المصدر: Tilde Andersson1 ، Rolf Lood1
1 قسم العلوم السريرية لوند، قسم طب العدوى، المركز الطبي الحيوي، جامعة لوند، 221 00 لوند، السويد
1. الإعداد
2. بروتوكول
)تسجيل الدخول أو للوصول إلى المحتوى الكامل. تعرّف على المزيد حول وصول مؤسستك إلى محتوى JoVE هنا
العاثيات ، وتسمى أيضا العاثيات ، هي فيروسات تصيب البكتيريا على وجه التحديد ويمكننا تأكيد وجودها وتحديدها باستخدام أداة تسمى مقايسة البلاك. تصيب العاثيات مضيفيها المعرضين للإصابة عن طريق الالتصاق أولا بجدار الخلية البكتيرية وحقن مادتها الوراثية. بعد ذلك ، يختطفون آلية التخليق الحيوي للخلية لتكرار الحمض النووي الخاص بهم وإنتاج العديد من جزيئات العاثيات ، والتي يطلقونها بعد ذلك عن طريق تحلل الخلية المضيفة وقتلها.
هذا النشاط اللايتي هو أساس تقنية تعداد العاثيات المستخدمة على نطاق واسع والمعروفة باسم مقايسة البلاك أو مقايسة طبقة الأجار المزدوجة. هنا ، يتم تحضير مزيج العاثيات لأول مرة في مرق المغذيات المنصهر الذي يحتوي على أجار منخفض التركيز. يجب أن تكون جميع البكتيريا المستخدمة في المزيج حية وتنقسم بنشاط في مرحلة السجل من نموها ، مما يضمن أن نسبة كبيرة من البكتيريا قابلة للحياة وقادرة على تكوين عشب كثيف حول اللويحات. بعد ذلك ، ينتشر مزيج أجار البكتيريا المنصهرة هذا على وسط مغذي أجار أكثر صلابة وتركيزا والذي تم ترسيخه بالفعل على طبق بتري. عند الحضانة في درجة حرارة الغرفة ، يتجمد مرق بكتيريا أجار والعاثية منخفض التركيز أيضا لتشكيل تراكب أجار ناعم.
هنا ، يمكن للخلايا البكتيرية أن تستمد مغذيات إضافية من الطبقة السفلية ويجب أن تتكاثر بسرعة لإنتاج عشب ملتقى من البكتيريا. ومع ذلك ، نظرا لوجود جزيئات العاثيات أيضا في الطبقة الرخوة ، فإنها ستصيب وتكرر مادتها الوراثية داخل البكتيريا ، وتبلغ ذروتها في تحلل الخلايا ، الذي يطلق ذرية متعددة. ثم تصيب ذرية العاثيات هذه الخلايا المجاورة ، حيث أن الحالة شبه الصلبة لطبقة العاثيات البكتيرية تقيد حركتها إلى الخلايا المضيفة البعيدة. تستمر دورة العدوى والتحلل هذه على مدى جولات متعددة ، مما يؤدي إلى قتل عدد كبير من البكتيريا في منطقة موضعية. يتمثل تأثير الخلايا المجاورة التي يتم تدميرها في إنتاج منطقة دائرية واحدة واضحة ، تسمى البلاك ، والتي يمكن رؤيتها بالعين المجردة ، مما يؤدي إلى تضخيم نشاط البكتيريا اللايتيك للعاثية بشكل فعال وتمكين تعدادها.
يشار إلى عدد اللويحات الموجودة على طبق بتري باسم وحدات تشكيل البلاك ، أو PFUs ، وبشرط أن يكون تركيز العاثيات الأولي مخففا بدرجة كافية ، يجب أن يتوافق مباشرة مع عدد جزيئات العاثيات المعدية في العينة الأصلية. يمكن أيضا استخدام هذه التقنية لتوصيف مورفولوجيا البلاك ، أو للمساعدة في تحديد أنواع العاثيات ، أو لعزل طفرات العاثيات. في هذا المختبر ، سوف تتعلم كيفية إجراء اختبار البلاك لتعداد العاثيات ، باستخدام عاثية T7 من بكتريا قولونية كمثال.
