فحص المؤشرات الحيوية التشخيصية المرشحة للجدرة باستخدام خوارزمية التعلم الآلي
شملت هذه الدراسة إجمالي 283 جينًا متعلقًا باستقلاب الهيم. وقد حدد تحليل التعبير التفاضلي لمجموعة بيانات GSE44270، من خلال مقارنة أنسجة الجدرة (keloid) وأنسجة الجلد الطبيعية، 25 جينًا ذات تعبير تفاضلي ملحوظ (الشكل 1A و الجدول التكميلي S3). ولمزيد من الفرز للمؤشرات الحيوية المرتبطة بالمرض، حدد انحدار LASSO تسعة جينات مرشحة (الشكل 1B،C و الجدول التكميلي S3)، بينما اختارت خوارزمية الغابة العشوائية (RF) أحد عشر جينًا ذات أهمية تنبؤية عالية (الشكل 1D و الجدول التكميلي S3). وتم تمثيل التداخل بين نتائج LASSO و RF باستخدام مخطط فين، مما أسفر عن ستة مؤشرات حيوية أساسية، وهي: FLVCR1 و TMCC2 و EIF2AK1 و XK و HPX و KEL (الشكل 1E و الجدول التكميلي S3). وأظهر تحليل منحنى خصائص التشغيل للمستقبل (ROC) في مجموعة GSE44270 أداءً تشخيصيًا جيدًا لجميع المؤشرات الحيوية الستة، حيث بلغت قيم AUC: 0.8016 لـ FLVCR1، و 0.7063 لـ TMCC2، و 0.7817 لـ EIF2AK1، و 0.7460 لـ XK، و 0.7500 لـ HPX، و 0.7857 لـ KEL (الشكل 1F). وبناءً على هذه المؤشرات الحيوية الستة، تم لاحقًا إنشاء مخطط تشخيصي (nomogram) للجدرة باستخدام حزمة rms في لغة R (الشكل 1G).

الشكل 1: تحديد الجينات المرشحة ذات الصلة باستقلاب الهيم المرتبطة بالجدرة باستخدام خوارزميات التعلم الآلي. (A) مخطط صندوقي يوضح التعبير التفاضلي للجينات المرتبطة باستقلاب الهيم بين أنسجة الجدرة والأنسجة الطبيعية. (B,C) تحليل انحدار LASSO اللوجستي لفحص المؤشرات التشخيصية المرشحة. (D) المؤشرات الحيوية المرشحة التي تم اختيارها بواسطة خوارزمية RF. (E) مخطط فين يوضح الجينات المتداخلة التي حددتها خوارزميتا التعلم الآلي. (F) تحليل منحنى ROC لتقييم الأداء التشخيصي للمؤشرات الحيوية المرشحة. (G) مخطط نوموجرام للتنبؤ بالجدرة بناءً على بصمة مكونة من ستة جينات. الاختصارات: LASSO، عامل تقليص واختيار أصغر مطلق؛ RF، الغابة العشوائية؛ ROC، خصائص تشغيل المستقبل. الدلالة الإحصائية: ns، P > 0.05؛ *، P < 0.05؛ **، P < 0.01؛ ***، P < 0.001؛ و ****، P < 0.0001. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
تم تقييم الأداء التنبؤي للمخطط التشخيصي (nomogram) في كل من مجموعة التدريب (GSE44270) ومجموعة التحقق (GSE7890). وقد أظهر النموذج دقة تشخيصية ممتازة، حيث حقق قيم AUC بلغت 0.984 (95% CI: 0.950–1.000) و0.922 (95% CI: 0.806–1.000) على التوالي (الشكل 2A,D). ولمزيد من التقييم لمتانة البصمة التشخيصية المكونة من ستة جينات واحتمالية حدوث فرط التخصيص (overfitting)، أُجريت تحليلات تحقق داخلية إضافية في مجموعة الاكتشاف (GSE44270). وأظهر التحقق المتقاطع خماسي الطيات (Fivefold cross-validation) أداءً تمييزياً متسقاً عبر المجموعات الفرعية، بمتوسط AUC بلغ 0.925، مما يشير إلى أن النموذج حافظ على أداء تصنيف مستقر رغم الاختلافات في عينات التدريب. علاوة على ذلك، أسفر التحقق بطريقة بوتستراب (bootstrap validation) مع 1,000 تكرار لإعادة أخذ العينات عن متوسط AUC بلغ 0.930 (95% CI: 0.794–1.000). وبعد التعديل لمعالجة التفاؤل المحتمل الناتج عن صغر حجم العينة، ظلت قيمة AUC المصححة من التفاؤل 0.930، مما يشير إلى أن الأداء التشخيصي للبصمة المكونة من ستة جينات كان مستقراً نسبياً بعد التحقق الداخلي. بالإضافة إلى ذلك، أشار تحليل منحنى القرار (DCA) إلى أن المخطط أظهر فائدة صافية محتملة أعلى من استراتيجيات التشخيص البديلة عبر مجموعة من احتمالات العتبة، على الرغم من وجوب تفسير هذه النتائج بحذر نظراً لصغر حجم العينة (الشكل 2B,E). كما أظهرت عينات الجدرة (keloid) درجات مخاطر أعلى بكثير من عناصر التحكم السليمة في كل من مجموعتي التدريب والتحقق (الشكل 2C,F)، مما يثبت بشكل أكبر استقرار وموثوقية النموذج التشخيصي.

