Why should rodents not be fasted before surgery?

Rodents have a high metabolic rate and very limited fat reserves, making them vulnerable to complications from fasting. Pre-surgical fasting can compromise their health status and recovery outcomes. Instead, evaluate the animal's hydration using the skin elasticity test before proceeding with the surgical procedure.

What is the proper technique for preparing the surgical site on a rodent?

After anesthesia induction and maintenance, shave the surgical area using electric clippers with appropriate blade size. Remove debris with moistened gauze, then scrub with antiseptic solution in a circular pattern from the incision site outward. Repeat the cleansing and rinsing cycle at least three times, then cover with a sterile gauze pad soaked in alcohol or iodine until positioning.

How should surgical instruments be sterilized for rodent surgery?

Wrap instruments in individually autoclavable pouches and place them in a tented configuration inside the autoclave to allow complete steam penetration. For serial surgeries, sterilize instruments between each animal using a bead sterilizer for 10-15 seconds. Always allow instruments to cool completely before using them on the next animal to prevent thermal injury.

What vital signs should be monitored during rodent surgery?

Monitor body temperature using a rectal probe designed for rodents, maintaining the normal range of 35.3 to 38°C. Visually observe heart rate, respirations, and tail color throughout the procedure. Electrocardiograms can provide additional cardiac monitoring. Continue monitoring until the animal is fully recovered from anesthesia.

How should a rodent be positioned and secured for dorsal surgical procedures?

Place the animal in prone position on an insulated, heated surgical platform. Secure the limbs using ligature or tape while avoiding circulation compromise, excessive limb tension, joint overstretching, or impeded breathing. Proper positioning maintains the sterile field and ensures animal safety throughout the procedure.

What post-operative care should be provided after rodent survival surgery?

Return the animal to a recovery cage placed partially over a heating pad, allowing it to move away from heat after regaining consciousness. Make food easily accessible and provide pre-emptive and postoperative analgesia whenever possible. This approach reduces pain, prevents hypothermia, and supports successful recovery.

What environmental conditions must be maintained in the surgical area?

The surgical area must be free of clutter and sanitized with appropriate hard surface disinfectant. Position the area away from direct ventilation drafts to prevent hypothermia. Use an insulated surgery platform with supplemental heat source. These conditions minimize infection risk, prevent hypothermia, and create an optimal environment for aseptic technique.

اعتبارات جراحة القوارض

0 مشاهدة12:13 دقيقة

1. التخطيط قبل الجراحة

على الرغم من أن الإرشادات لا تتطلب إجراء جراحات القوارض في منشأة جراحية مخصصة ، إلا أنه يجب تعقيم المنطقة المستخدمة بمطهر مناسب للأسطح الصلبة ، والذي يجب استخدامه وفقا للتركيزات المدرجة من قبل الشركة المصنعة وأوقات الاتصال. يجب أيضا أن تبقى المنطقة خالية من الفوضى ، وألا تكون في الخط المباشر لقنوات الإمداد والعادم ، حيث يمكن أن تساهم المسودات في انخفاض حرارة الجسم للحيوان. يجب أن يكون الوصول إلى الغرفة محدودا عند إجراء العمليات الجراحية. يجب أيضا تحديد منطقة للتحضير الجراحي (خاصة لإزالة شعر) ، وللتعافي والرعاية بعد الجراحة ، وعلى مقربة من ذلك ، إن لم يكن داخل غرفة الجراحة. بشكل عام ، إذا تم إجراء العمليات الجراحية بشكل روتيني في منطقة معينة ، فلا ينبغي استخدام المنطقة لأنشطة أخرى.

