-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Nucleofection من القوارض Neuroblasts لدراسة الهجرة أرومة عصبية في المختبر
Nucleofection من القوارض Neuroblasts لدراسة الهجرة أرومة عصبية في المختبر
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Nucleofection of Rodent Neuroblasts to Study Neuroblast Migration In vitro

Nucleofection من القوارض Neuroblasts لدراسة الهجرة أرومة عصبية في المختبر

Full Text
11,627 Views
11:32 min
November 12, 2013

DOI: 10.3791/50989-v

Katarzyna Falenta*1, Sangeetha Gajendra*2, Martina Sonego1, Patrick Doherty1, Giovanna Lalli1

1Wolfson Centre for Age-Related Diseases,King's College London, 2MRC Centre for Developmental Neurobiology,King's College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

الهجرة أرومة عصبية هو خطوة حاسمة في تكوين الخلايا العصبية بعد الولادة. وصف بروتوكول هنا يمكن أن تستخدم للتحقيق في دور المنظمين مرشح للهجرة أرومة عصبية من خلال توظيف DNA / RNA الصغيرة دبوس (shRNA) nucleofection ومقايسة 3D الهجرة مع neuroblasts معزولة عن القوارض بعد الولادة منقاري تيار المهاجرة.

Transcript

الهدف العام من هذا الإجراء هو نقل الخلايا العصبية الأولية بعد الولادة من أجل فحص تأثير البروتينات المستهدفة على هجرتها. يتم تحقيق ذلك عن طريق تشريح الخلايا العصبية أولا من التيار المهاجر المنقاري للقوارض الملوثات العضوية الثابتة. الخطوة الثانية هي فصلها ونقلها عن طريق المودة النووية إما مع الحمض النووي أو S-H-R-N-A.

بعد ذلك ، يتم إعادة تجميع الخلايا العصبية في قطرات معلقة ثم يتم زراعتها في التعليق لفترة مناسبة. تتمثل الخطوة الأخيرة في تضمين مجموعات الخلايا العصبية المجمعة في مصفوفة ثلاثية الأبعاد وتركها للهجرة. في النهاية ، يتم استخدام الفحص المجهري المناعي أو التصوير بفاصل زمني لتحليل هجرة الخلايا العصبية.

يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على سؤال رئيسي في مجال تكوين الخلايا العصبية ، مثل التحكم في هجرة الخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية في دماغ ما بعد الولادة. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها سهلة وسريعة نسبيا مقارنة باستخدام النواقل الفيروسية ، والتي يمكن أن تكون صعبة وتستغرق وقتا طويلا. بعد التضحية ب P ستة إلى P سبعة فضلات الفئران ، قم بعمل شق خلفي في الجلد على طول خياطة منتصف السهمية من الأنف إلى المخيخ بشفرة مشرط على كل فأر.

بعد ذلك ، قشر الجلد. كرر نفس الشق على طول الجمجمة. ثم قم بإزالة اللوحات الجمجمة برفق باستخدام ملقط وقم بإزالة الدماغ بعناية مع المصابيح الشمية باستخدام ملعقة.

بعد ذلك ، قم بقص ثلث الدماغ الأكثر دللا وتخلص منه. بعد ذلك ، قم بتقطيع أنسجة المخ إلى شرائح إكليلية بسمك 1.4 ملم باستخدام مفرمة الأنسجة. انقل الشرائح إلى طبق يحتوي على وسط تشريح بارد.

ثم اعرض الشرائح تحت مجهر التشريح. افصلهم بعناية باستخدام إبرة. يظهر التيار المهاجر المنقاري كمنطقة شفافة مثلثة في وسط أقسام OB وكمنطقة دائرية صغيرة.

في شرائح الدماغ الأكثر دللا ، قم بقص RMS من كل شريحة بسكين جراحي مجهري مع الحرص على تجنب تضمين الأنسجة المحيطة. بعد ذلك ، اجمع شظايا RMS بماصة بلاستيكية وضعها في طبق صغير يحتوي على وسط تشريح بارد على الجليد. ثم قم بتدوير الطبق برفق لتجميع شظايا RMS في وسط الطبق.

اجمع الأجزاء بماصة بلاستيكية وانقلها إلى أنبوب سعة 15 مل. اترك الشظايا لتستقر في قاع الأنبوب. استبدل وسط التشريح بملليلترين من وسط التفكك T tri.

