Name: هلسنكي الجرذ المجهرية جانب الجدار تمدد الأوعية الدموية نموذج (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-12T15:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 53 s
Description: تعلم تقنية الجراحة المجهرية لإنشاء تمدد الأوعية الدموية الجدارية في الجرذان باستخدام نموذج هلسنكي. تقدم هذه الطريقة خطوات مفصلة لإجراء التمفصل من طرف إلى جانب لدراسة تمدد الأوعية الدموية التجريبي.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

المؤلفون هم وحدهم المسؤولون عن تصميم وإجراء الدراسة المقدمة. تم دعم الدكتور مارباشر بمنحة من المؤسسة الوطنية السويسرية للعلوم (PBSKP3-123454). ويعلن أصحاب البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح. 
تشمل مساهمات المؤلف في الدراسة وإعداد المخطوطة ما يلي. المفهوم والتصميم: SM ، JM ، JF. الحصول على البيانات: SM ، EA، JF. تحليل وتفسير البيانات: SM ، JF ، JM. صياغة المقال: SM ، JF ، JM. مراجعة نقدية للمقال: JH ، MN. التحليل الإحصائي: SM, JF. الإشراف على الدراسة: JF, JH, MN.

<ol><li>Bouzeghrane, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+experimental+intracranial+aneurysm+models%3A+a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR+Am+J+Neuroradiol%22%5BJournal%5D)">In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 31, 418-423 (2010).</li>
<li>Marbacher, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex+bilobular%2C+bisaccular%2C+and+broad-neck+microsurgical+aneurysm+formation+in+the+rabbit+bifurcation+model+for+the+study+of+upcoming+endovascular+techniques.+AJNR%5BTitle%5D)+AND+%22American+journal+of+neuroradiology%22%5BJournal%5D)">Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. AJNR.</a> American journal of neuroradiology. 32, 772-777 (2011).</li>
<li>Frosen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+mural+and+bone+marrow-derived+neointimal+cells+to+thrombus+organization+and+wall+remodeling+in+a+microsurgical+murine+saccular+aneurysm+model%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Contribution of mural and bone marrow-derived neointimal cells to thrombus organization and wall remodeling in a microsurgical murine saccular aneurysm model.</a> Neurosurgery. 58, 936-944 (2006).</li>
<li>Marjamaa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mice+with+a+deletion+in+the+first+intron+of+the+Col1a1+gene+develop+dissection+and+rupture+of+aorta+in+the+absence+of+aneurysms%3A+high-resolution+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22at+4.7+T%2C+of+the+aorta+and+cerebral+arteries.+Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Mice with a deletion in the first intron of the Col1a1 gene develop dissection and rupture of aorta in the absence of aneurysms: high-resolution magnetic resonance imaging.</a> at 4.7 T, of the aorta and cerebral arteries. Magn Reson Med. 55, 592-597 (2006).</li>
<li>Oyamada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trans-iliac+rat+aorta+stenting%3A+a+novel+high+throughput+preclinical+stent+model+for+restenosis+and+thrombosis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+surgical+research%22%5BJournal%5D)">Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis.</a> The Journal of surgical research. , 166-191 (2011).</li>
<li>Lowe, H. C., James, B., Khachigian, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+model+of+in-stent+restenosis%3A+rat+aortic+stenting%5BTitle%5D)+AND+%22Heart%22%5BJournal%5D)">A novel model of in-stent restenosis: rat aortic stenting.</a> Heart. 91, 393-395 (2005).</li>
<li>Marjamaa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Occlusion+of+neck+remnant+in+experimental+rat+aneurysms+after+treatment+with+platinum-+or+polyglycolic-polylactic+acid-coated+coils%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Neurol%22%5BJournal%5D)">Occlusion of neck remnant in experimental rat aneurysms after treatment with platinum- or polyglycolic-polylactic acid-coated coils.</a> Surg Neurol. 71, 458-465 (2009).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((with+the+support+of+the+NC3Rs%5BTitle%5D)+AND+%22Aseptic+Technique+in+Rodent+Surgery%22%5BJournal%5D)">with the support of the NC3Rs.</a> Aseptic Technique in Rodent Surgery. , Newcastle University. cited 2014 Oct 3] Available from: http://www.procedureswithcare.org.uk/aseptic-technique-in-rodent-surgery (2014).</li>
<li>Bernal, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+rodent+survival+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+investigative+surgery+%3A+the+official+journal+of+the+Academy+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Guidelines for rodent survival surgery.</a> Journal of investigative surgery : the official journal of the Academy of Surgical Research. 22, 445-451 (2009).</li>
<li>Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+rodent+surgery+for+the+new%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Principles of rodent surgery for the new.</a> , (2011).</li>
<li>Marbacher, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+mural+cells+leads+to+wall+degeneration%2C+aneurysm+growth%2C+and+eventual+rupture+in+a+rat+aneurysm+model%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model.</a> Stroke. 45, 248-254 (2014).</li>
<li>Frosen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remodeling+of+saccular+cerebral+artery+aneurysm+wall+is+associated+with+rupture%3A+histological+analysis+of+24+unruptured+and+42+ruptured+cases%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Remodeling of saccular cerebral artery aneurysm wall is associated with rupture: histological analysis of 24 unruptured and 42 ruptured cases.</a> Stroke. 35, 2287-2293 (2004).</li>
<li>Frosen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Saccular+intracranial+aneurysm%3A+pathology+and+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+neuropathologica%22%5BJournal%5D)">Saccular intracranial aneurysm: pathology and mechanisms.</a> Acta neuropathologica. , 123-773 (2012).</li>
<li>Ysuda, R., Strother, C. M., Aagaard-Kienitz, B., Pulfer, K., Consigny, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+large+and+giant+bifurcation+aneurysm+model+in+canines%3A+proof+of+feasibility%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR+Am+J+Neuroradiol%22%5BJournal%5D)">A large and giant bifurcation aneurysm model in canines: proof of feasibility.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 33, 507-512 (2012).</li>
<li>Sherif, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+venous+pouch+arterial-bifurcation+aneurysms+in+the+rabbit+model%3A+technical+aspects%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Microsurgical venous pouch arterial-bifurcation aneurysms in the rabbit model: technical aspects.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).</li>
<li>Marjamaa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+TOF+MR+angiography+at+4.7+Tesla+for+volumetric+and+morphologic+evaluation+of+coiled+aneurysm+neck+remnants+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Radiol%22%5BJournal%5D)">High-resolution TOF MR angiography at 4.7 Tesla for volumetric and morphologic evaluation of coiled aneurysm neck remnants in a rat model.</a> Acta Radiol. 52, 340-348 (2011).</li>
</ol>