الشكل 2: التحقق من صحة المخطط البياني (nomogram) للتنبؤ بالجدرة. (A) منحنى ROC لتقييم الأداء التنبؤي للمخطط البياني في مجموعة بيانات GSE44270. (B) تحليل منحنى القرار (DCA) لتقييم الفائدة السريرية للمخطط البياني في GSE44270. (C) توزيع درجات المخاطر بمقارنة عينات الجدرة والعينات السليمة في GSE44270. (D) منحنى ROC لتقييم الأداء التنبؤي للمخطط البياني في مجموعة بيانات GSE7890 المستقلة. (E) تحليل منحنى القرار (DCA) لتقييم الفائدة السريرية للمخطط البياني في GSE7890. (F) توزيع درجات المخاطر بمقارنة عينات الجدرة والعينات السليمة في GSE7890. الاختصارات: ROC = خصائص تشغيل المستقبِل؛ DCA = تحليل منحنى القرار. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
ترتبط المؤشرات الحيوية التشخيصية بالخصائص المناعية للجدرة
لاستكشاف العلاقة بين المؤشرات الحيوية التشخيصية الستة والبيئة الدقيقة المناعية، تم إجراء تحليل ارتباط لتقييم الروابط بين تعبير المؤشرات الحيوية وتسلل الخلايا المناعية. وكشفت النتائج أن جميع المؤشرات الحيوية الستة كانت مرتبطة بشكل معنوي بعدة مجموعات من الخلايا المناعية المتسللة (الشكل 3A). وتحديداً، ارتبط تعبير FLVCR1 ارتباطاً سلبياً بالخلايا التائية المساعدة الجريبية (الشكل 3B). وأظهر TMCC2 ارتباطات إيجابية مع الخلايا القاتلة الطبيعية والخلايا التغصنية المنشطة، بينما ارتبط ارتباطاً سلبياً بالخلايا التغصنية غير الناضجة والخلايا البائية غير الناضجة (الشكل 3C–F). بالإضافة إلى ذلك، ارتبط تعبير EIF2AK1 ارتباطاً سلبياً بالخلايا القاتلة الطبيعية CD56dim (الشكل 3G)، بينما ارتبط XK ارتباطاً سلبياً بالخلايا الحمضية (الشكل 3H).

