What are the four stages of anesthesia in rodents?

Stage one involves an increasing pain threshold with minimal behavioral changes. Stage two is characterized by disorientation and irregular breathing. Stage three, the surgical stage, has four planes where the animal progresses from loss of righting reflex to complete anesthesia suitable for surgery. Stage four represents overdose with complete paralysis, potentially leading to respiratory arrest and death.

How should you prepare equipment before inducing anesthesia with an inhalant anesthetic?

First, fill the precision vaporizer with appropriate liquid anesthetic. Check the waste gas scavenging system canister by weighing it; replace if it has increased fifty grams above starting weight. Assemble the induction chamber ensuring input connects from the vaporizer and output connects to the scavenging system. Verify all connections are secure before placing the animal in the chamber.

What is the preferred method for inducing anesthesia in rodents?

The preferred method is induction in a precision vaporizer-connected chamber at 3-5% isoflurane with 1 liter per minute oxygen flow. After the animal is fully anesthetized, flush the chamber with oxygen by turning off isoflurane before gently removing the animal. This reduces personnel exposure to anesthetic gases compared to using a nose cone or facemask, which animals may resist.

How do you assess anesthetic depth during a surgical procedure?

Assess anesthetic depth every 10-15 minutes using physical methods like toe pinch, tail pinch, or pinna pinch to check for withdrawal reflexes. Also evaluate the palpebral reflex by touching the medial canthus and the corneal reflex by touching the cornea. Monitor physiological indicators including heart rate, respiratory rate, blood pressure, mucous membrane color, and capillary refill time, which should not exceed 1-2 seconds.

What factors determine which anesthetic to use for a rodent procedure?

The choice of anesthetic depends on the extent and duration of the procedure, the species and strain, the animal's age, and its physiological status. Accurate body weight measurement is essential before anesthesia to ensure appropriate dose calculation, minimize overdose risk, and support animal welfare. Injectable anesthetics like ketamine combined with sedatives or muscle relaxers offer alternatives to inhalant compounds like isoflurane.

Why is thermal support necessary during rodent anesthesia?

Rodents are prone to hypothermia during anesthesia lasting longer than five minutes. Controlled thermal support is required to maintain body temperature and prevent overheating. Hypothermia can complicate recovery and compromise animal welfare. Temperature monitoring and appropriate heating devices should be used throughout the anesthetic procedure to maintain normal body temperature.

What should you do after anesthesia to ensure proper animal recovery?

Animals should recover in a controlled environment with thermal support and appropriate analgesia. Monitor animals continuously until they regain sternal recumbency, normal respiratory function, and appropriate responsiveness. Only fully recovered animals should be returned to their housing. Animals showing anesthetic complications like respiratory depression or delayed recovery require immediate humane intervention and veterinary consultation.

تحريض التخدير وصيانته

0 views14:01 min

يجب أن يحدد الطبيب البيطري الاختيار الصحيح لأدوية التخدير للجراحة والإجراءات الأخرى التي يحتمل أن تكون مؤلمة. يعتمد هذا على جوانب عديدة ، بما في ذلك مدى ومدة الإجراء ، والأنواع والسلالة ، والعمر ، والحالة الفسيولوجية للحيوان.

التخدير متوفر كمستنشقات أو حقن. يمكن إجراء التخدير الجراحي باستخدام مزيج من التخدير عن طريق الحقن والاستنشاق. ²

1. تحريض التخدير المستنشق

يشمل التخدير المستنشق الأيزوفلوران وسيفوفلوران وديسفلوران ، مع استخدام الأيزوفلوران بشكل شائع. يتم استخدام هذه التخدير في كثير من الأحيان لأنه من الأسهل التحكم في عمق التخدير معها. يمكن تحريض التخدير باستخدام التخدير الاستنشاقي باستخدام جرة جرس أو غرفة حث مثبتة على مبخر دقيق.