الكتاب ليس لديهم مصلحة مالية أو تجارية في أي من الأدوية أو المواد أو المعدات المستخدمة.

التقدم في فهمنا لعلم الأحياء معقد من الشريان الدماغي الكيسية تمدد الأوعية الدموية يعتمد على تحليل البيانات الوبائية والسريرية، وتستكمل الدراسات المختبرية على عينات من المرضى والعمل التجريبي في النماذج الحيوانية 3،12،13. الحيوانات الصغيرة مثل الفئران ترتبط بطبيعتها مع انخفاض تكاليف التجارب والإسكان، وانخفاض الحاجة من المعدات المتخصصة. متوسط ​​إجمالي وقت تشغيل أقل من 60 دقيقة لخلق المجهرية من تمدد الأوعي...

تمزق في الشريان الدماغي الكيسية يسبب تمدد الأوعية الدموية نزيف يهدد الحياة مما يؤدي إلى السكتة الدماغية، والضرر العصبي الدائم أو الوفاة. تمزق يمكن الوقاية منها عن طريق إما لقطة المجهرية أو تمدد الأوعية الدموية انسداد الأوعية الدموية من الداخل. لم يتم بعد تأسيس العلاج الطبي لمنع نمو وتمدد الأوعية الدموية تمزق. وهناك حاجة إلى نماذج تجريبية لتمدد الأوعية الدموية كيسية لدراسة علم الأحياء من تمدد الأوعية الدموية الشريانية واختبار الأجهزة واستراتيجيات علاجية جديدة. لهذه الأغراض، تم وضع عدة نماذج مختلفة في أنواع مختلفة، ونشرت 1. وتستخدم نماذج تمدد الأوعية الدموية الكبيرة في الخنازير والكلاب والأرانب ويفضل لاختبار اللف الابتكارات في مجال العمارة تمدد الأوعية الدموية المعقدة 1،2. نماذج الفئران تمدد الأوعية الدموية، من ناحية أخرى، تسمح اختبار الأسئلة البحثية في الأنواع المعدلة وراثيا 3،4 وتسهيل توضيح تمدد الأوعية الدموية في البيولوجيا الخلوية والجزيئيةمستوى أفضل بكثير من الأنواع الكبيرة 1. على الرغم من اللف العابرة للالسباتي ونشر الجهاز عبر الحرقفي يقتصر على الفئران أكبر (&gt; 400-500 ز) والدعامات أصغر من 2.0 ملم و 1.5 ملم وقطرها 5،6، ويمكن أيضا أن توضع الدعامات من خلال الإدراج المباشر في الأبهر البطني قطاع إيواء تمدد الأوعية الدموية التجريبية. العمل السابق باستخدام الفئران المجهرية جدار الأبهر البطني نموذج تمدد الأوعية الدموية أثبتت جدواه في الأجهزة صمي اختبار الرواية واستخدامه في دراسة الأساس الجزيئي للتمدد الأوعية الدموية البيولوجيا 3،7. العديد من النماذج التجريبية تمدد الأوعية الدموية كيسية المنشورة حاليا تتطلب معدات باهظة الثمن، وبيئات خاصة (مثل غرف العمليات المعقمة مع قدرات التنظير)، الأشعة التداخلية الكفاءة، أو استخدام الأنواع باهظة الثمن. هذه المتطلبات تحد من انتشار استخدام هذه النماذج، وتؤدي إلى استخدام نماذج مختلفة في مختبرات مختلفة، والتي ماكيس مقارنة البيانات والتحليل التلوي من الصعب، إن لم يكن مستحيلا. وهناك حاجة إلى نموذج تجريبي بسيط وقوي، وغير مكلفة كأداة موحدة يمكن استخدامها بطريقة موحدة في مختلف مختبرات من أجل الحصول على نتائج مماثلة من مؤسسات مختلفة. لهذا الغرض، أنشأنا الفئران جدار الشريان الأبهر الشرايين الكيسية نموذج تمدد الأوعية الدموية. الهدف من هذا التقرير هو تقديم الإرشادات الإجرائية خطوة بخطوة، معلومات عن المعدات اللازمة، ومناقشة الخصائص التشريحية والجراحية الهامة لخلق المجهرية الناجح لجدار البطن تمدد الأوعية الدموية الأبهري في الفئران.

<table><tbody><tr><td>ميديتوميدين</td><td></td><td></td><td>أي genericon</td></tr><tr><td>Ketamin</td><td></td><td></td><td>أي genericon</td></tr><tr><td>بوبرينورفين</td><td></td><td></td><td>أي genericon</td></tr><tr><td>فوسفات مخزن محلول ملحي</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>كبريتات دوديسيل الصوديوم (0.1٪) 3-0</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>خياطة قابلة للامتصاص</td><td>Ethicon Inc. ، الولايات المتحدة الأمريكية</td> <td><a name = "RANGE! C7 ">VCP824G< / a></td><td></td></tr><tr><td>5-0 خياطة غير قابلة للامتصاص</td><td>Ethicon Inc. ، الولايات المتحدة الأمريكية</td><td>8618G</td><td></td></tr><tr><td>6-0 خياطة حريرية غير قابلة للامتصاص</td><td>B. براون ، ألمانيا</td><td>C0761060</td><td></td></tr><tr><td>9-0 خياطة نايلون صغيرة</td><td>B. Braun ، ألمانيا</td><td>G1118471</td><td></td></tr><tr><td>Spongostan</td><td>Ethicon Inc. ، الولايات المتحدة الأمريكية</td><td>MS0002</td><td></td></tr><tr><td>مجهر عملية</td><td>لايكا ، ألمانيا</td><td>كاميرا مجهر رقمي M651</td><td></td></tr><tr><td></td><td>سوني ، اليابان</td><td>SSC-DC58AP</td><td></td></tr><tr><td>الأدوات الجراحية القياسية</td><td>B. براون ، ألمانيا</td><td>بروتوكول رؤية</td><td>متعددة 1.4</td></tr><tr><td>أدوات الجراحة المجهرية</td><td>B. براون ، ألمانيا</td><td>متعددة</td><td>انظر البروتوكول 1.5</td></tr> قضيب <tr><td>مشبك الأوعية الدموية</td><td>B. Braun ، ألمانيا</td><td>FT495T</td><td></td></tr><tr><td>مشابك الأوعية الدموية المؤقتة</td><td>B. براون, ألمانيا</td><td>FT250T</td><td></td></tr><tr><td>الرسم البياني لوحة المنشور البرمجيات الإحصائية&nbsp;</td>برنامج <td>GraphPad ، سان دييغو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية</td><td></td><td>V 6.02 لنظام التشغيل Windows</td></tr></tbody></table>