الشكل 3الارتباط بين الجينات المرشحة ذات الصلة باستقلاب الهيم وتسلل الخلايا المناعية. (A(خريطة حرارية توضح الارتباطات بين الجينات المرشحة ومجتمعات الخلايا المناعية. يشير اللون الأحمر إلى ارتباطات إيجابية، بينما يشير اللون الأزرق إلى ارتباطات سلبية.)B). الارتباط بين FLVCR1 التعبير والخلايا التائية المساعدة الجريبية. (سي-إفالارتباطات بين TMCC2 التعبير والخلايا القاتلة الطبيعية، والخلايا الشجرية المنشطة، والخلايا الشجرية غير الناضجة، والخلايا البائية غير الناضجة، على التوالي. (جالارتباط بين EIF2AK1 التعبير والخلايا القاتلة الطبيعية من النوع CD56dim. (هـ). الارتباط بين XK التعبير والخلايا الحمضية. الاختصارات: FLVCR1 = مستقبل فيروس لوكيميا القطط من المجموعة الفرعية C 1؛ TMCC2 = نطاقات عبر الغشائية واللفائف الحلزونية 2؛ EIF2AK1 = كيناز عامل بدء الترجمة حقيقي النواة 2 ألفا 1؛ CD56خافت = عنقود التمايز 56 خافت. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
تحليل بيانات ترانسكريبتوم الخلية الواحدة
لتوصيف أنماط تعبير المؤشرات الحيوية التشخيصية المحددة ضمن البيئة المجهرية للجدرة (keloid)، قمنا بتحليل مجموعة بيانات تسلسل الحمض النووي الريبي (RNA) أحادي الخلية GSE163973. وبعد إجراء مراقبة الجودة وتكامل البيانات، تم الاحتفاظ بـ 21,488 خلية عالية الجودة للتحليلات اللاحقة. تم استبعاد الخلايا التي تحتوي على أقل من 200 أو أكثر من 6,000 إجمالي عدد من معرفات الجزيئات الفريدة (UMI)، كما تم تحديد وإزالة الثنائيات المحتملة باستخدام حزمة DoubletDetection. تم اختيار 2,000 جين أظهرت أكبر تباين في التعبير، تلا ذلك خفض الأبعاد والتصور باستخدام تقنية التقريب والإسقاط للمشعب الموحد (UMAP). تم تحديد ما مجموعه 10 مجموعات خلوية رئيسية، شملت الخلايا البطانية، والأرومات الليفية، والألياف العضلية، والخلايا الكيراتينية، والخلايا المناعية، والخلايا البطانية اللمفاوية، والخلايا الغدية، والخلايا العصبية، والخلايا الميلانينية، ومجموعة خلوية غير مصنفة (الشكل 4A,B). وكشف تحليل ملفات التعبير عن أنماط توزيع متميزة للمؤشرات الحيوية التشخيصية حسب نوع الخلية؛ حيث عُبّر عن FLVCR1 بشكل أساسي في الخلايا البطانية والخلايا الميلانينية، بينما أظهر EIF2AK1 تعبيراً مرتفعاً نسبياً في الخلايا العصبية، والخلايا الغدية، والأرومات الليفية. كما تركز HPX بشكل أساسي في الخلايا الميلانينية، بينما أظهر KEL تعبيراً سائداً في الخلايا الغدية (الشكل 4C,D).

الشكل 4: توزيع المؤشرات الحيوية التشخيصية المرتبطة باستقلاب الهيم في ترانسكريبتوم الخلية الواحدة للجدرة. (أ) مخطط UMAP يوضح 21 عنقوداً خلوياً تضم 21,488 خلية من عينات الجدرة. (ب) تعليقات توضيحية لأنواع الخلايا بناءً على التصنيفات الواردة في الدراسة الأصلية. (ج) مخططات السمات التي توضح تعبير المؤشرات الحيوية التشخيصية المرتبطة باستقلاب الهيم عبر أنواع الخلايا المختلفة. (د) مخطط فقاعي يوضح متوسط مستويات التعبير ونسب الخلايا التي تعبر عن المؤشرات الحيوية التشخيصية المرتبطة باستقلاب الهيم عبر أنواع الخلايا المختلفة. الاختصار: UMAP = التقريب والإسقاط المتشعب الموحد. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
تحديد وتحليل شبكة التفاعل للمؤشرات الحيوية التشخيصية المرشحة
لاستكشاف الآليات التنظيمية الكامنة وراء المؤشرات الحيوية التشخيصية المرشحة، تم بناء شبكة تنظيمية من نوع miRNA–mRNA. ولتعزيز موثوقية التفاعلات المتوقعة، تم تحديد جزيئات miRNA المتداخلة التي تستهدف المؤشرات الحيوية المرشحة. تم الحصول على ما مجموعه 282 من جزيئات miRNA التي تتفاعل مع المؤشرات الحيوية التشخيصية الستة، وتظهر الشبكة التنظيمية الناتجة في الشكل 5. ومن الجدير بالذكر أنه تم التنبؤ بأن hsa-miR-34a-5p، وhsa-let-7a-5p، وhsa-let-7d-5p، وhsa-let-7e-5p، وhsa-miR-26b-5p تنظم جميع المؤشرات الحيوية المرشحة الستة في آن واحد.

