أغسطس 14, 2011
لا غنى عن اختبار البروتين البروتين التفاعل لتشريح وظيفة البروتين. هنا ، نحن بتقديم و في المختبر البروتين البروتين فحص ملزمة ليشمل التحقيق في غشاء من البروتين ثبتوا مع بروتين قابل للذوبان. هذا الاختبار يوفر طريقة موثوق بها لاختبار التفاعل بين البروتينات غير قابلة للذوبان وبروتين في الحل.
اختبار البروتين. لا غنى عن تفاعل البروتين لتشريح وظائف البروتين. يقدم هذا الفيديو مقايسة ربط بروتين البروتين في المختبر لاختبار التفاعل بين الغشاء والبروتين الثابت مع بروتين قابل للذوبان.
أولا ، يتم استنساخ بروتينات الاندماج والتعبير عنها واستخراجها. يتم تثبيت البروتين غير القابل للذوبان الموسوم على غشاء النيتروسليلوز ومعالجته لإعادة طيه إلى تأكيده الأصلي. ثم يتم فحص الغشاء ببروتينات قابلة للذوبان وإجراء نشاف مناعي للكشف عن البروتينات.
إذا تفاعلت البروتينات الموسومة ، التقاطها بواسطة البروتين الثابت على الغشاء ، وستلاحظ الإشارة من النشاف المناعي. وبالتالي ، يوفر هذا الاختبار طريقة موثوقة لاختبار التفاعل بين البروتين غير القابل للذوبان والبروتين الموجود في المحلول. الميزة الرئيسية لهذه التقنية على الأوعية الموجودة مثل سحب ضريبة السلع والخدمات ، هي أنه يمكنك تقييم الارتباط بين البروتين غير القابل للذوبان والبروتين القابل للذوبان في المختبر بشكل موثوق.
تتمثل الخطوة الأولى في هذا الإجراء في توليد بروتينات ذات علامات وراثية للكشف عنها. ابدأ باستنساخ البروتين الذي سيتم تثبيته على الغشاء. ارجع هنا باسم pro Im للبروتين الثابت في متجه تعبير ، وترميز علامة كبيرة مثل GST ، متجه التعبير الفارغ ، والذي سيتم استخدام رمز العلامة فقط كعنصر تحكم سلبي للبروتين الثابت ، ويشار إليه باسم pro IM nc.
بعد ذلك ، استنساخ البروتين الذي سيتم استخدامه كمسبار قابل للذوبان في متجه تعبير ، مع ترميز علامة مختلفة مثل البكتيريا العقدية الثانية. سيشار إلى هذا باسم بروسول للبروتين القابل للذوبان كعنصر تحكم سلبي ، استنساخ ، بروتين قابل للذوبان في نفس ناقل التعبير. سيشار إلى هذا باسم Prosol NC للتحكم السلبي في البروتين القابل للذوبان.
بعد ذلك ، استخدم نظام تعبير البروتين مثل فيروس القولونية أو البالو للتعبير عن البروتينات الموسومة التي يستخدمها نظام التعبير يجب اختياره بعناية بناء على متطلبات التعديلات اللاحقة للترجمة. استخرج البروتينات المعبر عنها من الكائن الحي المفضل. للمحترفين IM و pro I mnc Resus.
قم بتعليق الخلايا في المخزن المؤقت لتحميل صفحة SDS الذي يحتوي على كوكتيل مثبط للبروتين. ثم قم بغلي الخلايا لمدة خمس دقائق ، ثم قم بالطرد المركزي لإزالة الراسب لاستخراج Prosol و prosol NC. استخدم الإجراءات القياسية. يمكن استخراج pro IMS في ظل ظروف تغيير الطبيعة لأن البروتينات ستتم إعادة طيها بعد تجميدها في غشاء النيتروسليلوز.
