-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
التصوير المباشر ل ذبابة الفاكهة اليرقات Neuroblasts
التصوير المباشر ل ذبابة الفاكهة اليرقات Neuroblasts
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Live Imaging of Drosophila Larval Neuroblasts

التصوير المباشر ل ذبابة الفاكهة اليرقات Neuroblasts

Full Text
15,373 Views
09:50 min
July 7, 2014

DOI: 10.3791/51756-v

Dorothy A. Lerit1, Karen M. Plevock1, Nasser M. Rusan1

1National Heart, Lung, and Blood Institute,National Institutes of Health

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

هذا البروتوكول تفاصيل طريقة مبسطة تستخدم لإجراء التصوير الخلية الحية في سياق الدماغ اليرقات سليمة. النهج التصوير الخلية الحية لا تقدر بثمن لدراسة الخلايا الجذعية العصبية الانقسامات غير المتماثلة فضلا عن العمليات العصبية والتنموية الأخرى، كشف باستمرار الآليات التي تم تجاهلها سابقا.

الهدف العام من هذا الإجراء هو تفصيل تشريح الجهاز العصبي المركزي السليم من يرقات الطور الثالث. من أجل دراسة انقسامات الخلايا الجذعية غير المتماثلة والتمايز الخلوي وتشكل الشكل. يتم تحقيق ذلك عن طريق زرع الجهاز العصبي المركزي الأول من جسم اليرقات عن طريق التشريح الإجمالي.

الخطوة الثانية هي عزل الدماغ السليم عن الأنسجة الطرفية عن طريق التشريح الدقيق باستخدام أدوات مخصصة. بعد ذلك ، يتم تركيب الأدمغة السليمة إما لتصوير الخلايا الحية أو إخضاعها للتثبيت الكيميائي والتألق المناعي ، وفي النهاية يتم استخدام الفحص المجهري متحد البؤر للقرص الدوار لإظهار الأحداث التي تحكم انقسامات الخلايا الجذعية العصبية وتوفير نظرة ثاقبة ميكانيكية لتطور الجهاز العصبي المركزي. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجالات سرطان الخلايا الجذعية والتطور العصبي.

من خلال المساهمة في فهمنا لكيفية تنظيم تكاثر الخلايا الجذعية ، نعلم أن انقسام الخلايا الجذعية ABER يرتبط بتكوين الورم وصغر الرأس ، وتكشف دراسات التصوير التي أجريناها عن الآليات التي تنظم انقسامات الخلايا الجذعية هذه. العرض المرئي لهذه الطريقة أمر بالغ الأهمية لأنه يصعب تعلم التشريح الدقيق وتركيب الدماغ لأنهما يتطلبان أيدا ثابتة وصبرا وممارسة. ابدأ هذا الإجراء بوضع قطرتين من وسائط التشريح الدافئة على شريحة زجاجية واحدة ، واحدة للتشريح الإجمالي والأخرى للتشريح الدقيق.

ثم انقل عدة يرقات إلى إحدى قطرات الوسائط. بعد ذلك ، انقل الشريحة الزجاجية مع اليرقات إلى مجهر تشريح. الآن قم بتكبير القطرة التي تحتوي على اليرقات بحيث تكون الأطراف الأمامية والخلفية لليرقات مرئية.

أمسك المنطقة الوسطى من يرقات واحدة بزوج من الملقط وامسك منطقة أخرى بجانبها مباشرة بزوج ثان من الملقط. ثم تمزيق اليرقات إلى نصفين. كرر الإجراءات لجميع اليرقات على الغطاء ، وانزلق وتخلص من النصفين الخلفيين.

قم بتكبير اليرقات بحيث تكون خطافات الفم الأمامية مرئية بوضوح. بعد ذلك ، قم بعمل شق صغير أو شق على الجانب الآخر من خطافات فم اليرقات بين عصابات CLE الصدرية الثالثة والبطنية الأولى. بعد ذلك ، أمسك خطافات الفم بالملقط.