جرة الجرس
1. المعدات: جرة جرس أو جرة تجفيف مع منصة مثقبة من السيراميك أو البلاستيك ، وكرة قطنية ، ومخدر سائل (إيزوفلوران ، أو سيفوفلوران ، أو ديسفلوران) ، وغطاء دخان يتم تنفيسه في الهواء الطلق.
2. اعداد
  1. استخدم جرة الجرس تحت غطاء المحرك ، وليس على المقعد ، لتجنب تعرض الأفراد لغازات التخدير.
  2. قم بتجميع جرة الجرس مع وضع المنصة في الأسفل ، مما يخلق مسافة بين قاع البرطمان والمنصة. هذا ضروري لمنع من ملامسة التخدير السائل.
  3. ارتداء قفازات النتريل أو غيرها من القفازات غير المنفذة ، تشبع كرة القطن بالتخدير.
  4. ضع كرة القطن تحت المنصة في جرة الجرس.
  5. قم بتثبيت الغطاء في جرة الجرس لمنع هروب بخار التخدير.
3. التعريفي
  1. ضع في جرة الجرس عن طريق تحريك الغطاء إلى جانب واحد.
  2. بمجرد أن يكون في الجرة ، سيكون من الضروري مراقبة نشاطه وتنفسه لتحديد عمق التخدير.
  3. يتعرض للتخدير ، حتى يفعل.
  4. بمجرد تخدير بالكامل ، حرك الغطاء إلى جانب واحد ، مع ترك مساحة كافية للسماح بإدخال اليد. أمسك ذيل المخدر أو قفسه أو جسمه ، ثم أخرجه برفق من جرة الجرس.
مبخرات دقيقة
يمكن استخدام المبخرات الدقيقة إما مع غرفة الحث أو قناع الوجه. يجب فحص جهاز التخدير قبل كل إجراء. يجب إضافة المخدر المناسب إذا كانت المستويات منخفضة. يجب فحص نظام الكسح للتأكد من إزالة غازات النفايات بالكامل. بالنسبة لأنظمة التخدير السلبية لغاز النفايات ، يجب وزن علبة الكسح لتحديد ما إذا كانت لا تزال فعالة. بشكل عام ، فإن الزيادة في الوزن بمقدار 50 جراما فوق الوزن الأولي هي النقطة التي يتم عندها إنفاق العلبة.
1. معدات
  1. غرفة الحث ، والمبخر الدقيق ، ووحدة تنظيف غاز النفايات (سواء كانت سلبية أو نشطة) ، ومخدر سائل (إيزوفلوران ، سيفوفلوران ، أو ديسفلوران ، على النحو الذي يحدده نوع المرذاذ المستخدم).
2. اعداد
  1. قم بتجميع غرفة الحث بحيث يكون المدخل من المرذاذ والإخراج إلى نظام كسح غاز النفايات.
3. التعريفي
  1. ضع في غرفة الحث. تحتوي بعض الغرف على غطاء منزلق ، والبعض الآخر يحتوي على غطاء مفصلي يغلق.
  2. بمجرد دخول إلى الغرفة ، يبدأ تدفق الأكسجين ويتم تشغيل المرذاذ الدقيق عند مستوى الحث 3-4 للأيزوفلوران. سيؤدي انخفاض مستويات توصيل التخدير إلى إطالة وقت تحريض.
  3. يتعرض للتخدير ، حتى يفعل.
  4. بمجرد تخدير بالكامل ، اغسل الغرفة بالأكسجين قبل إزالة لمنع تعرض الأفراد لغازات التخدير. إذا تم وضع غرفة الحث في غطاء الدخان ، فلن يكون التنظيف بالأكسجين ضروريا لتطهير المخدر من الغرفة قبل الفتح.
  5. أمسك ذيل أو قفص أو جسم المخدر ، ثم أخرجه برفق من الغرفة.
كمامة الوجه
1. تشتمل المعدات على مخروط أو قناع أنف القوارض ، ومبخر دقيق ، ووحدة تنظيف غاز النفايات (إما سلبية أو نشطة) ، ومخدر سائل (إيزوفلوران ، سيفوفلوران ، أو ديسفلوران ، على النحو المحدد حسب نوع المرذاذ المستخدم).
2. اعداد
  1. قم بتجميع مخروط الأنف أو القناع بحيث يكون المدخل من المرذاذ ، ويكون الإخراج إلى نظام كسح غاز النفايات.
  2. غالبا ما تحتوي آلات تخدير القوارض على مفتاح تبديل لتبديل توصيل بخار التخدير من غرفة الحث إلى مخروط أو قناع أنف القوارض. تأكد من ضبط هذا بشكل صحيح لتوصيل مخدر الأنف.
3. التعريفي
  1. نظرا لأن غازات التخدير لها رائحة كريهة ، فإن العديد من ستعترض على إخفاؤها للتحريض. الطريقة المفضلة هي استخدام صندوق الحث متبوعا بالصيانة مع مخروط الأنف. بمجرد أن يكون أنف أو وجهه في القناع بإحكام ، يبدأ تدفق الأكسجين ويتم تشغيل المرذاذ الدقيق عند مستوى تحريض 5 للأيزوفلوران. سيؤدي انخفاض مستويات توصيل التخدير إلى إطالة وقت الحث وزيادة في معاناة.
  2. من الضروري مراقبة للتنفس ، لأن الإمساك القوي جدا أثناء الحث يمكن أن يؤدي إلى الاختناق.
  3. بمجرد أن يبدأ في الاسترخاء ، يمكن تعديل الأنف أو الوجه في مخروط الأنف أو القناع ، ويتم تقليل توصيل التخدير إلى مستوى صيانة 1.5-0.5 للأيزوفلوران بمجرد تحقيق الاسترخاء التام.