الشكل 5: الشبكة التنظيمية لـ miRNA الخاصة بالمؤشرات الحيوية التشخيصية المرتبطة باستقلاب الهيم. توضح الشبكة العلاقات التنظيمية بين ستة جينات مؤشر حيوي تشخيصي (FLVCR1 و HPX و TMCC2 و KEL و XK و EIF2AK1) وجزيئات miRNA المرتبطة بها. تمثل عقد الجينات المؤشرات الحيوية التشخيصية، بينما تمثل العقد المحيطة جزيئات miRNA. تشير الحواف إلى التفاعلات بين miRNA و mRNA المدعومة تجريبياً. الاختصارات: FLVCR1 = مستقبل فيروس لوكيميا القطط من المجموعة الفرعية C 1؛ HPX = هيموبكسين؛ TMCC2 = النطاقات عبر الغشائية واللولبية الملتفة 2؛ KEL = كيل ميتالو-إندوببتيداز؛ XK = مجموعة الدم Kx المرتبطة بالكروموسوم X؛ EIF2AK1 = عامل بدء الترجمة حقيقي النواة 2 ألفا كيناز 1؛ miRNA = حمض ريبوزي نووي ميكروي؛ mRNA = حمض ريبوزي نووي رسول. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
التحقق التجريبي من تعبير FLVCR1 وتحليل الإرساء الجزيئي للمركبات العلاجية المحتملة
للتحقق من صحة النتائج المعلوماتية الحيوية وتأكيد الصلة الوظيفية للجين المحوري المحدد، قمنا بتقييم تعبير FLVCR1 تجريبياً في PKF وNHDF. وقد أظهرت تحليلات qRT-PCR واللطخة الغربية (western blot) باستمرار أن تعبير FLVCR1 كان مرتفعاً بشكل ملحوظ في الخلايا الليفية للجدرة مقارنة بالمجموعات الضابطة الطبيعية (الشكل 6A–C، الشكل التكميلي S1، والجدول التكميلي S4). ويدعم هذا التعبير الخلوي المرتفع الاحتمالية المرجحة لمشاركة الخلل في استقلاب الهيم المرتبط بـ FLVCR1 في إمراضية الجدرة.
نظراً للمشاركة المحتملة لـ FLVCR1 في التغيرات المناعية المرتبطة باستقلاب الهيم، سعينا بعد ذلك إلى تحديد مركبات علاجية محتملة يمكنها استهداف FLVCR1 بشكل مباشر لقطع هذا المحور المرضي. أُجري فحص افتراضي عالي الإنتاجية باستخدام مكتبة مركبات من الطب الصيني التقليدي (TCM) وبنية البروتين التي تم إعدادها. وقد اختيرت المركبات العشرين ذات درجات الارتباط الأكثر ملاءمة لإجراء مزيد من التقييم (الجدول التكميلي S5). وبشكل عام، تشير طاقة الارتباط المنخفضة إلى ألفة ارتباط أقوى، وتعتبر طاقات الالتحام التي تقل عن 5- كيلو كالوري/مول مؤشرًا على تفاعلات مستقرة بين الربيطة والبروتين. ومن بين المركبات التي تم فحصها، أظهر كل من (+)-Gallocatechin و (−)-Epicatechin و (−)-Gallocatechin و Cyanidin (chloride) ألفات ارتباط ملائمة تجاه FLVCR1. ومن الملاحظ أن (+)-Gallocatechin أظهر أقوى تفاعل مع FLVCR1 من خلال تكوين أربع روابط هيدروجينية مع GLU214 وASN245 وGLN246 وGLN471، مما يشير إلى نمط ارتباط مستقر بين الربيطة والبروتين (الشكل 6D–Gتُسلط هذه النتائج الضوء على مركب (+)-gallocatechin كمرشح واعد للتدخل العلاجي القائم على الآلية والذي يستهدف FLVCR1.