قشر البشرة برفق في الاتجاه الأمامي إلى الخلفي واستمر حتى يتعرض الجهاز العصبي المركزي. ثم قم بتمزيق الأنسجة لعزل الجهاز العصبي المركزي عن بقية اليرقات. احرص على عدم إتلاف الجهاز العصبي المركزي والتخلص من العينات التالفة باستخدام حبل عصبي بطني ممزق أو فصوص بصرية مشوهة.

كرر الإجراءات لجميع اليرقات الموجودة على زلة الغطاء. ثم انقل الأنسجة السليمة المزروعة إلى الوسط النظيف الآخر. اسقط على زلة الغطاء للتشريح الدقيق.

استخدم دبابيس التشريح لإزالة الأنسجة المحيطية من الدماغ. حرك المشرط بين الدماغ والأنسجة غير المرغوب فيها وقم بتثبيت النسيج الضام على الشريحة الزجاجية. استخدم الخطاف لإزالة الأنسجة غير المرغوب فيها برفق مع الضغط في نفس الوقت على المشرط إلى زلة الغطاء في حركات الأرجوحة.

اعمل ببطء وبشكل متعمد لإزالة جميع الأقراص من كل دماغ. توخي الحذر حتى لا تزعج مورفولوجيا الدماغ. سيكون للدماغ السليم حبل عصبي بطني سليم وفصوص بصرية مستديرة متماثلة.

الآن اقلب طبق ثقافة نفاذية للغاز مقاس 50 ملم مع فيلم شفاف مواجه لأعلى ، وقم بإيداع قطرة صغيرة من الوسط في وسط الطبق. بعد ذلك ، استخدم خطافا لالتقاط الأدمغة الموجودة أسفل الفصوص البصرية ونقلها إلى قطرة الوسط على الطبق واحدة تلو الأخرى. اجمع خمسة إلى 10 أدمغة في قطرة المتوسط.

ثم ادفعهم إلى الأسفل واحدا تلو الآخر ، حيث سيحاصر الكثير منهم في الغضروف المفصلي بعد ذلك. قم بتوجيه الأدمغة للسماح بتصوير الخلايا العصبية لتصوير الأرومة العصبية البطنية الأمامية. ضع الأدمغة مع الحبل العصبي البطني المواجه لأعلى لمحاذاة الأدمغة بحيث تشير جميع الحبال العصبية البطنية في نفس الاتجاه داخل المستوى XY.

استخدم حقنة أو ماصة نقل بلاستيكية لوضع أربع قطرات زيت كربون هالة على الغشاء المنفذ للغاز. يجب أن يكون حجم كل قطرة زيت مكافئا لبعضها البعض ولقطرة الوسط. بمجرد اكتمالها ، ستشبه القطرات الخمس الجوانب الخمسة على النرد على الطراز الغربي.

بعد ذلك ، قم بخفض زلة الغطاء على المجموعة بحيث تصل إلى جميع القطرات الخمس في نفس الوقت. يقلل الحفاظ على ضغط متساو عبر العينات من احتمالية تعطلها. انتظر حوالي ثلاث دقائق.

عندما يتشتت الزيت والوسط تحت وطأة الغطاء ينزلق تحت نطاق تشريح. قم بخفض زلة الغطاء على سطح الأدمغة بشكل أكبر عن طريق إزالة الوسائط الزائدة باستخدام فتيل مناديل ورقية حتى يلامس زلة الغطاء ، ولا تتجاوز الأدمغة الفتيل لأن هذا سيؤدي إلى تشويه الأنسجة أو انفجار الدماغ لتصوير الخلايا العصبية البطنية الأمامية. يجب تحريك زلة الغطاء قليلا في اتجاه أطراف الحبل العصبي البطني.