أولا ، حدد وسيطا مناسبا لزراعة الخلايا البكتيرية المضيفة والعاثية. هنا تم استخدام مرق lysogeny ، أو LB medium ، لزراعة الإشريكية القولونية والعاثية T7. بعد ذلك ، خذ ثلاث زجاجات زجاجية نظيفة وقم بتسميتها بالوسائط والاسم ، ثم الأولى باسم LB-Broth ، والثانية باسم LB-Bottom Agar ، والثالثة باسم LB-Top Agar. الآن ، قم بوزن أربعة جرامات من مسحوق LB المركب مسبقا في ثلاث مجموعات ثم انقل مجموعة واحدة من الوسائط المجففة الموزونة إلى كل زجاجة. أضف 200 مل من الماء إلى الزجاجة الأولى. امزج المحتويات باستخدام شريط تحريك مغناطيسي.
بعد ذلك ، باستخدام مقياس الأس الهيدروجيني والتحريك المستمر ، ارفع الرقم الهيدروجيني النهائي إلى 7.4 من خلال إضافة هيدروكسيد الصوديوم أو حمض الهيدروكلوريك. كرر إضافة الماء وضبط درجة الحموضة للزجاجتين الأخريين المتبقيتين أيضا. الآن ، قم بوزن ثلاثة جرامات من مسحوق أجار وأضفه إلى الزجاجة الثانية لعمل أجار سفلي بنسبة 1.5٪. أخيرا ، تزن 1. 2 جرام من أجار وأضفه إلى الزجاجة الثالثة لعمل أجار علوي .6٪. لا تحتاج حالة المرق في الزجاجة الأولى إلى إضافة أجار. قم بتغطية الزجاجة بإحكام ثم قم بتعقيم الوسائط عن طريق التعقيم على حرارة 121 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة. بمجرد الانتهاء ، قم بإزالة زجاجات الوسائط من الأوتوكلاف وقم بلف أغطية الزجاجات على الفور لإغلاقها تماما لمنع التلوث. احتفظ بوسائط LB-Broth و LB-Top Agar على المقعد لاستخدامها لاحقا. ضع أجار LB-Bottom ليبرد في حمام مائي مضبوطة مسبقا على 45 درجة مئوية تقريبا.
عندما يصل أجار LB-Bottom إلى حوالي 45 درجة مئوية ، انقله إلى طاولة العمل. بعد ذلك ، قم بتعقيم مساحة العمل باستخدام 70٪ إيثينول. بعد ذلك ، أضف 450 ميكرولتر من كلوريد الكالسيوم المولي المعقم إلى أجار القاع المنصهر لعمل تركيز نهائي يبلغ 2.25 ملليمولار. حركي الزجاجة برفق لخلطها. ثم ضع سبعة أطباق بتري نظيفة. قم بتسمية كل طبق في الأسفل باسم الوسائط وتاريخ التحضير. ثم اسكب 15 مل من الأجار السفلي في كل من أطباق بتري السبعة. اترك الأطباق تتماسك لبضع ساعات أو طوال الليل في درجة حرارة الغرفة. بمجرد ضبطها ، يمكن تخزين ألواح الاستزراع عند أربع درجات مئوية لعدة أيام إذا لزم الأمر ، رأسا على عقب لتقليل التكثيف. انقل أطباق بتري من ثلاجة الأربع درجات مئوية إلى حاضنة 37 درجة مئوية قبل ساعة واحدة من الفحص.
في اليوم السابق لإجراء الفحص ، يجب استزراع الإشريكية القولونية. هنا ، تم تلقيح 10 ميكرولتر من ثقافة الإشريكية القولونية في 10 مل من LB-Broth. ضع البكتيريا لتنمو طوال الليل في حاضنة اهتزاز مضبوطة على 37 درجة مئوية عند 160 دورة في الدقيقة. ثم ، في يوم الفحص ، قم بإزالة الثقافة البكتيرية من الحاضنة. قم ببذور 10 مل من مرق LB الطازج مع 0.5 مل من المزرعة الليلية. ضع هذه الخلايا لتنمو في حاضنة اهتزاز مضبوطة على 37 درجة مئوية عند 160 دورة في الدقيقة. بعد ذلك ، استخدم مقياس الطيف الضوئي للتحقق من وصول هذه الثقافة إلى نمو طور السجل ، ويشار إليه بكثافة بصرية من 0.5 إلى 0.7. بمجرد أن يصل OD إلى هذا المستوى ، أوقف الحضانة عن طريق نقل ثقافة الخلية إلى المقعد. وهي الآن جاهزة للاستخدام في فحص تراكب العاثيات.