هلسنكي الجرذ المجهرية جانب الجدار تمدد الأوعية الدموية نموذج

The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model

النماذج التجريبية تمدد الأوعية الدموية كيسية ضرورية لاختبار خيارات العلاج الجراحي واللف والأجهزة الجديدة قبل أن يتم إدخالها في الممارسة السريرية. وعلاوة على ذلك، هناك حاجة إلى نماذج تجريبية لتوضيح البيولوجيا تمدد الأوعية الدموية المعقدة مما يؤدي إلى تمزق تمدد الأوعية الدموية من كيسية. وقد أنشئت عدة أنواع مختلفة من نماذج تجريبية لتمدد الأوعية الدموية كيسية في الأنواع المختلفة. كثير منهم، ومع ذلك، تتطلب مهارات خاصة، معدات باهظة الثمن، أو في البيئات الخاصة، الأمر الذي يحد من استخدامها على نطاق واسع. وهناك حاجة إلى نموذج تجريبي بسيط وقوي، وغير مكلفة كأداة موحدة يمكن استخدامها بطريقة موحدة في مختلف المؤسسات. الفئران المجهرية البطن نموذج جدار الأبهر تمدد الأوعية الدموية يجمع بين إمكانية لدراسة كل استراتيجيات علاجية جديدة اللف والأساس الجزيئي للتمدد الأوعية الدموية في البيولوجيا موحدة وغير مكلفةالطريقة. ويتم حصاد الطعوم موحدة عن طريق الشكل والحجم، والهندسة من الانزلاق الأبهر الصدري فأر المتبرع ومن ثم نقلهم إلى الفئران المتلقي syngenic. تتم خياطة تمدد نهاية إلى جنب مع مستمرة أو توقف 9-0 خيوط النايلون إلى الشريان الأورطي البطني infrarenal. نقدم الإرشادات الإجرائية خطوة بخطوة، معلومات عن المعدات اللازمة، ومناقشة التفاصيل التشريحية والجراحية الهامة لخلق المجهرية الناجح لجدار الأبهر البطني تمدد الأوعية الدموية في الفئران.

تتألف سلسلة الطيار 14 الفئران. بعد ذلك تم تشغيل ما مجموعه 84 الحيوانات وفقا لبروتوكول المعروضة لعدة مشاريع بحثية بين مارس وسبتمبر 2012. إضافية 29 الحيوانات بمثابة المانحين لترقيع الشرايين كيسية. وأجريت التجارب المتبقية باستخدام الطعوم معاملة ما قبل حصادها وتخزينها من التجارب السابقة باستخدام الفئران من نفس الجنس والسلالة والوزن والعمر. وزن الجسم، والوقت التشغيل الشامل، الأبهر الوقت لقط، والوقت لإنشاء مفاغرة، والو...

يتم إنشاء تمدد الأوعية الدموية الجانبي المجهري في الفئران عن طريق مفاغرة طرف إلى جانب لطعم الأبهر في الشريان الأورطي البطني. نقدم إرشادات خطوة بخطوة ونناقش التفاصيل التشريحية والجراحية لإنشاء تمدد الأوعية الدموية الكيسي التجريبي الناجح.

Experimental saccular aneurysm models are necessary for testing novel surgical and endovascular treatment options and devices before they are introduced ...