2. تحريض التخدير باستخدام التخدير عن طريق الحقن

التخدير عن طريق الحقن هو في المقام الأول مزيج من الكيتامين والمهدئات أو مرخيات العضلات.

التركيبات الشائعة هي: 1) كوكتيل القوارض ، والذي يتكون من الكيتامين (100 مجم / مل) ، زيلازين (20 مجم / مل) ، أسيبرومازين (10 مجم / مل) ، والمحلول الملحي المعقم (0.9٪ كلوريد الصوديوم) ؛ 2) الكيتامين / الزيلازين 2: 1 ، والذي يتكون من الكيتامين (100 مجم / مل) ، والزيلازين (20 مجم / مل) ، والمحلول الملحي المعقم (0.9٪ كلوريد الصوديوم) ؛ و 3) مزيج الفأر الكيتامين / الزيلازين ، والذي يتكون من الكيتامين (100 مجم / مل) ، والزيلازين (20 مجم / مل) ، والمحلول الملحي المعقم (0.9٪ كلوريد الصوديوم). عند استخدام مجموعة الكيتامين / الزيلازين ، يجب أن يتم التعزيز فقط باستخدام الكيتامين فقط ، وليس الزيلازين ، بسبب عمر النصف لهذه الأدوية.

يجب تحضير مزيج الكيتامين مع المهدئات و / أو مرخيات العضلات كمحلول مخزون يمكن من خلاله استخلاص الجرعات الفردية. يجب قياس العوامل بدقة وتخفيفها بمحلول ملحي معقم لضمان إعطاء الجرعات المناسبة للحيوانات. نظرا لأن الكيتامين مادة خاضعة للرقابة ، يجب تدوين الكمية المستخدمة من الزجاجات في "سجل الأدوية الخاضعة للرقابة" ، ويجب أن تحتوي الخلائط على "سجلات المواد الخاضعة للرقابة" الفردية. عند تحضير الخلطات ، أضف الكيتامين ببطء إلى الزجاجة ، لأنه يميل إلى الرغوة إذا تم حقنه بقوة. يتم استخدام زجاجة معقمة سعة 20 مل للخليط. يجب أن تكون الزجاجات ملصقة بشكل صحيح باسم المركبات ، والتاريخ المختلط ، وتاريخ انتهاء الصلاحية ، ورقم دفعة الكيتامين (لأنها مادة خاضعة للرقابة) ، والجرعة المقترحة. يمكن تحديد تاريخ انتهاء الصلاحية من خلال تاريخ انتهاء صلاحية المكون في أقرب وقت (يعتمد على قواعد / إرشادات المنشأة / الدولة). لحفظ سجلات دقيقة للكيتامين ، يجب وزن كل من الزجاجة الفارغة والزجاجة المملوءة. بعد ذلك ، يجب تسجيل الأوزان على ملصق الخليط وعلى ورقة سجل المواد الخاضعة للرقابة الفردية التي يتم إعدادها لكل زجاجة. قم بتخزين مخاليط الكيتامين في مكان مظلم يتم التحكم في درجة حرارته للحفاظ على فعاليته.