يجب أن تشمل الاستعدادات قبل الجراحة فحصا بدنيا للمريض الجراحي لتحديد أي حالات صحية أساسية قد تتداخل مع الجراحة. نظرا لأن القوارض لديها معدل أيض مرتفع ، واحتياطيات دهنية محدودة للغاية ، فلا ينبغي الصيام قبل الجراحة. يجب تقييم حالة ترطيب من خلال اختبار مرونة الجلد. يتم رفع الجلد فوق الكتفين بلطف. في الذي يرطب عادة ، سيعود الجلد بسرعة إلى مكانه ، بينما في المصاب بالجفاف ، لن يعود الجلد على الفور إلى وضعه الطبيعي. يجب أيضا ملاحظة المظهر العام ، مثل الموقف وحالة معطف الشعر. قد يكون الذي يظهر وضعية منحنية ، أو لديه معطف شعر غير مهذب ، يعاني من مرض. يجب إجراء الفحص قبل إعطاء التخدير مباشرة ، ويجب ملاحظة أي حالات غير طبيعية على مخطط. ² أخيرا ، يجب مراعاة تشريح وفسيولوجيا الفأر أو الفأر عند إعدادهم للجراحة.

2. المنصة

كلا النوعين لهما مساحة سطح عالية إلى نسبة حجم الجسم مما يجعلهما عرضة لانخفاض حرارة الجسم أثناء العمليات الجراحية ، خاصة عندما تعرض الجراحة تجويف الجسم. تشمل الجهود المبذولة لمنع انخفاض حرارة الجسم استخدام منصة جراحية ساخنة.

يجب تغطية المنصة المستخدمة في جراحة القوارض ، والتي عادة ما تكون مصنوعة من الفولاذ المقاوم للصدأ أو البلاستيك الصلب ، بمادة عازلة أو مصدر حرارة تكميلي لمنع حرارة جسم من الهروب أثناء العملية. تشمل مصادر الحرارة التكميلية وسادات التدفئة المتداولة بالمياه ، أو البطانيات القسرية لتسخين الهواء ، أو المصابيح الحرارية ، أو طبقة من الحشوة الرغوية التي تغطي المنصة الجراحية. تتوفر المنصات الجراحية ذات مصدر الحرارة المدمج تجاريا. يجب أن تكون جميع المنصات من مادة يسهل تطهيرها وغير منفذة للرطوبة.

تشمل الطرق الأخرى لمنع انخفاض حرارة الجسم استخدام العوازل الجماعية ، ووضع مواد عازلة بين والمنصة الجراحية ، واستخدام مصادر حرارة خارجية. ³ تحبس العوازل الكتلية الهواء داخل مصفوفة ألياف ، وتنتج "هواء ساكن" يحيط بالحيوان. يمكن استخدام بطانيات الماء الساخن المتداولة تحت المريض. تتوفر هذه المعدات بأحجام مختلفة من القوارض إلى الخيول ، وتسمح بدعم حراري دقيق باستخدام منظمات الحرارة المدمجة.

يمكن أن تكون مصادر التسخين المنشطة كيميائيا إما للاستخدام لمرة واحدة أو قابلة لإعادة الاستخدام. يتكون أحد الأنواع من كيس بلاستيكي مملوء بمحلول كيميائي وقرص معدني ، والذي عند الضغط عليه يخلق تفاعلا حراريا خارجيا. هذا يتسبب في تصلب السائل وإطلاق الحرارة. بشكل عام ، لديهم كمية محدودة من الحرارة وهم مناسبون فقط للإجراءات القصيرة. تتوفر مصادر التسخين الكيميائية الأخرى كمواد صلبة في درجة حرارة الغرفة ، ولكن عند تسخينها ، تصبح سائلة. عندما يتم وضع على الوسادة ، يطلق السائل الحرارة ، وتتصلب محتويات الوسادة عندما تبرد. يمكن أن تطلق هذه الحرارة على مدى فترة أطول بكثير. كفائدة ، لا يمكن أن تتجاوز درجة حرارة التنشيط (~ 39 درجة مئوية) ، وبالتالي تلغي الحاجة إلى منظم الحرارة.

تتوفر عبوات المياه على شكل زجاجات ماء ساخن تتكون من كيس مطاطي أو سيليكون مع سدادة. تمتلئ العبوات بالماء الساخن الذي ينبعث منه الحرارة على السطح الخارجي. ستفقد العبوة الحرارة تدريجيا مع تبريد الماء. تتكون النسخة الأكثر حداثة من لوح بلاستيكي بنسيج منفذ للماء ملتصق بالأعلى. تمتلئ المسافة بينهما بمسحوق محب للماء يمتص الماء ويتضخم. يمكن استخدامه إما كمصدر للحرارة أو كمصدر للتبريد. اعتمادا على جودة المواد ، يمكن إعادة استخدامها وإعادة تسخينها في الميكروويف أو نقعها في الماء الساخن.