نموذج تمدد الأوعية الدموية الجداري للجراحة المجهرية في جرذان هلسنكي. يقدم الفيديو التالي أوصافاً تفصيلية لأهم مميزات نموذج تمدد الأوعية الدموية الجداري للجراحة المجهرية في الجرذان الذي تم تطويره في قسم جراحة الأعصاب بالمستشفى الجامعي في هلسنكي، فنلندا. ونعرض هنا تعليمات إجرائية خطوة بخطوة، ومعلومات حول المعدات اللازمة، ونناقش التفاصيل التشريحية والجراحية الهامة لنجاح إنشاء تمدد وعائي جداري مجهري في الجرذان، بالإضافة إلى الأدوات والمستهلكات.يجب الحفاظ على غرفة جراحة الحيوانات الصغيرة هادئة ومعقمة، مع تثبيت درجة حرارة الغرفة عند 23 ± 3 درجة. هناك حد أدنى من المعدات التالية المطلوبة لإجراء جراحة تمدد الأوعية الدموية التجريبية. ويفضل أن يكون المجهر الجراحي الدقيق المكتبي مجهزاً بمنظار مساعد وكاميرا مجهر رقمية.يُستخدم سطح تشغيل قابل لإعادة الاستخدام وغير مسامي وسطح أدوات قابل للتنظيف لحماية مستهلكات طاولة المختبر، مثل مطهرات الجلد، والخطوط الخلوية الفسيولوجية، بمقاسات صغيرة وكبيرة. كما يتم تجهيز مسحات ذهبية ومواد خياطة، بما في ذلك خيوط جراحية دقيقة بمقاس 9/0، وخيوط غير ممتصة بمقاس 5/0، وخيوط ممتصة بمقاس 3/0.يتم طلب الأدوات الجراحية القياسية التالية: مقص جراحي، وملاقط أنسجة، ومباعد للأنسجة الرخوة أو مباعد ذاتي التثبيت، ومشبكان جراحيان من نوع mosquito. وتتضمن مجموعة أدوات الجراحة المجهرية الأساسية حامل إبر مجهري منحني، وملقط مجهري واحد منحني واثنين مستقيمين، ومقص مجهري مستقيم أو منحني. تُحفظ الأدوات المجهرية في وعاء كلوي مملوء بمحلول خلوي معقم لضمان بقاء الأدوات نظيفة وغير لاصقة.أثناء الجراحة. يتم تبطين طبق الكلى بحشيرة مطاطية أو قفاز جراحي لمنع تلف رؤوس الأدوات الدقيقة. بالإضافة إلى ذلك، يلزم وجود أداة وضع مشابك وعائية وثلاثة مشابك وعائية مؤقتة غير صدمية.من المهم أن تكون للملاقط المستخدمة قوة إغلاق منخفضة لمنع إصابة الجدار الرقيق جداً للشريان الأورطي للجرذ. كما نقوم بتجهيز مسطرة ذات مقاييس تقسيم بنصف مليمتر، ووسادة مطاطية صغيرة ملونة، وإبرة قصيرة غير حادة. يتم تخدير الجرذ حسب الوزن عن طريق الحقن تحت الجلد بـ meine hydrochloride بجرعة 0.4 milligram per kilogram والحقن داخل الصفاق بـ ketomine hydrochloride بجرعة 60 milligram per kilogram. يتم اختبار غياب منعكس القرص للتأكد من أن الجرذ في حالة تخدير كامل قبل إجراء شق الجلد. وتتم مراقبة عمق التخدير كل 15 دقيقة أثناء الجراحة من خلال متابعة معدل التنفس، ومعدل ضربات القلب، والاستجابة للمنبهات الضارة.يتم إعطاء حقنة تحت الجلد من البوبرينورفين بجرعة 0.03 milligram per kilogram لتسكين الآلام بعد العملية الجراحية وتكرارها عند الضرورة. يتم حصاد الطعم من الأبهر الجوراسي كل 12 ساعة. ضع الجرذ في وضعية الاستلقاء على الظهر، وثبّت القوائم الأمامية والخلفية باستخدام شريط جراحي دون تطبيق أي شد أو ضغط على الجلد.