicine: Ershi-wei Chenxiang pills. J Ethnopharmacol. 2020;249:112426.
  42. Hou Y, Fan FH, Xie N, Zhang Y, Wang XB, Meng XL. Rhodiola crenulata alleviates hypobaric hypoxia-induced brain injury by maintaining BBB integrity and balancing energy metabolism dysfunction. Phytomedicine. 2024;128:155529.
  43. Hou Y, et al. Salidroside intensifies mitochondrial function of CoCl2-damaged HT22 cells by stimulating PI3K-AKT-MAPK signaling pathway. Phytomedicine. 2023;109:154568.
  44. Fan FH, et al. Association between systemic immune-inflammation indexes and Nuodikang capsule’s protection in LPS-induced acute lung injury in mice. Phytomedicine. 2025;147:157229.
  45. Wang XB, et al. Mechanistic insights into salidroside's mitochondrial protection via AMPK/Sirt1/HIF-1α pathway in hypoxic HT22 cells. JoVE. 2025;218:e66923.
  46. Wang XB, et al. Rhodiola crenulata attenuates apoptosis and mitochondrial energy metabolism disorder in rats with hypobaric hypoxia-induced brain injury by regulating the HIF-1α/microRNA 210/ISCU1/2(COX10) signaling pathway. J Ethnopharmacol. 2019;241:111801.
  47. Fan SJ, et al. PRMT5 encourages cell migration and metastasis of tongue squamous cell carcinoma through methylating ΔNp63α. Cell Death Differ. 2026; 33:465-479.
  48. Zhao Y, et al. Integrated analysis reveals that EGR1 promotes epithelial IL33 production in T2 asthma. J Transl Med. 2025;23:203.
  49. He XY, Wu LJ, Wang WX, Xie PJ, Chen YH, Wang F. Amygdalin - A pharmacological and toxicological review. J Ethnopharmacol. 2020;254:112717.
  50. Alan-Albayrak E, Simonsen U. Cyanide beyond toxicity: A systematic review of its effects on vascular function. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2025;137:e70124.
  51. Lachowicz JI, Alexander J, Aaseth JO. Cyanide and cyanogenic compounds-toxicity, molecular targets, and therapeutic agents. Biomolecules. 2024;14:1420.
  52. Jaszczak-Wilke E, Polkowska Ż, Koprowski M, Owsianik K, Mitchell AE, Bałczewski P. Amygdalin: Toxicity, anticancer activity and analytical procedures for its determination in plant seeds. Molecules. 2021;26:2253.
  53. Deeths MJ, Endrizzi BT, Irvin ML, Steiner LP, Ericson ME, Hordinsky MK. Phenotypic analysis of T-cells in extensive alopecia areata scalp suggests partial tolerance. J Invest Dermatol. 2006;126:366-373.
  54. Garzorz N, et al. Dissecting susceptibility from exogenous triggers: the model of alopecia areata and associated inflammatory skin diseases. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2015;29:2429-2435.
  55. Belpaire A, Demeyer A, Van Caelenberg E, van Geel N, Speeckaert R. The AhR pathway is dysregulated in alopecia areata. J Transl Autoimmun. 2025;10:100282.
  56. Gilhar A, Schrum AG, Etzioni A, Waldmann H, Paus R. Alopecia areata: Animal models illuminate autoimmune pathogenesis and novel immunotherapeutic strategies. Autoimmun Rev. 2016;15:726-735.
  57. Oelert T, Gilhar A, Paus R. T-cell "induced-self" MHC class I/peptide complexes may enable "de novo" tolerance induction to neo-antigens occurring outside of the thymus: Lessons from the hair follicle. Exp Dermatol. 2017;26:529-531.
  58. Freyschmidt-Paul P, et al. Interferon-γ-deficient mice are resistant to the development of alopecia areata. Br J Dermatol. 2006;155:515-521.
  59. Lensing M, Jabbari A. An overview of JAK/STAT pathways and JAK inhibition in alopecia areata. Front Immunol. 2022;13:955035.
  60. Suzuki T, et al. Interleukin-15 is a hair follicle immune privilege guardian. J Autoimmun. 2024;145:103217.
  61. Fitzhugh MH, Hansen JG, Jabbari A, Berrebi KG. Pathophysiology of Alopecia Areata in the Pediatric Patient. Pediatr Dermatol. 2025;42:24-30.
  62. Ma YQ, Sun Z, Li YM, Xu H. Oxidative stress and alopecia areata. Front Med (Lausanne). 2023;10:1181572.
  63. Bakry OA, Elshazly RM, Shoeib MA, Gooda A. Oxidative stress in alopecia areata: A case-control study. Am J Clin Dermatol. 2014;15:57-64.
  64. Peterle L, Sanfilippo S, Borgia F, Cicero N, Gangemi S. Alopecia areata: A review of the role of oxidative stress, possible biomarkers, and potential novel therapeutic approaches. Antioxidants (Basel). 2023;12:135.
  65. Yang X, et al. Exosomes derived from platelet-rich plasma promote hair regeneration by regulating the SIRT1/FoxO3a pathway to alleviate oxidative stress. Regen Ther. 2025;30:710-718.
  66. Xu SC, Huang P, Yang JH, Du HX, Wan HT, He Y. Calycosin alleviates cerebral ischemia/reperfusion injury by repressing autophagy via STAT3/FOXO3a signaling pathway. Phytomedicine. 2023;115:154845.
  67. Tang QY, et al. Orlistat facilitates immunotherapy via AKT-FOXO3a-FOXM1-mediated PD-L1 suppression. J Immunother Cancer. 2025;13:e008923.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

العلاج بالأميغدالينفئران C3H/HeJأنواع الأكسجين التفاعليةسوبر أكسيد ديسميوتازجلوتاثيون بيروكسيدازلطخة ويسترنالاستجابة الالتهابية