When is intradermal injection used in rodent research?

Intradermal injection delivers compounds into the space between the epidermis and dermis layers. This route is typically used to assess inflammation, measure cutaneous blood flow, or evaluate allergenic reactions to antigens. The procedure requires anesthesia and specialized training to ensure accurate placement and minimize tissue damage at the injection site.

What are the key advantages of intranasal administration in laboratory animals?

Intranasal administration is non-invasive and requires minimal training and simple equipment like a calibrated micropipette. The nasal mucosa's rich blood vessel and nerve supply enables rapid systemic absorption and direct central nervous system targeting. This route is commonly used for vaccine delivery and local decongestant applications in rodents.

Why is anesthesia recommended for intranasal dosing in conscious rodents?

Anesthesia during intranasal administration ensures proper compound placement at the nares for accurate dosing, prevents animals from biting equipment, and eliminates head jerking that could injure nasal tissue or eyes. Anesthesia also reduces the likelihood of the animal snorting and spraying the compound from the nares upon administration.

What volume limits apply to intranasal administration in different rodent species?

For rats, intranasal administration should not exceed 50 microliters per administration. For mice, the maximum total volume is less than 20 microliters. These volume restrictions prevent complications and ensure compliance with institutional guidelines and IACUC-approved protocols for safe compound delivery.

How is needle depth controlled during neonatal intracranial injection?

A needle guard is created by measuring the correct needle against its cap, marking the desired length, and cutting the cap with a razor blade to produce a clean, level cut. This custom depth-control device is prepared aseptically and ensures the needle penetrates only to the validated depth appropriate for the target brain structure and animal age.

What preparation steps are essential before intradermal injection in rodents?

The injection site must be shaved using an electric razor or depilatory cream, then thoroughly cleaned with water-dampened gauze to remove lingering hair. A topical antiseptic solution is applied to the shaved area. The skin is stabilized by stretching it between thumb and index finger before needle insertion to ensure accurate bleb formation.

Why is a separate needle used to draw test articles for intracranial injection?

A separate needle is used to draw the test article because insertion into the stopper significantly dulls fine-gauge needles, which compromises injection quality. Using a fresh needle for intracranial administration preserves needle sharpness and ensures precise, trauma-free delivery directly into the neonatal rodent brain.

إدارة المجمع III

0 مشاهدات13:19 د

1. الإدارة داخل الأدمة

معظم الحقن داخل الأدمة عبارة عن مركبات مائية. يجب تخزين المحاليل من الناحية الفسيولوجية للحصول على درجة حموضة محايدة ، من أجل تجنب نخر الأنسجة في موقع الحقن.
نطاق حجم الإبرة هو مقياس 25-30 ، وهو أصغر مقياس ممكن.
نطاق الجرعة لكل موقع حقن هو 50-100 ميكرولتر. يمكن أن يؤدي حقن كميات زائدة إلى نخر في موقع الحقن أو تسرب المركب خارج الموقع بسبب الضغط.
من أجل وضع الإبرة بدقة في الفضاء داخل الأدمة ، من الضروري تخدير كل من الفئران والجرذان. يسمح التخدير الاستنشاقي بالتحريض والتعافي السريع. ومع ذلك ، فإن التخدير عن طريق الحقن له ميزة توفير متسع من الوقت لإعداد المنطقة وإجراء الحقن. ¹
قم بإزالة الشعر في موقع الحقن من خلال استخدام كريم مزيل الشعر أو عن طريق حلق المنطقة.
قم بإزالة أي كريم مزيل شعر متبقي أو بقايا شعر تماما.
ضع مطهر موضعيا، مثل محلول اليود أو محلول الكلورهيكسيدين أو الكحول.
إجراءات الإدارة
1. مد الجلد مشدودا بين الإبهام والسبابة. هذا يوفر ثباتا للجلد عند وضع الإبرة.
2. ضع الإبرة شطبة على الجلد.
3. أدخل الإبرة برفق في الجلد بين البشرة والأدمة. تقدم الإبرة إلى ما بعد شطبة.
4. حقن المادة ببطء. سيؤدي حقن المركب إلى إنشاء فقاعة أو نفطة صغيرة في الجلد.
5. توقف مؤقتا بعد الحقن للسماح للجلد بالتمدد والتكيف قبل سحب الإبرة.
الاحتياطات
1. سحب المكبس ليس ضروريا.
2. إذا تم إدخال الإبرة في الفضاء تحت الجلد ، فلن تتشكل فقاعة. يؤدي الحقن بعمق إلى حقن تحت الجلد.
3. تجنب نشاف أو مسح المنطقة ، حيث يمكن أن يتسبب ذلك في تسرب المركب من موقع الحقن.
4. عند إجراء حقن متعددة ، باعد بينها حتى لا تتداخل الفقاع.