تحضير كوكتيل القوارض
1. تشمل معدات تحضير محلول التخدير 3 محاقن سم مكعب ، وحقنة 12 سم مكعب ، وإبر 22 جم × 1 بوصة ، و 1.8 سم مكعب من الكيتامين عن طريق الحقن 100 مجم / مل ، و 1.8 سم مكعب من الزيلازين عن طريق الحقن 20 مجم / مل ، و 0.6 سم مكعب من الأسيبرومازين عن طريق الحقن 10 مجم / مل ، و 15.8 سم مكعب من محلول ملحي معقم للحقن ، وملصق مخدر.
2. ارسم 15.8 سم مكعب من المحلول الملحي المعقم ، وحقنها في الزجاجة. استخدم حقنة 12 سم مكعب وحقنة 3 سم مكعب ، وتخلص من فقاعات الهواء للحصول على قياسات دقيقة.
3. أضف الكيتامين والزيلازين والأسيبرومازين إلى الزجاجة.
تحريض كوكتيل القوارض
1. بشكل عام ، يستخدم كوكتيل القوارض لتخدير الفأر. نظرا للاختلاف في الاستجابة لكوكتيل القوارض في الفئران البالغة ، فمن الأفضل استخدامه في الفئران التي تقل أعمارها عن 5 أسابيع. يمكن استخدام كوكتيل القوارض بالتزامن مع التخدير الاستنشاقي ، خاصة في الفئران.
2. يتم إعطاء كوكتيل القوارض بشكل عام للفئران وفقا للوزن ، باستخدام الحساب التالي: (أبيض × 10) - 50 = ميكرولتر من كوكتيل القوارض الذي يجب إعطاؤه. سيختلف هذا بناء على الإجهاد والعمر والحالة الصحية.
3. يتم إعطاء هذا الحل فقط داخل الصفاق إذا تم حقنها في العضل ، يمكن أن يكون هناك رد فعل شديد في الأنسجة.
تحضير الكيتامين / الزيلازين 2: 1
1. تشمل معدات تحضير محلول التخدير 3 محاقن سم مكعب ، وإبر 22 جم × 1 بوصة ، و 10 سم مكعب من الكيتامين عن طريق الحقن 100 مجم / مل ، و 5 سم مكعب من الزيلازين عن طريق الحقن 20 مجم / مل ، وزجاجة معقمة سدادة سعة 20 مل ، وملصق مخدر.
2. أضف الكيتامين والزيلازين إلى الزجاجة.
التعريفي
1. يستخدم الكيتامين / الزيلازين 2: 1 للتخدير للفئران ، ويمكن استخدامه مع التخدير الاستنشاقي.
2. يعطى الكيتامين / الزيلازين 2: 1 بشكل عام بدءا من جرعة 0.3 سم مكعب ويزداد بمقدار 0.02 سم مكعب مع أحداث التخدير اللاحقة. سيختلف هذا بناء على الإجهاد والعمر والحالة الصحية.
3. يعطى الكيتامين / الزيلازين 2: 1 فقط عن طريق الحقن العضلي.
تحضير مزيج الفأر الكيتامين / الزيلازين
1. تشمل معدات خلط الفأر الكيتامين / الزيلازين المطلوبة لتحضير محلول التخدير 3 محاقن سم مكعب ، وإبر 22 جم × 1 بوصة ، و 3.6 سم مكعب من الكيتامين عن طريق الحقن 100 مجم / مل ، و 0.4 سم مكعب من الزيلازين عن طريق الحقن 20 مجم / مل ، و 16 سم مكعب محلول ملحي معقم (0.9٪ كلوريد الصوديوم) ، وزجاجة معقمة 20 مل ، وملصق مخدر.
2. أضف الكيتامين والزيلازين إلى الزجاجة ، لعمل محلول 9: 1 من الكيتامين إلى الزيلازين.
3. أضف المحلول الملحي إلى الزجاجة ، مما ينتج عنه خليط 1: 4 من الكيتامين / الزيلازين 9: 1 إلى محلول ملحي.
تحريض مزيج الفأر الكيتامين / الزيلازين
1. يمكن أيضا استخدام مزيج الفأر الكيتامين / الزيلازين جنبا إلى جنب مع التخدير الاستنشاقي.
2. يعطى مزيج الفأر الكيتامين / الزيلازين بشكل عام للفئران وفقا للوزن ، باستخدام الحساب التالي: (وزن أبيض × 10) - 50 = ميكرولتر من مزيج الفأر من الكيتامين / الزيلازين الذي يجب إعطاؤه. سيختلف هذا بناء على الإجهاد والعمر والحالة الصحية.
3. يمكن إعطاء مزيج الفأر الكيتامين / الزيلازين داخل الصفاق.

3. تقييم التخدير

يمكن تقييم عمق التخدير من خلال اختبار الاستجابة للمنبهات المختلفة. ستنتج الحركة الإرادية عن المحفزات الجسدية للجسم. انظر الجدول 1 للحصول على قائمة بالطرق الفيزيائية المستخدمة لتقييم عمق التخدير.