يجب اتخاذ الاحتياطات عند استخدام مصادر الحرارة الخارجية. يجب مراقبة درجة حرارة الجسم إما باستخدام مسبار المستقيم أو مقياس حرارة يوضع بجوار على مصدر الحرارة. يجب فحص جميع مصادر الحرارة الخارجية بحثا عن عيوب قبل الاستخدام.

3. إزالة الشعر

يجب تحضير موقع الجراحة لتقليل تلوث الشق. يجب قص الشعر عن كثب أو إزالته باستخدام كريم كيميائي لإزالة الشعر ، والذي يذيب الشعر في الجريب. ^2،3 على الرغم من أنه يمكن أحيانا إجراء قص الشعر على واعي مع ضبط يدوي ، إلا أن تطبيق كريم إزالة الشعر يجب أن يتم فقط على مخدر لمنع ابتلاع المنتج وتلف العين وإزالة الشعر الزائد. الحلاقة باستخدام ماكينة حلاقة هي خيار إذا لم يكن هناك بديل. تتطلب هذه الطريقة مهارة فنية ووقتا إضافيا وصبرا لمنع تمزقات الجلد. يجب أن يكون المجال الجراحي كبيرا بما يكفي للسماح بالشق والخياطة دون إدراج الفراء في الجرح الجراحي ، ولكن أصغر حجما قدر الإمكان لتجنب تفاقم انخفاض حرارة الجسم.

قص
1. يمكن قص الشعر باستخدام مقصات كهربائية سلكية أو تعمل بالبطارية ، ويفضل أن يكون ذلك بشفرة A40 جراحية. يجب مراعاة عرض الشفرة. يمكن استخدام شفرة قياسية مقاس 2 بوصة للفئران ، في حين أن الشفرة 1 / 2-1 بوصة أكثر ملاءمة للفئران.
2. يتم قص الشعر عكس اتجاه النمو. قم بتمديد الجلد لتثبيته ، حيث أن القوارض لها ارتباط فضفاض للجلد بالعضلة الأساسية.
3. يجب توخي الحذر لتجنب خدش الجلد أو قطعه. يتم وضع الطرف المسطح للشفرة على الجلد عند قص الشعر. لا ينبغي أبدا استخدام الشفرة مع الأسنان المتعامدة مع الجلد.

الشكل 1. الوضع الصحيح لمقص الشعر أثناء الحلاقة.

الكريمات أو المستحضرات الكيميائية لإزالة الشعر
1. ضع المنتج على منطقة موقع الجراحة.
2. بعد 10 دقائق ، يجب شطف الجلد بالكامل وتنظيفه من جميع آثار مزيل الشعر لتجنب تهيج أو حروق كيميائية على الجلد.

4. فرك جراحي

يجب أن تستخدم محاليل التنظيف الجراحية: 1) تقليل الميكروبات الموجودة على الجلد بشكل كبير وتحتوي على مستحضر مضاد للميكروبات غير مهيج ؛ 2) تمتلك مجموعة واسعة من الخصائص المضادة للميكروبات. 3) أن تكون سريعة المفعول. و 4) لديها نشاط تراكمي مستمر.

محلولا فرك التطهير شائعا الاستخدام هما الكلورهيكسيدين واليودوفور. محاليل الكلورهيكسيدين فعالة ضد البكتيريا والفيروسات حتى في وجود المواد العضوية. في المقابل ، يحتوي اليودوفور على مجموعة واسعة من أعمال مبيدات الميكروبات ، ولكن فعاليتها تقل في وجود المواد العضوية. النشاط المتبقي أقل من نشاط الكلورهيكسيدين.