الشكل 6: التحقق التجريبي من تعبير FLVCR1 والرسو الجزيئي لمركبات محتملة تستهدف FLVCR1. (A) صور تمثيلية من لطخة ويسترن توضح تعبير بروتين FLVCR1 في مجموعتي CON والندبة المخلبية (keloid). استُخدم GAPDH كضابط تحميل. (B) تقدير كمي لمستويات بروتين FLVCR1 بعد تسويتها مع GAPDH. (C) تحديد مستويات التعبير النسبي لـ mRNA الخاص بـ FLVCR1 في الخلايا الليفية لمجموعتي CON والندبة المخلبية باستخدام qRT-PCR. استُخدم GAPDH كمرجع داخلي. (D–G) تمثيلات ثلاثية الأبعاد لأنماط الارتباط المتوقعة بين FLVCR1 ومركبات جزيئية صغيرة مختارة: (D) (+)-Gallocatechin. (E) (-)-Epicatechin. (F) (-)-Gallocatechin. (G) Cyanidin (Chloride). الاختصارات: FLVCR1 = feline leukemia virus subgroup C receptor 1؛ CON، المجموعة الضابطة؛ GAPDH، glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase؛ qRT-PCR، تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي للنسخ العكسي؛ SD، الانحراف المعياري. يتم عرض البيانات كمتوسط ± SD. الدلالة الإحصائية: ns، P > 0.05؛ *، P < 0.05؛ **، P < 0.01؛ ***، P < 0.001؛ و ****، P < 0.0001. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
تأكيد استقرار معقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin باستخدام محاكاة الديناميكيات الجزيئية
لفحص موثوقية نمط ارتباط الربيطة بالبروتين المتوقع، تم إجراء محاكاة للديناميكا الجزيئية (MD) لمعقد FLVCR1–(+)-gallocatechin. ركز التحليل على ما إذا كان المعقد قد ظل مستقراً هيكلياً بمرور الوقت، وما إذا كان ارتباط الربيطة قد أدى إلى تغيير السلوك التشكيلي للبروتين، وذلك باستخدام تحليل جذر متوسط مربع الانحراف (RMSD)، وجذر متوسط مربع التقلب (RMSF)، ونصف قطر الدوران (Rg)، ومساحة السطح المتاحة للمذيب (SASA)، وتحليل الروابط الهيدروجينية، وحسابات MM/GBSA. أما تحليل RMSD (الشكل 7أأظهرت النتائج أن كلاً من البروتين الفارغ (apo protein) والمعقد المرتبط بالرابطة قد شهدا تقلبات أولية خلال أول 20 نانو ثانية، تلاها استقرار تدريجي، مما يشير إلى أن الأنظمة قد وصلت إلى حالة الاتزان خلال عملية المحاكاة. وبعد مرحلة الاتزان، ظلت قيمة جذر متوسط مربع الانحراف (RMSD) لمعقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin دون 0.2 نانومتر، مما يشير إلى أن ارتباط الرابطة قد ساهم في الحفاظ على الاستقرار البنيوي لبروتين FLVCR1. أما تحليل جذر متوسط مربع التقلب (RMSF) (الشكل 7Bأظهرت ( ) أن معظم البقايا أبدت تقلبات محدودة طوال فترة المحاكاة، مما يشير إلى الحفاظ على السلامة العامة للبروتين، بينما قد تمثل العديد من المناطق المرنة مناطق حلقية تشارك في استيعاب الربيطة. علاوة على ذلك، فإن استقرار ملفات نصف قطر الدوران (Rg) ومساحة السطح المتاحة للمذيب (SASA) (الشكل 7ج،دأظهر ذلك أن المعقد حافظ على تشكيل مدمج، دون وجود تمدد بنيوي واضح أو تغيرات في التعرض للمذيب. وأشار تحليل الروابط الهيدروجينية (الشكل 7Eكشف (أن معقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin حافظ على تفاعلات جزيئية مستمرة، مع تشكل ما يقرب من 3-4 روابط هيدروجينية أثناء المحاكاة، مما يدعم استقرار الارتباط بين اللجين والبروتين. كما أظهر تحليل MM/GBSA أن معقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin قد أظهر طاقة حرة ملائمة للارتباط (Δجإجمالي = −34.87 ± 4.13 كيلوكالوري/مول) (الجدول التكميلي S6أشار تحليل تفكيك الطاقة إلى أن تفاعلات فان دير فالس (Δقوى فان دير فالس = −46.34 ± 2.16 كيلوكالوري/مول) والتفاعلات الكهروستاتيكية (Δهـكهرباء = −14.09 ± (3.45 كيلو كالوري/مول) كانت المساهمات المواتية الرئيسية في الارتباط، على الرغم من المساهمة غير المواتية لطاقة الذوبان القطبية (Δجالذوبان (Solvation) = 25.55 ± 0.74 كيلو كالوري/مول) (الجدول التكميلي S6وبشكل جماعي، أظهرت نتائج محاكاة الديناميكا الجزيئية (MD simulation) هذه أن (+)-Gallocatechin قد شكل معقداً مستقراً مع FLVCR1 وعزز ذلك من موثوقية نمط الارتباط المتوقع عن طريق الالتحام الجزيئي.