يؤدي هذا إلى دوران الدماغ ، مما يجعل فصوص الدماغ على اتصال مباشر مع زلة الغطاء لتسهيل التصوير ، ثم يتم إغلاق الغرفة بواسطة enc. ينزلق الغطاء بكمية صغيرة من زيت الكربون الهالة. يجب تقليل الزيت الزائد الذي ينزف من زلة الغطاء ومسحه بمنديل.

قبل التصوير. أضف قطرة من زيت الغمر إلى زلة الغطاء فوق الأدمغة المثبتة مباشرة للمساعدة في توسيط الهدف مباشرة فوق العينة. ضع العينة المركبة برفق في حاضنة المرحلة 25 درجة مئوية وقم بتغطية الغرفة بغطاءها.

بعد ذلك ، حدد موقع الخلايا العصبية الدماغية المركزية باستخدام الضوء المنقول من خلال التركيز على الخلايا المستديرة الكبيرة الموجودة في المناطق المركزية والوسطى من الفصوص البصرية. بمجرد وضعه في مكانه ، خذ تعريضات سريعة باستخدام متحد البؤر لتحديد الموقع الصحيح وعمق الخلايا العصبية. حدد العمق إلى أول 10 إلى 15 ميكرومتر.

اضبط حسب الحاجة والتقط صورة اختبار أخرى. للتخلص من الانجراف المحوري ، استخدم جهاز تركيز تلقائي مستمر يستخدم مؤشر LED بالأشعة تحت الحمراء أو قم بتصحيح المستوى البؤري يدويا. بمجرد تحديد الخلايا العصبية ذات الأهمية ، قم بتحسين جميع المعلمات قبل التصوير.

الآن قم بتصوير الخلايا العصبية بأكملها عن طريق جمع 12 إلى 14 صورة متباعدة بميكرومتر واحد في المحور Z. اضبط دقة الوقت لالتقاط دورات خلية مفردة أو متعددة من نفس الخلايا العصبية. استخدم فترات من 10 إلى 32 لتصوير دورة الخلية المفردة وفترات من دقيقة إلى ثلاث دقائق لدورات الخلايا المتعددة.

بعد ذلك ، تأكد من أن العينة صحية من خلال مراقبة مدة الانقسام. إذا استغرق الانقسام أكثر من 15 دقيقة ، فانتقل إلى دماغ آخر. سيظهر الدماغ السليم العديد من الخلايا العصبية في نفس مجال الرؤية ، حيث يخضع لعدة جولات من الانقسام.

بمجرد اكتمال التصوير ، قم بتفكيك غرفة الحضانة وتخلص من كل شيء ما عدا أطباق الزراعة المنفذة للغاز. اشطف سطح طبق الثقافة بنسبة 95٪ من الإيثانول وامسح الزيت بمنديل ورقي. كرر الإجراء مرتين أخريين.

يظهر هنا التصوير الحي لانقسامات الخلايا الجذعية للأرومات العصبية في مستحضرات الجبل الكاملة. هذه هي الصور ذات الفاصل الزمني لدورة خلية واحدة من الخلايا العصبية التي تعبر عن GFP Mosin للتحليل الخلوي الدقيق ، يتم تصوير دورة خلية الخلايا العصبية الواحدة في أقل من 32 فواصل زمنية وهذه هي الصور المتتابعة لدورات انقسام الخلايا المتتالية من الخلايا العصبية التي تعبر عن كل من G-F-P-M-O و GFP المسمى علامة الجسيم المركزي.

لتصوير دورات خلايا الخلايا العصبية المتعددة. عادة ما يتم تصوير الأدمغة على فترات زمنية من دقيقة إلى ثلاث دقائق على مدى ساعتين إلى ثلاث ساعات. يتم عرض الإسقاطات متحدة البؤر للخلايا الجذعية الثابتة من مستحضرات التثبيت المنزلي هنا.

لتصوير كل الخلايا العصبية الموجودة على كلا الفصين البصريين ، يتم استخدام تكبير 20 ×. هذا التحليل مفيد بشكل خاص لفحص مورفولوجيا الدماغ الكلية وتحديد أعداد الخلايا العصبية. يمكن تصور غالبية الخلايا العصبية من فص بصري واحد بتكبير 40 ×.