يمكن أن تختلف عيارات العاثيات بشكل كبير عبر أنواع وعينات العاثيات المختلفة. لذلك من أجل عدها بشكل فعال ، يجب تخفيفها لتوليد مجموعة واسعة من تركيزات العاثيات. في يوم الفحص ، قم بإنشاء سلسلة من تخفيفات العاثيات تتراوح من عشر إلى مليون تركيزات ، باتباع تقنية التخفيف 10 أضعاف. للحصول على بيانات ذات دلالة إحصائية ودقيقة ، قم بإجراء التخفيف التسلسلي ثلاث نسخ.
بعد ذلك ، قم بإذابة أجار LB-top المتصلب باستخدام الميكروويف. ثم ضعه في حمام مائي محدد مسبقا على 45 درجة مئوية لمدة ساعة واحدة. بعد ساعة واحدة ، اجمع أطباق بتري التي تحتوي على طبقة الأجار السفلية من الحاضنة. قم بتسمية الألواح بتركيز العاثيات وتاريخ الفحص. ثم ضع سبعة أنابيب اختبار نظيفة. قم بتسمية كل أنبوب اختبار برقم تخفيف العاثية التسلسلي وقم بتعيين واحد كعنصر تحكم.
عندما يصل أجار LB-top إلى 45 درجة مئوية ، انقله إلى مقعد العمل. والآن، أضف 450 ميكرولتر من كلوريد الكالسيوم المولي إلى أجار 200 ملليلتر لتكوين تركيز نهائي يساوي 2.25 ملليمولار. حركي الزجاجة برفق لخلطها. بعد ذلك ، أضف 35 مل من أجار LB-top وأربعة ملليلتر من التعليق البكتيري إلى أنبوب مخروطي معقم. قم بتدوير الخلايا برفق لتوزيع الخلايا بالتساوي ولكن تجنب الاهتزاز لمنع تكوين الرغوة.
الآن ، قم بنقل خمسة ملليلتر من مزيج أجار البكتيريا العلوي إلى كل من أنابيب الاختبار السبعة. بعد ذلك ، انقل 100 ميكرولتر من عينات العاثيات المخففة بشكل متسلسل ووسائط التحكم ، والتي يجب أن تكون مجرد وسائط بدون عاثية ، إلى أنابيب الاختبار المصنفة باحترام. حركي الخليط برفق لضمان الخلط المناسب. انقل برفق خمسة ملليلتر من مزيج العاثيات إلى صفيحة بتري المعنية. وزعي المزيج بالتساوي في جميع أنحاء السطح بالكامل عن طريق تحريك لوحة بتري برفق.
بمجرد وضع جميع ألواح بتري في طبقات مع المزيج ، اسمح بتصلب الطبقة العليا عن طريق الحضانة في درجة حرارة الغرفة لمدة 15 دقيقة. بعد الانتهاء من هذه الخطوات ، كرر العملية للمجموعتين الثانية ثم الثالثة من أطباق بتري باستخدام المجموعتين المتبقيتين من تخفيفات العاثيات. أغلق كل طبق بالبارافيلم واحتضنه في درجة حرارة الغرفة لمدة 15 دقيقة. ضع لوحة الثقافة رأسا على عقب عند درجة حرارة مناسبة لمدة 24 ساعة أو حتى تتطور اللويحات. هنا ، تم وضع الصفائح في حاضنة 37 درجة مئوية ليوم واحد ، وهي حالة محفزة للنمو للإشريكية القولونية والعاثية T7.
ستظهر اللويحات بعد يوم إلى خمسة أيام من الحضانة ، اعتمادا على الأنواع البكتيرية وظروف الحضانة واختيار الوسيط. هنا ، كانت اللويحات مرئية بعد يوم واحد من الحضانة عند 37 درجة مئوية. ابدأ بفحص اللوحات التي تحمل علامة التحكم وتأكد من عدم تشكل لويحات في هذه الألواح ، لأن هذا قد يشير إلى تلوث فيروسي. لتحديد عيار العاثيات في العينة الأصلية ، ابدأ بالألواح التي تحتوي على عينة العاثية المخففة أولا واحسب اللويحات دون إزالة الأغطية ، مع وضع علامة عليها للإشارة إلى تلك التي تم عدها بالفعل. كرر العد لكل طبق في كل مجموعة. قد تحتوي بعض اللوحات على لويحات كثيرة جدا أو قليلة جدا بحيث لا يمكن عدها. ضع في اعتبارك من 10 إلى 150 عددا مثاليا من البلاك.