ومع ذلك ، يجب استخراج البروسول لإعطاء تأكيد أصلي لأنه سيتم إضافتها إلى المخزن المؤقت الملزم بمجرد استخراج البروتينات الموسومة. حدد تركيز البروتينات المؤتلفة باستخدام طريقة قياسية مثل مجموعة فحص البروتين BioRad. إذا كان مستخلص الخام بدلا من البروتين المنقى سيتم استخدامه في الفحص.
تقدير تركيز البروتين محل الاهتمام عن طريق مسح قياس الكثافة للشريط المقابل على جل بولي أكريلاميد SDS الملون بالكوماسي. استخدام تركيزات معروفة من BSA كمرجع. ثم ارسم المنحنى القياسي بناء على شدة الإشارة المقاسة بواسطة قياس كثافة المسح الضوئي ل BSA واحسب كمية البروتين الموجودة في المستخرج الخام.
الخطوة التالية من الإجراء هي تثبيت pro Iam و pro IAM NC على الغشاء. ابدأ بتحميل ميكروغرام واحد ، كل من مستخلصات pro Iam و pro IAM NC في نسختين على جل بولي أكريلاميد SDS. بعد الرحلان الكهربائي ، قم بإزالة الجل من الألواح الزجاجية وضعه في 100 مل من المخزن المؤقت للنقل ، ثم احتضنه بتحريض لطيف لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
بعد الحضانة ، قم بإجراء لطخة غربية لنقل البروتينات إلى غشاء النيتروسليلوز بعد النقل للسماح للبروتينات المرتبطة بالغشاء بإعادة الطي ضع الغشاء في 15 مل من العازلة A واحتضنه بتحريض لطيف. لإزالة بقايا SDS ، احتضن لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة مع تحريك لطيف.
بعد الحضانة ، قم بإزالة الغشاء بعناية من العازلة. ثم ضع الغشاء في 25 مل من المخزن المؤقت للتمسخ. احتضن لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة مع تحريك لطيف.
أثناء الحضانة ، سيصبح غشاء النيتروسليلوز معتما. بعد ذلك ، باستخدام الملقط ، انقل الغشاء إلى 25 مل من TBS واحتضانه بتحريض لطيف لمدة خمس دقائق. خلال هذه الخطوة ، يعود الغشاء إلى لونه الأبيض الأصلي.
بعد ذلك ، انقل الغشاء إلى 25 مل من المخزن المؤقت الملزم. احتضن عند أربع درجات مئوية مع تحريك لطيف طوال الليل. بعد ذلك ، سيتم استخدام البروتين القابل للذوبان لفحص الغشاء للبروتين الثابت.
أولا ، قم بإعداد مخازن التهجين المخففة من واحد إلى 10 ميكروغرام من البروسول والبروسول NC في أنابيب منفصلة تحتوي على 10 ملليلتر من المخزن المؤقت الطازج. ثم انقل المخزن المؤقت إلى كيس تهجين. بعد ذلك ، قم بتقطيع الغشاء إلى شريطين ، كلاهما يحتوي على pro IM و pro IAM nc.
سيتم وضع هذه الأغشية في مخزن التهجين. انقل كل غشاء إلى محلول تهجين Prosol أو Prosol NC واحتضنه لمدة 1.5 ساعة في درجة حرارة الغرفة مع تحريك لطيف. قم بإزالة الأغشية من محاليل التهجين واشطفها ثلاث مرات لمدة 15 دقيقة في TBS.
لتصور تفاعلات بروتين البروتين ، قم بسد الغشاء بحليب خالي الدسم بنسبة 2.5٪ في TBST لمدة ساعة واحدة. بعد الحضانة ، ضع الأغشية المسدودة في محلول الجسم المضاد الأساسي. هنا يتم استخدام البكتيريا العقدية المضادة لاثنين من الأرانب متعددة النسيلة.