قم بتطبيق محفز قرصتين مؤلمتين للتأكد من أن الجرذ غير مستجيب تماماً قبل فتح التجويف الصدري. فور فتح التجويف الصدري، يتم تضحية الجرذ عن طريق جرعة زائدة من حقن هيدروكلوريد الكيتامين داخل القلب، ثم يتم تحريك الرئتين إلى الجانب الأيمن من القلب. يتداخل الجذع الرئوي، والوريد تحت الترقوة الأيسر، والوريد القحفي الأيسر، والوريد CVA، والوريد ATUs مع عملية استئصال الشريان الأبهر الصدري القريب بسبب الأوردة البارزة.توجد نقطة دخول مناسبة لبدء تشريح الأبهر الصدري النازل باستخدام مقصات مجهرية وملاقط مجهرية. يتم تتبع الأبهر الصدري من الجدار الظهري للصدر صعوداً نحو قوس الأبهر عن طريق التراجع الكليل اللطيف والتشريح باستخدام مشبك جراحي من نوع "موسكيتو"، حيث يتم تثبيت الأوردة ثم قطعها بالمقصات. يتم الإبقاء على المشابك مثبتة على الأوردة واستخدامها كمباعدات للكشف عن قوس الأبهر الكامن تحتها.يتم وضع رباط فوق الشريان الوربي الأول الخارج من الأبهر مباشرة. ثم يتم قطع الأبهر النازل أسفل الشريان تحت الترقوة الأيسر مباشرة، ثم أسفل الرباط. يمكن إجراء عملية التصريف للحصول على هندسة تمدد وعائي قياسية متعامدة، أو إذا لزم الأمر، للحصول على زاوية محددة بين محور التمدد الوعائي والأبهر.يتم قياس عرض الطعم وطوله. ويمكن إما زراعة الطعوم التي تم حصادها فوراً في الجرذان المستقبلة أو معالجتها بشكل إضافي لتحقيق إزالة الخلايا من جدار الطعم. ويمكن تخزين الطعوم منزوعة الخلايا عند درجة حرارة 4- Celsius حتى إعادة زراعتها.في تاريخ لاحق. لقد تبين أن إزالة الخلايا من جدار تمدد الأوعية الدموية تهيئ التمدد للزيادة في الحجم عند إنشاء تمدد الأوعية الدموية. بعد تخدير الحيوان، يتم قص الفراء من موقع الجراحة وتنظيف الجلد بمطهر مناسب، ثم يُوضع الجرذ في وضع الاستلقاء على الظهر مع تثبيت كل من الأطراف الأمامية والخلفية بشريط جراحي دون تطبيق شد أو ضغط على الجلد، ويُثنى الظهر باستخدام قلم تحديد سميك أو قلم ماركر عن طريق وضعه تحت المنطقة القطنية من الظهر. ومن المهم الحصول على أكبر قدر ممكن من القعس في العمود الفقري القطني من أجل تحسين الكشف عن خلف الصفاق والوصول إلى الأبهر تحت الكلوي، مما يسهل عملية المفاغرة الجراحية المجهرية؛ يتم اختبار غياب رد فعل القرص للتأكد من أن الجرذ مخدر بالكامل قبل إجراء شق الجلد.بعد إجراء الشق في الخط الناصف، يتم تحريك الأمعاء الدقيقة والصائم البارز إلى اليمين أو اليسار. يتم قطع الرباط الموجود بين الأمعاء الدقيقة والقولون النازل في الاتجاه الرأسي. وللسماح بكشف أوسع لجدار الجسم الظهري، يتم وضع مباعد ذاتي التثبيت لإبعاد الأمعاء عن بعضها البعض.يوجد الموقع المثالي لمفاغرة تمدد الشريان الأبهر البطني في المستوى الواقع بين الوريد الكلوي والوريد الحرقفي القطني. ويقع الشريان الأبهر البطني في الحيز خلف البريتوني مغموراً في النسيج الدهني أثناء عملية التشريح. ويجب إيلاء اهتمام خاص للحالب والأوعية الخصوية المزدوجة وشبه الشفافة.يجب إجراء سحب إضافي للأمعاء. يمكن استخدام مساحات قطنية "شبحية" (ghost swabs) أكبر حجماً. السطح البطني لجدار الجسم الظهري مغطى ببريتون جداري رقيق.بمجرد فتح هذا الجزء، يمكن رؤية الأبهر مباشرة تحته أثناء إجراء تشريح دقيق وحذر (حاد وكليل) للأبهر البطني. يجب الإمساك بالمنسوج المحيط فقط لتجنب إتلاف جدار الوعاء الدموي. وتظهر بشكل متكرر شرايين قطنية صغيرة كأوعية قطعية تنشأ من السطح الظهري للأبهر البطني، مما قد يعيق عملية التحضير.