بعد ذلك ، قم بإنشاء جدول يسرد قيم أرقام البلاك للتخفيفات والتكرارات المختلفة. بعد ذلك ، احسب متوسط قيم عدد البلاك لألواح التخفيف التي تحتوي على العدد المثالي لعدد البلاك. في هذا المثال ، كان هذا هو متوسط عدد اللويحات المتكونة في 10 إلى سالب ثلاثة و 10 إلى سالب أربعة ألواح تخفيف. الآن ، اضبط عامل تخفيف العاثيات بقسمة متوسط قيم البلاك التي تم الحصول عليها على عوامل تخفيف العاثية المعنية. هنا ، تم تقسيم متوسط عدد اللويحات المتكونة إلى 10 إلى سالب ثلاثة و 10 إلى سالب أربعة ألواح التخفيف ، حسب عوامل التخفيف الخاصة بها للحصول على عدد وحدات تشكيل البلاك ، أو PFUs ، في 100 ميكرولتر من خليط العاثية. لتحويل القيمة إلى PFU لكل مليلتر ، اضرب القيم المتولدة في 10 ، حيث تم استخدام 100 ميكرولتر فقط من مزيج تخفيف العاثيات أثناء خطوة تحضير تراكب العاثيات ، مما ينتج عنه عامل تخفيف إضافي قدره 10. أخيرا ، احسب متوسط القيم التي تم الحصول عليها من لوحات التخفيف المختلفة. سيعطي هذا متوسط عدد PFUs لكل مليلتر. يتوافق عدد PFUs مع عدد جزيئات العاثيات المعدية في العينة الأصلية.
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What are bacteriophages and how do they infect bacterial cells?
Bacteriophages, or phages, are viruses that specifically infect bacteria. They attach to the bacterial cell wall and inject their genetic material into the host. The phage then hijacks the cell's biosynthetic machinery to replicate its DNA and produce numerous progeny phage particles, which are released by lysing and killing the host cell.
Q2: Why is the plaque assay considered a reliable method for determining viral titer?
The plaque assay remains one of the most reliable methods for determining viral titer because it directly visualizes the lytic activity of phages. Each plaque represents a single infective phage particle that has infected and lysed multiple neighboring bacterial cells, creating a clear, countable zone. This amplification of lytic activity enables accurate enumeration of phage particles in a sample.
Q3: What is the purpose of using bacteria in log-phase growth for the plaque assay?
Bacteria in log-phase growth are actively dividing and have the highest viability, ensuring that a large percentage of cells are capable of forming a dense, confluent lawn on the agar plate. This dense bacterial lawn is essential for the plaque assay because it provides abundant host cells for phage infection and allows clear visualization of plaques as transparent zones against the turbid bacterial background.
Q4: How does the double agar layer technique work in a plaque assay?
The double agar layer technique uses a solid, concentrated bottom agar layer and a soft, low-concentration top agar layer containing bacteria and phage. The soft overlay allows phage particles to move locally and infect neighboring cells while restricting their movement to distant areas. This creates localized zones of cell lysis, producing visible plaques that can be counted to determine phage concentration.
Q5: Why are serial dilutions necessary before performing a plaque assay?
Phage titers vary exponentially across different samples and types, so serial dilutions generate a wide range of phage concentrations to ensure countable plaque numbers. Performing dilutions in triplicate provides statistically significant and accurate data. An ideal plaque count ranges from 10 to 150 plaques per plate, making dilutions essential for obtaining reliable results.
Q6: What does PFU stand for and how is it calculated from plaque counts?
PFU stands for Plaque-Forming Units, representing the number of infective phage particles in a sample. To calculate PFU per milliliter, divide the mean plaque count by the dilution factor, then multiply by 10 to account for the additional dilution from using only 100 microliters of phage mixture during overlay preparation. The final average PFU per milliliter corresponds to the number of infective phage particles in the original sample.
Q7: How can the plaque assay be used beyond viral enumeration?
Beyond quantifying phage titer, the plaque assay can characterize plaque morphology to aid in identification of different phage types and isolate phage mutants. Additionally, the resistance or sensitivity of bacterial strains to specific phages can be used for phage typing, dividing bacterial species into subgroups based on their susceptibility to different bacteriophages.