أسلوب إجراء استجابه قرصة إصبع القدم مد الساق وعزل الحزام بين أصابع القدم. يتم ضغط هذه المنطقة بإحكام باستخدام الأظافر أو الملقط اللارضحي. يشار إلى المنعكس الإيجابي من خلال تراجع الساق أو سحب القدم. ليس في مستوى التخدير الجراحي إذا كانت هناك حركة في الساق أو الجسم أو نطق أو زيادة ملحوظة في التنفس. قرصة الذيل يتم ضغط طرف الذيل باستخدام الأصابع أو الملقط غير الرضحي. يشار إلى رد الفعل الإيجابي عن طريق ارتعاش الذيل أو حركته. لا يكون في مستوى جراحي للتخدير إذا كانت هناك حركة للذيل أو نطق أو زيادة ملحوظة في التنفس. قرصة الأذن باستخدام الأصابع أو الملقط اللارضحي ، اضغط على طرف الصيوان. رد الفعل الإيجابي هو هز الرأس أو حركة الشعيرات للأمام. إذا كانت هناك حركة في الرأس أو شعيرات أو نطق أو زيادة ملحوظة في التنفس ، فإن ليس في مستوى التخدير الجراحي. منعكس الجفن باستخدام طرف الإصبع ، المس الكانثوس الإنسي (الزاوية الداخلية) للعين. يشار إلى رد الفعل الإيجابي من خلال وميض استجابة للمس الجفون. إذا كانت هناك حركة للجفون أو الشعيرات أو زيادة ملحوظة في التنفس ، فإن ليس في مستوى التخدير الجراحي. منعكس القرنية باستخدام قضيب برأس قطني، المس القرنية برفق (مقلة العين). يشار إلى الاستجابة الإيجابية من خلال وميض. إذا كانت هناك حركة للجفون أو الشعيرات أو زيادة ملحوظة في التنفس ، فإن ليس في مستوى عميق بما فيه الكفاية من التخدير الجراحي.

الجدول 1. طرق المحفزات الفيزيائية لتقييم عمق التخدير. ²

يجب أيضا استخدام المؤشرات الفسيولوجية مثل معدل ضربات القلب ومعدل التنفس وضغط الدم ولون الغشاء المخاطي ووقت إعادة الملء الشعري. في حين أن الملاحظات العامة يمكن أن تكون مفيدة للكشف عن التغيرات في معدل التنفس للحيوانات ، للاستفادة من معدل ضربات القلب ، أو ضغط الدم لتقييم العمق ، فإن المعدات المتخصصة مطلوبة. إذا كان مخطط كهربية القلب متاحا، فيمكن قياس معدل ضربات القلب وقوتها. لقياس ضغط الدم ، هناك مجموعة متنوعة من الأجهزة التي يتم تركيبها على الذيل أو حتى على الجسم كله. ستؤدي المحفزات الفيزيائية كما هو موضح في الجدول 1 إلى زيادة في جميع هذه المعلمات الثلاثة.

لوح لون الأغشية المخاطية والعينين والأذنين والفم والأنف وفتحة الشرج ، وبدرجة أقل - يتم ملاحظة الكفوف والذيل للتغييرات. يجب أن تكون المناطق وردية اللون ، مما يشير إلى التنفس الكافي ووظيفة القلب. عندما ينتقل إلى المرحلة الرابعة من التخدير ، تتوقف التنفس ، مما يؤدي إلى زرقة - يشار إليها باللون الأزرق أو الرمادي - إلى الأغشية المخاطية والجلد المحيط.

يتم تعريف وقت إعادة الملء الشعري على أنه مقدار الوقت المستغرق لعودة اللون إلى سرير شعري خارجي بعد أن يتم تبييضه عن طريق الضغط على المنطقة. يتم الضغط على عصا قضيب أو إصبع على اللثة أو الصيوان أو أسرة الأظافر للحيوانات المخدرة. يجب ألا يزيد عدد الثواني التي تستغرقها المنطقة المبيضة للعودة إلى اللون الوردي عن 1-2 ثانية. يشير وقت إعادة الملء الممتد إلى انخفاض معدل ضربات القلب أو قوة تقلصات القلب ، مما يشير إلى أن قد يكون مخدرا بعمق وقريبا من الموت.

من المهم استخدام العديد من المعلمات المختلفة لتقييم عمق التخدير. سيؤدي استخدام نفس إصبع القدم أو الأذن للقرصات المتكررة إلى إزالة حساسية المنطقة ، وسيتم قمع الاستجابة وعدم إعطاء تقييم دقيق لعمق التخدير. استخدم مواقع بديلة لتقييم قرصة أصابع القدم والأذن. يجب إعادة تقييم عمق التخدير كل 10-30 دقيقة طوال الجراحة. ²

أظهرت الدراسات أن هناك تغيرات قلبية تنفسية في مخدر. أثناء التخدير بالعقاقير القابلة للحقن ، تعاني من معدل تنفس مستقر. ومع ذلك ، فإنها تظهر التباين في النتاج القلبي. تم الإبلاغ عن أن الاستجابة للتخدير عن طريق الحقن تختلف اختلافا كبيرا بين السلالات المختلفة ، وبالتالي يصعب توحيد الجرعة. ⁷ تميل عوامل الاستنشاق إلى تقليل معدل التنفس ولكن لها تأثير أقل على نظام القلب والأوعية الدموية. نظرا لأن جرعة التخدير المستنشق يمكن تعديلها بسهولة طوال مدة الإجراء ، فغالبا ما تكون الطريقة المفضلة.