قم بتقييم شظايا RMS عن طريق سحب تعليق الشظية برفق لأعلى ولأسفل حوالي 10 مرات باستخدام ماصة P 1000 بعد ذلك. اترك الأنبوب مع شظايا الأنسجة في حمام مائي 37 درجة مئوية لمدة دقيقتين. بعد ذلك ، قم بتقطيع المحلول مرة أخرى 10 مرات وتأكد من تفكك الشظايا.

ثم قم بإلغاء تنشيط التربسين عن طريق إضافة خمسة ملليلتر من DMEM المصابة مسبقا بالإضافة إلى 10٪ FCS وقم بالطرد المركزي لتعليق الخلية عند 433 مرة G لمدة خمس دقائق. قم بإزالة الوسيط الزائد وإعادة الضغط. قم بتعليق حبيبات الخلية عن طريق ماصتها برفق في مليلتر واحد من DMEM الدافئ بالإضافة إلى 10٪ FCS ، ثم أضف أربعة ملليلتر أخرى من نفس الوسط.

ثم قم بإجراء عدد الخلايا. مطلوب ما لا يقل عن 2.5 مرة 10 إلى الخلايا السادسة لكل عاطفة نواة بينما يتم تحقيق النتائج المثلى. باستخدام ثلاثة إلى أربعة أضعاف 10 إلى الخلايا الست لكل عاطفة نواة.

الطرد المركزي معلق الخلية عند 433 مرة G لمدة خمس دقائق. بعد ذلك ، قم بإزالة أكبر قدر ممكن من الوسط في هذا الإجراء. على الفور ، قم بتعليق حبيبات الخلية في محلول عاطفة نواة الخلايا العصبية للفئران الذي تم احتضانه مسبقا.

في درجة حرارة الغرفة ، انقل 100 ميكرولتر من تعليق الخلية إلى كل أنبوب استخلاص للنفط يحتوي على SI R-N-A-D-N-A. ثم امزجها برفق عن طريق سحب العينات مرتين إلى ثلاث مرات باستخدام ماصة P 200. بعد ذلك ، أضف العينة إلى الجزء السفلي من النواة مع الحرص على تجنب توليد أي فقاعات.

بالنسبة لعاطفة النواة ، استخدم برنامج G dash 0 1 3 لخلايا الفئران أو O dash 0 0 5 لخلايا الفأر. بعد ذلك ، أضف بسرعة ملليلترا واحدا من DMEM قبل الحرب بالإضافة إلى 10٪ FCS إلى العينة المصابة بالنواة. انقل العينة إلى أنبوب سعة 15 مليلتر يحتوي على خمسة ملليلتر من DMEM قبل الحرب بالإضافة إلى 10٪ FCS باستخدام الماصة البلاستيكية التي توفرها مجموعة المودة النووية.

ثم قم بالطرد المركزي للعينة عند 433 مرة G لمدة خمس دقائق. قم بإزالة جميع الوسائط الزائدة بعناية وأعد تعليق الحبيبات في 25 إلى 30 ميكرولتر من DMEM قبل الحرب بالإضافة إلى 10٪ FCS باستخدام ماصة P 20. لا تستخدم أكثر من 30 ميكرولتر من المتوسط.

بعد ذلك ، قم بسحب التعليق كقطرة على الجانب الداخلي لغطاء الطبق P 35. ثم اقلب الغطاء فوق طبق P 35 الذي يحتوي على ملليلترين من الوسط الكامل. اتركه في الحاضنة عند 37 درجة مئوية مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون لمدة خمس ساعات على الأقل.

بعد خمس ساعات ، انقل القطرات المعلقة من الغطاء إلى الوسط الكامل في الطبق. باستخدام ماصة P 1000 بطرف مقطوع. ثم احتضان العينات عند 37 درجة مئوية مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون لمدة 24 ساعة للعدوى النووية للحمض النووي NU ، أو 48 ساعة للتأثيرات النووية ل SI A

HRA.

الآن قم بإعداد 25 مل من الوسط الكامل والتوازن المسبق عند 37 درجة مئوية مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون لبضع ساعات. في غضون ذلك ، أخرج الحصص المجمدة لمصفوفة الغشاء القاعدي من الفريزر سالب 80 درجة مئوية وقم بإذابة الثلج على الجليد في الغرفة الباردة. لكل عاطفة نواة ، قم بإعداد طبق بطول ستة سنتيمترات يحتوي على ما يصل إلى ثماني زلات غطاء معقمة مقاس 13 ملم.