يمكن أن يسهل استخدام ملاقط دقيقة منحنية عملية الربط. ويلزم وضع الربط والقطع في عمق الوعاء الدموي لتجنب النزف الارتجاعي. وأثناء خياطة تمدد الأوعية الدموية، يتم وضع وسادة مطاطية ملونة أسفل الأبهر البطني وتدعيمها بقطنة صغيرة من النسيج الضام الرخو، ثم يتم إزالة AIA عند مستوى موقع المفاغرة المخطط له.يتم تثبيت الشريان الأبهر البطني بمشبك أولاً في المنطقة البعيدة عن المفاغرة، ثم في المنطقة القريبة. يضمن ذلك امتلاء الوعاء الدموي بشكل محكم ويسهل عملية شق الشريان اللاحقة. يتم إجراء شق الشريان باستخدام مقصات دقيقة مستقيمة أو منحنية.تُمسك ملقط دقيقة قطعة صغيرة جداً من جدار الوعاء الدموي لقص شكل بيضاوي. يتم غسل الشريان جيداً بخط خلوي في كلا الاتجاهين باستخدام إبرة ذات طرف غير مدبب. يتم وضع أول غرزتين في عملية المفاغرة هذه (من الطرف إلى الجانب) عند الطرفين القريب والبعيد من فتحة الشريان.عند هذه النقطة، يتم إجراء الخياطة إما عن طريق الغرز المستمرة أو الغرز المتقطعة. في حال اختيار الغرز المتقطعة، يتم وضع غرزة الساعة التاسعة في الجانب الخلفي أولاً. مع تجنب الإمساك بجدار الوعاء الدموي باستخدام الملاقط الدقيقة.احرص قدر الإمكان على تمرير كل غرزة عبر جميع طبقات جدار الوعاء. ويمكن توزيع الغرز اللاحقة بمسافات منتظمة، بدءاً من المنطقة المجاورة لأول غرزة في جدران الأوعية على التوالي. يتم الإمساك بالشريان الأصغر الأمامي (AIA) بحذر، مع تجنب عصر أو الإمساك ببطانة الشريان.عند الانتهاء من الجدار الخلفي، يتم فحص الجزء الداخلي من المفاغرة. وفي حال وجود غرز في غير موضعها، تُنفذ الإجراءات نفسها وبالترتيب ذاته على الجانب الأمامي من المفاغرة، وخاصة العقدة الأولى من إجمالي ثلاث عقد. يجب أن يكون الإجراء محكماً ولكن ليس شديد الشد.بعد اكتمال عملية الالتقام الخلوي، يتم شطف الموقع باستخدام خط الخلايا وإزالة المشبك القاصي أولاً للسماح بالتدفق العكسي. وفي حال حدوث نزيف واضح نتيجة التدفق العكسي، قد يلزم وضع غرزة إضافية. أما في حالة الرشح البسيط، فيمكن تحقيق الإرقاء عن طريق الضغط اللطيف على الجانب النازف.باستخدام قطعة صغيرة من سدادة شبحية (ghost swap). ثم تُزال الملقط الوعائي الداني. يتم شطف جانب التوصيل الوعائي مرة أخرى وقص الأطراف المتبقية من الرباط عند قبة تمدد الأوعية الدموية، ثم يتم تقييم نفاذية الشريان البطني القاصي من خلال اختبار الحلب المباشر.تتم إزالة الورقة البلاستيكية ومسحة الشبح الصغيرة الموجودة أسفلها. ويصبح تدفق الدم النابض داخل تمدد الأوعية الدموية الذي تم إنشاؤه مرئياً بوضوح. يمكن تغطية خطوط الخياطة حول المفاغرة بقطع صغيرة من الأنسجة الدهنية أو pongo stand لتحقيق إرقاء إضافي.إذا استمر وجود نضح بسيط، يتم إزالة مباعدة الأنسجة الرخوة ومسحات الشاش. وفي الختام، يعد نموذج تمدد الأوعية الدموية في جرذان هلسنكي طريقة سريعة وبأسعار معقولة ومتسقة لإنشاء تمددات أوعية دموية تجريبية موحدة من حيث الحجم والشكل والتكوين الهندسي للتمدد بالنسبة للشريان الأصلي.