< p class = "jove_content" fo: keep-together.within-page = "1" >

الشكل 1. الحقن داخل الأدمة في الفئران.

2. الإدارة داخل الأنف

معدات
1. استخدم ماصة وحدة الماصات الدقيقة التي يمكن معايرتها لتقديم حجم دقيق.
2. يجب استخدام أطراف الماصة التي تستخدم لمرة واحدة لتجنب التلوث المتبادل. يمكن أيضا استخدام محاقن السل والإبر الحادة والأنابيب المرنة للجرعات.
3. يجب ألا يتجاوز إجمالي أحجام الحقن للفئران 40-100 ميكرولتر ، ويجب إعطاؤه في قطرات 6-10 ميكرولتر. بالنسبة للفئران ، يبلغ الحد الأقصى للحجم الكلي 24 ميكرولتر ، ويعطى في قطرات 3-4 ميكرولتر.
الإدارة في الواعية
1. يتطلب ضبط النفس اليدوي في الواعية أن يكون الرأس غير متحرك نسبيا بحيث يمكن وضع طرف الماصة أو الإبرة الحادة بالقرب من الأنثان لتوصيل المركب ، ولكن ليس قريبا جدا من كزة أو تمزيق أنسجة الأنف.
2. كبح جماح واحتفظ به في وضع رأسي.
3. ضع قطرة صغيرة من مركب سائل عند فتحة الأنف. يجب أن يستنشق القطرة.
4. قم بإدارة وحدة تخزين إضافية ، بالتناوب على المجلد حتى يتم إعطاء المجلد بالكامل.
5. عند إعطاء كميات أكبر ، من المهم عدم تضييق الصدر أثناء ضبط النفس. يعيق ضغط الصدر قدرة على أخذ أنفاس عميقة بما يكفي لسحب السائل إلى الشعب الهوائية والرئتين.

الشكل 2. الإعطاء داخل الأنف في الفئران الواعية.

الإدارة في الفاقدة للوعي
1. يسمح استخدام التخدير الاستنشاقي بتجميد أثناء الاقتراب من المركب وتسليمه. هذا يلغي إمكانية عض لمعدات الجرعات ، وفقدان المركب بسبب اهتزاز الرأس ، وإصابة أنسجة أنف أو عينيه أو بشرة وجهه. كما أن أقل عرضة للشخير ورش المركب من الناف عند تناوله.
2. ضع في وضع ضعيف. يؤثر موضع الرأس على وضع المحلول في الأنثوذ. لقد ثبت أن الوضع المثالي لتوصيل الجهاز العصبي المركزي هو مع استلقاح. هذا يسمح بامتصاص أفضل. ²
3. قم بإدارة نصف المركب مباشرة في جانب واحد من فتحة الأنف ، مع توقيته بالاستنشاق. ثم اقلب.
4. على النحو الوارد أعلاه ، قم بإدارة النصف الآخر من الحجم في فتحة الأنف الأخرى.

< p class = "jove_content" fo: keep-together.within-page = "1" >

الشكل 3. الإعطاء داخل الأنف في الفئران الفاقدة للوعي. < p class = "jove_title" >3. الإعطاء داخل الجمجمة في الفئران والجرذان حديثي الولادة

يجب تخدير الفئران أو الفئران للحقن داخل الجمجمة.