الشكل 7: تحليل محاكاة الديناميكيات الجزيئية لمعقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin. (A) مخططات RMSD لبروتين FLVCR1 غير المرتبط (apo) ومعقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin خلال محاكاة الديناميكيات الجزيئية لمدة 100 ns. (B) مخطط RMSF الذي يوضح تقلبات مستوى البقايا لبروتين FLVCR1 أثناء المحاكاة. (C) مخطط SASA الذي يوضح التغيرات في مساحة السطح المتاحة للمذيب لمعقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin. (D) مخطط Rg الذي يقيم مدى تماسك معقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin أثناء المحاكاة. (E) تحليل الروابط الهيدروجينية الذي يوضح التفاعلات الديناميكية بين الجزيئات بين FLVCR1 و (+)-Gallocatechin طوال فترة المحاكاة. الاختصارات: FLVCR1 = feline leukemia virus subgroup C receptor 1؛ RMSD = root mean square deviation؛ RMSF = root mean square fluctuation؛ SASA = solvent-accessible surface area؛ Rg = radius of gyration. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
توفر البيانات:
يمكن الوصول إلى مجموعات بيانات النسخ المتوفرة علنًا والتي تم تحليلها في هذه الدراسة من خلال قاعدة بيانات Gene Expression Omnibus (GEO) تحت أرقام الوصول GSE44270 وGSE7890 وGSE163973. أما البيانات المصدرية الناتجة عن هذه الدراسة والتي استند إليها التحقق التجريبي، بما في ذلك قياسات qRT-PCR، وصور western blot الأصلية، وبيانات التكميم لـ western blot، فهي متوفرة في الشكل التكميلي S1، والجدول التكميلي S1، والجدول التكميلي S2، والجدول التكميلي S3، والجدول التكميلي S4. كما تتوفر نتائج الالتحام الجزيئي وبيانات طاقة الارتباط الحرة MM/GBSA في الجدول التكميلي S5 والجدول التكميلي S6.
الشكل التكميلي S1: البيانات الأصلية لطريقة لطخة ويسترن.يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الملف.
الجدول التكميلي S1: الجينات المرتبطة باستقلاب الهيم.يرجى النقر هنا لتحميل هذا الملف.
الجدول التكميلي S2: تسلسلات البادئات للجينات المختارة. يرجى النقر هنا لتحميل هذا الملف.
الجدول التكميلي S3: مناهج التعلم الآلي لتحديد المؤشرات الحيوية التشخيصية المحتملة في الجدرة. يرجى النقر هنا لتحميل هذا الملف.
الجدول التكميلي S4: البيانات الخام التي تدعم التحقق التجريبي من تعبير FLVCR1. يرجى الضغط هنا لتنزيل هذا الملف.
الجدول التكميلي S5: أفضل 20 مركباً مرشحاً تم تحديدها عن طريق الالتحام الجزيئي مع FLVCR1.يرجى النقر هنا لتنزيل هذا الملف.
الجدول التكميلي S6: تحليل الطاقة الحرة للارتباط باستخدام طريقة MM/GBSA لمعقد FLVCR1–(+)-Gallocatechin.يرجى النقر هنا لتنزيل هذا الملف.