the-helsinki-rat-microsurgical-sidewall-aneurysm-model

Research

JoVE Journal

Medicine

الطب

أم الدم نزيف تحت العنكبوتية (SAH) والذي يحدث نزيف في الفضاء تحت العنكبوتية عندما تمزق تمدد الأوعية الدموية. في حين كانت معدلات الاعتلال والوفيات من هذا الحدث على انخفاض بسبب النهج تحسين العلاج، وخطر بالتشنج بعد نزيف تحت العنكبوتية لا يزال هو نفسه كما كان قبل عدة سنوات. كانت أهمية إنشاء نموذج حيواني شاملة وقابلة للتكرار لتحديد بدء الأحداث من تشنج وعائي دماغي محور البحوث منذ أول استخدام للالفئران في نموذج بالتشنج التجريبية في عام 1979 من قبل...

A فأر معدل وفيات منخفض الموديل بالتشنج الدماغي لتقييم تأخر بعد نزيف تحت العنكبوتية التجريبية

التعديلات النسيجية والكيميائية الحيوية بعد تمدد الأوعية الدموية الاستبعاد endograft لا تزال غير واضحة. وصفنا نموذجا جديدا من زرع endograft على تمدد الأوعية الدموية الفئران. من خلال تحليل خثرة مع وبدون المثابرة تيار الدورة الدموية واجهة، وتقييم المواد الحيوية الجديدة اللف، وهذا النموذج يساعد على فهم أفضل اللف تمدد الأوعية الدموية البيولوجيا المرضية الاستبعاد.