للتحليل الخلوي التفصيلي لعدد قليل من الخلايا العصبية ، يجب استخدام تكبير 100 ×. يظهر هذا الأرومة العصبية الطافرة العديد من الجسيمات المركزية في كل قطب مغزل. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر تجنب تلف الصورة عن طريق الحد من كمية الضوء التي تصيب العينة.

مهدت

هذه التقنية المتمثلة في تصوير انقسامات الخلايا العصبية الحية في مستحضرات الجبل بالكامل الطريق للباحثين في مجال بيولوجيا الخلايا الجذعية لاستكشاف انقسام الخلايا غير المتماثل في السياق الأصلي الحي لدماغ ذبابة الفاكهة النامي.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 89 والتصوير الحية ذبابة الفاكهة أرومة عصبية الخلايا الجذعية وتقسيم غير المتماثلة والجسيم المركزي والدماغ دورة الخلية الانقسام

Related Videos

يعيش التصوير للهجرة الخلايا الدبقية في القرص العين تخيلي ذبابة الفاكهة

09:12

يعيش التصوير للهجرة الخلايا الدبقية في القرص العين تخيلي ذبابة الفاكهة

Related Videos

11.2K Views

يعيش تصوير ذبابة الفاكهة السوداء البطن هجرات كرية دموية الجنينية

08:35

يعيش تصوير ذبابة الفاكهة السوداء البطن هجرات كرية دموية الجنينية

Related Videos

16K Views

في التصور المجراة من الحويصلات متشابك ضمن محاور عصبية ذبابة الفاكهة القطاعي اليرقات

05:58

في التصور المجراة من الحويصلات متشابك ضمن محاور عصبية ذبابة الفاكهة القطاعي اليرقات

Related Videos

9.8K Views

التصوير الحي لعين ذبابة الفاكهة العذراء باستخدام الفحص المجهري الفلوري

04:22

التصوير الحي لعين ذبابة الفاكهة العذراء باستخدام الفحص المجهري الفلوري

Related Videos

427 Views

باستخدام رقائق الموائع الدقيقة للتصوير لايف ودراسة الردود الإصابات في ذبابة الفاكهة يرقات

11:46

باستخدام رقائق الموائع الدقيقة للتصوير لايف ودراسة الردود الإصابات في ذبابة الفاكهة يرقات

Related Videos

15.8K Views

يعيش التصوير لل ذبابة الفاكهة العذراء العين

09:54

يعيش التصوير لل ذبابة الفاكهة العذراء العين

Related Videos

9.9K Views

الفاصل الزمني التصوير الحي والقياس الكمي لديناميات فرع التقشر السريع في تطوير الخلايا العصبية Drosophila

08:23

الفاصل الزمني التصوير الحي والقياس الكمي لديناميات فرع التقشر السريع في تطوير الخلايا العصبية Drosophila

Related Videos

6.5K Views

LarvaSPA، طريقة لتركيب Drosophila Larva للتصوير على المدى الطويل الفاصل الزمني

08:55

LarvaSPA، طريقة لتركيب Drosophila Larva للتصوير على المدى الطويل الفاصل الزمني

Related Videos

7.9K Views

تشريح وكيمياء الهيستولوجية المناعية وتركيب أدمغة ذبابة الفاكهة اليرقية والبالغة لتصور الفص البصري

11:29

تشريح وكيمياء الهيستولوجية المناعية وتركيب أدمغة ذبابة الفاكهة اليرقية والبالغة لتصور الفص البصري

Related Videos

4.9K Views

تصوير الخلايا الحية لذبابة الفاكهة الميلانوجاستر أدمغة اليرقات الثالثة

07:06

تصوير الخلايا الحية لذبابة الفاكهة الميلانوجاستر أدمغة اليرقات الثالثة

Related Videos

4.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code