ضع الأطباق على صندوق ثلج مغطى بغشاء بلاستيكي. للحفاظ على الرطوبة ، ضع شريطا من الأنسجة الرطبة داخل طبق طوله 15 سم والذي سيتم استخدامه لاستيعاب ما يصل إلى ثلاثة أطباق بطول ستة سنتيمترات تحتوي على أبلاستات مدمجة في الركبة. بعد ذلك ، أضف الوسط الكامل إلى مصفوفة هاو بنسبة واحد إلى ثلاثة ، وانقل مجموعات الخلايا المجمعة إلى أنبوب سعة 15 مليلتر وقم بالطرد المركزي 433 مرة G لمدة خمس دقائق.

بعد ذلك ، قم بإزالة الوسيط الزائد وإعادة تعليق البليت في 10 ميكرولتر من الوسط الكامل. ثم ضع ميكرولترين من تعليق ركام الخلية على كل زلة غطاء معقمة. أضف 18 ميكرولترا من خليط المصفوفة المتوسط الكامل واستخدم طرف الماصة لنشر المصفوفة على الغطاء بالكامل.

انزلق مباشرة بعد وضع الطبق الذي يبلغ طوله ستة سنتيمترات والذي يحتوي على زلات الغطاء في الطبق الذي يبلغ طوله 15 سم. انقل الطبق إلى الحاضنة على حرارة 37 درجة مئوية مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون لمدة 15 إلى 20 دقيقة. بعد أن تصلب المصفوفة ، أضف برفق خمسة ملليلتر من الوسط الكامل إلى كل طبق يبلغ طوله ستة سنتيمترات وادفع أي زلات غطاء عائمة مع طرف الماصة ثم تحضنها لمدة 24 ساعة عند 37 درجة مئوية مع 5٪ كربوجين للسماح للأرومة العصبية بالهجرة خارج مجاميع الخلية.

في هذا الشكل ، تظهر خلايا RMS المعزولة للفئران إيجابية للمناعة لعلامات الخلايا العصبية المهاجرة DCX وبيتا ثلاثة توبولين. ويوضح هذا الشكل أن علامات الخلايا العصبية المهاجرة DCX و PSA NCA يتم التعبير عنها في الخلايا المهاجرة من الفأر. RMS Explan للفأر Neuroblast Nu المودة النووية ، تأثرت الخلايا العصبية RMS الفأر المنفصل بإعادة تجميع GFP المضمنة في مصفوفة ثلاثية الأبعاد وسمح لها بالهجرة لمدة ست ساعات.

تظهر الخلايا العصبية التي تهاجر من مجموعة الخلايا المجمعة كفاءة عالية في التعدين. هنا ، تأثرت الخلايا العصبية للفئران بالنواة بلازميدين مختلفين يشفران GFP المعاد تجميعهما في المصفوفة وتركها للهجرة لمدة 24 ساعة. ثم تم تثبيت الخلايا وصبغها المناعي ل GFP و beta three tubulin لقياس مسافة الهجرة.

تنقسم مجموعة الخلايا المجمعة إلى ستة قطاعات متساوية ويتم قياس المسافة بين حافة الكتلة وأبعد خلية مهاجرة لكل قطاع. يوضح هذا الشكل القياس الكمي للمسافة النسبية التي تم ترحيلها بواسطة الخلايا المصابة بالنواة الإيجابية GFP والتحكم في الخلايا غير المصابة بالنواة السلبية GFP لمراقبة هجرة الخلايا العصبية. بعد S-H-R-N-A تتأثر الخلايا العصبية للفئران ذات النواة بناقل تحكم S-H-R-N-A أو نفس الناقل الذي يحتوي على HRNA المستهدف ، تم إعادة تجميع خلايا البروتين التي تجمع على مدار 48 ساعة مدمجة في المصفوفة وتركها للهجرة لمدة 24 ساعة.

ثم تم إصلاح الركام وصبغة مناعية ل GFP وبيتا ثلاثة توبولين. يمكن الكشف عن استنفاد التثبيت الفعال بعد 50 ساعة من عاطفة نوى S-H-R-N-A بواسطة Western Blood Analysis و Acton يظهر هنا كعنصر تحكم في التحميل. فيما يلي التحليل الكمي لمسافة الهجرة النسبية التي تظهر أن النضوب المثبت يضعف بشكل كبير هجرة الخلايا العصبية.

