نوفمبر 30, 2006
يمكن أن القدرة على قياس حركية الافراج حويصلة تساعد على توفير نظرة ثاقبة بعض أساسيات العصبي. المستخدمة هنا فإننا في الوقت الحقيقي التصوير من الحويصلات المسمى مع وزير الخارجية صبغ أحمر فلوري 4-64 لقياس معدل الافراج قبل المشبكي حويصلة في الثقافات العصبية الحصين.
أنا جيمي لين، طالب دراسات عليا في برنامج البيولوجيا الجزيئية والخلوية في جامعة هارفارد. أعمل حالياً في مختبر ميرفي، حيث نقوم بدراسة الخلايا العصبية في الحصين في المختبر.
سأقوم الآن بموافاتكم بكيفية إجراء تجارب FM-d. والآن سنشرع في تثبيت غطاء الشريحة الذي يحتوي على العصبونات في هذه الحجرة المصنعة خصيصاً. مجهرنا هو مجهر مقلوب مزود بـ CCD، وتأكد من تجفيف الجزء السفلي تماماً.
لا تقم بتوصيل الأقطاب الكهربائية الآن. لقد تم إعداد نظام التروية. سأضعه عند أحد طرفي الغرفة.
نستخدم الصلصال من أجل التثبيت. سيقوم القائمون على تجارب HBS بإضافة كل ذلك، ومن ثم يتم إعداد عملية الاندماج.
يمكنك استخدام الصلصال لتثبيت هذا في مكانه، وأعتقد أن يكون بهذا الشكل الذي يحتوي على أجسام خلوية لأن أغشية الأجسام الخلوية ستمتص الكثير من الصبغة وتكون واضحة جداً في المشابك العصبية. ربما في منطقة مجاورة مثل هنا حيث كانت هذه المنطقة هي التي بدأت منها مباشرة ونحن مستمرون. ومن ثم، يتم التبييض الضوئي الأولي من الصور العشر الأولى.
وهنا نبدأ، أنا جميل نيوتن، طالب دراسات عليا في برنامج البيولوجيا الجزيئية هنا في جامعة هارفارد. وأعمل حالياً في مختبر لعلوم الأعصاب تحت إشراف الدكتورة فينكي ميرفي بصفتها الباحث الرئيسي.
وموضوع حديثي معكم اليوم هو إجراء تجارب FM. وما هو الهدف من تجربتكم؟ والميزة في FM هي أنه صبغة فلورية تتيح لنا تتبع حركية الإخراج الخلوي.
لذا، نتحقق أولاً من أن الصبغة قد تم امتصاصها داخل التشابك العصبي عن طريق تقديم محفز تحميل. وبعد فترة غسيل، نقدم محفز إزالة التحميل الذي يتم من خلاله تحرير الصبغة من الحويصلات. هل تعمل على نوع محدد من الخلايا العصبية؟
وبناءً على ذلك، نستخدم هذه الطريقة في مختبرنا مع العصبونات الحصينية، ونطبقها على العصبونات المستزرعة بدلاً من استخدام تحليل الخلايا. ما هي المشكلات المحتملة في هذه التجربة؟ ومن بين المشكلات الشائعة، نستخدم المحاكاة الكهربائية.
في بعض الأحيان سابقاً، ولأسباب مختلفة، واجهنا مشكلات في تشغيل المحاكاة الكهربائية. وأعلم أن مختبرات أخرى تستخدم أيضاً محلول البوتاسيوم عالي التركيز. لذا، يمكن أن يكون محلول البوتاسيوم عالي التركيز بديلاً جيداً لاستخدام التحفيز الكهربائي في حال وجود مشكلات في ذلك.
كذلك، وبشكل عام، لأي سبب كان خلال خطوة الغسيل، يبدو أنك لا تحصل على تحرر كافٍ من الصبغ غير النوعي. وقد وجدت غالباً أن مجرد زيادة معدل التدفق، وبدلاً من استخدام 0.5 ml، يتم استخدام 1.5 ml في الدقيقة، وعن طريق زيادة مدة الغسيل من خمس دقائق إلى 10 دقائق، تتحسن النتائج بشكل كبير. ما هي التطبيقات الممكنة لهذه التجربة؟
ما الذي ترغب في دراسته فعلياً؟ حسناً، يمكنك استخدام هذه الطريقة لاختبار الخلايا الضابطة مقابل خلايا تم تعديلها بطريقة ما. فعلى سبيل المثال، يمكنك استخدام سلالات مختلفة من الفئران لمعرفة ما إذا كانت حركية الإطلاق مختلفة، أو يمكنك معرفة ما إذا كان إضافة عقار معين يؤثر فعلياً على عملية الإفراز الخلوي.
شكراً لك.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تركز هذه الدراسة على قياس حركية إطلاق الحويصلات لتعزيز فهم عملية النقل العصبي. وباستخدام التصوير في الوقت الفعلي مع صبغة FM 4-64، يبحث هذا البحث في معدلات إطلاق الحويصلات قبل التشابكية في مستنبتات عصبونية من الحصين.
يوفر القياس الكمي للإفراز الخلوي للحويصلات التشابكية باستخدام وسم صبغة FM رؤى قابلة للتطبيق حول آليات إطلاق النواقل العصبية، مما يدعم التحقق من الأهداف في المراحل المبكرة من اكتشاف الأدوية الموجهة لعلم الأحياء العصبي. يتيح هذا النهج المقارنة المباشرة لحركية إطلاق الحويصلات بين العصبونات التي خضعت لمعالجة جينية أو دوائية وبين المجموعات الضابطة، مما يساهم في تقليل المخاطر الميكانيكية وتعزيز الثقة التنبؤية عند نقطة التحول في عملية الاكتشاف.
يُدمج قياس الإفراز الخلوي القائم على صبغة FM في سلسلة العمليات الممتدة من الاكتشاف إلى المرحلة قبل السريرية، مما يربط بين الدراسات الميكانيكية المبكرة والتحقق الانتقالي في الأنظمة العصبية.