نموذج الفئران من جديد اللف الأورطي إصلاح تمدد الأوعية الدموية

يسمح نموذج إصابة بالون الشريان السباتي الموضح أدناه للباحثين بتقييم الأدوية أو العلاجات التي تنفي تضخم الشرايين الناجم عن الإصابة. يتم وصف التحضير التفصيلي قبل الجراحة والإجراءات الجراحية ورعاية ما بعد الجراحة للحيوان.

بالون إصابة الفئران السباتي نموذج لاختبار التداوي إعادة عرض لمكافحة الأوعية الدموية

حمل الإدراج القسطرة البولي يوريثان في التجويف الابهر وربط خياطة الابهر نقص مزمنة بسبب هيبوبيرفوسيون فاسوروم فاسا أدفينتيتيال. توضح هذه المقالة نموذج حيوان رواية لتمدد الشريان الاورطي البطني (AAA) مع خصائص مشابهة لتلك التي AAA في البشر.

إنشاء نموذج القوارض من الابهر البطني عن طريق حظر أدفينتيتيال Vasa Vasorum التروية

ريبرودوكابل نماذج حيوانية التجريبية اللازمة لاختبار المواد الانصمام الرواية، التي تم تصميمها لمعالجة انسداد اللمفاوية لتمدد الأوعية الدموية داخل الجمجمة (IA). هذه الدراسة تهدف إلى تطوير تقنية جراحية آمنة وموحدة الانصمام ساعد تركيب دعامات من الكييس تمدد الأوعية الدموية في نموذج الفئران حيوان.

العلاج تركيب دعامات المغنيسيوم للتحلل من الكييس تمدد الأوعية الدموية في نموذج الفئران-الأخذ بالأسلوب الجراحي

لا يزال تطوير واختبار الأجهزة داخل الأوعية الدموية لعلاج تمدد الأوعية الدموية داخل الجمجمة ذا أهمية كبيرة. معظم نماذج تمدد الأوعية الدموية المستخدمة اليوم تفتقد إما الخصائص المهمة للجدار الشرياني المتدهور أو ديناميكا الدم للتشعب الحقيقي. لذلك ، كنا نهدف إلى تصميم نموذج جديد لتشعب الجيب الشرياني في الأرانب.

الجيب الشرياني المجهري التشعب تمدد الأوعية الدموية نموذج في الأرنب

هنا، ونحن إنشاء رواية سبراغ دولي (SD) نموذج الفئران من تجلط الجيوب الأنفية القوس متفوقة (SSS) عن طريق طريقة الانسداد الخيط، وتم التحقق من استقرار وموثوقية النموذج.<br...

إنشاء نموذج الفئران من القوس العليا الجيوب الأنفية انسداد عبر طريقة الخيط والانصمام

أجرينا حقنة تتبع الخلايا المحبة للدهون من نقطة واحدة لتتبع الخلايا البطانية ، تليها بضع الشرايين وخياطة تمدد الأوعية الدموية في الجدار الجانبي على الشريان الأورطي للفئران البطنية. بدا أن تكوين Neointima يعتمد على الشريان الأم في تمدد الأوعية الدموية المنزوع الخلايا وتم تعزيزه من خلال التوظيف من خلايا جدار تمدد الأوعية الدموية في الجدران الحيوية الغنية بالخلايا.

استخدام حقن تتبع الخلايا للتحقيق في أصل الخلايا المكونة للنيوينتيما في نموذج الجدار الجانبي العجزي للفئران

هنا ، وصفنا تقنية إنشاء الجراحة المجهرية لتمدد الأوعية الدموية العملاقة في الأرانب لتقييم أجهزة الأوعية الدموية.

إنشاء الجراحة المجهرية لتمدد الأوعية الدموية العملاقة في الأرانب لتقييم أجهزة الأوعية الدموية

يصف هذا البروتوكول طريقة جراحية موحدة لتحريض تمدد الأوعية الدموية السباتي في نموذج الفئران من خلال عملية جراحية واحدة.

نموذج فئران لتكوين تمدد الأوعية الدموية الشريان السباتي

تعلم تقنية الجراحة المجهرية لإنشاء تمدد الأوعية الدموية الجدارية في الجرذان باستخدام نموذج هلسنكي. تقدم هذه الطريقة خطوات مفصلة لإجراء التمفصل من طرف إلى جانب لدراسة تمدد الأوعية الدموية التجريبي.

هلسنكي الجرذ المجهرية جانب الجدار تمدد الأوعية الدموية نموذج

استكشف المزيد من الفيديوهات