باتباع هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل التثقيب الكهربائي بعد الولادة للتحقق من صحة النتائج التي تم الحصول عليها في الجسم الحي باستخدام مقايسة هجرة المودة النووية NU.

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 81 البيولوجيا الخلوية خلية فحوصات الهجرة ترنسفكأيشن تكوين الخلايا العصبية منطقة subventricular (SVZ) والخلايا الجذعية العصبية تيار المهاجرة منقاري (RMS) أرومة عصبية 3D فحص الهجرة nucleofection

Related Videos

في الرحم بعد Electroporation للثقافة متعلق بالخلايا العصبية الأولية لدراسة وظائف الجينات في مجموعة فرعية من العصبونات القشرية

08:24

في الرحم بعد Electroporation للثقافة متعلق بالخلايا العصبية الأولية لدراسة وظائف الجينات في مجموعة فرعية من العصبونات القشرية

Related Videos

18K Views

تسليم الجينات إلى الدماغ الجرذ بعد الولادة من غير البطين حقن البلازميد وElectroporation

10:34

تسليم الجينات إلى الدماغ الجرذ بعد الولادة من غير البطين حقن البلازميد وElectroporation

Related Videos

15.2K Views

والفحص عن عضوي النمط شريحة الوقت الفاصل بين التصوير عالية الدقة للهجرة الخلايا العصبية في الدماغ بعد الولادة

10:41

والفحص عن عضوي النمط شريحة الوقت الفاصل بين التصوير عالية الدقة للهجرة الخلايا العصبية في الدماغ بعد الولادة

Related Videos

12.2K Views

ترنسفكأيشن من خلايا الشبكية بواسطة الماوس العقدة في الجسم الحي Electroporation

05:26

ترنسفكأيشن من خلايا الشبكية بواسطة الماوس العقدة في الجسم الحي Electroporation

Related Videos

15.8K Views

أساليب لدراسة التشكل متعلق بالخلايا العصبية: خارج الحي رني Electroporation في اللحاء المخي الفئران الجنينية

10:12

أساليب لدراسة التشكل متعلق بالخلايا العصبية: خارج الحي رني Electroporation في اللحاء المخي الفئران الجنينية

Related Videos

12K Views

الوقت الفاصل بين التصوير للهجرة أرومة عصبية في شرائح الدماغ الأمامي الحاد للماوس الكبار

10:25

الوقت الفاصل بين التصوير للهجرة أرومة عصبية في شرائح الدماغ الأمامي الحاد للماوس الكبار

Related Videos

15.1K Views

في الجسم الحي بعد الولادة التثقيب الكهربائي والوقت الفاصل بين التصوير من أرومة عصبية الهجرة في الدماغ الحادة ماوس شرائح

10:51

في الجسم الحي بعد الولادة التثقيب الكهربائي والوقت الفاصل بين التصوير من أرومة عصبية الهجرة في الدماغ الحادة ماوس شرائح

Related Videos

13.4K Views

استهداف الصفائح العصبية الفئرانية بواسطة حقن النانو في الرحم (NEPTUNE) في اليوم الجنيني 7.5

10:49

استهداف الصفائح العصبية الفئرانية بواسطة حقن النانو في الرحم (NEPTUNE) في اليوم الجنيني 7.5

Related Videos

4K Views

الوقت الفاصل بين التصوير متحد البؤر من الخلايا العصبية المهاجرة في شريحة عضوي نمط ثقافة الفأر الجنينية باستخدام الدماغ في أوتيرو إليكتروبوراتيون

13:33

الوقت الفاصل بين التصوير متحد البؤر من الخلايا العصبية المهاجرة في شريحة عضوي نمط ثقافة الفأر الجنينية باستخدام الدماغ في أوتيرو إليكتروبوراتيون

Related Videos

11.3K Views

تصوير الفاصل الزمني للخلايا العصبية المهاجرة والأسلاف الدبقية في شرائح دماغ الفأر الجنينية

04:17

تصوير الفاصل الزمني للخلايا العصبية المهاجرة والأسلاف الدبقية في شرائح دماغ الفأر الجنينية

Related Videos

1.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code