الشطف المستخدم بين الدعك إما ماء معقم أو كحول. المحاليل التي تحتوي على الكحول التي تحتوي على 60-95٪ كحول لها تأثيرات رائعة مضادة للميكروبات من خلال تغيير طبيعة البروتينات. ² ومع ذلك ، يمكن أن يكون الكحول مهيجا قويا للجلد. الماء المعقم فعال في شطف المنطقة ، ومع ذلك لا يحتوي على أي خصائص مضادة للميكروبات.

استخدم إسفنجة شاش مبللة لإزالة الحطام الجسيم بما في ذلك الشعر والوبر.
يتم وضع محلول منظف مطهر مبلل على وسادة شاش على الجلد بدءا من موقع الشق. يجب أن يبدأ التطهير على طول خط الشق ويمتد إلى الخارج في نمط دائري.
ثم يتم تطبيق الشطف المطهر بدءا من موقع الشق. يتم مسح الجلد بنمط دائري يتصاعد من خط الشق إلى محيط المجال الجراحي لإزالة محلول التطهير.
يتكرر هذا ثلاث مرات.
بعد الشطف النهائي ، يتم وضع وسادة شاش معقمة فوق المجال الجراحي. قد يكون هذا الشاش مبللا بالكحول أو اليود. ستتم إزالة الشاش بمجرد نقل ووضعه في موضعه على منصة جراحية أو طاولة / مقعد جراحي.

تشمل مناطق الجسم التي لا تستخدم فيها طرق التنظيف الجراحية القياسية العينين والفم ومنطقة الشرج. نظرا لأن سطح العين سيتلف إذا تم استخدام محاليل التقشير ، يتم إجراء مقشر جراحي فقط للجفون بعد غرس مرهم واقي في العين. في بعض الحالات ، يتم استخدام محلول ملحي متوازن من الناحية الفسيولوجية لتنظيف العين لإزالة الحطام الجسيم وتخفيف أي بكتيريا إلى مستوى مقبول لإجراء الجراحة. يثبت أيضا صعوبة تنظيف الفم بشكل كاف للجراحة. يمكن شطفه بمحلول ملحي متوازن من الناحية الفسيولوجية لتخفيف أي بكتيريا ؛ ومع ذلك ، من المهم تجنب استخدام الكثير من المحلول الملحي ، مما قد يتسبب في شفط السائل. يمكن مسح اللثة والأسنان واللسان بمطهر غير سام. ومع ذلك ، فإن تطبيق المحاليل على الأغشية المخاطية يمكن أن يؤدي إلى امتصاص جهازي. لا تعتبر العمليات الجراحية في منطقة الشرج ، مثل التخفيض الجراحي لتدلي المستقيم ، عمليات جراحية نظيفة. يمكن أن يؤدي استخدام بعض المحاليل المطهرة إلى زيادة تلف الأنسجة ومنع الشفاء أو إطالة أمده. يعد استخدام محلول ملحي متوازن من الناحية الفسيولوجية لغسل المنطقة نظيفة من الحطام الجسيم الطريقة المفضلة للتحضير الجراحي. ^2,4

5. تحديد المواقع

يتضمن وضع المريض لإجراءات البطن تثبيت أطراف العرضة على المنصة بشريط أو رباطة. عند استخدام الرباط لتمديد الأطراف ، يجب توخي الحذر لمنع تعرض الدورة الدموية إلى القدمين للخطر ، لتجنب التوتر المفرط على الأطراف والتمدد الشديد للأطراف التي يمكن أن تضعف المفاصل ، وتجنب إعاقة التنفس. يجب أن تكون الروابط عبارة عن تحرير سريع مع حلقة نصف وصلة ربط فقط على الطرف. تأتي بعض المنصات المتاحة تجاريا مع تراجع الأطراف المدمج الذي يتكون من خطافات أو حلقات من أسلاك الفولاذ المقاوم للصدأ أو سلسلة كروية ، والتي يمكن تعديلها وفقا لحجم. إذا تم استخدام الشريط ، فيجب التمسك به على الأسطح الجافة.