يشكل تحريض التخدير وصيانته جزءا لا يتجزأ من الرعاية البيطرية لحيوانات المختبر التي تخضع لأي شكل من أشكال العمليات الجراحية. الهدف من التخدير هو شل حركة بشكل كاف وتخفيف جميع أحاسيس الألم. بالإضافة إلى الحث ، يلزم إجراء مراقبة دقيقة ومستمرة للحفاظ على عمق التخدير الصحيح بأمان طوال العملية.

في هذا الفيديو ، سنناقش أولا بإيجاز مستويات تخدير القوارض والمرحلة التي يجب أن يهدف المرء إلى تحقيقها. بعد ذلك ، سنراجع طرق الحث والصيانة المختلفة ، والطرق المختلفة للتأكد من أن دائما في مرحلة التخدير المرغوبة ، وأخيرا بعض التجارب الواقعية التي تنطوي على استخدام مواد تخدير مختلفة لأغراض متنوعة.

لنبدأ بمناقشة المستويات. هناك أربع مراحل من التخدير وأربع مستويات في المرحلة الثالثة أو المرحلة الجراحية.

خلال المرحلة الأولى ، يصبح مشوشا. تتميز المرحلة الثانية بمعدل التنفس غير المنتظم وفقدان منعكس التصحيح. في المستوى الأول من المرحلة الثالثة ، تكون ردود الفعل الجفنية والبلع غائبة. خلال المستوى الثاني ، تفقد ردود الفعل الحنجرية والقرنية. حتى هذه اللحظة ، لم يسبب التخدير فقدان الذاكرة أو التسكين.

في المستوى الثالث يتطور فقدان الذاكرة والتسكين من جزئي إلى كامل ، ويتم تخدير بالكامل لإجراء جراحي. يشار إلى المستوى الثالث أيضا من خلال شلل العضلات الوربية ، مما يؤدي إلى التنفس الحجابي الذي يتنفس ضحل. في المستوى الرابع ، تم تناول جرعة زائدة من ويمكن أن ينتقل بسرعة إلى المرحلة الرابعة ، حيث يوجد شلل كامل في كل من العضلات الوربية والحجاب الحاجز ، مما قد يسبب توقف التنفس ، ويؤدي في النهاية إلى الوفاة.

تتوفر

التخدير كمستنشق أو عن طريق الحقن ، ويجب على الطبيب البيطري أن يقرر ما يجب استخدامه في الإجراء الذي سيتم إجراؤه. يعتمد هذا الاختيار على العديد من الجوانب بما في ذلك: مدى ومدة الإجراء ، والأنواع والسلالة ، والعمر ، والحالة الفسيولوجية للحيوان.

تشتمل فئة التخدير المستنشق شائعة الاستخدام على مركبات مثل Isoflurane و Sevoflurane و Desflurane. تسمح هذه المركبات بالتحكم السهل في عمق التخدير. هناك عدد قليل من الخيارات في المعدات التي يمكن للمرء الاختيار من بينها لإدارة التخدير المستنشق.

أحد الخيارات هو جرة الجرس ، والتي يجب استخدامها تحت غطاء المحرك - وليس على المقعد - لتجنب تعرض الأفراد لغازات التخدير. قم بتجميع البرطمان بمنصة مثقبة من السيراميك أو البلاستيك ، مما يخلق مسافة بين قاع البرطمان والمنصة. بعد ذلك ، أثناء ارتداء قفازات منيعة ، قم بتشبع كرة قطنية بالتخدير وضعها تحت المنصة بحيث تستقر في قاع البرطمان. ثم قم بتأمين الغطاء على الفور لمنع هروب بخار التخدير. لوضع ، حرك الغطاء إلى جانب واحد ، وأدخل وقم بتثبيته على الفور. بعد ذلك ، راقب النشاط والتنفس لتحديد عمق التخدير ، وتعريض للمستنشقات للتأثير. لاحظ أن المنصة تعمل كحاجز وتمنع من الاتصال المباشر بالمخدر السائل.

بديل لجرة الجرس هو غرفة الحث المستخدمة جنبا إلى جنب مع آلة مبخر دقيقة متصلة بخزان الأكسجين. تتمثل الخطوة الأولى في التأكد من أن المرذاذ مملوء بكمية مناسبة من التخدير السائل. بعد ذلك ، تحقق من نظام كسح غاز النفايات. إذا كان هذا هو النظام السلبي الشائع الاستخدام ، فقم بوزن العلبة لتحديد ما إذا كانت لا تزال فعالة. بشكل عام ، فإن الزيادة بمقدار خمسين جراما فوق الوزن الأولي هي النقطة التي يتم عندها إنفاق العلبة. الخطوة التالية هي تجميع غرفة الحث. تأكد من أن المدخلات من المرذاذ وأن الإخراج إلى نظام كسح غاز النفايات.

