What is footpad injection and when is it used in animal research?

Footpad injection is a specialized subcutaneous administration technique where compounds are injected into an animal's hind foot. Researchers use this method for studies involving inflammation and tumor growth. However, it should only be performed when scientifically justified and alternative approaches are unsuitable, as it causes increased discomfort and may impact normal ambulation.

Why is hock injection preferred over footpad injection in some studies?

Hock injections, administered in the tarsal region, target the popliteal lymph nodes while minimizing pain and preserving mobility compared with footpad injections. Since footpad injection involves a weight-bearing surface and increases discomfort, hock injection is often the preferred alternative when experimental objectives allow for this route of administration.

What needle size and injection volume are recommended for footpad injections?

A 27-gauge or small-gauge needle is recommended for footpad injections. The maximum volume recommended is 50 microliters or as specified in IACUC-approved institutional guidelines. These specifications help minimize tissue damage and ensure consistent, controlled delivery of the compound into the subcutaneous space.

How should the footpad injection site be located and prepared?

The injection landmark is at the center of the foot but just off the midline, closer to the toes, to avoid the blood vessel running the length of the foot. Before injection, wipe the foot with water or alcohol to remove debris. Place the needle bevel up at the injection site, directing it toward the heel, then inject the compound slowly and steadily to avoid rapid tissue distention.

What post-injection monitoring and measurements are required after footpad administration?

Animals must be closely monitored daily for signs of pain, food consumption, and normal ambulation. Once obvious swelling occurs, footpad measurements should be taken daily using a caliper to measure foot thickness in millimeters. This quantifies swelling and helps assess the inflammatory or tumor response. Humane endpoints must be established to ensure animals are euthanized before mobility is significantly impaired.

How do researchers use footpad injection to study inflammatory responses?

Investigators isolate peripheral blood mononuclear cells from human blood samples, mix them with different test antigens, and inject the solutions into an animal's footpad. They then measure foot thickness to quantify the swelling response due to different antigens. This approach allows researchers to assess how various compounds trigger inflammatory reactions in living animals.

What alternative methods should be considered before using footpad injection?

Whenever scientifically appropriate, non-animal methods including cell-based models, organoids, organ-on-chip platforms, and other in vitro assays should be used to reduce or replace animal use in studies involving compound administration. Footpad injection should only be performed when these alternatives cannot meet experimental objectives and scientific justification is documented for IACUC approval.

إدارة المجمع IV

0 مشاهدات05:27 د

1. الحقن داخل القلب

المعالم وتحديد المواقع: ضع الفأر أو الجرذ إما في الاستلقاء الجانبي الأيمن (بحيث يكون الجانب الأيسر متجها لأعلى) أو في الاستلقاء الظهري ، وحدد المعالم.
1. ضع القلب في مستوى نقطة الكوع تقريبا وعلى يسار القص.
2. أدخل الإبرة بين الأضلاع عند نقطة الكوع.
3. في في الاستلقاء الظهري ، أدخل الإبرة في الصدر الموازي للطاولة.
4. في في الاستلقاء الجانبي ، أدخل الإبرة في الصدر بشكل عمودي على الطاولة.
حقن المقال
1. تأكد من وجود الحد الأدنى من حركة الإبرة بمجرد إدخالها في القلب لمنع تمزق العضلات والتسبب في نزيف في كيس التامور ، لأن هذا يضر بوظيفة القلب.
2. شفط المحقنة لتحديد الموضع المناسب. غالبا ما يكون هناك وميض من الدم في محور المحقنة.
3. أمسك المحقنة بحيث لا يتم تغيير وضع اليد على المحقنة للحقن بمجرد وضع الإبرة في القلب.
4. حقن المقالة بطريقة بطيئة وثابتة.
5. اسحب الإبرة ببطء لتقليل النزيف.
6. يجب تقييم الفئران التي تعاني من ضيق التنفس أو النوبات أو الزرقة أو الرنح المطول أو غيرها من العواقب المتعلقة بصدمة الحقن من قبل الطاقم البيطري والقتل الرحيم وفقا لتوصيتهم.

الشكل 1. الحقن داخل القلب في الفئران.

2. الحقن في الوريد باستخدام الضفيرة المدارية الرجعية

معالم الحقن وتحديد المواقع
1. ضع على سطح مستو في الاستلقاء الجانبي.
2. أدخل الإبرة في الظوة الإنسية للعين بزاوية 45 درجة على الأنف.
3. يجب أن يكون عمق الإبرة كافيا لاختراق أنسجة الملتحمة والتقدم خلف مدار العين وإلى الضفيرة العينية. عند وضع الإبرة ، يجب ألا تصادف العظم في الجزء الخلفي من المدار.
4. ضع السبابة في الجزء العلوي من الرأس مع وضع الإبهام على الفك.
5. اسحبي برفق للخلف ولأسفل لشد الجلد وإبرازات مقلة العين.
6. احرص على عدم الضغط على القصبة الهوائية وتقييد تدفق الهواء.
حقن
1. ضع الإبرة خلف العين وليس داخل العين.
2. تأكد من أن الإبرة لديها الحد الأدنى من الحركة بمجرد إدخالها في الضفيرة المدارية الرجعية ، وإلا ستتمزق الأوعية المسببة نزيفا وفقدان العامل في الأنسجة خلف العين. أمسك المحقنة بحيث لا يتم تغيير موضع اليد على المحقنة للحقن بمجرد وضع الإبرة في الضفيرة المدارية الرجعية.
3. لا تشنشق بالمحقنة ، لأنك ستنهار الأوعية.
4. حقن المقالة بطريقة بطيئة وثابتة.
5. اسحب الإبرة واضغط على العين للسيطرة على النزيف وتوفير الإرقاء.
6. يجب تقييم الفئران التي تعاني من التورم أو التهاب الملتحمة أو غيرها من العواقب المتعلقة بصدمة الحقن من قبل الطاقم البيطري وعلاجها أو القتل الرحيم وفقا لتوصيتهم

الشكل 2. الحقن المداري الرجعي في الفئران.

3. حقن وسادة القدم

لضبط النفس ، ضع في أنبوب تقييد مع عزل قدم خلفية واحدة ، وقم بتمديده عن طريق الإمساك بالجلد فوق الخنق.
امسح القدم بالماء أو الكحول لإزالة الحطام قبل الحقن.
حقن تحت الجلد في وسط القدم الخلفية لتشكيل فقاعة صغيرة في موقع الحقن. لتجنب الأوعية الدموية التي تمتد على طول القدم ، قم بالحقن قبالة خط الوسط الموازي للوعاء الدموي.

الشكل 3. حقن وسادة القدم في الفئران والجرذان.

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: كاي ستيوارت ، RVT ، RLATG ، CMAR. فاليري أ. شرودر ، RVT ، RLATG. جامعة نوتردام ، إنديانا

هناك العديد من الطرق الشائعة الاستخدام للإدارة المركب…