6. اللف

بمجرد تحضير ووضعه على المنصة الجراحية ، يتم استخدام الستائر الجراحية لمنع تلوث مادة الخياطة والحفاظ على مجال معقم في موقع الجراحة. يمكن أن تكون الستائر مادة قماش قابلة لإعادة الاستخدام ، أو مادة ورقية يمكن التخلص منها ، أو مادة بلاستيكية لاصقة يمكن التخلص منها.

تحتوي الستائر الورقية التي تستخدم لمرة واحدة على مصفوفة من الألياف المنسوجة للقوة التي تسمح بالقطع إلى أي شكل أو حجم ، بما في ذلك قطع الفتحة أو الفتحة في الستارة ، دون تمزق أو تآكل الحواف المقطوعة. كما أنها طاردة للرطوبة. يمكن شراء الستائر التي تستخدم لمرة واحدة وتعبئتها مسبقا وتعقيمها مسبقا في مجموعة متنوعة من الأحجام والأشكال. لم يتم تصميم ستائر القماش ليتم قطعها من قبل الجراح لإنشاء فتحة. يتم شراؤها باستخدام حافة مسبقة القطع وملزمة. تتطلب ستائر القماش الغسيل والتعقيم. عند العناية بها جيدا ، يمكن أن تدوم ستائر القماش لسنوات ، مما يجعلها استثمارا اقتصاديا.

يتم تثبيت كل من الستائر الورقية والمصنوعة من القماش في مكانها باستخدام مشابك منشفة من خلال جلد إذا كان قوارضا أكبر ، مثل الفئران البالغة. بالنسبة للقوارض الصغيرة ، لا يتم لصق الستارة على الجلد ، الأمر الذي يتطلب اليقظة والعناية من جانب الجراح لعدم إزاحة الستارة أو إزاحتها بمجرد وضعها على.

الستائر اللاصقة إما شفافة أو غير شفافة. يفضل استخدام الستائر الشفافة لجراحات القوارض ، لأنها تسمح بالتصور المباشر للحيوان. بعض الستائر البلاستيكية عبارة عن مزيج من البلاستيك والورق ، حيث تكون المنطقة البلاستيكية فوق مباشرة وتحدد منطقة الورق المجال المعقم الممتد. تم تصميم جزء الستارة الموجود مباشرة فوق موقع الشق الجراحي للالتصاق بمنطقة الشق. يمكن للجراح بعد ذلك قطع البلاستيك مباشرة عند عمل شق الجلد. تم قبول الغلاف البلاستيكي المعقم كمادة فعالة من حيث التكلفة ومفيدة لجراحات القوارض. يجب توخي الحذر لتجنب انقباض الحركة للتنفس عند وضع الغلاف حول المريض. سيحافظ الغلاف على حرارة الجسم ، ويسمح بتصور المريض ، ويوفر حاجزا للرطوبة بين المجال المعقم. يمكن أن يعمل أيضا على المساعدة في وضع وإمساكه للجراحة بدلا من تثبيت الأطراف.

يجب فتح الستائر من أي نوع بعناية لتجنب ملامسة المناطق والمعدات والأفراد غير المعقمين. لا ينبغي أبدا أن تتكشف عن طريق الاهتزاز أو التلويح.