للبدء ، ضع في غرفة الحث وقم بتأمين الغطاء. بمجرد دخول إلى الغرفة ، ابدأ أولا تدفق الأكسجين بمعدل 1 لتر في الدقيقة ، ثم اضبط إعداد المرذاذ الدقيق على مستوى تحريض 3-4٪ للأيزوفلوران. مثل جرة الجرس ، قم بتعريض للتخدير للتأثير. بمجرد تخدير بالكامل ، اغسل الغرفة بالأكسجين عن طريق إيقاف تشغيل الأيزوفلوران قبل إزالة برفق. هذا لمنع تعرض الأفراد لغازات التخدير.

طريقة أخرى لتحريض التخدير هي عن طريق مخروط الأنف أو قناع الوجه المتصل أيضا بالمرذاذ الدقيق. ومع ذلك ، نظرا لأن غازات التخدير لها رائحة كريهة ، فقد تعترض على إقناعها للتحريض. بالإضافة إلى ذلك ، هناك أيضا خطر التسبب في الاختناق بسبب الإمساك بقوة شديدة. لذلك ، فإن الطريقة المفضلة هي استخدام صندوق الحث أو جرة الجرس للحث على التخدير متبوعا بالصيانة باستخدام مخروط الأنف. في كثير من الأحيان ، يكون التجميع بحيث يتم توصيل كل من المخروط وغرفة الحث بنفس المرذاذ مع تبديل بينهما لتبديل توصيل بخار التخدير من غرفة الحث إلى مخروط الأنف والعكس صحيح. بعد تخدير في الغرفة ، قم بتأمين وجهه في المخروط ، وقم بتبديل الأنبوب لإعادة توجيه تدفق الغاز إلى مخروط الأنف. راقب التنفس وبعد التأكد من استرخاء ، قلل من التخدير إلى مستوى صيانة يتراوح بين 0.5 و 1.5 ٪. أيضا ، ضع مرهم العين على العينين لمنع جفاف القرنية.

للتخدير عن طريق الحقن، يتم تناول مزيج من الكيتامين والمهدئات الأخرى أو مرخيات العضلات بما في ذلك زيلازين و/أو أسيبرومازين. يمكن تحضير تركيبات مختلفة باستخدام هذه المركبات. انظر النص أدناه لمعرفة النسب شائعة الاستخدام. لاحظ أن الكيتامين مادة خاضعة للرقابة وبالتالي يجب تدوين الكمية المستخدمة في سجل المخدرات الخاضعة للرقابة ويجب أن تحتوي المخاليط على سجلات المواد الخاضعة للرقابة الفردية. اعتمادا على نوع وعمره وحالته الصحية ، يتم اختيار الخليط وجرعة المخدر ويمكن حقن المحلول داخل الصفاق أو العضلي. عادة ، يتم استخدام التخدير بالحقن والاستنشاق معا لتحقيق التخدير الجراحي.

الآن بعد أن عرفت كيفية تحفيز التخدير ، دعنا نتعرف على تقييم عمق التخدير ، والذي من المهم مراقبته كل 10-30 دقيقة للتأكد من عدم تعرض للأذى أثناء العملية. هناك عدة طرق للقيام بذلك في القوارض.

الطريقة الشائعة الاستخدام هي قرصة إصبع القدم. مد ساق وعزل الحزام بين أصابع القدم. ثم اضغط بإحكام على المنطقة باستخدام أظافر الأصابع أو الملقط اللارضحي. يشار إلى المنعكس الإيجابي من خلال تراجع الساق أو سحب القدم. طريقة أخرى هي قرصة الذيل التي يتم إجراؤها عند طرف الذيل. يظهر رد الفعل الإيجابي من خلال الوخز أو حركة الذيل. يمكنك أيضا الضغط على طرف الصيوان ، وإذا كان هناك اهتزاز في الرأس أو حركة الشعيرات للأمام ، فإن ليس في المستوى الجراحي للتخدير.

للتحقق من عمق التخدير ، يمكن للمرء أيضا لمس القناة الإنسية أو الزاوية الداخلية للعين لاستنباط المنعكس الجني - المشار إليه بميض استجابة للمس الجفون. حتى لو كانت هناك حركة للجفون أو الشعيرات أو زيادة ملحوظة في التنفس ، فإن ليس في المستوى الجراحي للتخدير.