احتضن لمدة ساعة في درجة حرارة الغرفة مع تحريك لطيف بعد الحضانة. اشطف الأغشية في 20 مل من TBST لمدة 15 دقيقة ومرتين لمدة خمس دقائق في درجة حرارة الغرفة مع تحريض لطيف. بعد ذلك ، ضع الأغشية في محلول الأجسام المضادة الثانوية المترافقة HRP هنا ، يتم استخدام جسم مضاد IgG مضاد للأرانب مقترن ب HRP.
احتضن لمدة ساعة في درجة حرارة الغرفة مع تحريك لطيف. اشطف الأغشية في 20 مل من TBST لمدة 15 دقيقة ومرتين لمدة خمس دقائق في درجة حرارة الغرفة مع تحريك لطيف كما كان من قبل ، بعد الشطف النهائي في TBS ، تصور تفاعل بروتين البروتين باستخدام ركيزة HRP كيميائية هنا Millipore. أنا مولان الغربي Chemiluminescent.
يتم استخدام ركيزة HRP بعد النشاف المناعي للبروسول. اشطف الغشاء و TBST لمدة 15 دقيقة ومرتين لمدة خمس دقائق في درجة حرارة الغرفة. ثم أعد فحص الأغشية بالجسم المضاد الأساسي للعلامة للاحتراف.
يتبعه الجسم المضاد الثانوي المناسب. تصور PRO I و pro Im NNC عن طريق الكشف عن التلألؤ الكيميائي للتحقق من هوية النطاقات التي تم الحصول عليها في مقايسة تراكب غشاء البروتين. تم تقييم التفاعل بين البروتينات A و K و YFP و MP CYFP في خلايا بشرة التبغ باستخدام الطريقة الموضحة في هذا الفيديو كما هو موضح هنا.
عندما تم تقييم تكملة التألق الجزيئي الحيوي ، أعيد بناء إشارة YFP قوية. تتراكم إشارة BFC هذه في بونتا في محيط الخلية ، والتي يتم تشخيصها للبلازما de لأن MP هو بروتين غير قابل للذوبان بدرجة كبيرة. عند التعبير عنها في البكتيريا أو في النباتات ، تم اعتماد مقايسة تراكب غشاء البروتين للتحقق من صحة هذا التفاعل.
تمحل مستخلصات البروتين في المختبر التي تحتوي على ميكروغرام واحد من GST MP أو GST غير المنصهر عن طريق الرحلان الكهربائي لجل بولي أكريلاميد SDS متبوعا بالنقل الكهربائي إلى غشاء النيتروسليلوز. عندما تم فحص هذه الاحترافية مع البكتيريا العقدية القابلة للذوبان ، ولكن ليس غير المدمجة ، أظهرت ضريبة السلع والخدمات ملزمة. علاوة على ذلك ، عندما تم فحص نفس المجموعة من pro IMS باستخدام منشار احترافي غير ذي صلة nc IE Arabidopsis Cytoplasmic ، NADH kinase الموسوم بالبكتيريا العقدية الثانية ، لم يلاحظ أي ارتباط يوضح خصوصية تفاعل A NK MP أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر إعادة ملء البروتينات المجمدة بشكل صحيح باتباع البروتوكول المقدم.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تقدم هذه المقالة فحصًا في المختبر لارتباط البروتين بالبروتين مصممًا للتحقيق في التفاعلات بين بروتين مثبت على الغشاء وبروتين قابل للذوبان. توفر الطريقة نهجًا موثوقًا لاختبار التفاعلات التي تتضمن بروتينات غير قابلة للذوبان.
Validating protein-protein interactions is essential for target de-risking in early discovery, particularly when studying insoluble or membrane-associated targets. The protein membrane overlay assay enables reliable in vitro assessment of interactions between soluble and insoluble proteins, addressing a key limitation of solubility-dependent methods like GST pull-down or Co-IP. When combined with orthogonal approaches such as BiFC, it supports mechanistic confidence and reduces false-positive risk in target validation workflows.
The assay fits within the discovery continuum from target engagement screening to lead optimization, particularly for targets where solubility complicates biochemical validation. It enables progression from phenotypic hits or genetic interactors to mechanistically de-risked targets.