الستائر الورقية: في طريقة الستارة المفردة ، يتم فتح الستارة للسماح بقطع الفتحة إذا لم يتم قطعها مسبقا.
1. سيضع الجراح الستارة فوق مع إبقاء اليدين على جانب الستارة التي لن تلمس المريض.
2. يتم ضبط الستارة بحيث يكون المجال الجراحي مرئيا من خلال الفتحة.
3. يتم تثبيت الستارة في مكانها بمشابك منشفة من خلال جلد في حالة الفئران الكبيرة.
ورق أو بلاستيك مع نافذة لاصقة
1. تتطلب الستارة ذات النافذة اللاصقة تقشير منطقة الورق للسماح للمنطقة اللاصقة بالالتصاق بالمجال الجراحي.
2. عند فتح الستارة المعقمة ، تكون المنطقة اللاصقة بشكل عام هي المنطقة العلوية ويمكن للجراح الوصول إليها بسهولة.
3. بمجرد الكشف عن المادة اللاصقة ، يتم فتح الستارة بعناية وتقليبها بحيث يكون الجانب اللزج مواجها للحيوان.
4. من الضروري وضع الستارة بشكل صحيح ، لأنه بمجرد أن تلامس المادة اللاصقة ، لن يكون من الممكن تعديلها.
5. يجب على الجراح الضغط برفق على المادة اللاصقة في المجال الجراحي لإنشاء ختم مع الجلد.
ستائر من القماش
1. لا يجب قطع الستائر القماشية المزخرفة ، لذلك تقع على عاتق الجراح مسؤولية اختيار ستارة ذات فتحة كبيرة بما يكفي لكشف المنطقة الجراحية بشكل كاف ، ولكن ليس كبيرا جدا للسماح بالتعرض لأي أسطح جسم غير محلوقة وغير جاهزة.
2. يتم فتح الستارة بعناية للكشف عن الفتحة.
3. سيضع الجراح الستارة فوق ، مع إبقاء اليدين على جانب الستارة التي لن تلمس المريض.
4. يتم ضبط الستارة بحيث يكون المجال الجراحي مرئيا من خلال الفتحة.

الشكل 2. المجال الجراحي مرئي من خلال فتحة الستارة الموضوعة بشكل صحيح.

الستائر اللاصقة: مادة فعالة من حيث التكلفة ومفيدة لجراحات القوارض. ⁵
1. يجب سحب الستارة من اللفة بطريقة تضمن بقاء القسم المستخدم معقما.
2. يفتح المساعد الجراحي الصندوق ويسحب طولا من الغلاف ، مع الحرص على تجنب لمسه بالصندوق أو أي سطح آخر.
3. يمسك الجراح بالغلاف على كل جانب ، ويقطع المساعد الطرف الذي يمسك به بعيدا (حوالي 3-4 بوصات).
4. بعد التخلص من الحافة المقطوعة ، يقوم المساعد أيضا بقطع القسم من بقية اللفة.
5. يمسك الجراح جانبا واحدا من الغلاف ويضعه فوق.
6. تسمح خصائص الغلاف لها بالالتصاق بجميع الأسطح.
7. يضغط الجراح على الفيلم على ويخلق مجالا معقما.
8. ليست هناك حاجة لاستخدام مشابك المناشف أو القلق من أن الستارة ستتحول.
9. يجب توخي الحذر لتجنب انقباض الحركة للتنفس. سيحافظ الغلاف على حرارة الجسم ، ويسمح بتصور المريض ، ويوفر حاجزا للرطوبة بين المجال المعقم.

7. المراقبة أثناء الجراحة

يجب مراقبة المرضى الذين تم تخديرهم بحثا عن درجة حرارة الجسم والتنفس ومعدل ضربات القلب حتى يتعافوا تماما.

يمكن مراقبة درجة حرارة الجسم بشكل مباشر أو غير مباشر. للمراقبة المباشرة ، يجب استخدام مسبار المستقيم المصمم خصيصا للقوارض. موازين حرارة المستقيم للحيوانات الصغيرة ، سواء كانت زئبقية أو رقمية ، كبيرة جدا بحيث لا يمكن استخدامها في الفئران والجرذان دون الإضرار بالعضلة العاصرة الشرجية وأنسجة المستقيم. في السلالات الحساسة ، يمكن أن يؤدي استخدامها إلى تدلي المستقيم. تتضمن المراقبة غير المباشرة وضع مقياس حرارة بجوار أو تحت الجسم على مصدر تسخين خارجي. على الرغم من أن هذا لن يعطي درجة حرارة دقيقة للجسم ، إلا أنه يمكن أن يشير إلى فعالية مصدر الحرارة ويسمح بالتعديلات لتقليل الحرارة أو زيادتها حسب الحاجة.

من الصعب تسمع معدل ضربات القلب وحساب التنفس على القوارض الصغيرة بدون معدات متخصصة.

معظم المراقبة مرئية وتشير فقط إلى وجود أو عدم وجود تنفس في الصدر أو البطن. يتم تقييم معدلات ضربات القلب على أنها موجودة أو غائبة عن طريق الجس أو الملاحظة البصرية للحركة الدقيقة لجدار الصدر. قد لا يكون هذا ممكنا أثناء الجراحة بسبب اللف وصغر حجم.