أخيرا ، يمكن للمرء التحقق من منعكس القرنية عن طريق لمس القرنية بإصبع مرتدي قفازات أو قضيب قطني. يشار إلى الاستجابة الإيجابية من خلال وميض.

من المهم التبديل بين المواقع لتقييم عمق التخدير. سيؤدي استخدام نفس إصبع القدم أو الأذن للقرصات المتكررة إلى إزالة حساسية المنطقة وسيتم قمع الاستجابة وعدم إعطاء تقييم دقيق لعمق التخدير.

بالإضافة إلى طرق التقييم الفيزيائية هذه ، يجب على المرء أيضا مراقبة المؤشرات الفسيولوجية بما في ذلك معدل ضربات القلب ومعدل التنفس وضغط الدم ولون الغشاء المخاطي ووقت إعادة ملء الشعيرات الدموية. في حين أن الملاحظات العامة يمكن أن تكون مفيدة للكشف عن التغيرات في معدل التنفس ، للاستفادة من معدل ضربات القلب لتقييم العمق ، يمكن استخدام معدات متخصصة مثل تخطيط كهربية القلب. لقياس ضغط الدم ، هناك مجموعة متنوعة من الأجهزة التي يمكن تركيبها على الذيل أو حتى على الجسم كله. يمكن أن يشير لون الأغشية المخاطية والعينين والأذنين والفم والأنف والشرج والكفوف والذيل أيضا إلى عمق التخدير. يجب أن تكون هذه المناطق وردية اللون ، مما يشير إلى التنفس الكافي ومعدل ضربات القلب.

للتحقق من وقت إعادة تعبئة الشعيرات الدموية ، اضغط على صيوان المخدرة ، واحسب عدد الثواني التي تستغرقها المنطقة المبيضة للعودة إلى اللون الوردي. يجب ألا يزيد هذا عن 1 إلى 2 ثانية. يشير وقت إعادة الملء الممتد إلى انخفاض معدل ضربات القلب أو قوة تقلص القلب ، مما يشير إلى أن قد يكون مخدرا بعمق وقريبا من الموت. بعد إخراج من التخدير ، يجب عدم إعادته إلى المنشأة السكنية حتى يتعافى من التخدير ، ما لم يتم مراقبته بشكل مستمر في منطقة السكن.

الآن بعد أن تعلمنا مبادئ وإجراءات تحريض تخدير القوارض وصيانتها ، دعنا نلقي نظرة على بعض التطبيقات المتكررة للتخدير في البحوث الطبية الحيوية اليوم.

ربما يكون الاستخدام الأكثر شيوعا لتخدير القوارض قبل الجراحة وأثناءها. على سبيل المثال ، أراد الباحثون هنا تطوير نموذج للسكتة الدماغية الناجمة عن تكوين جلطة في الدماغ. من أجل تحقيق ذلك ، قاموا بتخدير الفئران ثم حفروا الجمجمة لإنشاء نافذة رفيعة. وبينما كان لا يزال مخدرا ، قام هؤلاء العلماء بحقن صبغة حساسة للضوء في الدورة الدموية. بعد ذلك ، قاموا بتحفيز التنشيط الضوئي بمساعدة الليزر من خلال الجمجمة المحفورة لإحداث جلطة في الأوعية الدموية القحفية.

مثال آخر يتطلب تخدير القوارض هو إجراء التحليل الفسيولوجي. على سبيل المثال ، غالبا ما يستخدم العلماء أقطاب تخطيط القلب على المخدرة لمراقبة نشاط القلب. أو يستخدمون مجسات الموجات فوق الصوتية لتحديد معدل حركة الحجاب الحاجز لتحديد معدل التنفس بدقة أكبر.

أخيرا ، يعد استخدام التخدير إلزاميا عند إعداد البقاء على قيد الحياة في تجارب الرحم. على سبيل المثال ، في التثقيب الكهربائي للرحم - وهي طريقة يتم فيها تخدير الأنثى الحامل ، ويتم إجراء شق لكشف الأجنة النامية ، وتستخدم الأقطاب الكهربائية للحث على امتصاص الخلايا الجنينية للمادة الوراثية المحقونة.

لقد شاهدت للتو فيديو JoVE حول إدارة التخدير وصيانته. نظرا لأن تخدير القوارض يسهل تنفيذ مثل هذه المجموعة الواسعة من التجارب البيولوجية ، فمن الضروري أن يمتلك كل عالم مهارة تحفيز عمق التخدير الصحيح والحفاظ عليه طوال التجربة. كما هو الحال دائما ، شكرا على المشاهدة!