ماوس rat العمر (أيام) مقياس الإبرة (ز) العمر (أيام) مقياس الإبرة (ز) 0-7 29-30 0-5 27-29 7-14 27 5-10 25-27 14-28 25 10-14 25 العمر (أيام) طول الإبرة (مم) العمر (أيام) طول الإبرة (مم) 0-7 2 0-4 2-3 7-14 3 4-7 3 14-21 4 7-10 4 21-28 5 10-14 5 العمر (أيام) الحجم (ميكرولتر) العمر (أيام) الحجم (ميكرولتر) 0-5 <20 1-3 <20 6-20 <60 4-10 <60 20-28 <100 11-14 <100

الجدول 1. مقياس الإبرة وطول الإبرة والحد الأقصى لحجم الإدارة داخل الجمجمة حسب عمر الفئران والجرذان. ⁴

معدات
1. تحديد مقياس الإبرة الصحيح والحد الأقصى لحجم الإدارة وفقا للجدول 1.
2. قم بإعداد واقي إبرة قبل تخدير.
  ملاحظة: يتم التحكم في عمق حقن الإبرة من خلال استخدام واقي يتم إنشاؤه باستخدام غطاء الإبرة.
  1. لإنشاء الحارس ، يتم قياس إبرة مقابل غطاء الإبرة ، ويتم وضع علامة على الغطاء للإشارة إلى مكان القطع. يجب إجراء القطع بحيث يتم الكشف عن 2 إلى 5 مم من الإبرة عند استبدال الغطاء على الإبرة.
  2. يجب أن يكون طول الإبرة المكشوفة طويلا بما يكفي لاختراق الجلد والجمجمة ، والوصول إلى العمق المطلوب في الدماغ.
  3. أطوال الإبر اللازمة للفئران والجرذان مذكورة في الجدول 1.
3. مطلوب مصدر تسخين لمنع انخفاض حرارة الجسم في الجراء. هناك عدة أنواع: وسادة تسخين كهربائية مثبتة على مستوى منخفض ، أو بطانية مياه متداولة ، أو كيس حراري قابل لإعادة الاستخدام.
ضبط النفس
1. تتطلب صغار الفئران والجرذان التي تبلغ أعمارها 10 أيام أو أقل تخديرا لهذا الإجراء. قم بتقييدها يدويا عن طريق إمساكها خلف الرأس مباشرة وسحب الجلد بشكل ذيلي لممارسة ضغط طفيف على الكتفين.
2. تخدير الجراء الذين تزيد أعمارهم عن 10 أيام مع استنشاق الأيزوفلوران. قم بتوصيل غرفة الحث بمبخر دقيق أو جرة جرس بكرة قطنية مبللة بالأيزوفلوران. بمجرد تثبيت الجرو ، يكون التخدير فعالا لمدة 40 ثانية تقريبا ، مما يوفر وقتا كافيا للحقن.
تقنية الحقن
1. اسحب المادة في المحقنة وضع دليل الغطاء / الإبرة فوق الإبرة.
2. حجم الحقن الموصى به كحجم أقصى لكل فأر أو فأر حديث الولادة هو 100 ميكرولتر ، ويصل حجم الحقن للفظام أو الفئران الأكبر سنا إلى 300 ميكرولتر.
3. للحقن في القشرة الدماغية لحديثي الولادة، يتم إدخال الإبرة على بعد 5 مم خلف العين، على بعد حوالي 3 مم من خط الوسط للجمجمة.
4. يقع موقع حقن فأر الفطام في منتصف الطريق تقريبا بين العين والأذن ، وبعيدا عن خط الوسط.

الشكل 4. الإدارة داخل الجمجمة في جرو الفأر.

المصدر: كاي ستيوارت ، RVT ، RLATG ، CMAR. فاليري أ. شرودر ، RVT ، RLATG. جامعة نوتردام ، إنديانا

هناك العديد من الطرق الشائعة الاستخدام للإدارة المركب…