يوليو 9, 2010
الموجات فوق الصوتية عالية التردد دوبلر هو تقنية جديدة لتقييم وظيفة عضلة القلب في المنطقة. هذا العمل يطرح أول دليل إثبات انطباق هذا المنبر التصوير تنوعا لقياس الضغط المتكرر لعضلة القلب ، DP / دينارا ، وقلس التاجي في القلب (IR) ، نقص التروية إشباعها الفئران.
يظهر هذا الفيديو إجراءً لأداء تصوير صدى عالي التردد وعالي الدقة في الإقفار. يتم تحفيز الإقفار عن طريق سد الشريان النازل الأمامي الأيسر للفأر المخدر جراحيًا. بعد التعافي، يتم وضع الفأر على منصة ECG للتخدير ومجهزة بمنصة دافئة.
يتم الحصول على الأفلام في وضع B للحصول على تحليل ضغط المحور الطويل والماء لتصوير ضغط القلب وتصوير سرعة دوبلر الملون للحصول على ملف تعريف السرعة. ثم تتم معالجة الأفلام للحصول على منحنيات الضغط، والانسجام على أساس الضغط، ولحساب معدل تغير ضغط البطين الأيسر. مرحبًا، أنا الدكتور. Chandon Sen من معهد ديفيس لأبحاث القلب والرئة وقسم الجراحة في مركز أوهايو ستيت الطبي.
تصوير صدى عالي التردد وعالي الدقة هو أداة جديدة وقوية للحصول على بيانات سريرية ذات صلة عن طريق القياس المتكرر من نفس الحيوان. اليوم، سنوضح لك كيفية استخدام هذه التقنية لقياس انقباض عضلة القلب، وكذلك قلس الصمام التاجي في القلب المريوض المتعرض للإقفار. أولاً، سيقوم Jason Driggs من مختبري بتوضيح الإجراءات الجراحية لتحفيز الإقفار، وتنشيط القلب الفأري.
بعد ذلك، سيقوم الدكتور Surya Al، وهو زميل ما بعد الدكتوراه في الهندسة الطبية الحيوية في مختبري بتوضيح إجراءات التصوير. وأخيرًا، الدكتور Thomas Ryan، مدير مركز القلب في مركز أوهايو ستيت الطبي. وكذلك، سيقدم خبير إكلينيكي في تصوير الصدى الختامية.
لذا فلنبدأ. ابدأ هذا الإجراء بوضع فأر ذكر أسود عمره ثمانية أسابيع على طاولة جراحية ساخنة. يجب مراقبة درجة حرارة جسم الحيوان بمجس حراري مستقيم ويجب الحفاظ عليها عند 36.7 ± 0.5 درجة مئوية طوال فترة الجراحة.
قم بتطهير الجلد بمطهر متبوعًا بالكحول وكرر ذلك ثلاث مرات ثم قم بإدخال أنبوب 0.7 سم عبر شق طولي على منتصف القصبة الهوائية. قم بتصور القصبة الهوائية عن طريق التشريح الخفيف للغدد المجاورة. ثم قم بإدخال قسطرة مقاس 20 في الفم كأنبوب رغامي. باستخدام طرف القسطرة، قم بتهوية الفئران بـ 0.5٪ من الأيزوفلورين.
للحفاظ على التخدير، قم بإغلاق الجلد حول الرقبة بخيط 5-0. قم بإعداد مخطط كهربائية القلب بثلاثة أسلاك عن طريق إدخال إبر تحت الجلد لمراقبة النشاط الكهربائي للقلب طوال فترة الجراحة. يجب تسجيل التغييرات في النشاط الكهربائي للقلب.
باستخدام برنامج PC Power Lab. قم بتدوير الحيوان لكشف الجانب الأيسر. قم بعمل شق على طول المستوى العرضي.
ثم قم بالتشويش من خلال الفضاءات بين الأضلاع الرابع والخامس. قم بالحفاظ على الصدر مفتوحًا باستخدام موسع الأضلاع النحاسي أثناء قطع التامور. ثم قم بسحب الرئة اليسرى للسماح بالوصول إلى التامور بين الشريان الرئوي والأذينة اليسرى.
توجد الشريان النازل الأمامي الأيسر على طول الجدار الحاجزي بعد 7.0. قم بوضع خيوط برولين تحته. ثم قم بوضع خيوط PE ten two كبيرة فوقه وقم بربط الأنبوب في مكانه.
اترك الأنبوب لمدة 60 دقيقة لتحفيز الإقفار. بعد 60 دقيقة، قم بقطع نهايات الخيط في الحلقة لإعادة تنشيط القلب. قم بإغلاق الصدر بخيط برولين 7-0.
قم بإغلاق الجلد حول المنطقة الصدرية بثرات برولين 5-0. قم بإزالة مصدر الغاز من جهاز التنفس الصناعي واترك للحيوان التنفس هواء الغرفة. بمجرد حدوث التنفس التلقائي واستجابة الحيوان لقرصة الأصابع، قم بوضعه في قفص جديد على حاضنة بدرجة حرارة 37 درجة مئوية.