يمكن إجراء مراقبة إضافية من خلال استخدام مخطط كهربية القلب (ECG) ومقاييس التأكسج النبضي. تقوم تخطيط القلب بتقييم الحالة القلبية للقوارض أثناء التخدير والجراحة. يستخدم مقياس التأكسج النبضي انكسار الضوء الأحمر والأشعة تحت الحمراء لقياس الأكسجين في الدم الشرياني. تم تكييف هذه التقنية للاستخدام في القوارض باستخدام الذيل أو المخلب. يمكن الوصول بسهولة إلى كلا النوعين من القياسات المستمرة غير الغازية للعلامات الحيوية للمريض بأقل قدر من التعطيل في المجال الجراحي.

8. مراقبة ما بعد الجراحة

يجب على المرء أن يفكر في استخدام وسادة تدفئة أسفل قفص التعافي بعد الجراحة. بالإضافة إلى ذلك ، يجب توفير التسكين الوقائي وما بعد الجراحة كلما أمكن ذلك. تعتبر أحكام التسكين أكثر فاعلية في تقليل شدة التحفيز المؤلم عند إعطائها قبل الحدث المؤلم. تشمل مزايا الاستخدام الاستباقي للمسكنات تقليل شدة التحفيز المؤلم ، وتحسين مستوى راحة بعد الجراحة ، وتقليل كمية التخدير المطلوبة للحفاظ على مستوى الجراحة ، والتعافي بشكل أكثر سلاسة من التخدير بمجرد الانتهاء من الإجراء. يتم عرض الأدوية الوقائية وما بعد الجراحة شائعة الاستخدام في الجدول 1. ⁶

فئة المخدرات	الاسم	الجرعة	التردد
دواء غير ستيرويدي مضاد للالتهابات (مادة غير خاضعة للرقابة)	كيتوبروفين	2-5 ملغم/كغ من الفئران SC 5 ملغ/كغ من الفئران SC	كل 12-24 ساعة كل 12-24 ساعة
دواء غير ستيرويدي مضاد للالتهابات (مادة غير خاضعة للرقابة)	Flunixin meglumine	2.5 ملغم/كغ من الفئران SC	كل 12-24 ساعة
دواء غير ستيرويدي مضاد للالتهابات (مادة غير خاضعة للرقابة)	ميلوكسيكام	5-10 ملغم/كغ من الفئران الفموية أو 1-2 ملغم/كغ من الفئران المصابة بالجلجلد/السرطان 5-10 ملغ/كغ من الفم أو 1-2 ملغم/كغ من الفئران المصابة بالفولبورد أو الفمو	كل 12-24 ساعة كل 24 ساعة كل 12-24 ساعة كل 24 ساعة
دواء غير ستيرويدي مضاد للالتهابات (مادة غير خاضعة للرقابة)	أسيتامينوفين	50 ملغ/كغ SC/IP أو 100 ملغم/كغ من الفئران الفمائية	كل 8-12 ساعة
المواد الأفيونية (مادة خاضعة للرقابة)	بوتورفانول	0.5-3.0 مجم / كجم SC أو 0.2-2 مجم / كجم من الفئران الملكية الفكرية 2.0 ملغم/كغ SC 0.2-2 مجم / كجم من الفئران الملكية الفكرية	كل 4 ساعات كل 2-4 ساعات كل 4 ساعات كل 2-4 ساعات
المواد الأفيونية (المواد الخاضعة للرقابة)	بوبرينورفين	0.05-2.5 ملغ/كغ من فئران SC أو IP 0.01 - 0.5 ملغم/كغ من الفئران SC	كل 6-12 ساعة كل 8-12 ساعة
المواد الأفيونية (المواد الخاضعة للرقابة)	أوكسي مورفون	0.2-0.5 ملغم/كغ من الفئران SC 0.2-0.5 ملغم/كغ من الفئران SC	كل 6-12 ساعة كل 6-12 ساعة