قم بإزالة أنبوب القصبة الهوائية عندما يكون الحيوان واعيًا تقريبًا ولا توجد مشاكل واضحة. بمجرد تعافي الحيوان، يمكن إرجاعه إلى المختبر البيطري حتى يتم تصويره. يجب إجراء بروتوكولات التصوير الموصوفة هنا قبل 3 أيام و 7 أيام بعد تحفيز الإقفار.
لتقييم التغييرات في وظيفة القلب وحركة الجدار، ابدأ إجراء التصوير بوضع الحيوان المخدر بالإيزوفلورين في الوضع البطني تحت مسبار نظام تصوير vivo 2100. قم بوضع قناع للأنف لتوفير مصدر مستمر من 1.5٪ ISO فلورين وقم بتطبيق هلام موصل على الحيوان. قم ببدء نظام vivo 2100 وقم بتهيئة المحول MS 400.
استخدم كرة التحكم الدوارة على لوحة التحكم في vivo 2100 لاختيار أمراض القلب واكتساب صورة M mode قياسية. قم بوضع المسبار على الحيوان ثم انقر فوق ctor لبدء اكتساب الفيلم. لإجراء القياسات، انقر فوق القياس وقم بتتبع ثلاث دورات قلب على الأقل على كلا منحنى العلوي والسفلي لغرفتي البطين الأيسر.
ستظهر المعلمات التالية على الشاشة: أبعاد الجدار، والحجم في الانقباض والانبساطي، وحجم السكتة، ونسبة القذف أو EF، والانكماش الجزئي أو FS، والنتاج القلبي أو CO، والقطرين الداخليين. في الانقباض والانبساطي، تظهر المعلمات تلقائيًا على الشاشة بمجرد اكتمال التتبع. بعد اكتمال تصوير M mode، قم بوضع الحيوان في وضع الصدر وانقر فوق B mode.
لإجراء تصوير الضغط، انقر فوق sinister. ثم قم باستخدام المسبار لاكتساب أفلام B mode على محور قصير ومحور طويل. لتحليل الأفلام، قم باختيار B mode movie وانقر فوق أيقونة سلالة vivo لاستخدام خوارزمية تتبع البقعة.
سيظهر نافذة جديدة مع أفلام B mode على اليسار وبدء التحليل على اليمين. قم بتتبع حدود القلب الداخلي والخارجي. انقر فوق أيقونة بدء التحليل لفتح نافذة أخرى.
ثم قم بتحديد إزاحة السرعة والضغط ومعدل الضغط. اختر نقطة مثيرة للاهتمام هنا. يتم اختيار موقع الإصابة ويتم رسم المنحنى المقابل لنقطة الإصابة لجميع المعلمات المختارة.
الآن انقر فوق زر الماوس الأيمن لنسخ المخططات أو تصدير البيانات. لتحليل انسجام عضلة القلب، انتقل إلى يمين النافذة الجديدة وانقر فوق أيقونة تحليل وقت الذروة. الآن ستظهر نافذة تعرض صفحة انسجام LV القطاعي وتحديد خيارات إزاحة السرعة والضغط ومعدل الضغط الشعاعي والطولي.
قم باختيار زر الضغط، ثم قم بتخزين البيانات. كرر هذا الإجراء لإزاحة الضغط ومعدل الضغط. قم بإبقاء الحيوان في وضع الصدر لإجراء قياسات تدفق دوبلر.
ابدأ باستخدام الكرة المتعقبة لوضع حجم العينة في الصمام التاجي، وتدفق الشريان الأورطي، وجاذبية الصمام التاجي. انقر فوق PW للحصول على ملف تعريف التدفق. ستظهر نافذة جديدة مع الفيلم المعروض في الأعلى وملفات تعريف السرعة في الأسفل. انقر فوق image store.
للحصول على صورة ثابتة، قم بإجراء تصوير دوبلر باور لجاذبية تدفق الصمام التاجي، وجاذبية النفاث، وجاذبية الشريان الأورطي بنفس الطريقة عن طريق وضع حجم العينة في الموقع المطلوب، والنقر فوق PW، ثم تخزين الصورة. للحصول على تدفق دوبلر الملون، انتقل إلى لوحة التحكم وانقر فوق color. ثم باستخدام صورة تدفق الدم المرمزة بالألوان، قم بتحديد نصف قطر الفتحة بالنقر فوق measure واختيار رمز الطول المقدم في القائمة. ثم قم بتحديد MV flow من القائمة المنسدلة.
ثم قم بوضع المؤشر على النقاط الأولية والنهائية للمنحدر الأشد انحدارًا لملف تعريف السرعة. وانقر فوق زر الماوس الأيسر لرؤية السرعة في النقاط المعنية من هذه السرعات. استخدم علاقة RNLI المعدلة لإيجاد انخفاض الضغط DP على DT في مللي
This article presents a novel application of high frequency Doppler ultrasound for assessing myocardial function in ischemia-reperfused murine hearts. The study demonstrates the technique's ability to measure myocardial strain, dp/dt, and mitral regurgitation.